- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT06056791
Étude d'INKmune chez des patients atteints de mCRPC (CaRe Prostate) (CaRe)
Une étude ouverte de phase I/IIa sur l'augmentation et l'expansion de la dose pour déterminer l'innocuité et l'activité clinique d'une thérapie cellulaire d'amorçage immunitaire (INKmune) chez les patients atteints d'un cancer de la prostate métastatique résistant à la castration (mCRPC)
Aperçu de l'étude
Statut
Intervention / Traitement
Description détaillée
Il s'agit d'une étude ouverte de phase I/IIa d'augmentation et d'expansion de dose d'INKmune chez les hommes atteints de mCRPC. INKmune est administré aux patients par voie intraveineuse en 3 doses. Les 3 perfusions se dérouleront sur une période minimale de 2 semaines, chaque perfusion étant espacée d'au moins 1 semaine. L'étude comprendra 2 étapes :
- Augmentation de la dose : exploration des niveaux de dose de 1x10^8, 3x10^8 et 5x10^8 cellules par perfusion (18 patients projetés).
- Expansion de la dose : après l'arrêt de mBOIN et l'identification de la dose maximale tolérée (DMT), 12 patients seront inscrits dans jusqu'à 2 niveaux de dose optimaux candidats pour la détermination finale de la dose optimale.
Les patients éligibles signeront un consentement éclairé avant toute évaluation de l'étude. Les patients ont jusqu’à 30 jours pour faire évaluer toutes les procédures de dépistage et leur éligibilité. Les patients recevront une perfusion d'INKmune les jours 1, 8 et 15. Les patients se présenteront également sur site les jours 29, 57, 85, 113 et 141 pour compléter les évaluations de l'étude. Le jour 169 est la dernière visite d'étude et le patient aura terminé l'essai une fois cette visite terminée. L'option d'inscription au registre de suivi à long terme INKmune sera présentée lors de la visite du jour 169.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Phase
- Phase 2
- La phase 1
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
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California
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Los Angeles, California, États-Unis, 90095
- University of California, Los Angeles
-
Los Angeles, California, États-Unis, 90073
- VA Greater Los Angeles Healthcare System
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Nevada
-
Las Vegas, Nevada, États-Unis, 89169
- Comprehensive Cancer Centers of Nevada
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Ohio
-
Cincinnati, Ohio, États-Unis, 45219
- Carl & Edyth Lindner Center for Research and Education at The Christ Hospital and The Christ Hospital Cancer Center
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Texas
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El Paso, Texas, États-Unis, 79915
- Renovatio Clinical
-
The Woodlands, Texas, États-Unis, 77380
- Renovatio Clinical
-
-
Virginia
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Fairfax, Virginia, États-Unis, 22031
- NEXT Virginia
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Washington
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Seattle, Washington, États-Unis, 98108
- VA Puget Sound Health Care System
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
- Adulte
- Adulte plus âgé
Accepte les volontaires sains
La description
Critère d'intégration:
- Sujets masculins de plus de 18 ans au moment de la sélection.
- Antigène sanguin spécifique de la prostate (PSA) > 1,0 ng/ml au moment du dépistage.
- Statut de performance de l'Eastern Cooperative Oncology Group (ECOG) 0-1 au moment de la sélection.
- Confirmation histologique du cancer de la prostate adénocarcinome.
- Un diagnostic de cancer de la prostate métastatique résistant à la castration (mCRPC), tel que défini par le groupe de travail 3 sur les essais cliniques sur le cancer de la prostate (PCWG3), après un traitement par privation androgénique (TAD) et au moins un inhibiteur de signalisation des récepteurs androgènes, mais pas plus de 3 traitements dans en plus de l'ADT. Maladie évolutive au moment de l'entrée à l'étude, comme indiqué par au moins l'un des éléments suivants : i. Au moins deux valeurs de PSA croissantes à un intervalle minimum d'une semaine. Si le PSA est la seule mesure de progression, alors la valeur minimale du PSA au début du traitement doit être ≥ 1 ng/mL. ii. Progression radiographique selon RECIST1.1 pour les tissus mous (au moins 1 lésion mesurable selon RECIST 1.1), et/ou iii. Progression des métastases osseuses.
- Niveau de castration de testostérone < 50 ng/dL.
Fonctionnement adéquat des organes indiqué par les paramètres de laboratoire suivants :
je. Hémoglobine ≥ 8,0 g/dL. ii. Nombre de globules blancs (WBC) ≥ 3,0 x 10⁹/L. iii. Lymphocytes ≥ 80 % LLN iv. Nombre absolu de neutrophiles (ANC) ≥ 1,5 x 10⁹/L. v. Plaquettes ≥ 100 x 10⁹/L. vi. PT et APTT <1,5x LSN (sauf si vous recevez une anticoagulation thérapeutique). vii. AST ou ALT ≤ 2,5x LSN. AST ou ALT ≤ 5x LSN pour les patients présentant des métastases hépatiques.
viii. Bilirubine < 1,5x LSN (< 3x LSN dans le syndrome de Gilbert). ix. Clairance de la créatinine/DFG estimé ≥ 50 ml/min (MDRD ou Cockcroft-Gault). X. Saturation en PaO2 de l'air de la salle de repos > 95 %, mesurée par oxymétrie de pouls.
- Dépistage négatif du virus de l'immunodéficience humaine (VIH), de l'antigène du virus de l'hépatite B (VHB) et du virus de l'hépatite C (VHC). Si les tests ont été effectués au cours des trois derniers mois, il n'est pas nécessaire de répéter les tests si la documentation des résultats est fournie au site d'étude.
- Les sujets et leurs partenaires en âge de procréer doivent accepter d'utiliser une forme efficace de contraception pendant la période d'administration du médicament et pendant trois mois après la fin de la dernière administration du médicament à l'étude. Une forme efficace de contraception est définie comme un contraceptif oral associé à une forme de méthode barrière ou à une méthode à double barrière (préservatif avec spermicide ou préservatif avec diaphragme).
- Les sujets doivent être capables de comprendre les risques et les avantages potentiels de l'étude et être capables de lire et de donner leur consentement éclairé écrit.
