- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT06250517
Einfluss des Ex-vivo-Lungenperfusionssystems auf das Mikrobiom von Lungentransplantaten und ihre Entzündungsreaktion. (ExBioma)
Es ist bekannt, dass die Wechselwirkungen zwischen Transplantat und Empfängermikrobiom in der Lage sind, Immunantworten zu modulieren, Widerstandsfähigkeit zu induzieren oder verschiedene entzündliche oder fibrotische Prozesse zu verschlimmern. Daher sind Variationen im Lungenmikrobiom mit immunologischen Veränderungen in der transplantierten Lunge verbunden.
Das Hauptziel besteht darin, die Auswirkungen neuer Systeme zur Konditionierung und Verbesserung suboptimaler Lungentransplantate mit Ex-vivo-Perfusion (EVLP) auf das Lungenmikrobiom und seinen Zusammenhang mit Gewebeentzündungen zu verstehen.
Die Hypothese ist, dass die Manipulation von Lungentransplantaten und die Perfusion mit Breitbandantibiotika während der EVLP-Konditionierung das Lungenmikrobiom verändern und eine weniger entzündungsfördernde Umgebung konditionieren.
Die Methodik: Es handelt sich um eine prospektive Beobachtungsstudie an einem einzigen Zentrum. 7 aufeinanderfolgende hirntote Spender, die die Kriterien für einen Lungenspender nicht erfüllen, werden in die Studie einbezogen. Sie werden durchgeführt:
- P1. Erkennung: Der Spender hat keine Kriterien für die Einstufung als Lungenspender oder wird von allen Transplantationsteams abgelehnt.
- P2. Extraktion.
- P3. Kältekonservierung: Der linke Lungenflügel wird kältekonserviert
- P4. EVLP-Konservierung: Die rechte Lunge wird mit EVLP präpariert und 3 Stunden lang konditioniert
Die folgenden Proben werden zu zwei Zeitpunkten entnommen:
- T0: Am Ende der Extraktion
- Bronchoalveoläre Lavage (BAL): Vor der Trachealklemmung wird mittels Bronchoskopie die BAL aus dem linken Hauptbronchus entnommen. Die BAL wird kurz vor Beginn von P4 an der rechten Lunge durchgeführt.
- Lungenbiopsie: Es wird eine Lungenbiopsie des Unterlappens beider Transplantate durchgeführt
- Konservierungsflüssigkeit oder Perfusionsflüssigkeit: 20 ml Konservierungsflüssigkeit, die vor der Lagerung mit dem linken Transplantat in Kontakt kommt, als Sterilitätskontrolle (P3) und 20 ml Perfusionsflüssigkeit vor der Konditionierung als Sterilitätskontrolle (P4).
- T1: Am Ende der Konservierungsprotokolle (P3 oder P4).
- B.A.L.
- Lungenbiopsie: linker Unterlappen.
- Konservierungsflüssigkeit oder Infusionsflüssigkeit: 20 ml Konservierungsflüssigkeit, die mit dem linken Transplantat in Kontakt kommt, oder 20 ml Perfusionsflüssigkeit.
Aufgrund der Manipulation der Transplantate während der Extraktion und der Anwendung der Technik, die die Extubation des Spenders und die anschließende erneute Intubation der Transplantate sowie eine mindestens dreistündige Perfusion mit Antibiotika umfasst, könnte die Verwendung von EVLP das Mikrobiom des Spenders verändern Transplantate. Diese Veränderung könnte sich auf die Gewinnung lebensfähiger Organe für eine Transplantation sowohl in der unmittelbaren postoperativen Phase als auch auf die langfristigen Ergebnisse auswirken. Es gibt keine Studien, die die Veränderung des Mikrobioms nach der Konditionierung mit EVLP oder seinen Zusammenhang mit Entzündungsparametern analysieren.
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
PROBENENTNAHME UND LAGERUNG
- BAL:
- Technik: Das Bronchoskop wird in Segment 6 eingeführt, Aliquots steriler Kochsalzlösung werden instilliert. Der Vorgang wird im Fall der rechten Lunge in den Segmenten 3 und 5 und im Fall der linken Lunge in Segment 6 und Lingula wiederholt. Für jedes Transplantat werden 20-30 ml BAL vervollständigt.
- Lagerung: Die Proben werden unmittelbar nach der Entnahme eingefroren und mit einem Kältespeicher ins Labor gebracht, um sicherzustellen, dass sie nicht auftauen.
- Analyse: Das Lungenmikrobiom wird analysiert.
