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Impact du système de perfusion pulmonaire ex vivo sur le microbiome des greffes pulmonaires et leur réaction inflammatoire. (ExBioma)

31 janvier 2024 mis à jour par: Irene Bello, Vall d'Hebron Institute Research

On sait que les interactions du microbiome du greffon et du receveur sont capables de moduler les réponses immunitaires, induisant une résilience ou une exacerbation de divers processus inflammatoires ou fibrotiques. Par conséquent, les variations du microbiome pulmonaire sont associées à des changements immunologiques dans le poumon transplanté.

L'objectif principal est de comprendre l'impact de nouveaux systèmes de conditionnement et d'amélioration des greffes pulmonaires sous-optimales avec perfusion ex vivo (EVLP) sur le microbiome pulmonaire et son association avec l'inflammation tissulaire.

L'hypothèse est que la manipulation des greffes pulmonaires et la perfusion avec des antibiotiques à large spectre pendant le conditionnement EVLP modifient le microbiome pulmonaire, conditionnant un environnement moins pro-inflammatoire.

La méthodologie : Il s’agit d’une étude observationnelle prospective monocentrique. 7 donneurs consécutifs en mort cérébrale qui ne répondent pas aux critères pour être donneurs de poumons seront inclus dans l'étude. Ils seront réalisés :

  • P1. Détection : Le donneur sans critère de donneur de poumon ou rejeté par toutes les équipes de transplantation.
  • P2. Extraction.
  • P3. Conservation au froid : Le poumon gauche sera conservé au froid
  • P4. Conservation EVLP : Le poumon droit sera préparé et conditionné pendant 3 heures à l'aide d'EVLP

Les échantillons suivants seront prélevés à deux moments :

  • T0 : A la fin de l'extraction
  • Lavage broncho-alvéolaire (BAL) : avant le clampage trachéal, le BAL sera prélevé de la bronche principale gauche par bronchoscopie. Le BAL sera réalisé sur le poumon droit juste avant de démarrer P4.
  • Biopsie pulmonaire : une biopsie pulmonaire du lobe inférieur des deux greffons sera réalisée
  • Liquide de conservation ou Liquide de perfusion : 20 mL de liquide de conservation en contact avec le greffon gauche avant stockage, comme contrôle de stérilité (P3) et 20 mL de liquide de perfusion avant conditionnement, comme contrôle de stérilité (P4).
  • T1 : A la fin des protocoles de conservation (P3 ou P4).
  • B.A.L.
  • Biopsie pulmonaire : lobe inférieur gauche.
  • Liquide de conservation ou Liquide de perfusion : 20 mL de liquide de conservation en contact avec le greffon gauche ou 20 mL de liquide de perfusion.

En raison de la manipulation des greffons lors de l'extraction et de l'utilisation de la technique, qui implique l'extubation du donneur puis la ré-intubation des greffons, ainsi qu'une perfusion d'un minimum de 3 heures avec des antibiotiques, l'utilisation de l'EVLP pourrait altérer le microbiome du greffes. Cette altération pourrait avoir un impact sur l'obtention d'organes viables pour la transplantation, dans la période postopératoire immédiate ainsi que sur les résultats à long terme. Aucune étude n'analyse l'évolution du microbiome après conditionnement avec EVLP ou sa relation avec les paramètres inflammatoires.