Critère d'exclusion:
Le participant ne peut pas participer à l’étude si l’une des conditions suivantes s’applique :
- Diagnostic du cancer de la prostate à petites cellules/neuroendocrinien. La coloration immunohistochimique des marqueurs neuroendocriniens (par exemple, la chromogranine A, l'énolase spécifique des neurones et la synaptophysine) n'est pas suffisante pour établir une histologie neuroendocrinienne à petites cellules ; les caractéristiques morphologiques caractéristiques du cancer de la prostate à petites cellules/neuroendocrine sont nécessaires pour confirmer la présence d'un cancer de la prostate à petites cellules/neuroendocrine.
- Antécédents de cancer malin concomitant au cours des 3 années précédentes, à l'exception des carcinomes in situ et du cancer de la peau autre que le mélanome.
- Maladie auto-immune non contrôlée, notamment le lupus érythémateux disséminé, la polyarthrite rhumatoïde, la colite ulcéreuse, la maladie de Crohn, l'artérite temporale et la thyroïdite. Les maladies auto-immunes qui sont bien contrôlées de l'avis de l'investigateur doivent d'abord être discutées avec le promoteur avant l'inscription.
- Un besoin de corticostéroïdes systémiques quotidiens pour quelque raison que ce soit ; ou d'autres agents immunosuppresseurs ou immunomodulateurs. Les corticostéroïdes topiques, nasaux, oraux à libération modifiée et/ou physiologiques peuvent être autorisés après discussion avec le promoteur.
- Maladie cardiaque cliniquement significative (classe III/IV de la New York Heart Association) ou maladie pulmonaire débilitante grave.
- Patients ayant des antécédents actuels ou récents, tels que déterminés par l'enquêteur, de maladies rénales, hépatiques, hématologiques, endocriniennes, pulmonaires, cardiaques, gastro-entérologiques ou neurologiques incontrôlées.
- Chimiothérapie cytotoxique dans les trois semaines précédant le début du traitement à l'étude (jour 1).
- Radiothérapie dans les deux semaines précédant le début du traitement à l'étude (jour 1).
- Les patients peuvent ne pas avoir reçu de traitement antérieur à base de NK.
- Preuve d'une maladie métastatique du système nerveux central (SNC) lors du dépistage.
- Patients présentant une infection active nécessitant un traitement antibiotique dans les sept jours suivant le début du traitement à l'étude (jour 1).
- Administration de vaccins vivants atténués dans les huit semaines suivant le début du traitement à l'étude (jour 1) et tout au long de l'étude.
- Toute autre condition médicale qui, de l'avis de l'enquêteur, peut interférer avec la participation ou le respect d'un sujet à l'étude.
- Participation à une étude de recherche thérapeutique ou réception d'un médicament expérimental dans les 4 semaines suivant le début du traitement (jour 1) ou 5 demi-vies, selon la première éventualité.
- Survie attendue de moins de six mois
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Traitement
- Répartition: Non randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation séquentielle
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Expérimental: Cohorte 1 : 1 x 10^8 INKmune
En augmentation de dose : la thérapie INKmune sera administrée par une injection intraveineuse lente via un ensemble de don de sang conventionnel. Environ 18 patients recevront 3 doses IV hebdomadaires d'INKmune les jours 1, 8 et 15 selon les indications ci-dessous :
En expansion de dose : la thérapie INKmune sera administrée par une injection intraveineuse lente via un ensemble de don de sang conventionnel. Environ 12 patients recevront 3 doses IV hebdomadaires d'INKmune les jours 1, 8 et 15 selon les indications ci-dessous : Après l'arrêt de mBOIN et l'identification du MTD, les patients seront inscrits dans jusqu'à deux niveaux de dose optimaux candidats (pas plus élevés que le MTD) pour la détermination finale de la dose optimale. |
INKmune est un système et une méthode brevetés d'administration de produits biologiques pour le traitement du cancer utilisant l'amorçage et l'activation in vivo de cellules tueuses naturelles (NK) afin de réaliser la lyse des cellules tumorales.
INKmune est une suspension de cellules INB16 rendues incompétentes pour la réplication et ne nécessitant pas de correspondance avec un donneur.
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Expérimental: Cohorte 2 : 3 x 10^8 INKmune
En augmentation de dose : la thérapie INKmune sera administrée par une injection intraveineuse lente via un ensemble de don de sang conventionnel. Environ 18 patients recevront 3 doses IV hebdomadaires d'INKmune les jours 1, 8 et 15 selon les indications ci-dessous :
En expansion de dose : la thérapie INKmune sera administrée par une injection intraveineuse lente via un ensemble de don de sang conventionnel. Environ 12 patients recevront 3 doses IV hebdomadaires d'INKmune les jours 1, 8 et 15 selon les indications ci-dessous : Après l'arrêt de mBOIN et l'identification du MTD, les patients seront inscrits dans jusqu'à deux niveaux de dose optimaux candidats (pas plus élevés que le MTD) pour la détermination finale de la dose optimale. |
INKmune est un système et une méthode brevetés d'administration de produits biologiques pour le traitement du cancer utilisant l'amorçage et l'activation in vivo de cellules tueuses naturelles (NK) afin de réaliser la lyse des cellules tumorales.
INKmune est une suspension de cellules INB16 rendues incompétentes pour la réplication et ne nécessitant pas de correspondance avec un donneur.
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Expérimental: Cohorte 3 : 5 x 10^8 INKmune
En augmentation de dose : la thérapie INKmune sera administrée par une injection intraveineuse lente via un ensemble de don de sang conventionnel. Environ 18 patients recevront 3 doses IV hebdomadaires d'INKmune les jours 1, 8 et 15 selon les indications ci-dessous :
En expansion de dose : la thérapie INKmune sera administrée par une injection intraveineuse lente via un ensemble de don de sang conventionnel. Environ 12 patients recevront 3 doses IV hebdomadaires d'INKmune les jours 1, 8 et 15 selon les indications ci-dessous : Après l'arrêt de mBOIN et l'identification du MTD, les patients seront inscrits dans jusqu'à deux niveaux de dose optimaux candidats (pas plus élevés que le MTD) pour la détermination finale de la dose optimale. |
INKmune est un système et une méthode brevetés d'administration de produits biologiques pour le traitement du cancer utilisant l'amorçage et l'activation in vivo de cellules tueuses naturelles (NK) afin de réaliser la lyse des cellules tumorales.