- Lungenbiopsie:
- Technik: Eine Lungenbiopsie von mindestens 2 cm3 wird mit einer nicht resorbierbaren automatischen Naht entnommen.
- Lagerung: Die Proben werden im RNA-Stabilisierungslösungsreagenz (QIAGEN) aufbewahrt, wodurch die Proben bis zum Einfrieren bei Raumtemperatur aufbewahrt werden können, wodurch ein RNA-Abbau vermieden wird.
- Analyse: RNA-Sequenzierung der Transkription von Entzündungssignalen.
- Ex-vivo-Perfusionsflüssigkeitslösung:
- Technik: Sterile Probenentnahme mit einer 20-ml-Spritze.
- Lagerung: Die Proben werden unmittelbar nach der Entnahme eingefroren und mit einem Kältespeicher ins Labor gebracht, um sicherzustellen, dass sie nicht auftauen.
- Analyse: Mikrobiomanalyse
- Flüssige Konservierungslösung:
- Technik: Sterile Probenentnahme mit einer 20-ml-Spritze.
- Lagerung: Die Proben werden unmittelbar nach der Entnahme eingefroren und mit einem Kältespeicher ins Labor gebracht, um sicherzustellen, dass sie nicht auftauen.
- Analyse: Mikrobiom- und Zytokinanalyse
Alle Proben werden in einem Gefrierschrank bei -80 °C gelagert
- Mikrobiomanalyse Zur Analyse der mikrobiellen Diversität wird die variable V4-Region des 16S-Gens aus bakterieller DNA mittels PCR amplifiziert. Amplikons werden mithilfe der Illumina-Technologie (MiSeq) sequenziert. Die Proben werden verarbeitet und mehr als 10.000 300-bp-Sequenzen pro Sequenz und Probe generiert.
Die Genexpressionsanalyse der RNA-Extraktion wird mit dem kommerziellen RNeasy Mini Kit (QIAGEN) durchgeführt. Die Genexpressionsanalyse wird durch quantitative PCR (qPCR) unter Verwendung des vorgefertigten TransplantRejection-Panels von SignArray (AnyGenes®, Paris, Frankreich) durchgeführt, das 84 Gene umfasst, von denen beschrieben wurde, dass sie mit der Immunantwort bei der Transplantatabstoßung zusammenhängen. Dies sind: Im Panel enthaltene Gene: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86, CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44 , CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2, IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5 , IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28, CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA , GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10.
- Zytokinanalyse Die Bestimmung von Zytokinen in der Perfusionsflüssigkeit erfolgt mithilfe von Immunoassays auf Basis der Luminex™ xMAP™-Technologie (Multi-Analyt-Profiling), die die gleichzeitige Quantifizierung und Detektion verschiedener sekretierter Proteine (Zytokine, Chemokine, Wachstumsfaktoren usw.) ermöglichen .) Wir werden Panels verwenden, die speziell für die interessierenden Genprodukte entwickelt wurden.
Die Zytokinspiegel werden mithilfe eines Immunoassays gemessen, der auf der Luminex™ xMAP™-Technologie basiert und eine multiparametrische Analyse der verschiedenen Zytokine ermöglicht. Zu diesem Zweck wird ein personalisiertes Zytokin-Panel entwickelt, das auf der veröffentlichten Literatur über die Wirkung von Statinen auf die Produktion von Zytokinen und anderen proinflammatorischen Chemokinen auf systemischer Ebene sowie auf bibliografischen Belegen zu den an Lungentransplantationen beteiligten Zytokinen basiert. Die in dem für diesen Zweck konzipierten Panel analysierten Zytokine sind IFN-Gamma, IL-1 Beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP- 1 alpha (CCL3), TNF alpha, VEGF-D (Custom Procartaplex Multiplex Panel, Invitrogen, ThermoFisher Scientific, MA, USA). Die immunologische Analyse wird mit der Invitrogen ProcartaPlex Analyst 1.0-Software durchgeführt, die mit den Reagenzien geliefert wird.
- Bioinformatische Analyse der Sequenzen Um die mikrobielle Zusammensetzung jeder Probe zu erhalten, verwenden wir die QIIME-Software. QIIME ist eine Software-Pipeline, die phylogenetische Informationen und multivariate statistische Techniken nutzt, um mikrobielle Gemeinschaften zu vergleichen und beispielsweise festzustellen, ob sie statistisch unterschiedlich sind. Das Programm identifiziert auch die Arten, die am meisten zu diesen Unterschieden beitragen, und entdeckt Muster verschiedener Typen, die bestimmte Gruppen von Proben charakterisieren.
