Denna sida har översatts automatiskt och översättningens korrekthet kan inte garanteras. Vänligen se engelsk version för en källtext.

Inverkan av Ex-vivo lungperfusionssystemet på mikrobiomet hos lungtransplantat och deras inflammatoriska reaktion. (ExBioma)

31 januari 2024 uppdaterad av: Irene Bello, Vall d'Hebron Institute Research

Det är känt att interaktionerna mellan transplantatet och mottagarmikrobiomet kan modulera immunsvar, inducera motståndskraft eller exacerbation av olika inflammatoriska eller fibrotiska processer, därför är variationer i lungmikrobiomet associerade med immunologiska förändringar i den transplanterade lungan.

Huvudsyftet är att förstå effekten av nya system för att konditionera och förbättra suboptimala lungtransplantat med ex vivo perfusion (EVLP) på lungmikrobiomet och dess samband med vävnadsinflammation.

Hypotesen är att manipulation av lungtransplantat och perfusion med bredspektrumantibiotika under EVLP-konditionering förändrar lungmikrobiomet, vilket ger en mindre pro-inflammatorisk miljö.

Metodiken: Detta är en prospektiv observationsstudie med ett centrum. 7 på varandra följande hjärndöda donatorer som inte uppfyller kriterierna för att vara lungdonatorer kommer att inkluderas i studien. De kommer att genomföras:

  • P1. Detektion: Donatorn utan kriterier för att vara lungdonator eller avvisad av alla transplantationsteam.
  • P2. Extraktion.
  • P3. Kylkonservering: Vänster lunga kommer att kallkonserveras
  • P4. EVLP-konservering: Höger lunga förbereds och konditioneras i 3 timmar med EVLP

Följande prover kommer att tas vid två tillfällen:

  • T0: Vid slutet av extraktionen
  • Bronkoalveolär sköljning (BAL): Innan trakeal fastklämning kommer BAL att tas från den vänstra huvudbronkusen med hjälp av bronkoskopi. BAL kommer att utföras på höger lunga precis innan P4 startar.
  • Lungbiopsi: Lungbiopsi av den nedre loben av båda transplantaten kommer att utföras
  • Konserveringsvätska eller perfusionsvätska: 20 ml konserveringsvätska som är i kontakt med vänster transplantat före lagring, som sterilitetskontroll (P3) och 20 ml perfusionsvätska före konditionering, som sterilitetskontroll (P4).
  • T1: I slutet av konserveringsprotokollen (P3 eller P4).
  • B.A.L.
  • Lungbiopsi: vänster nedre lob.
  • Konserveringsvätska eller infusionsvätska: 20 mL konserveringsvätska som är i kontakt med det vänstra transplantatet eller 20 mL perfusionsvätska.

På grund av manipuleringen av transplantaten under extraktion och användning av tekniken, vilket innebär att givaren extuberas och därefter intuberas igen transplantaten, samt perfusion i minst 3 timmar med antibiotika, kan användningen av EVLP förändra mikrobiomet hos transplantatet. transplantat. Denna förändring kan påverka erhållandet av livsdugliga organ för transplantation, såväl under den omedelbara postoperativa perioden som i de långsiktiga resultaten. Det finns inga studier som analyserar förändringen i mikrobiomet efter konditionering med EVLP eller dess samband med inflammatoriska parametrar.

