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Einfluss des Ex-vivo-Lungenperfusionssystems auf das Mikrobiom von Lungentransplantaten und ihre Entzündungsreaktion. (ExBioma)

31. Januar 2024 aktualisiert von: Irene Bello, Vall d'Hebron Institute Research

Es ist bekannt, dass die Wechselwirkungen zwischen Transplantat und Empfängermikrobiom in der Lage sind, Immunantworten zu modulieren, Widerstandsfähigkeit zu induzieren oder verschiedene entzündliche oder fibrotische Prozesse zu verschlimmern. Daher sind Variationen im Lungenmikrobiom mit immunologischen Veränderungen in der transplantierten Lunge verbunden.

Das Hauptziel besteht darin, die Auswirkungen neuer Systeme zur Konditionierung und Verbesserung suboptimaler Lungentransplantate mit Ex-vivo-Perfusion (EVLP) auf das Lungenmikrobiom und seinen Zusammenhang mit Gewebeentzündungen zu verstehen.

Die Hypothese ist, dass die Manipulation von Lungentransplantaten und die Perfusion mit Breitbandantibiotika während der EVLP-Konditionierung das Lungenmikrobiom verändern und eine weniger entzündungsfördernde Umgebung konditionieren.

Die Methodik: Es handelt sich um eine prospektive Beobachtungsstudie an einem einzigen Zentrum. 7 aufeinanderfolgende hirntote Spender, die die Kriterien für einen Lungenspender nicht erfüllen, werden in die Studie einbezogen. Sie werden durchgeführt:

  • P1. Erkennung: Der Spender hat keine Kriterien für die Einstufung als Lungenspender oder wird von allen Transplantationsteams abgelehnt.
  • P2. Extraktion.
  • P3. Kältekonservierung: Der linke Lungenflügel wird kältekonserviert
  • P4. EVLP-Konservierung: Die rechte Lunge wird mit EVLP präpariert und 3 Stunden lang konditioniert

Die folgenden Proben werden zu zwei Zeitpunkten entnommen:

  • T0: Am Ende der Extraktion
  • Bronchoalveoläre Lavage (BAL): Vor der Trachealklemmung wird mittels Bronchoskopie die BAL aus dem linken Hauptbronchus entnommen. Die BAL wird kurz vor Beginn von P4 an der rechten Lunge durchgeführt.
  • Lungenbiopsie: Es wird eine Lungenbiopsie des Unterlappens beider Transplantate durchgeführt
  • Konservierungsflüssigkeit oder Perfusionsflüssigkeit: 20 ml Konservierungsflüssigkeit, die vor der Lagerung mit dem linken Transplantat in Kontakt kommt, als Sterilitätskontrolle (P3) und 20 ml Perfusionsflüssigkeit vor der Konditionierung als Sterilitätskontrolle (P4).
  • T1: Am Ende der Konservierungsprotokolle (P3 oder P4).
  • B.A.L.
  • Lungenbiopsie: linker Unterlappen.
  • Konservierungsflüssigkeit oder Infusionsflüssigkeit: 20 ml Konservierungsflüssigkeit, die mit dem linken Transplantat in Kontakt kommt, oder 20 ml Perfusionsflüssigkeit.

Aufgrund der Manipulation der Transplantate während der Extraktion und der Anwendung der Technik, die die Extubation des Spenders und die anschließende erneute Intubation der Transplantate sowie eine mindestens dreistündige Perfusion mit Antibiotika umfasst, könnte die Verwendung von EVLP das Mikrobiom des Spenders verändern Transplantate. Diese Veränderung könnte sich auf die Gewinnung lebensfähiger Organe für eine Transplantation sowohl in der unmittelbaren postoperativen Phase als auch auf die langfristigen Ergebnisse auswirken. Es gibt keine Studien, die die Veränderung des Mikrobioms nach der Konditionierung mit EVLP oder seinen Zusammenhang mit Entzündungsparametern analysieren.