INKmune est une suspension de cellules INB16 rendues incompétentes pour la réplication et ne nécessitant pas de correspondance avec un donneur.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Déterminer la concentration optimale de thérapie INKmune à utiliser chez les patients atteints de mCRPC.
Délai: 2-3 ans
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Mesure du pourcentage de cellules NK activées par le sang périphérique (mémoire comme le phénotype des cellules NK) par cytométrie en flux jusqu'à> 2 fois le pourcentage de pré-traitement.
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2-3 ans
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Déterminer la concentration optimale de thérapie INKmune à utiliser chez les patients atteints de mCRPC.
Délai: 2-3 ans
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Mesure de l'antigène spécifique de la prostate (PSA) pour déterminer le pourcentage de patients qui diminuent le PSA de ≥ 30 % pendant le traitement.
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2-3 ans
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Déterminer la concentration optimale de thérapie INKmune à utiliser chez les patients atteints de mCRPC.
Délai: 2-3 ans
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Mesure de la charge de morbidité telle que déterminée par tomographie par émission de positrons (TEP) de l'antigène membranaire spécifique de la prostate (PMSA).
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2-3 ans
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Déterminer la concentration optimale de thérapie INKmune à utiliser chez les patients atteints de mCRPC.
Délai: 2-3 ans
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Mesure du changement dans l'ADN tumoral circulant (ADNc).
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2-3 ans
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Évaluer la sécurité et la tolérabilité de la thérapie INKmune chez les patients atteints de mCRPC.
Délai: 2-3 ans
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Mesure de la fréquence et de la gravité des toxicités limitant la dose (DLT).
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2-3 ans
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Évaluer la sécurité et la tolérabilité de la thérapie INKmune chez les patients atteints de mCRPC.
Délai: 2-3 ans
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Identification MTD, si disponible.
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2-3 ans
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Évaluer la sécurité et la tolérabilité de la thérapie INKmune chez les patients atteints de mCRPC.
Délai: 2-3 ans
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Mesure de la fréquence et de la gravité des événements indésirables (EI).
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2-3 ans
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Évaluer la sécurité et la tolérabilité de la thérapie INKmune chez les patients atteints de mCRPC.
Délai: 2-3 ans
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Mesure de la fréquence et de la gravité des événements indésirables graves (EIG).
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2-3 ans
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Évaluer l'efficacité clinique globale du traitement INKmune chez les patients utilisant RECIST.
Délai: 2-3 ans
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Évaluation basée sur les critères d'évaluation de la réponse modifiés (RECIST) version 1.1 actuels du groupe de travail 3 sur le cancer de la prostate (PCWG3), le cas échéant.
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2-3 ans
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Évaluer l'efficacité clinique globale du traitement INKmune chez les patients utilisant le PSA.
Délai: 2-3 ans
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Mesure de la réponse PSA en utilisant le taux de réponse PSA50.
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2-3 ans
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Évaluer l'efficacité clinique globale du traitement INKmune chez les patients utilisant le PSA.
Délai: 2-3 ans
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Mesure de la période pendant laquelle le PSA diminue de ≥30 %.
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2-3 ans
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Évaluer l'efficacité clinique globale du traitement INKmune chez les patients utilisant le PSA.
Délai: 2-3 ans
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Mesure de la période pendant laquelle le PSA est inférieur à la ligne de base.
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2-3 ans
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Évaluer l'efficacité clinique globale du traitement INKmune chez les patients en utilisant les données de survie.
Délai: 2-3 ans
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Mesure de la survie sans progression (PFS).
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2-3 ans
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Évaluer l'efficacité clinique globale du traitement INKmune chez les patients en utilisant les données de survie.
Délai: 2-3 ans
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Mesure de la survie sans progression radiologique (rPFS).
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2-3 ans
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Évaluer l'efficacité clinique globale du traitement INKmune chez les patients utilisant la réponse à la maladie.
Délai: 2-3 ans
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Mesure du taux de réponse objective (ORR)
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2-3 ans
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Évaluer l'efficacité clinique globale du traitement INKmune chez les patients utilisant la réponse à la maladie.
Délai: 2-3 ans
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Mesure du taux de contrôle de la maladie.
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2-3 ans
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Évaluer l'efficacité clinique globale du traitement INKmune chez les patients en utilisant les données de survie.
Délai: 2-3 ans
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Mesure de la survie globale (OS).
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2-3 ans
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Autres mesures de résultats
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Évaluez la persistance de la mémoire comme le numéro de cellule Natural Killer (NK).
Délai: 2-3 ans
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Évaluez la persistance de la mémoire comme le numéro de cellule Natural Killer (NK).
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2-3 ans
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Déterminer l’infiltration de cellules NK endogènes à partir du tissu de biopsie facultative et du tissu précédemment réséqué (si disponible).
Délai: 2-3 ans
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Les tissus de biopsie facultatifs et les tissus préalablement réséqués seront analysés par immunohistochimie (IHC) et séquençage de l'ARN des échantillons pathologiques du patient.
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2-3 ans
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Déterminer l’expression stromale des ligands inhibiteurs à partir du tissu de biopsie facultatif et du tissu précédemment réséqué (si disponible).
Délai: 2-3 ans
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Les tissus de biopsie facultatifs et les tissus préalablement réséqués seront analysés par immunohistochimie (IHC) et séquençage de l'ARN des échantillons pathologiques du patient.
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2-3 ans
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Analyses transcriptomiques complètes à partir de tissus de biopsie facultative et de tissus précédemment réséqués (si disponibles).
Délai: 2-3 ans
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Les tissus de biopsie facultatifs et les tissus préalablement réséqués seront analysés par immunohistochimie (IHC) et séquençage de l'ARN des échantillons pathologiques du patient.
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2-3 ans
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Évaluer l'activité de la thérapie INKmune par rapport à la séquence de traitement mCRPC reçu par les patients.
Délai: 2-3 ans
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Le résultat sera évalué par l'examen des antécédents médicaux et la collecte de visites de suivi de sécurité pour enregistrer les traitements mCRPC après la fin de l'essai clinique par rapport au pourcentage de cellules NK activées par le sang périphérique (mémoire comme le phénotype des cellules NK) par cytométrie en flux.