Studieöversikt

Status

Rekrytering

Detaljerad beskrivning

PROVTAGNING OCH FÖRVARING

  • BAL:
  • Teknik: Bronkoskopet kommer att sättas in i segment 6, alikvoter av steril koksaltlösning kommer att instilleras. Proceduren kommer att upprepas i segment 3 och 5, när det gäller höger lunga, och i segment 6 och lingula i vänster lunga. 20-30cc BAL kommer att fyllas i för varje transplantat.
  • Förvaring: Proverna kommer att frysas omedelbart efter insamling och överföras till laboratoriet med en kylackumulator för att säkerställa att de inte tinar.
  • Analys: Lungmikrobiomet kommer att analyseras.
  • Lungbiopsi:
  • Teknik: Lungbiopsi på minst 2 cm3 kommer att tas med icke-absorberbar automatisk sutur.
  • Förvaring: Proverna kommer att bevaras i RNA Stabilization Solution Reagent (QIAGEN), vilket gör att prover kan förvaras i rumstemperatur tills de fryses, vilket undviker RNA-nedbrytning.
  • Analys: RNA-sekvensering av transkription av inflammatoriska signaler.
  • Ex vivo perfusion flytande lösning:
  • Teknik: Ta prover sterila med en 20cc spruta.
  • Förvaring: Proverna kommer att frysas omedelbart efter insamling och överföras till laboratoriet med en kylackumulator för att säkerställa att de inte tinar.
  • Analys: Mikrobiomanalys
  • Konserverande flytande lösning:
  • Teknik: Ta prover sterila med en 20cc spruta.
  • Förvaring: Proverna kommer att frysas omedelbart efter insamling och överföras till laboratoriet med en kylackumulator för att säkerställa att de inte tinar.
  • Analys: Mikrobiom och cytokinanalys

Alla prover kommer att förvaras i frys vid -80

- Mikrobiomanalys För analys av mikrobiell mångfald kommer den variabla V4-regionen av 16S-genen att amplifieras från bakteriellt DNA genom PCR. Amplikoner kommer att sekvenseras med Illumina (MiSeq) teknologi. Prover kommer att bearbetas och mer än 10 000 300bp-sekvenser per sekvens per prov kommer att genereras.

Genuttrycksanalys RNA-extraktion kommer att utföras med det kommersiella RNeasy Mini Kit (QIAGEN). Genuttrycksanalys kommer att utföras med kvantitativ PCR (qPCR) med hjälp av den fördesignade TransplantRejection-panelen från SignArray (AnyGenes®, Paris, Frankrike) som inkluderar 84 gener som har beskrivits vara relaterade till immunsvaret vid transplantatavstötning. Dessa är: Gener som ingår i panelen: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86, CTLA4, CD, T4GF14, CXCR3, STAT , CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2, IL2RA, 5 IL, 4 IL, 5 , IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28, CD8A, FCMA, FAS1A, FAS , GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10.

- Cytokinanalys Bestämningen av cytokiner i perfusionsvätskan kommer att utföras med hjälp av immunanalyser baserade på Luminex™ xMAP™-teknologi (multi-analytprofilering) som möjliggör samtidig kvantifiering och detektering av olika utsöndrade proteiner (cytokiner, kemokiner, tillväxtfaktorer, etc.) .) Vi kommer att använda paneler utformade specifikt för genprodukterna av intresse.

Cytokinnivåer mäts med en immunanalys baserad på Luminex™ xMAP™-teknologi som möjliggör multiparametrisk analys av de olika cytokinerna. För detta ändamål utformas en personlig cytokinpanel baserad på den publicerade litteraturen om effekten av statiner på produktionen av cytokiner och andra proinflammatoriska kemokiner på systemisk nivå, samt bibliografiska bevis på de cytokiner som är involverade i lungtransplantation. Cytokinerna som analyseras i panelen utformad för detta ändamål är IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP- 1 alfa (CCL3), TNF alfa, VEGF-D (Custom Procartaplex Multiplex Panel, Invitrogen, ThermoFisher Scientific, MA, USA). Den immunologiska analysen kommer att utföras med hjälp av programvaran Invitrogen ProcartaPlex Analyst 1.0, som levereras med reagenserna.

- Bioinformatisk analys av sekvenserna För att få fram den mikrobiella sammansättningen av varje prov kommer vi att använda programvaran QIIME. QIIME är en mjukvarupipeline som använder fylogenetisk information och multivariat statistisk teknik för att jämföra mikrobiella samhällen och avgöra till exempel om de är statistiskt olika. Programmet identifierar också de arter som bidrar mest till dessa skillnader och upptäcker mönster av olika typer som kännetecknar specifika grupper av prover.

Studietyp

Interventionell

Inskrivning (Beräknad)

7

Fas

  • Inte tillämpbar

Kontakter och platser

Det här avsnittet innehåller kontaktuppgifter för dem som genomför studien och information om var denna studie genomförs.

