Denne siden ble automatisk oversatt og nøyaktigheten av oversettelsen er ikke garantert. Vennligst referer til engelsk versjon for en kildetekst.

Innvirkningen av Ex-vivo lungeperfusjonssystemet på mikrobiomet til lungetransplantater og deres inflammatoriske reaksjon. (ExBioma)

31. januar 2024 oppdatert av: Irene Bello, Vall d'Hebron Institute Research

Det er kjent at interaksjonene mellom transplantat- og mottakermikrobiomet er i stand til å modulere immunresponser, indusere motstandskraft eller forverring av forskjellige inflammatoriske eller fibrotiske prosesser, derfor er variasjoner i lungemikrobiomet assosiert med immunologiske endringer i den transplanterte lungen.

Hovedmålet er å forstå virkningen av nye systemer for kondisjonering og forbedring av suboptimale lungetransplantater med ex vivo perfusjon (EVLP) på lungemikrobiomet og dets assosiasjon med vevsbetennelse.

Hypotesen er at manipulering av lungetransplantater og perfusjon med bredspektrede antibiotika under EVLP-kondisjonering endrer lungemikrobiomet, og betinger et mindre pro-inflammatorisk miljø.

Metodikken: Dette er en prospektiv observasjonsstudie med ett senter. 7 påfølgende hjernedøde givere som ikke oppfyller kriteriene for å være lungedonorer vil bli inkludert i studien. De vil bli utført:

  • P1. Påvisning: Donoren uten kriterier for å være lungedonor eller avvist av alle transplantasjonsteamene.
  • P2. Utdrag.
  • P3. Kaldkonservering: Venstre lunge vil være kaldkonservert
  • P4. EVLP-konservering: Høyre lunge vil bli klargjort og kondisjonert i 3 timer ved bruk av EVLP

Følgende prøver vil bli tatt to ganger:

  • T0: På slutten av ekstraksjonen
  • Bronkoalveolær lavage (BAL): Før trakealklemming vil BAL bli tatt fra venstre hovedbronkus ved hjelp av bronkoskopi. BAL vil bli utført på høyre lunge rett før start av P4.
  • Lungebiopsi: Lungebiopsi av nedre del av begge transplantatene vil bli utført
  • Konserveringsvæske eller perfusjonsvæske: 20 ml konserveringsvæske som er i kontakt med venstre graft før lagring, som sterilitetskontroll (P3) og 20 ml perfusjonsvæske før kondisjonering, som sterilitetskontroll (P4).
  • T1: På slutten av konserveringsprotokollene (P3 eller P4).
  • B.A.L.
  • Lungebiopsi: venstre nedre lapp.
  • Konserveringsvæske eller infusjonsvæske: 20 ml konserveringsvæske som er i kontakt med venstre graft eller 20 ml perfusjonsvæske.

På grunn av manipulasjonen av transplantatene under ekstraksjon og bruk av teknikken, som involverer ekstubering av giveren og deretter intubering av transplantatene igjen, samt perfusjon i minimum 3 timer med antibiotika, kan bruk av EVLP endre mikrobiomet til grafts. Denne endringen kan påvirke oppnåelsen av levedyktige organer for transplantasjon, i den umiddelbare postoperative perioden så vel som i de langsiktige resultatene. Det er ingen studier som analyserer endringen i mikrobiomet etter kondisjonering med EVLP eller dets forhold til inflammatoriske parametere.

Studieoversikt

Status

Rekruttering

Detaljert beskrivelse

PRØVETAKING OG OPPBEVARING

  • BAL:
  • Teknikk: Bronkoskopet settes inn i segment 6, alikvoter av sterilt saltvann vil bli instillert. Prosedyren gjentas i segment 3 og 5, når det gjelder høyre lunge, og i segment 6 og lingula i venstre lunge. 20-30cc BAL vil bli fullført for hver graft.
  • Oppbevaring: Prøver fryses umiddelbart etter innsamling og overføres til laboratoriet med kuldeakkumulator for å sikre at de ikke tiner.
  • Analyse: Lungemikrobiomet vil bli analysert.
  • Lungebiopsi:
  • Teknikk: Lungebiopsi på minimum 2cm3 vil bli tatt med ikke-absorberbar automatisk sutur.
  • Oppbevaring: Prøver vil bli oppbevart i RNA Stabilization Solution Reagent (QIAGEN), som gjør at prøver kan oppbevares ved romtemperatur til de er frosne, og unngår RNA-nedbrytning.
  • Analyse: RNA-sekvensering av transkripsjon av inflammatoriske signaler.
  • Ex vivo perfusjonsvæskeløsning:
  • Teknikk: Tar prøver sterile med en 20cc sprøyte.
  • Oppbevaring: Prøver fryses umiddelbart etter innsamling og overføres til laboratoriet med kuldeakkumulator for å sikre at de ikke tiner.
  • Analyse: Mikrobiomanalyse
  • Konserveringsvæskeløsning:
  • Teknikk: Tar prøver sterile med en 20cc sprøyte.
  • Oppbevaring: Prøver fryses umiddelbart etter innsamling og overføres til laboratoriet med kuldeakkumulator for å sikre at de ikke tiner.
  • Analyse: Mikrobiom og cytokinanalyse