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2-3 ans
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Évaluer l'expérience de participation des patients aux essais cliniques grâce à une enquête complète auprès des patients fournie après la visite à 3 moments au cours de l'essai.
Délai: 1-2 ans
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Amélioration de la qualité : évaluer l'expérience de participation des patients aux essais cliniques au moyen de questionnaires destinés aux patients collectés tout au long de l'essai clinique. Des questionnaires seront fournis à 3 moments pendant la participation à l'étude après les visites d'étude. Comprendre les expériences des patients tout au long de leur participation à l'essai clinique, au moyen de questionnaires destinés aux patients (réponses à sélectionner sur une échelle de « 1 à 5 », « 1 » étant très mauvais et « 5 » étant très bon), pour évaluer les perceptions des patients dans les domaines suivants :
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1-2 ans
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Explorez la relation entre la persistance des cellules INKmune chez les patients traités par INKmune et la réponse à la maladie ressentie jusqu'au jour 169.
Délai: 1-169 jours
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La relation sera explorée par cytométrie en flux multiparamétrique et destruction tumorale des cibles tumorales résistantes à la NK (cellules RAJI) dans le sang des patients après traitement par INKmune.
La réponse à la maladie sera évaluée à partir des données RECIST, PSMA et PSA.
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1-169 jours
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Déterminer la concentration des niveaux d'ADN tumoral circulant (ADNc) et la réponse au traitement chez les patients disposant de données sur l'ADNc.
Délai: 1-169 jours
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La relation entre les niveaux d'ADNc et la réponse au traitement sera évaluée par la collecte de tests d'ADNc en série chez les patients ayant un ADN tumoral disponible avant le traitement.
Les collectes d'ADNct auront lieu au jour 1, au jour 57 et au jour 169.
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1-169 jours
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Déterminer l'évolution des taux sanguins de PSA par rapport à l'évolution de la charge tumorale, telle qu'évaluée par RECIST v1.1 et la TEP Pylarify PSMA (piflufolastat F 18) pour chaque patient traité par INKmune.
Délai: 1-169 jours
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La relation entre les taux sanguins de PSA et l'évolution de la charge tumorale sera évaluée par la collecte du taux sérique de PSA et de la charge de morbidité mesurable évaluée par RECIST v1.1, les critères PCWG3 et la TEP Pylarify PSMA (piflufolastat F 18). Le PSA sera collecté lors du dépistage et à chaque visite suite aux 3 doses d'INKmune.
Les scans PSMA PET seront effectués au jour 1, au jour 57 et au jour 169.
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1-169 jours
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Directeur d'études: Tara Lehner, INmune Bio
Publications et liens utiles
Publications générales
- Yuan Y, Hess KR, Hilsenbeck SG, Gilbert MR. Bayesian Optimal Interval Design: A Simple and Well-Performing Design for Phase I Oncology Trials. Clin Cancer Res. 2016 Sep 1;22(17):4291-301. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-16-0592. Epub 2016 Jul 12.
- de Bono JS, Oudard S, Ozguroglu M, Hansen S, Machiels JP, Kocak I, Gravis G, Bodrogi I, Mackenzie MJ, Shen L, Roessner M, Gupta S, Sartor AO; TROPIC Investigators. Prednisone plus cabazitaxel or mitoxantrone for metastatic castration-resistant prostate cancer progressing after docetaxel treatment: a randomised open-label trial. Lancet. 2010 Oct 2;376(9747):1147-54. doi: 10.1016/S0140-6736(10)61389-X.
- Torre LA, Bray F, Siegel RL, Ferlay J, Lortet-Tieulent J, Jemal A. Global cancer statistics, 2012. CA Cancer J Clin. 2015 Mar;65(2):87-108. doi: 10.3322/caac.21262. Epub 2015 Feb 4.
- Siegel RL, Miller KD, Jemal A. Cancer statistics, 2020. CA Cancer J Clin. 2020 Jan;70(1):7-30. doi: 10.3322/caac.21590. Epub 2020 Jan 8.
- Ferlay J, Soerjomataram I, Dikshit R, Eser S, Mathers C, Rebelo M, Parkin DM, Forman D, Bray F. Cancer incidence and mortality worldwide: sources, methods and major patterns in GLOBOCAN 2012. Int J Cancer. 2015 Mar 1;136(5):E359-86. doi: 10.1002/ijc.29210. Epub 2014 Oct 9.
- James ND, de Bono JS, Spears MR, Clarke NW, Mason MD, Dearnaley DP, Ritchie AWS, Amos CL, Gilson C, Jones RJ, Matheson D, Millman R, Attard G, Chowdhury S, Cross WR, Gillessen S, Parker CC, Russell JM, Berthold DR, Brawley C, Adab F, Aung S, Birtle AJ, Bowen J, Brock S, Chakraborti P, Ferguson C, Gale J, Gray E, Hingorani M, Hoskin PJ, Lester JF, Malik ZI, McKinna F, McPhail N, Money-Kyrle J, O'Sullivan J, Parikh O, Protheroe A, Robinson A, Srihari NN, Thomas C, Wagstaff J, Wylie J, Zarkar A, Parmar MKB, Sydes MR; STAMPEDE Investigators. Abiraterone for Prostate Cancer Not Previously Treated with Hormone Therapy. N Engl J Med. 2017 Jul 27;377(4):338-351. doi: 10.1056/NEJMoa1702900. Epub 2017 Jun 3.
- Kyriakopoulos CE, Chen YH, Carducci MA, Liu G, Jarrard DF, Hahn NM, Shevrin DH, Dreicer R, Hussain M, Eisenberger M, Kohli M, Plimack ER, Vogelzang NJ, Picus J, Cooney MM, Garcia JA, DiPaola RS, Sweeney CJ. Chemohormonal Therapy in Metastatic Hormone-Sensitive Prostate Cancer: Long-Term Survival Analysis of the Randomized Phase III E3805 CHAARTED Trial. J Clin Oncol. 2018 Apr 10;36(11):1080-1087. doi: 10.1200/JCO.2017.75.3657. Epub 2018 Jan 31.