Studienübersicht

Status

Rekrutierung

Detaillierte Beschreibung

PROBENENTNAHME UND LAGERUNG

  • BAL:
  • Technik: Das Bronchoskop wird in Segment 6 eingeführt, Aliquots steriler Kochsalzlösung werden instilliert. Der Vorgang wird im Fall der rechten Lunge in den Segmenten 3 und 5 und im Fall der linken Lunge in Segment 6 und Lingula wiederholt. Für jedes Transplantat werden 20-30 ml BAL vervollständigt.
  • Lagerung: Die Proben werden unmittelbar nach der Entnahme eingefroren und mit einem Kältespeicher ins Labor gebracht, um sicherzustellen, dass sie nicht auftauen.
  • Analyse: Das Lungenmikrobiom wird analysiert.
  • Lungenbiopsie:
  • Technik: Eine Lungenbiopsie von mindestens 2 cm3 wird mit einer nicht resorbierbaren automatischen Naht entnommen.
  • Lagerung: Die Proben werden im RNA-Stabilisierungslösungsreagenz (QIAGEN) aufbewahrt, wodurch die Proben bis zum Einfrieren bei Raumtemperatur aufbewahrt werden können, wodurch ein RNA-Abbau vermieden wird.
  • Analyse: RNA-Sequenzierung der Transkription von Entzündungssignalen.
  • Ex-vivo-Perfusionsflüssigkeitslösung:
  • Technik: Sterile Probenentnahme mit einer 20-ml-Spritze.
  • Lagerung: Die Proben werden unmittelbar nach der Entnahme eingefroren und mit einem Kältespeicher ins Labor gebracht, um sicherzustellen, dass sie nicht auftauen.
  • Analyse: Mikrobiomanalyse
  • Flüssige Konservierungslösung:
  • Technik: Sterile Probenentnahme mit einer 20-ml-Spritze.
  • Lagerung: Die Proben werden unmittelbar nach der Entnahme eingefroren und mit einem Kältespeicher ins Labor gebracht, um sicherzustellen, dass sie nicht auftauen.
  • Analyse: Mikrobiom- und Zytokinanalyse

Alle Proben werden in einem Gefrierschrank bei -80 °C gelagert

- Mikrobiomanalyse Zur Analyse der mikrobiellen Diversität wird die variable V4-Region des 16S-Gens aus bakterieller DNA mittels PCR amplifiziert. Amplikons werden mithilfe der Illumina-Technologie (MiSeq) sequenziert. Die Proben werden verarbeitet und mehr als 10.000 300-bp-Sequenzen pro Sequenz und Probe generiert.

Die Genexpressionsanalyse der RNA-Extraktion wird mit dem kommerziellen RNeasy Mini Kit (QIAGEN) durchgeführt. Die Genexpressionsanalyse wird durch quantitative PCR (qPCR) unter Verwendung des vorgefertigten TransplantRejection-Panels von SignArray (AnyGenes®, Paris, Frankreich) durchgeführt, das 84 Gene umfasst, von denen beschrieben wurde, dass sie mit der Immunantwort bei der Transplantatabstoßung zusammenhängen. Dies sind: Im Panel enthaltene Gene: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86, CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44 , CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2, IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5 , IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28, CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA , GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10.

- Zytokinanalyse Die Bestimmung von Zytokinen in der Perfusionsflüssigkeit erfolgt mithilfe von Immunoassays auf Basis der Luminex™ xMAP™-Technologie (Multi-Analyt-Profiling), die die gleichzeitige Quantifizierung und Detektion verschiedener sekretierter Proteine ​​(Zytokine, Chemokine, Wachstumsfaktoren usw.) ermöglichen .) Wir werden Panels verwenden, die speziell für die interessierenden Genprodukte entwickelt wurden.

Die Zytokinspiegel werden mithilfe eines Immunoassays gemessen, der auf der Luminex™ xMAP™-Technologie basiert und eine multiparametrische Analyse der verschiedenen Zytokine ermöglicht. Zu diesem Zweck wird ein personalisiertes Zytokin-Panel entwickelt, das auf der veröffentlichten Literatur über die Wirkung von Statinen auf die Produktion von Zytokinen und anderen proinflammatorischen Chemokinen auf systemischer Ebene sowie auf bibliografischen Belegen zu den an Lungentransplantationen beteiligten Zytokinen basiert. Die in dem für diesen Zweck konzipierten Panel analysierten Zytokine sind IFN-Gamma, IL-1 Beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP- 1 alpha (CCL3), TNF alpha, VEGF-D (Custom Procartaplex Multiplex Panel, Invitrogen, ThermoFisher Scientific, MA, USA). Die immunologische Analyse wird mit der Invitrogen ProcartaPlex Analyst 1.0-Software durchgeführt, die mit den Reagenzien geliefert wird.

- Bioinformatische Analyse der Sequenzen Um die mikrobielle Zusammensetzung jeder Probe zu erhalten, verwenden wir die QIIME-Software. QIIME ist eine Software-Pipeline, die phylogenetische Informationen und multivariate statistische Techniken nutzt, um mikrobielle Gemeinschaften zu vergleichen und beispielsweise festzustellen, ob sie statistisch unterschiedlich sind. Das Programm identifiziert auch die Arten, die am meisten zu diesen Unterschieden beitragen, und entdeckt Muster verschiedener Typen, die bestimmte Gruppen von Proben charakterisieren.