Alle prøver vil bli lagret i fryser ved -80

- Mikrobiomanalyse For analyse av mikrobiell mangfold, vil V4 variable regionen av 16S genet bli amplifisert fra bakteriell DNA ved PCR. Amplikoner vil bli sekvensert ved hjelp av Illumina (MiSeq) teknologi. Prøver vil bli behandlet og mer enn 10 000 300bp-sekvenser per sekvens per prøve vil bli generert.

Genekspresjonsanalyse RNA-ekstraksjon vil bli utført ved å bruke det kommersielle RNeasy Mini Kit (QIAGEN). Genekspresjonsanalyse vil bli utført ved kvantitativ PCR (qPCR) ved bruk av det forhåndsdesignede TransplantRejection-panelet fra SignArray (AnyGenes®, Paris, Frankrike) som inkluderer 84 gener som har blitt beskrevet å være relatert til immunresponsen ved transplantasjonsavvisning. Disse er: Gener inkludert i panelet: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86, CTLA4, CD, T4GF14, CD, T4GF14, CXCR3, STAT , CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2, IL2RA, 5 IL3, IL, 5 , IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28, CD8A, FCMA1A, FASLG, FAS , GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10.

- Cytokinanalyse Bestemmelsen av cytokiner i perfusjonsvæsken vil bli utført ved hjelp av immunoassays basert på Luminex™ xMAP™-teknologi (multi-analytprofilering) som muliggjør samtidig kvantifisering og påvisning av ulike utskilte proteiner (cytokiner, kjemokiner, vekstfaktorer, etc.) .) Vi vil bruke paneler designet spesielt for genproduktene av interesse.

Cytokinnivåer måles ved hjelp av en immunanalyse basert på Luminex™ xMAP™-teknologi som muliggjør multiparametrisk analyse av de forskjellige cytokinene. For dette formål er det utformet et personlig cytokinpanel basert på publisert litteratur om effekten av statiner på produksjonen av cytokiner og andre proinflammatoriske kjemokiner på systemisk nivå, samt bibliografiske bevis på cytokinene involvert i lungetransplantasjon. Cytokinene som er analysert i panelet designet for dette formålet er IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP- 1 alfa (CCL3), TNF alfa, VEGF-D (Custom Procartaplex Multiplex Panel, Invitrogen, ThermoFisher Scientific, MA, USA). Den immunologiske analysen vil bli utført ved å bruke Invitrogen ProcartaPlex Analyst 1.0-programvaren, som følger med reagensene.

- Bioinformatisk analyse av sekvensene For å få den mikrobielle sammensetningen til hver prøve, vil vi bruke QIIME-programvaren. QIIME er en programvarepipeline som bruker fylogenetisk informasjon og multivariate statistiske teknikker for å sammenligne mikrobielle samfunn og for eksempel bestemme om de er statistisk forskjellige. Programmet identifiserer også artene som bidrar mest til disse forskjellene og oppdager mønstre av ulike typer som karakteriserer bestemte grupper av prøver.

Studietype

Intervensjonell

Registrering (Antatt)

7

Fase

  • Ikke aktuelt

Kontakter og plasseringer

Denne delen inneholder kontaktinformasjon for de som utfører studien, og informasjon om hvor denne studien blir utført.

Studiekontakt

Studer Kontakt Backup

Studiesteder

Deltakelseskriterier

Forskere ser etter personer som passer til en bestemt beskrivelse, kalt kvalifikasjonskriterier. Noen eksempler på disse kriteriene er en persons generelle helsetilstand eller tidligere behandlinger.

Kvalifikasjonskriterier

Alder som er kvalifisert for studier

  • Voksen
  • Eldre voksen

Tar imot friske frivillige

Nei

Beskrivelse

Inklusjonskriterier:

  • hjernedødsgivere og donorer etter kardiosirkulasjonsdød avvist for lungetransplantasjon

Ekskluderingskriterier:

  • Ensidig lungebetennelse
  • Manglende samtykke for giverens familie.

Studieplan

Denne delen gir detaljer om studieplanen, inkludert hvordan studien er utformet og hva studien måler.

Hvordan er studiet utformet?

Designdetaljer

  • Primært formål: Behandling
  • Tildeling: Ikke-randomisert
  • Intervensjonsmodell: Parallell tildeling
  • Masking: Ingen (Open Label)

Våpen og intervensjoner

Deltakergruppe / Arm
Intervensjon / Behandling
Eksperimentell: EVLP
Høyre lunge vil bli perfusert i 3 timer med EVLP
Aktiv komparator: Kald konservering
Venstre lunge vil bli kaldt konservert som vanlig protokoll

Hva måler studien?