- James ND, Sydes MR, Clarke NW, Mason MD, Dearnaley DP, Spears MR, Ritchie AW, Parker CC, Russell JM, Attard G, de Bono J, Cross W, Jones RJ, Thalmann G, Amos C, Matheson D, Millman R, Alzouebi M, Beesley S, Birtle AJ, Brock S, Cathomas R, Chakraborti P, Chowdhury S, Cook A, Elliott T, Gale J, Gibbs S, Graham JD, Hetherington J, Hughes R, Laing R, McKinna F, McLaren DB, O'Sullivan JM, Parikh O, Peedell C, Protheroe A, Robinson AJ, Srihari N, Srinivasan R, Staffurth J, Sundar S, Tolan S, Tsang D, Wagstaff J, Parmar MK; STAMPEDE investigators. Addition of docetaxel, zoledronic acid, or both to first-line long-term hormone therapy in prostate cancer (STAMPEDE): survival results from an adaptive, multiarm, multistage, platform randomised controlled trial. Lancet. 2016 Mar 19;387(10024):1163-77. doi: 10.1016/S0140-6736(15)01037-5. Epub 2015 Dec 21.
- Kantoff PW, Higano CS, Shore ND, Berger ER, Small EJ, Penson DF, Redfern CH, Ferrari AC, Dreicer R, Sims RB, Xu Y, Frohlich MW, Schellhammer PF; IMPACT Study Investigators. Sipuleucel-T immunotherapy for castration-resistant prostate cancer. N Engl J Med. 2010 Jul 29;363(5):411-22. doi: 10.1056/NEJMoa1001294.
- Miller JS, Soignier Y, Panoskaltsis-Mortari A, McNearney SA, Yun GH, Fautsch SK, McKenna D, Le C, Defor TE, Burns LJ, Orchard PJ, Blazar BR, Wagner JE, Slungaard A, Weisdorf DJ, Okazaki IJ, McGlave PB. Successful adoptive transfer and in vivo expansion of human haploidentical NK cells in patients with cancer. Blood. 2005 Apr 15;105(8):3051-7. doi: 10.1182/blood-2004-07-2974. Epub 2005 Jan 4.
- Tannock IF, de Wit R, Berry WR, Horti J, Pluzanska A, Chi KN, Oudard S, Theodore C, James ND, Turesson I, Rosenthal MA, Eisenberger MA; TAX 327 Investigators. Docetaxel plus prednisone or mitoxantrone plus prednisone for advanced prostate cancer. N Engl J Med. 2004 Oct 7;351(15):1502-12. doi: 10.1056/NEJMoa040720.
- Gray PJ, Lin CC, Cooperberg MR, Jemal A, Efstathiou JA. Temporal Trends and the Impact of Race, Insurance, and Socioeconomic Status in the Management of Localized Prostate Cancer. Eur Urol. 2017 May;71(5):729-737. doi: 10.1016/j.eururo.2016.08.047. Epub 2016 Sep 3.
- Resnick MJ, Koyama T, Fan KH, Albertsen PC, Goodman M, Hamilton AS, Hoffman RM, Potosky AL, Stanford JL, Stroup AM, Van Horn RL, Penson DF. Long-term functional outcomes after treatment for localized prostate cancer. N Engl J Med. 2013 Jan 31;368(5):436-45. doi: 10.1056/NEJMoa1209978.
- Crawford ED, Higano CS, Shore ND, Hussain M, Petrylak DP. Treating Patients with Metastatic Castration Resistant Prostate Cancer: A Comprehensive Review of Available Therapies. J Urol. 2015 Dec;194(6):1537-47. doi: 10.1016/j.juro.2015.06.106. Epub 2015 Jul 18.
- Scher HI, Morris MJ, Stadler WM, Higano C, Basch E, Fizazi K, Antonarakis ES, Beer TM, Carducci MA, Chi KN, Corn PG, de Bono JS, Dreicer R, George DJ, Heath EI, Hussain M, Kelly WK, Liu G, Logothetis C, Nanus D, Stein MN, Rathkopf DE, Slovin SF, Ryan CJ, Sartor O, Small EJ, Smith MR, Sternberg CN, Taplin ME, Wilding G, Nelson PS, Schwartz LH, Halabi S, Kantoff PW, Armstrong AJ; Prostate Cancer Clinical Trials Working Group 3. Trial Design and Objectives for Castration-Resistant Prostate Cancer: Updated Recommendations From the Prostate Cancer Clinical Trials Working Group 3. J Clin Oncol. 2016 Apr 20;34(12):1402-18. doi: 10.1200/JCO.2015.64.2702. Epub 2016 Feb 22.
- Lee DW, Santomasso BD, Locke FL, Ghobadi A, Turtle CJ, Brudno JN, Maus MV, Park JH, Mead E, Pavletic S, Go WY, Eldjerou L, Gardner RA, Frey N, Curran KJ, Peggs K, Pasquini M, DiPersio JF, van den Brink MRM, Komanduri KV, Grupp SA, Neelapu SS. ASTCT Consensus Grading for Cytokine Release Syndrome and Neurologic Toxicity Associated with Immune Effector Cells. Biol Blood Marrow Transplant. 2019 Apr;25(4):625-638. doi: 10.1016/j.bbmt.2018.12.758. Epub 2018 Dec 25.
- Siegel RL, Miller KD, Jemal A. Cancer statistics, 2018. CA Cancer J Clin. 2018 Jan;68(1):7-30. doi: 10.3322/caac.21442. Epub 2018 Jan 4.
- Beer TM, Armstrong AJ, Rathkopf DE, Loriot Y, Sternberg CN, Higano CS, Iversen P, Bhattacharya S, Carles J, Chowdhury S, Davis ID, de Bono JS, Evans CP, Fizazi K, Joshua AM, Kim CS, Kimura G, Mainwaring P, Mansbach H, Miller K, Noonberg SB, Perabo F, Phung D, Saad F, Scher HI, Taplin ME, Venner PM, Tombal B; PREVAIL Investigators. Enzalutamide in metastatic prostate cancer before chemotherapy. N Engl J Med. 2014 Jul 31;371(5):424-33. doi: 10.1056/NEJMoa1405095. Epub 2014 Jun 1.
