Denne side blev automatisk oversat, og nøjagtigheden af ​​oversættelsen er ikke garanteret. Der henvises til engelsk version for en kildetekst.

Indvirkningen af ​​det ex-vivo pulmonale perfusionssystem på mikrobiomet af lungetransplantater og deres inflammatoriske reaktion. (ExBioma)

31. januar 2024 opdateret af: Irene Bello, Vall d'Hebron Institute Research

Det er kendt, at interaktionerne mellem transplantatet og modtagermikrobiomet er i stand til at modulere immunresponser, inducere modstandskraft eller forværring af forskellige inflammatoriske eller fibrotiske processer, derfor er variationer i lungemikrobiomet forbundet med immunologiske ændringer i den transplanterede lunge.

Hovedformålet er at forstå virkningen af ​​nye systemer til konditionering og forbedring af suboptimale lungetransplantater med ex vivo perfusion (EVLP) på lungemikrobiomet og dets sammenhæng med vævsinflammation.

Hypotesen er, at manipulation af lungetransplantater og perfusion med bredspektrede antibiotika under EVLP-konditionering ændrer lungemikrobiomet, hvilket betinger et mindre pro-inflammatorisk miljø.

Metoden: Dette er et enkelt-center prospektivt observationsstudie. 7 på hinanden følgende hjernedøde donorer, som ikke opfylder kriterierne for at være lungedonorer, vil blive inkluderet i undersøgelsen. De vil blive udført:

  • P1. Påvisning: Donoren uden kriterier for at være lungedonor eller afvist af alle transplantationsholdene.
  • P2. Udvinding.
  • P3. Koldkonservering: Den venstre lunge vil være koldkonserveret
  • P4. EVLP-konservering: Den højre lunge vil blive klargjort og konditioneret i 3 timer ved hjælp af EVLP

Følgende prøver udtages på to tidspunkter:

  • T0: Ved slutningen af ​​ekstraktionen
  • Bronchoalveolær udskylning (BAL): Inden tracheal fastspænding vil BAL blive taget fra venstre hovedbronchus ved hjælp af bronkoskopi. BAL vil blive udført på højre lunge lige før start af P4.
  • Lungebiopsi: Lungebiopsi af den nedre del af begge transplantater vil blive udført
  • Konserveringsvæske eller perfusionsvæske: 20 ml konserveringsvæske, der er i kontakt med venstre graft før opbevaring, som sterilitetskontrol (P3) og 20 ml perfusionsvæske før konditionering, som sterilitetskontrol (P4).
  • T1: I slutningen af ​​konserveringsprotokollerne (P3 eller P4).
  • B.A.L.
  • Lungebiopsi: venstre nederste lap.
  • Konserveringsvæske eller infusionsvæske: 20 ml konserveringsvæske, der er i kontakt med venstre graft eller 20 ml perfusionsvæske.

På grund af manipulation af transplantaterne under ekstraktion og brug af teknikken, som involverer ekstubering af donoren og efterfølgende intubering af transplantaterne, samt perfusion i minimum 3 timer med antibiotika, kan brugen af ​​EVLP ændre mikrobiomet af transplantater. Denne ændring kan påvirke opnåelsen af ​​levedygtige organer til transplantation, i den umiddelbare postoperative periode såvel som i de langsigtede resultater. Der er ingen undersøgelser, der analyserer ændringen i mikrobiomet efter konditionering med EVLP eller dets forhold til inflammatoriske parametre.

Studieoversigt

Status

Rekruttering

Detaljeret beskrivelse

PRØVETAGNING OG OPBEVARING

  • BAL:
  • Teknik: Bronkoskopet vil blive indsat i segment 6, alikvoter af sterilt saltvand inddryppes. Proceduren vil blive gentaget i segment 3 og 5, i tilfælde af højre lunge, og i segment 6 og lingula i venstre lunge. 20-30cc BAL vil blive færdiggjort for hver graft.
  • Opbevaring: Prøver vil blive frosset umiddelbart efter indsamling og overført til laboratoriet med en kold akkumulator for at sikre, at de ikke tøer op.
  • Analyse: Lungemikrobiomet vil blive analyseret.
  • Lungebiopsi:
  • Teknik: Lungebiopsi på minimum 2 cm3 vil blive taget med ikke-absorberbar automatisk sutur.
  • Opbevaring: Prøver vil blive bevaret i RNA Stabilization Solution Reagent (QIAGEN), som gør det muligt at opbevare prøver ved stuetemperatur, indtil de er frosne, hvilket undgår RNA-nedbrydning.
  • Analyse: RNA-sekventering af transkription af inflammatoriske signaler.
  • Ex vivo perfusion flydende opløsning:
  • Teknik: Udtagning af prøver sterilt med en 20cc sprøjte.
  • Opbevaring: Prøver vil blive frosset umiddelbart efter indsamling og overført til laboratoriet med en kold akkumulator for at sikre, at de ikke tøer op.
  • Analyse: Mikrobiom analyse
  • Konserverende flydende opløsning:
  • Teknik: Udtagning af prøver sterilt med en 20cc sprøjte.
  • Opbevaring: Prøver vil blive frosset umiddelbart efter indsamling og overført til laboratoriet med en kold akkumulator for at sikre, at de ikke tøer op.
  • Analyse: Mikrobiom og cytokinanalyse

Alle prøver vil blive opbevaret i en fryser ved -80

- Mikrobiomanalyse Til analyse af mikrobiel diversitet vil den variable V4-region af 16S-genet blive amplificeret fra bakterielt DNA ved PCR. Amplikoner vil blive sekventeret ved hjælp af Illumina (MiSeq) teknologi. Prøver vil blive behandlet, og mere end 10.000 300bp-sekvenser pr. sekvens pr. prøve vil blive genereret.