Aperçu de l'étude

Statut

Recrutement

Description détaillée

PRÉLÈVEMENT ET CONSERVATION DES ÉCHANTILLONS

  • BAL :
  • Technique : Le bronchoscope sera inséré dans le segment 6, des aliquotes de solution saline stérile seront instillées. La procédure sera répétée dans les segments 3 et 5, dans le cas du poumon droit, et dans le segment 6 et le lingula du poumon gauche. 20 à 30 cc de BAL seront complétés pour chaque greffe.
  • Stockage : Les échantillons seront congelés immédiatement après le prélèvement et transférés au laboratoire avec un accumulateur de froid pour garantir qu'ils ne décongèlent pas.
  • Analyse : Le microbiome pulmonaire sera analysé.
  • Biopsie pulmonaire :
  • Technique : Une biopsie pulmonaire d'un minimum de 2 cm3 sera réalisée à l'aide d'une suture automatique non résorbable.
  • Stockage : les échantillons seront conservés dans une solution de stabilisation de l'ARN réactif (QIAGEN), qui permet de conserver les échantillons à température ambiante jusqu'à ce qu'ils soient congelés, évitant ainsi la dégradation de l'ARN.
  • Analyse : Séquençage d'ARN de transcription de signaux inflammatoires.
  • Solution liquide de perfusion ex vivo :
  • Technique : Prélèvement d'échantillons stériles avec une seringue de 20cc.
  • Stockage : Les échantillons seront congelés immédiatement après le prélèvement et transférés au laboratoire avec un accumulateur de froid pour garantir qu'ils ne décongèlent pas.
  • Analyse : analyse du microbiome
  • Solution liquide de conservation :
  • Technique : Prélèvement d'échantillons stériles avec une seringue de 20cc.
  • Stockage : Les échantillons seront congelés immédiatement après le prélèvement et transférés au laboratoire avec un accumulateur de froid pour garantir qu'ils ne décongèlent pas.
  • Analyse : analyse du microbiome et des cytokines

Tous les échantillons seront conservés au congélateur à -80

- Analyse du microbiome Pour l'analyse de la diversité microbienne, la région variable V4 du gène 16S sera amplifiée à partir de l'ADN bactérien par PCR. Les amplicons seront séquencés à l'aide de la technologie Illumina (MiSeq). Les échantillons seront traités et plus de 10 000 séquences de 300 pb par séquence et par échantillon seront générées.

Analyse de l'expression génique L'extraction de l'ARN sera effectuée à l'aide du kit commercial RNeasy Mini (QIAGEN). L'analyse de l'expression génique sera effectuée par PCR quantitative (qPCR) à l'aide du panel TransplantRejection prédéfini de SignArray (AnyGenes®, Paris, France) qui comprend 84 gènes qui ont été décrits comme étant liés à la réponse immunitaire en cas de rejet de greffe. Il s'agit de : Gènes inclus dans le panel : CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86, CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44. , CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2, IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5 , IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28, CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA , GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10.

- Analyse des cytokines Le dosage des cytokines dans le liquide de perfusion sera réalisé à l'aide d'immunoessais basés sur la technologie Luminex™ xMAP™ (profilage multi-analyte) qui permettent la quantification et la détection simultanées de différentes protéines sécrétées (cytokines, chimiokines, facteurs de croissance, etc. .) Nous utiliserons des panels conçus spécifiquement pour les produits génétiques d’intérêt.

Les niveaux de cytokines sont mesurés à l'aide d'un test immunologique basé sur la technologie Luminex™ xMAP™ qui permet une analyse multiparamétrique des différentes cytokines. À cette fin, un panel de cytokines personnalisé est conçu sur la base de la littérature publiée sur l'effet des statines sur la production de cytokines et d'autres chimiokines pro-inflammatoires à un niveau systémique, ainsi que des preuves bibliographiques sur les cytokines impliquées dans la transplantation pulmonaire. Les cytokines analysées dans le panel prévu à cet effet sont l'IFN gamma, l'IL-1 bêta, l'IL-6, l'IL-8 (CXCL8), l'IL-18, l'IP-10 (CXCL10), le MCP-1 (CCL2), le MIP- 1 alpha (CCL3), TNF alpha, VEGF-D (Custom Procartaplex Multiplex Panel, Invitrogen, ThermoFisher Scientific, MA, USA). L'analyse immunologique sera réalisée à l'aide du logiciel Invitrogen ProcartaPlex Analyst 1.0, fourni avec les réactifs.

- Analyse bioinformatique des séquences Pour obtenir la composition microbienne de chaque échantillon, nous utiliserons le logiciel QIIME. QIIME est un pipeline logiciel qui utilise des informations phylogénétiques et des techniques statistiques multivariées pour comparer les communautés microbiennes et déterminer, par exemple, si elles sont statistiquement différentes. Le programme identifie également les espèces qui contribuent le plus à ces différences et découvre des modèles de différents types qui caractérisent des groupes spécifiques d'échantillons.

Type d'étude

Interventionnel

Inscription (Estimé)

7

Phase

  • N'est pas applicable

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Coordonnées de l'étude

Sauvegarde des contacts de l'étude

Lieux d'étude

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

  • Adulte
  • Adulte plus âgé

Accepte les volontaires sains

Non

La description

Critère d'intégration:

  • les donneurs en mort cérébrale et les donneurs après décès cardio-circulatoire rejetés pour une transplantation pulmonaire

Critère d'exclusion:

  • Pneumonie unilatérale
  • Absence de consentement de la famille du donneur.

