L'effet d'un seul probiotique sur le contrôle métabolique dans le diabète de type 2

Des données factuelles ont montré que le microbiote intestinal (MI) joue un rôle dans le développement de maladies métaboliques. Des études récentes ont rapporté que la dysbiose de la MI et l'inflammation de bas grade sont efficaces dans la pathogenèse du diabète sucré de type 2 (T2DM), dont la taille épidémique a augmenté au cours des 20 dernières années. Les ratios de Firmicutes, Bacteroidetes et Proteobacteria chez les patients obèses et DT2 se sont avérés différents de ceux des sujets sains. Dans ces cas, il existe une association entre l'augmentation de la proportion de bactéries gram-négatives dans les intestins et l'inflammation subclinique.

Les probiotiques sont des micro-organismes vivants destinés à avoir des effets bénéfiques sur la santé en régulant l'immunité muqueuse et systémique, lorsqu'ils sont consommés comme complément nutritionnel. Il existe des études portant sur les effets de l'utilisation de probiotiques sur la sensibilité à l'insuline, le contrôle glycémique, le profil lipidique et les paramètres inflammatoires chez les patients atteints de DT2. Cependant, plusieurs souches de probiotiques ont été utilisées fréquemment dans ces études, ou des probiotiques et des prébiotiques ont été administrés en cocktails. Leurs effets peuvent être combinés ou même synergiques. Lactobacillus rhamnosus GG (ou Lactobacillus GG : LGG) est un micro-organisme probiotique largement utilisé. Des études ont montré que le LGG prévient la diarrhée et la dermatite atopique, fournit une activité antitumorale, améliore le système immunitaire et abaisse le taux de cholestérol sérique. Cependant, il existe peu de données sur les effets du LGG sur le contrôle glycémique des modèles animaux diabétiques, mais les études humaines sont rares.

Par conséquent, la présente étude vise à déterminer les effets du LGG sur le contrôle glycémique, le profil lipidique, les paramètres d'inflammation et l'expression de certains gènes liés au DT2.

Les sujets seront assignés au hasard pour recevoir le probiotique "Lactobacillus Rhamnosus GG (ATCC 53103)" ou un placebo pendant 8 semaines administré sous forme de goutte. Les patients du groupe d'intervention reçoivent 10 gouttes de probiotiques (1x1010 cfu LGG) une fois par jour avec le petit-déjeuner. Les sujets seront contactés par téléphone chaque semaine pour une évaluation des événements indésirables et de la conformité aux probiotiques/placebos. Des échantillons de sang à jeun seront prélevés au départ et après le traitement pour mesurer le métabolisme des glucides (glucose, insuline, fructosamine et HbA1c), le profil lipidique (triglycérides ; cholestérol total, HDL et LDL) et les biomarqueurs de l'inflammation (hs-CRP et IL- 6). Les expressions des gènes TLR2, TLR4, MUC2 et MUC3A seront étudiées sur des échantillons de selles au départ et après le traitement. Les échantillons de selles seront conservés à -80 °C jusqu'à l'isolement de l'ARN. Les niveaux d'expression génique seront déterminés par la méthode de PCR quantitative en temps réel à l'aide des échantillons d'ADNc déterminés. L'apport alimentaire sera évalué par le carnet alimentaire de 3 jours. Au cours de la 4ème et de la 8ème semaine de l'étude, un relevé de consommation alimentaire de 3 jours sera effectué. Les diabétiques recevront des instructions orales et écrites détaillées concernant la réalisation du registre alimentaire, composé de 2 jours en milieu de semaine et 1 jour de week-end. Afin de déterminer correctement les quantités d'aliments consommés, des informations seront données sur les tasses à mesurer telles que verre à eau, verre à thé, cuillère à café, cuillère à soupe, cuillère de service, bol. L'apport alimentaire sera évalué à l'aide d'une base de données sur la composition des aliments du programme BEBIS, y compris des aliments turcs spécifiques. Toutes les mesures anthropométriques seront effectuées dans un état de jeûne pris au départ et après une intervention de 8 semaines par un examinateur expérimenté (diététiste). Le poids corporel et la composition corporelle seront évalués par un appareil d'analyse d'impédance bioélectrique (Tanita BC-420 MA). L'indice de masse corporelle (IMC) sera calculé comme le poids (kg) divisé par la taille au carré (m2). Le tour de taille (mesuré à mi-chemin entre la côte la plus basse et la crête iliaque) sera mesuré à l'aide d'un ruban à mesurer non extensible.

Toutes les analyses seront effectuées à l'aide du progiciel SPSS (Statistical Package for Social Sciences) 21.0 et la signification sera définie comme p<0,05. Les statistiques descriptives seront données sous forme de moyenne, d'écart-type et de médiane (du minimum au maximum) pour les mesures continues. Les variables catégorielles seront exprimées sous forme de nombres de cas et de pourcentages. Les tests de Shapiro-Wilk seront utilisés pour déterminer si la distribution des mesures continues est normale. Le test t de Student et le test de Mann-Whitney-U seront utilisés pour les comparaisons des deux groupes selon que les variables ont montré ou non une distribution normale. Les comparaisons des changements dans les groupes en eux-mêmes (avant et après l'administration de probiotiques ou de placebo) seront effectuées à l'aide du test t si les variances sont normales et si le test de Wilcoxon n'est pas normal dans la cohorte. Le programme Web d'analyse de données RT2 Profiler PCR Array sera utilisé pour déterminer le changement des valeurs ΔCt obtenues à partir de l'étude d'expression génique PCR en temps réel (avant et après l'administration de probiotiques et de placebo). p<0,05 sera considéré comme statistiquement significatif.