Genekspressionsanalyse RNA-ekstraktion vil blive udført ved hjælp af det kommercielle RNeasy Mini Kit (QIAGEN). Genekspressionsanalyse vil blive udført ved kvantitativ PCR (qPCR) ved hjælp af det foruddesignede TransplantRejection-panel fra SignArray (AnyGenes®, Paris, Frankrig), der inkluderer 84 gener, der er blevet beskrevet at være relateret til immunresponset ved transplantatafstødning. Disse er: Gener inkluderet i panelet: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86, CTLA4, CD, T4GF14, CXCR3, STAT , CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2, IL2RA, 5 IL, 4 IL, 5 , IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28, CD8A, FCMALG, FAS1A, FAS , GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10.

- Cytokinanalyse Bestemmelsen af ​​cytokiner i perfusionsvæsken vil blive udført ved hjælp af immunoassays baseret på Luminex™ xMAP™-teknologi (multi-analytprofilering), der muliggør samtidig kvantificering og påvisning af forskellige udskilte proteiner (cytokiner, kemokiner, vækstfaktorer osv.) .) Vi vil bruge paneler designet specifikt til genprodukterne af interesse.

Cytokinniveauer måles ved hjælp af en immunoassay baseret på Luminex™ xMAP™-teknologi, der muliggør multiparametrisk analyse af de forskellige cytokiner. Til dette formål er der designet et personligt cytokinpanel baseret på den publicerede litteratur om virkningen af ​​statiner på produktionen af ​​cytokiner og andre proinflammatoriske kemokiner på systemisk niveau, samt bibliografisk dokumentation for de cytokiner, der er involveret i lungetransplantation. Cytokinerne analyseret i panelet designet til dette formål er IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP- 1 alfa (CCL3), TNF alfa, VEGF-D (Custom Procartaplex Multiplex Panel, Invitrogen, ThermoFisher Scientific, MA, USA). Den immunologiske analyse vil blive udført ved hjælp af Invitrogen ProcartaPlex Analyst 1.0-softwaren, der leveres med reagenserne.

- Bioinformatisk analyse af sekvenserne For at opnå den mikrobielle sammensætning af hver prøve, vil vi bruge QIIME-softwaren. QIIME er en softwarepipeline, der bruger fylogenetisk information og multivariate statistiske teknikker til at sammenligne mikrobielle samfund og for eksempel bestemme, om de er statistisk forskellige. Programmet identificerer også de arter, der bidrager mest til disse forskelle, og opdager mønstre af forskellige typer, der karakteriserer specifikke grupper af prøver.

Undersøgelsestype

Interventionel

Tilmelding (Anslået)

7

Fase

  • Ikke anvendelig

Kontakter og lokationer

Dette afsnit indeholder kontaktoplysninger for dem, der udfører undersøgelsen, og oplysninger om, hvor denne undersøgelse udføres.

Studiekontakt

Undersøgelse Kontakt Backup

Studiesteder

Deltagelseskriterier

Forskere leder efter personer, der passer til en bestemt beskrivelse, kaldet berettigelseskriterier. Nogle eksempler på disse kriterier er en persons generelle helbredstilstand eller tidligere behandlinger.

Berettigelseskriterier

Aldre berettiget til at studere

  • Voksen
  • Ældre voksen

Tager imod sunde frivillige

Ingen

Beskrivelse

Inklusionskriterier:

  • hjernedødsdonorer og donorer efter hjerte-kredsløbsdød afvist til lungetransplantation

Ekskluderingskriterier:

  • Ensidig lungebetændelse
  • Manglende samtykke til donorens familie.

Studieplan

Dette afsnit indeholder detaljer om studieplanen, herunder hvordan undersøgelsen er designet, og hvad undersøgelsen måler.

Hvordan er undersøgelsen tilrettelagt?

Design detaljer

  • Primært formål: Behandling
  • Tildeling: Ikke-randomiseret
  • Interventionel model: Parallel tildeling
  • Maskning: Ingen (Åben etiket)

Våben og indgreb

Deltagergruppe / Arm
Intervention / Behandling
Eksperimentel: EVLP
Den højre lunge vil blive perfunderet i 3 timer med EVLP
Aktiv komparator: Kold konservering
Den venstre lunge vil blive koldbevaret som sædvanlig protokol

Hvad måler undersøgelsen?