- Sweeney CJ, Chen YH, Carducci M, Liu G, Jarrard DF, Eisenberger M, Wong YN, Hahn N, Kohli M, Cooney MM, Dreicer R, Vogelzang NJ, Picus J, Shevrin D, Hussain M, Garcia JA, DiPaola RS. Chemohormonal Therapy in Metastatic Hormone-Sensitive Prostate Cancer. N Engl J Med. 2015 Aug 20;373(8):737-46. doi: 10.1056/NEJMoa1503747. Epub 2015 Aug 5.
- Center MM, Jemal A, Lortet-Tieulent J, Ward E, Ferlay J, Brawley O, Bray F. International variation in prostate cancer incidence and mortality rates. Eur Urol. 2012 Jun;61(6):1079-92. doi: 10.1016/j.eururo.2012.02.054. Epub 2012 Mar 8.
- Global Burden of Disease Cancer Collaboration; Fitzmaurice C, Akinyemiju TF, Al Lami FH, Alam T, Alizadeh-Navaei R, Allen C, Alsharif U, Alvis-Guzman N, Amini E, Anderson BO, Aremu O, Artaman A, Asgedom SW, Assadi R, Atey TM, Avila-Burgos L, Awasthi A, Ba Saleem HO, Barac A, Bennett JR, Bensenor IM, Bhakta N, Brenner H, Cahuana-Hurtado L, Castaneda-Orjuela CA, Catala-Lopez F, Choi JJ, Christopher DJ, Chung SC, Curado MP, Dandona L, Dandona R, das Neves J, Dey S, Dharmaratne SD, Doku DT, Driscoll TR, Dubey M, Ebrahimi H, Edessa D, El-Khatib Z, Endries AY, Fischer F, Force LM, Foreman KJ, Gebrehiwot SW, Gopalani SV, Grosso G, Gupta R, Gyawali B, Hamadeh RR, Hamidi S, Harvey J, Hassen HY, Hay RJ, Hay SI, Heibati B, Hiluf MK, Horita N, Hosgood HD, Ilesanmi OS, Innos K, Islami F, Jakovljevic MB, Johnson SC, Jonas JB, Kasaeian A, Kassa TD, Khader YS, Khan EA, Khan G, Khang YH, Khosravi MH, Khubchandani J, Kopec JA, Kumar GA, Kutz M, Lad DP, Lafranconi A, Lan Q, Legesse Y, Leigh J, Linn S, Lunevicius R, Majeed A, Malekzadeh R, Malta DC, Mantovani LG, McMahon BJ, Meier T, Melaku YA, Melku M, Memiah P, Mendoza W, Meretoja TJ, Mezgebe HB, Miller TR, Mohammed S, Mokdad AH, Moosazadeh M, Moraga P, Mousavi SM, Nangia V, Nguyen CT, Nong VM, Ogbo FA, Olagunju AT, Pa M, Park EK, Patel T, Pereira DM, Pishgar F, Postma MJ, Pourmalek F, Qorbani M, Rafay A, Rawaf S, Rawaf DL, Roshandel G, Safiri S, Salimzadeh H, Sanabria JR, Santric Milicevic MM, Sartorius B, Satpathy M, Sepanlou SG, Shackelford KA, Shaikh MA, Sharif-Alhoseini M, She J, Shin MJ, Shiue I, Shrime MG, Sinke AH, Sisay M, Sligar A, Sufiyan MB, Sykes BL, Tabares-Seisdedos R, Tessema GA, Topor-Madry R, Tran TT, Tran BX, Ukwaja KN, Vlassov VV, Vollset SE, Weiderpass E, Williams HC, Yimer NB, Yonemoto N, Younis MZ, Murray CJL, Naghavi M. Global, Regional, and National Cancer Incidence, Mortality, Years of Life Lost, Years Lived With Disability, and Disability-Adjusted Life-Years for 29 Cancer Groups, 1990 to 2016: A Systematic Analysis for the Global Burden of Disease Study. JAMA Oncol. 2018 Nov 1;4(11):1553-1568. doi: 10.1001/jamaoncol.2018.2706.
- Fehniger TA, Miller JS, Stuart RK, Cooley S, Salhotra A, Curtsinger J, Westervelt P, DiPersio JF, Hillman TM, Silver N, Szarek M, Gorelik L, Lowdell MW, Rowinsky E. A Phase 1 Trial of CNDO-109-Activated Natural Killer Cells in Patients with High-Risk Acute Myeloid Leukemia. Biol Blood Marrow Transplant. 2018 Aug;24(8):1581-1589. doi: 10.1016/j.bbmt.2018.03.019. Epub 2018 Mar 27.
- Kottaridis PD, North J, Tsirogianni M, Marden C, Samuel ER, Jide-Banwo S, Grace S, Lowdell MW. Two-Stage Priming of Allogeneic Natural Killer Cells for the Treatment of Patients with Acute Myeloid Leukemia: A Phase I Trial. PLoS One. 2015 Jun 10;10(6):e0123416. doi: 10.1371/journal.pone.0123416. eCollection 2015.
- Fizazi K, Tran N, Fein L, Matsubara N, Rodriguez-Antolin A, Alekseev BY, Ozguroglu M, Ye D, Feyerabend S, Protheroe A, De Porre P, Kheoh T, Park YC, Todd MB, Chi KN; LATITUDE Investigators. Abiraterone plus Prednisone in Metastatic, Castration-Sensitive Prostate Cancer. N Engl J Med. 2017 Jul 27;377(4):352-360. doi: 10.1056/NEJMoa1704174. Epub 2017 Jun 4.
- Negoita S, Feuer EJ, Mariotto A, Cronin KA, Petkov VI, Hussey SK, Benard V, Henley SJ, Anderson RN, Fedewa S, Sherman RL, Kohler BA, Dearmon BJ, Lake AJ, Ma J, Richardson LC, Jemal A, Penberthy L. Annual Report to the Nation on the Status of Cancer, part II: Recent changes in prostate cancer trends and disease characteristics. Cancer. 2018 Jul 1;124(13):2801-2814. doi: 10.1002/cncr.31549. Epub 2018 May 22.
- Flaig TW, Potluri RC, Ng Y, Todd MB, Mehra M. Treatment evolution for metastatic castration-resistant prostate cancer with recent introduction of novel agents: retrospective analysis of real-world data. Cancer Med. 2016 Feb;5(2):182-91. doi: 10.1002/cam4.576. Epub 2015 Dec 29.