Primære resultatmål

Resultatmål
Tiltaksbeskrivelse
Tidsramme
Endring i individuelle operasjonelle taksonomiske enheter (OTU) i lungeparenkym etter exvivo lungeperfusjon i løpet av 3 timer
Tidsramme: Etter 3 timers perfusjon in ex vivo lungeperfusjon
Analyser lungemikrobiomet og alfa-diversiteten før bruk av exvivo lungeperfusjon og etter sammenligne de mikrologiske prøvene
Etter 3 timers perfusjon in ex vivo lungeperfusjon
Analyse med kvantitativ PCR av det genetiske uttrykket av 84 gener relatert til immunrespons ved lungetransplantasjon etter lungeperfusjon i løpet av 3 timer i exvivo lungeperfusjonssystem.
Tidsramme: Etter 3 timers perfusjon in ex vivo lungeperfusjon
Analyser med kvantitativ PCR av det genetiske uttrykket av 84 gener relatert til immunrespons ved lungetransplantasjon: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL132A, IL13 IL, 1BIL, 1BIL, IL , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CD1, CASP3, CASP8, CCR2CR, CD , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 i lungeprøver før bruk av exvivo lungeperfusjon og etter, dem
Etter 3 timers perfusjon in ex vivo lungeperfusjon
Analyser konsentrasjonen av inflammatoriske cytokiner etter exvivo lungeperfusjon
Tidsramme: Etter 3 timers perfusjon in ex vivo lungeperfusjon
Analyser konsentrasjonen av inflammatoriske cytokiner: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alfa (CCL3) ), TNF alfa,VEGF-D, med Luminex xMAP-teknikk, i perfusjonsløsning før og etter bruk av exvivo lungeperfusjon og sammenligne dem
Etter 3 timers perfusjon in ex vivo lungeperfusjon
Endring i individuelle operasjonelle taksonomiske enheter (OTU) i lungeparenkym etter kjølelagring
Tidsramme: Etter 3 timers kjølelagring
Analyser lungemikrobiomet og alfa-diversiteten før og etter kjølelagringen og sammenlign de mikrologiske prøvene.
Etter 3 timers kjølelagring
Analyse av konsentrasjonen av inflammatoriske citokiner etter kjølelagring
Tidsramme: Etter 3 timers kjølelagring
Analyser konsentrasjonen av inflammatoriske cytokiner: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alfa (CCL3) ), TNF alfa,VEGF-D, med Luminex xMAP-teknikk, i perfusjonsløsning før og etter kjølelagring og sammenligne dem
Etter 3 timers kjølelagring
Analyse med kvantitativ PCR av det genetiske uttrykket av 84 gener relatert til immunrespons ved lungetransplantasjon etter kjølelagring
Tidsramme: Etter 3 timers kjølelagring
Analyser med kvantitativ PCR av det genetiske uttrykket av 84 gener relatert til immunrespons ved lungetransplantasjon: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL132A, IL13 IL, 1BIL, 1BIL, IL , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CD1, CASP3, CASP8, CCR2CR, CD , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 i lungeprøver før og etter kjølelagring, sammenligne dem
Etter 3 timers kjølelagring

Samarbeidspartnere og etterforskere

Det er her du vil finne personer og organisasjoner som er involvert i denne studien.

Samarbeidspartnere

Etterforskere

  • Studieleder: Irene Bello Rodríguez, Professor, Hospital Clinic of Barcelona

Studierekorddatoer

Disse datoene sporer fremdriften for innsending av studieposter og sammendragsresultater til ClinicalTrials.gov. Studieposter og rapporterte resultater gjennomgås av National Library of Medicine (NLM) for å sikre at de oppfyller spesifikke kvalitetskontrollstandarder før de legges ut på det offentlige nettstedet.

Studer hoveddatoer

Studiestart (Faktiske)

1. juni 2021

Primær fullføring (Antatt)

1. april 2024

Studiet fullført (Antatt)

1. juni 2024

Datoer for studieregistrering

Først innsendt

23. desember 2023

Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene

31. januar 2024

Først lagt ut (Antatt)

9. februar 2024

Oppdateringer av studieposter

Sist oppdatering lagt ut (Antatt)

9. februar 2024

Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene

31. januar 2024

Sist bekreftet

1. januar 2024

Mer informasjon

Begreper knyttet til denne studien

Ytterligere relevante MeSH-vilkår

Andre studie-ID-numre

  • ExBioma

Plan for individuelle deltakerdata (IPD)

Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?

NEI

Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter

Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt

Nei

Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt

Nei

Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .

Abonnere