Studientyp
Einschreibung (Geschätzt)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Irene Bello Rodríguez, Professor
- Telefonnummer: +34620664172
- E-Mail: irene.bello.rodriguez@gmail.com
Studieren Sie die Kontaktsicherung
- Name: Alberto Sandiumenge Camps, Professor
- Telefonnummer: +34639955585
- E-Mail: albertosandiumenge@gmail.com
Studienorte
-
-
-
Barcelona, Spanien, 08036
- Rekrutierung
- Hospital Clinic de Barcelona
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Kontakt:
- Irene bello, Prof
- Telefonnummer: +34620664172
- E-Mail: irene.bello.rodriguez@gmail.com
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Kontakt:
- Alberto Sandiumenge, Prof
- Telefonnummer: +34639955585
- E-Mail: albertosandiumenge@gmail.com
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Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
- Erwachsene
- Älterer Erwachsener
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Hirntodspender und Spender nach Herz-Kreislauf-Tod, die für eine Lungentransplantation abgelehnt wurden
Ausschlusskriterien:
- Einseitige Lungenentzündung
- Fehlende Zustimmung der Familie des Spenders.
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: Nicht randomisiert
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
|---|---|
|
Experimental: EVLP
|
Die rechte Lunge wird 3 Stunden lang mit EVLP perfundiert
|
|
Aktiver Komparator: Kaltkonservierung
|
Die linke Lunge wird wie üblich kalt konserviert
|
Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
|
Veränderung einzelner operativer taxonomischer Einheiten (OTUs) im Lungenparenchym nach der Ex-vivo-Lungenperfusion über 3 Stunden
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
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Analysieren Sie das Lungenmikrobiom und die Alpha-Diversität vor der Verwendung der Ex-vivo-Lungenperfusion und vergleichen Sie anschließend die mikrologischen Proben
|
Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
|
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Analyse mit quantitativer PCR der genetischen Expression von 84 Genen im Zusammenhang mit der Immunantwort bei Lungentransplantationen nach der Lungenperfusion während 3 Stunden im Ex-vivo-Lungenperfusionssystem.
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
|
Analysieren Sie mit quantitativer PCR die genetische Expression von 84 Genen, die mit der Immunantwort bei Lungentransplantationen zusammenhängen: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 in Lungenproben vor und nach der Verwendung von Ex-vivo-Lungenperfusion, Vergleich ihnen
|
Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
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Analysieren Sie die Konzentration entzündlicher Zytokine nach ex vivo Lungenperfusion
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
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Analysieren Sie die Konzentration entzündlicher Zytokine: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alpha (CCL3). ), TNF alpha,VEGF-D, mit Luminex xMAP-Technik, in Perfusionslösung vor und nach der Verwendung von ex vivo Lungenperfusion und Vergleich dieser Ergebnisse
|
Nach 3 Stunden Perfusion in der Ex-vivo-Lungenperfusion
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Veränderung einzelner operativer taxonomischer Einheiten (OTUs) im Lungenparenchym nach Kühllagerung
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Kühllagerung
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Analysieren Sie das Lungenmikrobiom und die Alpha-Diversität vor und nach der Kühllagerung und vergleichen Sie die mikrologischen Proben.
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Nach 3 Stunden Kühllagerung
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Analyse der Konzentration entzündungsfördernder Zitokine nach Kühllagerung
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Kühllagerung
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Analysieren Sie die Konzentration entzündlicher Zytokine: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alpha (CCL3). ), TNF alpha,VEGF-D, mit Luminex xMAP-Technik, in Perfusionslösung vor und nach der Kühllagerung und deren Vergleich
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Nach 3 Stunden Kühllagerung
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Analyse mit quantitativer PCR der genetischen Expression von 84 Genen im Zusammenhang mit der Immunantwort bei Lungentransplantationen nach Kühllagerung
Zeitfenster: Nach 3 Stunden Kühllagerung
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Analysieren Sie mit quantitativer PCR die genetische Expression von 84 Genen, die mit der Immunantwort bei Lungentransplantationen zusammenhängen: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 in Lungenproben vor und nach der Kühllagerung und deren Vergleich
|
Nach 3 Stunden Kühllagerung
|
Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Mitarbeiter
Ermittler
- Studienleiter: Irene Bello Rodríguez, Professor, Hospital Clinic of Barcelona
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Geschätzt)
Studienabschluss (Geschätzt)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Geschätzt)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Geschätzt)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Mehr Informationen
Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie
Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
Andere Studien-ID-Nummern
- ExBioma
Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)
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Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
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