- Cheng HH, Gulati R, Azad A, Nadal R, Twardowski P, Vaishampayan UN, Agarwal N, Heath EI, Pal SK, Rehman HT, Leiter A, Batten JA, Montgomery RB, Galsky MD, Antonarakis ES, Chi KN, Yu EY. Activity of enzalutamide in men with metastatic castration-resistant prostate cancer is affected by prior treatment with abiraterone and/or docetaxel. Prostate Cancer Prostatic Dis. 2015 Jun;18(2):122-7. doi: 10.1038/pcan.2014.53. Epub 2015 Jan 20.
- Suzman DL, Luber B, Schweizer MT, Nadal R, Antonarakis ES. Clinical activity of enzalutamide versus docetaxel in men with castration-resistant prostate cancer progressing after abiraterone. Prostate. 2014 Sep;74(13):1278-85. doi: 10.1002/pros.22844. Epub 2014 Jul 22.
- Loeb S, Bruinsma SM, Nicholson J, Briganti A, Pickles T, Kakehi Y, Carlsson SV, Roobol MJ. Active surveillance for prostate cancer: a systematic review of clinicopathologic variables and biomarkers for risk stratification. Eur Urol. 2015 Apr;67(4):619-26. doi: 10.1016/j.eururo.2014.10.010. Epub 2014 Oct 31.
- Vlachostergios PJ, Puca L, Beltran H. Emerging Variants of Castration-Resistant Prostate Cancer. Curr Oncol Rep. 2017 May;19(5):32. doi: 10.1007/s11912-017-0593-6.
- Knudsen KE, Penning TM. Partners in crime: deregulation of AR activity and androgen synthesis in prostate cancer. Trends Endocrinol Metab. 2010 May;21(5):315-24. doi: 10.1016/j.tem.2010.01.002. Epub 2010 Feb 6.
- Pezaro CJ, Omlin AG, Altavilla A, Lorente D, Ferraldeschi R, Bianchini D, Dearnaley D, Parker C, de Bono JS, Attard G. Activity of cabazitaxel in castration-resistant prostate cancer progressing after docetaxel and next-generation endocrine agents. Eur Urol. 2014 Sep;66(3):459-65. doi: 10.1016/j.eururo.2013.11.044. Epub 2013 Dec 17.
- Handy CE, Antonarakis ES. Sequencing Treatment for Castration-Resistant Prostate Cancer. Curr Treat Options Oncol. 2016 Dec;17(12):64. doi: 10.1007/s11864-016-0438-9.
- Zhang T, Zhu J, George DJ, Armstrong AJ. Enzalutamide versus abiraterone acetate for the treatment of men with metastatic castration-resistant prostate cancer. Expert Opin Pharmacother. 2015 Mar;16(4):473-85. doi: 10.1517/14656566.2015.995090. Epub 2014 Dec 23.
- Roubaud G, Liaw BC, Oh WK, Mulholland DJ. Strategies to avoid treatment-induced lineage crisis in advanced prostate cancer. Nat Rev Clin Oncol. 2017 May;14(5):269-283. doi: 10.1038/nrclinonc.2016.181. Epub 2016 Nov 22.
- Donkor MK, Sarkar A, Savage PA, Franklin RA, Johnson LK, Jungbluth AA, Allison JP, Li MO. T cell surveillance of oncogene-induced prostate cancer is impeded by T cell-derived TGF-beta1 cytokine. Immunity. 2011 Jul 22;35(1):123-34. doi: 10.1016/j.immuni.2011.04.019. Epub 2011 Jul 14.
- Rodrigues DN, Rescigno P, Liu D, Yuan W, Carreira S, Lambros MB, Seed G, Mateo J, Riisnaes R, Mullane S, Margolis C, Miao D, Miranda S, Dolling D, Clarke M, Bertan C, Crespo M, Boysen G, Ferreira A, Sharp A, Figueiredo I, Keliher D, Aldubayan S, Burke KP, Sumanasuriya S, Fontes MS, Bianchini D, Zafeiriou Z, Mendes LST, Mouw K, Schweizer MT, Pritchard CC, Salipante S, Taplin ME, Beltran H, Rubin MA, Cieslik M, Robinson D, Heath E, Schultz N, Armenia J, Abida W, Scher H, Lord C, D'Andrea A, Sawyers CL, Chinnaiyan AM, Alimonti A, Nelson PS, Drake CG, Van Allen EM, de Bono JS. Immunogenomic analyses associate immunological alterations with mismatch repair defects in prostate cancer. J Clin Invest. 2018 Nov 1;128(11):5185. doi: 10.1172/JCI125184. Epub 2018 Nov 1. No abstract available.
- Whiteside TL. The tumor microenvironment and its role in promoting tumor growth. Oncogene. 2008 Oct 6;27(45):5904-12. doi: 10.1038/onc.2008.271.
- Idorn M, Kollgaard T, Kongsted P, Sengelov L, Thor Straten P. Correlation between frequencies of blood monocytic myeloid-derived suppressor cells, regulatory T cells and negative prognostic markers in patients with castration-resistant metastatic prostate cancer. Cancer Immunol Immunother. 2014 Nov;63(11):1177-87. doi: 10.1007/s00262-014-1591-2. Epub 2014 Aug 2.
- Dai J, Lu Y, Roca H, Keller JM, Zhang J, McCauley LK, Keller ET. Immune mediators in the tumor microenvironment of prostate cancer. Chin J Cancer. 2017 Mar 14;36(1):29. doi: 10.1186/s40880-017-0198-3.
- McAllister MJ, Underwood MA, Leung HY, Edwards J. A review on the interactions between the tumor microenvironment and androgen receptor signaling in prostate cancer. Transl Res. 2019 Apr;206:91-106. doi: 10.1016/j.trsl.2018.11.004. Epub 2018 Nov 24.
- Shen YC, Ghasemzadeh A, Kochel CM, Nirschl TR, Francica BJ, Lopez-Bujanda ZA, Carrera Haro MA, Tam A, Anders RA, Selby MJ, Korman AJ, Drake CG. Combining intratumoral Treg depletion with androgen deprivation therapy (ADT): preclinical activity in the Myc-CaP model. Prostate Cancer Prostatic Dis. 2018 Apr;21(1):113-125. doi: 10.1038/s41391-017-0013-x. Epub 2017 Dec 4.