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

  • Objectif principal: Traitement
  • Répartition: Non randomisé
  • Modèle interventionnel: Affectation parallèle
  • Masquage: Aucun (étiquette ouverte)

Armes et Interventions

Groupe de participants / Bras
Intervention / Traitement
Expérimental: EVLP
Le poumon droit sera perfusé pendant 3h avec EVLP
Comparateur actif: Conservation au froid
Le poumon gauche sera conservé au froid selon le protocole habituel

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Modification des unités taxonomiques opérationnelles (OTU) individuelles dans le parenchyme pulmonaire après la perfusion pulmonaire exvivo pendant 3 heures
Délai: Après 3 heures de perfusion en perfusion pulmonaire ex vivo
Analyser le microbiome pulmonaire et la diversité alpha avant l'utilisation de la perfusion pulmonaire exvivo et après comparaison des échantillons micrologiques
Après 3 heures de perfusion en perfusion pulmonaire ex vivo
Analyse par PCR quantitative de l'expression génétique de 84 gènes liés à la réponse immunitaire lors d'une transplantation pulmonaire après perfusion pulmonaire pendant 3h dans un système de perfusion pulmonaire exvivo.
Délai: Après 3 heures de perfusion en perfusion pulmonaire ex vivo
Analyse par PCR quantitative de l'expression génétique de 84 gènes liés à la réponse immunitaire en transplantation pulmonaire : CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 dans des échantillons de poumon avant et après l'utilisation d'une perfusion pulmonaire exvivo, en comparant eux
Après 3 heures de perfusion en perfusion pulmonaire ex vivo
Analyser la concentration de cytokines inflammatoires après perfusion pulmonaire exvivo
Délai: Après 3 heures de perfusion en perfusion pulmonaire ex vivo
Analyser la concentration de cytokines inflammatoires : IFN gamma, IL-1 bêta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alpha (CCL3) ), TNF alpha,VEGF-D, avec la technique Luminex xMAP, en solution de perfusion avant et après l'utilisation de la perfusion pulmonaire exvivo et en les comparant
Après 3 heures de perfusion en perfusion pulmonaire ex vivo
Modification des unités taxonomiques opérationnelles (OTU) individuelles dans le parenchyme pulmonaire après stockage au froid
Délai: Après 3 heures de stockage au froid
Analysez le microbiome pulmonaire et la diversité alpha avant et après la chambre froide et comparez les échantillons micrologiques.
Après 3 heures de stockage au froid
Analyser la concentration de citokines inflammatoires après stockage au froid
Délai: Après 3 heures de stockage au froid
Analyser la concentration de cytokines inflammatoires : IFN gamma, IL-1 bêta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alpha (CCL3) ), TNF alpha,VEGF-D, avec la technique Luminex xMAP, en solution de perfusion avant et après la chambre froide et comparaison
Après 3 heures de stockage au froid
Analyse par PCR quantitative de l'expression génétique de 84 gènes liés à la réponse immunitaire lors d'une transplantation pulmonaire après stockage frigorifique
Délai: Après 3 heures de stockage au froid
Analyse par PCR quantitative de l'expression génétique de 84 gènes liés à la réponse immunitaire en transplantation pulmonaire : CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 dans des échantillons de poumons avant et après la chambre froide, en les comparant
Après 3 heures de stockage au froid

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Les enquêteurs

  • Directeur d'études: Irene Bello Rodríguez, Professor, Hospital Clinic of Barcelona

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

1 juin 2021

Achèvement primaire (Estimé)

1 avril 2024

Achèvement de l'étude (Estimé)

1 juin 2024

Dates d'inscription aux études

Première soumission

23 décembre 2023

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

31 janvier 2024

Première publication (Estimé)

9 février 2024

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Estimé)

9 février 2024

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

31 janvier 2024

Dernière vérification

1 janvier 2024

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Termes MeSH pertinents supplémentaires

Autres numéros d'identification d'étude

  • ExBioma

Plan pour les données individuelles des participants (IPD)

Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?

NON

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

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