Studientyp

Interventionell

Einschreibung (Geschätzt)

7

Phase

  • Unzutreffend

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienkontakt

Studieren Sie die Kontaktsicherung

Studienorte

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

  • Erwachsene
  • Älterer Erwachsener

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Nein

Beschreibung

Einschlusskriterien:

  • Hirntodspender und Spender nach Herz-Kreislauf-Tod, die für eine Lungentransplantation abgelehnt wurden

Ausschlusskriterien:

  • Einseitige Lungenentzündung
  • Fehlende Zustimmung der Familie des Spenders.

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

  • Hauptzweck: Behandlung
  • Zuteilung: Nicht randomisiert
  • Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
  • Maskierung: Keine (Offenes Etikett)

Waffen und Interventionen

Teilnehmergruppe / Arm
Intervention / Behandlung
Experimental: EVLP
Die rechte Lunge wird 3 Stunden lang mit EVLP perfundiert
Aktiver Komparator: Kaltkonservierung
Die linke Lunge wird wie üblich kalt konserviert

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Veränderung einzelner operativer taxonomischer Einheiten (OTUs) im Lungenparenchym nach der Ex-vivo-Lungenperfusion über 3 Stunden
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
Analysieren Sie das Lungenmikrobiom und die Alpha-Diversität vor der Verwendung der Ex-vivo-Lungenperfusion und vergleichen Sie anschließend die mikrologischen Proben
Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
Analyse mit quantitativer PCR der genetischen Expression von 84 Genen im Zusammenhang mit der Immunantwort bei Lungentransplantationen nach der Lungenperfusion während 3 Stunden im Ex-vivo-Lungenperfusionssystem.
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
Analysieren Sie mit quantitativer PCR die genetische Expression von 84 Genen, die mit der Immunantwort bei Lungentransplantationen zusammenhängen: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 in Lungenproben vor und nach der Verwendung von Ex-vivo-Lungenperfusion, Vergleich ihnen
Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
Analysieren Sie die Konzentration entzündlicher Zytokine nach ex vivo Lungenperfusion
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
Analysieren Sie die Konzentration entzündlicher Zytokine: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alpha (CCL3). ), TNF alpha,VEGF-D, mit Luminex xMAP-Technik, in Perfusionslösung vor und nach der Verwendung von ex vivo Lungenperfusion und Vergleich dieser Ergebnisse
Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
Veränderung einzelner operativer taxonomischer Einheiten (OTUs) im Lungenparenchym nach Kühllagerung
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Kühllagerung
Analysieren Sie das Lungenmikrobiom und die Alpha-Diversität vor und nach der Kühllagerung und vergleichen Sie die mikrologischen Proben.
Nach 3 Stunden Kühllagerung
Analyse der Konzentration entzündungsfördernder Zitokine nach Kühllagerung
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Kühllagerung
Analysieren Sie die Konzentration entzündlicher Zytokine: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alpha (CCL3). ), TNF alpha,VEGF-D, mit Luminex xMAP-Technik, in Perfusionslösung vor und nach der Kühllagerung und deren Vergleich
Nach 3 Stunden Kühllagerung
Analyse mit quantitativer PCR der genetischen Expression von 84 Genen im Zusammenhang mit der Immunantwort bei Lungentransplantationen nach Kühllagerung
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Kühllagerung
Analysieren Sie mit quantitativer PCR die genetische Expression von 84 Genen, die mit der Immunantwort bei Lungentransplantationen zusammenhängen: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 in Lungenproben vor und nach der Kühllagerung und deren Vergleich
Nach 3 Stunden Kühllagerung

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Ermittler

  • Studienleiter: Irene Bello Rodríguez, Professor, Hospital Clinic of Barcelona

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn (Tatsächlich)

1. Juni 2021

Primärer Abschluss (Geschätzt)

1. April 2024

Studienabschluss (Geschätzt)

1. Juni 2024

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

23. Dezember 2023

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

31. Januar 2024

Zuerst gepostet (Geschätzt)

9. Februar 2024

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Geschätzt)

9. Februar 2024

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

31. Januar 2024

Zuletzt verifiziert

1. Januar 2024

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen

Andere Studien-ID-Nummern

  • ExBioma

Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)

Planen Sie, individuelle Teilnehmerdaten (IPD) zu teilen?

NEIN

Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt

Nein

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt

Nein

Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .

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Klinische Studien zur EVLP

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