- Cha HR, Lee JH, Ponnazhagan S. Revisiting Immunotherapy: A Focus on Prostate Cancer. Cancer Res. 2020 Apr 15;80(8):1615-1623. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-19-2948. Epub 2020 Feb 17.
- Cai T, Santi R, Tamanini I, Galli IC, Perletti G, Bjerklund Johansen TE, Nesi G. Current Knowledge of the Potential Links between Inflammation and Prostate Cancer. Int J Mol Sci. 2019 Aug 6;20(15):3833. doi: 10.3390/ijms20153833.
- Handgretinger R, Lang P, Andre MC. Exploitation of natural killer cells for the treatment of acute leukemia. Blood. 2016 Jun 30;127(26):3341-9. doi: 10.1182/blood-2015-12-629055. Epub 2016 May 20.
- Smyth MJ, Cretney E, Kelly JM, Westwood JA, Street SE, Yagita H, Takeda K, van Dommelen SL, Degli-Esposti MA, Hayakawa Y. Activation of NK cell cytotoxicity. Mol Immunol. 2005 Feb;42(4):501-10. doi: 10.1016/j.molimm.2004.07.034.
- Liu S, Galat V, Galat Y, Lee YKA, Wainwright D, Wu J. NK cell-based cancer immunotherapy: from basic biology to clinical development. J Hematol Oncol. 2021 Jan 6;14(1):7. doi: 10.1186/s13045-020-01014-w.
- Roda JM, Parihar R, Magro C, Nuovo GJ, Tridandapani S, Carson WE 3rd. Natural killer cells produce T cell-recruiting chemokines in response to antibody-coated tumor cells. Cancer Res. 2006 Jan 1;66(1):517-26. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-05-2429.
- Bottcher JP, Bonavita E, Chakravarty P, Blees H, Cabeza-Cabrerizo M, Sammicheli S, Rogers NC, Sahai E, Zelenay S, Reis e Sousa C. NK Cells Stimulate Recruitment of cDC1 into the Tumor Microenvironment Promoting Cancer Immune Control. Cell. 2018 Feb 22;172(5):1022-1037.e14. doi: 10.1016/j.cell.2018.01.004. Epub 2018 Feb 8.
- Brehm C, Huenecke S, Quaiser A, Esser R, Bremm M, Kloess S, Soerensen J, Kreyenberg H, Seidl C, Becker PS, Muhl H, Klingebiel T, Bader P, Passweg JR, Schwabe D, Koehl U. IL-2 stimulated but not unstimulated NK cells induce selective disappearance of peripheral blood cells: concomitant results to a phase I/II study. PLoS One. 2011;6(11):e27351. doi: 10.1371/journal.pone.0027351. Epub 2011 Nov 9.
- Wu X, Matosevic S. Gene-edited and CAR-NK cells: Opportunities and challenges with engineering of NK cells for immunotherapy. Mol Ther Oncolytics. 2022 Nov 3;27:224-238. doi: 10.1016/j.omto.2022.10.011. eCollection 2022 Dec 15.
- Sakamoto N, Ishikawa T, Kokura S, Okayama T, Oka K, Ideno M, Sakai F, Kato A, Tanabe M, Enoki T, Mineno J, Naito Y, Itoh Y, Yoshikawa T. Phase I clinical trial of autologous NK cell therapy using novel expansion method in patients with advanced digestive cancer. J Transl Med. 2015 Aug 25;13:277. doi: 10.1186/s12967-015-0632-8.
- Rubnitz JE, Inaba H, Ribeiro RC, Pounds S, Rooney B, Bell T, Pui CH, Leung W. NKAML: a pilot study to determine the safety and feasibility of haploidentical natural killer cell transplantation in childhood acute myeloid leukemia. J Clin Oncol. 2010 Feb 20;28(6):955-9. doi: 10.1200/JCO.2009.24.4590. Epub 2010 Jan 19.
- Iliopoulou EG, Kountourakis P, Karamouzis MV, Doufexis D, Ardavanis A, Baxevanis CN, Rigatos G, Papamichail M, Perez SA. A phase I trial of adoptive transfer of allogeneic natural killer cells in patients with advanced non-small cell lung cancer. Cancer Immunol Immunother. 2010 Dec;59(12):1781-9. doi: 10.1007/s00262-010-0904-3. Epub 2010 Aug 12.
- Barbosa FG, Queiroz MA, Ferraro DA, Nunes RF, Dreyer PR, Zaniboni EC, Costa LB, Bastos DA, Marin JFG, Buchpiguel CA. Prostate-specific Membrane Antigen PET: Therapy Response Assessment in Metastatic Prostate Cancer. Radiographics. 2020 Sep-Oct;40(5):1412-1430. doi: 10.1148/rg.2020200058. Epub 2020 Aug 7.
- Lowdell MW, Craston R, Samuel D, Wood ME, O'Neill E, Saha V, Prentice HG. Evidence that continued remission in patients treated for acute leukaemia is dependent upon autologous natural killer cells. Br J Haematol. 2002 Jun;117(4):821-7. doi: 10.1046/j.1365-2141.2002.03495.x.
- Yarchoan M, Johnson BA 3rd, Lutz ER, Laheru DA, Jaffee EM. Targeting neoantigens to augment antitumour immunity. Nat Rev Cancer. 2017 Apr;17(4):209-222. doi: 10.1038/nrc.2016.154. Epub 2017 Feb 24.
- Ryan CJ, Smith MR, de Bono JS, Molina A, Logothetis CJ, de Souza P, Fizazi K, Mainwaring P, Piulats JM, Ng S, Carles J, Mulders PF, Basch E, Small EJ, Saad F, Schrijvers D, Van Poppel H, Mukherjee SD, Suttmann H, Gerritsen WR, Flaig TW, George DJ, Yu EY, Efstathiou E, Pantuck A, Winquist E, Higano CS, Taplin ME, Park Y, Kheoh T, Griffin T, Scher HI, Rathkopf DE; COU-AA-302 Investigators. Abiraterone in metastatic prostate cancer without previous chemotherapy. N Engl J Med. 2013 Jan 10;368(2):138-48. doi: 10.1056/NEJMoa1209096. Epub 2012 Dec 10.
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