Réponse inflammatoire sous-cutanée humaine aux capteurs de glucose (TISSUESENSOR)

Dix-huit patients atteints de diabète de type 1 vont être inclus. Objectifs principaux

1. Définir la variabilité intra-individuelle et inter-individuelle du nombre de macrophages autour du capteur
2. Évaluer s'il existe une relation entre le nombre de macrophages, la fibrose et le MARD du registre MCG.

Objectifs secondaires 1. Décrire l'histologie de la réponse tissulaire. Ce descriptif comprendra :

1. Coloration HE : types cellulaires, disposition, structures vasculaires, signes d'hémorragie-caillot. Coloration de Giemsa : mastocytes. Coloration trichrome de Masson : str. vasculaire.

2. Immunohistochimie : Bilan vasculaire, caractérisation des macrophages (CD 68 +), macrophages de type 1 (CD 68 + CD 163 -), macrophages de type 2 (CD 163 +), CD31 comme marqueur vasculaire, mastocytes CD 117 2. Décrire les accumulation de protéines (biofouling) qui se produit à la surface du capteur.

   Critères d'inclusion 1. Diabète de type 1 (plus de 6 mois d'ancienneté), confirmé par la positivité aux Ac antiGAD 65 2. Être un utilisateur régulier d'un système de surveillance continue de la glycémie 3. Comprendre le protocole proposé et accepter la participation. Critère d'exclusion

   1. Traitement par des médicaments susceptibles de modifier la réponse inflammatoire dans les 10 jours précédant l'intervention (anti-inflammatoires non stéroïdiens ou corticoïdes, antioxydants ou antiagrégants plaquettaires).

   Chaque patient aura 1 capteur de glucose inséré dans le bras non dominant. L'HbA1c sera déterminée (HbA1c ; DCA 2000+ ; Siemens Healthcare Diagnostics).

   . Pendant la durée de vie utile du capteur (10), un minimum de 4 mesures de glycémie capillaire/jour seront effectuées (avant le petit-déjeuner, avant le déjeuner, avant le dîner, avant d'aller au lit) ; (obtention de 1 microL de sang total) en utilisant toujours le même glucomètre.

   Le capteur a une longueur de 8 mm et un diamètre de 0,4 mm. Tout le matériel nécessaire sera fourni, y compris un journal de contrôle pour aider le patient à se souvenir d'effectuer l'autocontrôle et à définir sa répartition temporelle.

   Le dernier jour d'utilisation du capteur, il sera retiré et une biopsie cutanée à l'emporte-pièce de 4 mm sera effectuée 5 minutes plus tard.

   Des échantillons de tissus seront fixés dans une solution de formaldéhyde à 4 %, des blocs de paraffine fabriqués et sectionnés. Les échantillons résultants seront colorés avec de l'hématoxyline/éosine (HE), du trichrome de Giemsa et de Masson. Un dosage semi-quantitatif des lymphocytes, neutrophiles, mastocytes, macrophages (- 0 ; +/- <20 ; + 20-40 ; ++ 40-80 ; +++ > 80 cellules / champ fort) sera réalisé ; fibrine, fibrose, prolifération vasculaire et caryorrhexis (-, absent ; +/-, très léger ; +, léger, ++, modéré ; +++, sévère).

   Un sous-groupe de 6 capteurs de 6 patients sera coupé avec un scalpel de la racine et stocké dans du glutaraldéhyde à 4 ° C pour une évaluation par microscopie électronique à balayage.

   Dans tous les cas, une étude immunohistochimique quantitative sera réalisée avec comptage de terrain x40 avec photographies et grille (Dako omnis avec système envision) pour : Macrophages phénotype I (CD68), phénotype II CD163 • mastocytes (CD 117)

   • prolifération vasculaire (CD34)
   • TGFb

   Le moniteur-glucomètre sera récupéré pour téléchargement et étude du dossier. Les couples glucose interstitiel - sang seront réalisés avec ceux enregistrés mais non utilisés pour la calibration.