Primære resultatmål

Resultatmål
Foranstaltningsbeskrivelse
Tidsramme
Ændring i individuelle operationelle taksonomiske enheder (OTU'er) i lungeparenkym efter exvivo lungeperfusion i 3 timer
Tidsramme: Efter 3 timers perfusion in ex vivo lungeperfusion
Analyser lungemikrobiomet og alfa-diversiteten før brugen af ​​exvivo lungeperfusion og efter sammenligne de mikrologiske prøver
Efter 3 timers perfusion in ex vivo lungeperfusion
Analyse med kvantitativ PCR af den genetiske ekspression af 84 gener relateret til immunrespons ved lungetransplantation efter lungeperfusionen i løbet af 3 timer i exvivo lungeperfusionssystem.
Tidsramme: Efter 3 timers perfusion in ex vivo lungeperfusion
Analyser med kvantitativ PCR af den genetiske ekspression af 84 gener relateret til immunrespons ved lungetransplantation: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL13 IL, 1BIL, 1BIL, 1BIL, 1BIL, 16 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2CR, CD8 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 i lungeprøver før brug af exvivo lungeperfusion og efter, dem
Efter 3 timers perfusion in ex vivo lungeperfusion
Analyser koncentrationen af ​​inflammatoriske cytokiner efter exvivo lungeperfusion
Tidsramme: Efter 3 timers perfusion in ex vivo lungeperfusion
Analyser koncentrationen af ​​inflammatoriske cytokiner: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alpha (CCL3) ), TNF alfa,VEGF-D, med Luminex xMAP teknik, i perfusionsopløsning før og efter brug af exvivo lungeperfusion og sammenligning af dem
Efter 3 timers perfusion in ex vivo lungeperfusion
Ændring i individuelle operationelle taksonomiske enheder (OTU'er) i lungeparenkym efter køleopbevaring
Tidsramme: Efter 3 timers køleopbevaring
Analyser lungemikrobiomet og alfa-diversiteten før og efter køleopbevaringen og sammenlign de mikrologiske prøver.
Efter 3 timers køleopbevaring
Analyse af koncentrationen af ​​inflammatoriske citokiner efter køleopbevaring
Tidsramme: Efter 3 timers køleopbevaring
Analyser koncentrationen af ​​inflammatoriske cytokiner: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alpha (CCL3) ), TNF alfa,VEGF-D, med Luminex xMAP-teknik, i perfusionsopløsning før og efter køleopbevaring og sammenligning af dem
Efter 3 timers køleopbevaring
Analyse med kvantitativ PCR af den genetiske ekspression af 84 gener relateret til immunrespons ved lungetransplantation efter køleopbevaring
Tidsramme: Efter 3 timers køleopbevaring
Analyser med kvantitativ PCR af den genetiske ekspression af 84 gener relateret til immunrespons ved lungetransplantation: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL13 IL, 1BIL, 1BIL, 1BIL, 1BIL, 16 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2CR, CD8 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 i lungeprøver før og efter køleopbevaring, og sammenligner dem
Efter 3 timers køleopbevaring

Samarbejdspartnere og efterforskere

Det er her, du vil finde personer og organisationer, der er involveret i denne undersøgelse.

Samarbejdspartnere

Efterforskere

  • Studieleder: Irene Bello Rodríguez, Professor, Hospital Clinic of Barcelona

Datoer for undersøgelser

Disse datoer sporer fremskridtene for indsendelser af undersøgelsesrekord og resumeresultater til ClinicalTrials.gov. Studieregistreringer og rapporterede resultater gennemgås af National Library of Medicine (NLM) for at sikre, at de opfylder specifikke kvalitetskontrolstandarder, før de offentliggøres på den offentlige hjemmeside.

Studer store datoer

Studiestart (Faktiske)

1. juni 2021

Primær færdiggørelse (Anslået)

1. april 2024

Studieafslutning (Anslået)

1. juni 2024

Datoer for studieregistrering

Først indsendt

23. december 2023

Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier

31. januar 2024

Først opslået (Anslået)

9. februar 2024

Opdateringer af undersøgelsesjournaler

Sidste opdatering sendt (Anslået)

9. februar 2024

Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier

31. januar 2024

Sidst verificeret

1. januar 2024

Mere information

Begreber relateret til denne undersøgelse

Yderligere relevante MeSH-vilkår

Andre undersøgelses-id-numre

  • ExBioma

Plan for individuelle deltagerdata (IPD)

Planlægger du at dele individuelle deltagerdata (IPD)?

INGEN

Lægemiddel- og udstyrsoplysninger, undersøgelsesdokumenter

Studerer et amerikansk FDA-reguleret lægemiddelprodukt

Ingen

Studerer et amerikansk FDA-reguleret enhedsprodukt

Ingen

Disse oplysninger blev hentet direkte fra webstedet clinicaltrials.gov uden ændringer. Hvis du har nogen anmodninger om at ændre, fjerne eller opdatere dine undersøgelsesoplysninger, bedes du kontakte register@clinicaltrials.gov. Så snart en ændring er implementeret på clinicaltrials.gov, vil denne også blive opdateret automatisk på vores hjemmeside .

Kliniske forsøg med Lungetransplantationsfejl

Kliniske forsøg med EVLP

Abonner