Studiekontakt

Studera Kontakt Backup

Studieorter

Deltagandekriterier

Forskare letar efter personer som passar en viss beskrivning, så kallade behörighetskriterier. Några exempel på dessa kriterier är en persons allmänna hälsotillstånd eller tidigare behandlingar.

Urvalskriterier

Åldrar som är berättigade till studier

  • Vuxen
  • Äldre vuxen

Tar emot friska volontärer

Nej

Beskrivning

Inklusionskriterier:

  • hjärndödsgivare och donatorer efter hjärt-cirkulationsdöd avvisade för lungtransplantation

Exklusions kriterier:

  • Ensidig lunginflammation
  • Bristande samtycke för donatorns familj.

Studieplan

Det här avsnittet ger detaljer om studieplanen, inklusive hur studien är utformad och vad studien mäter.

Hur är studien utformad?

Designdetaljer

  • Primärt syfte: Behandling
  • Tilldelning: Icke-randomiserad
  • Interventionsmodell: Parallellt uppdrag
  • Maskning: Ingen (Open Label)

Vapen och interventioner

Deltagargrupp / Arm
Intervention / Behandling
Experimentell: EVLP
Höger lunga kommer att perfunderas i 3 timmar med EVLP
Aktiv komparator: Kallkonservering
Den vänstra lungan kommer att kallkonserveras som vanligt protokoll

Vad mäter studien?

Primära resultatmått

Resultatmått
Åtgärdsbeskrivning
Tidsram
Förändring i individuella operationella taxonomiska enheter (OTU) i lungparenkym efter exvivo lungperfusion under 3 timmar
Tidsram: Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
Analysera lungmikrobiomet och alfadiversiteten före användning av exvivo lungperfusion och efter jämförelse av de mikrologiska proverna
Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
Analys med kvantitativ PCR av det genetiska uttrycket av 84 gener relaterade till immunsvar vid lungtransplantation efter lungperfusion under 3 timmar i exvivo lungperfusionssystem.
Tidsram: Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
Analysera med kvantitativ PCR av det genetiska uttrycket av 84 gener relaterade till immunsvar vid lungtransplantation: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, . , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CD1, CASP3, CASP8, CCR2CR, CD8. , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 i lungprover före användning av exvivo lungperfusion och efter, dem
Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
Analysera koncentrationen av inflammatoriska cytokiner efter exvivo lungperfusion
Tidsram: Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
Analysera koncentrationen av inflammatoriska cytokiner: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alfa (CCL3) ), TNF alfa,VEGF-D, med Luminex xMAP-teknik, i perfusionslösning före och efter användning av exvivo lungperfusion och jämför dem
Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
Förändring i individuella operationella taxonomiska enheter (OTU) i lungparenkym efter kylförvaring
Tidsram: Efter 3 timmars kylförvaring
Analysera lungmikrobiomet och alfadiversiteten före och efter kylförvaringen och jämför de mikrologiska proverna.
Efter 3 timmars kylförvaring
Analysera koncentrationen av inflammatoriska citokiner efter kylförvaring
Tidsram: Efter 3 timmars kylförvaring
Analysera koncentrationen av inflammatoriska cytokiner: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alfa (CCL3) ), TNF alfa,VEGF-D, med Luminex xMAP-teknik, i perfusionslösning före och efter kylförvaring och jämför dem
Efter 3 timmars kylförvaring
Analysera med kvantitativ PCR av det genetiska uttrycket av 84 gener relaterade till immunsvar vid lungtransplantation efter kylförvaring
Tidsram: Efter 3 timmars kylförvaring
Analysera med kvantitativ PCR av det genetiska uttrycket av 84 gener relaterade till immunsvar vid lungtransplantation: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, . , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CD1, CASP3, CASP8, CCR2CR, CD8. , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 i lungprover före och efter kylförvaringen, jämför dem
Efter 3 timmars kylförvaring

Samarbetspartners och utredare

Det är här du hittar personer och organisationer som är involverade i denna studie.

Samarbetspartners

Utredare

  • Studierektor: Irene Bello Rodríguez, Professor, Hospital Clinic of Barcelona

Studieavstämningsdatum

Dessa datum spårar framstegen för inlämningar av studieposter och sammanfattande resultat till ClinicalTrials.gov. Studieposter och rapporterade resultat granskas av National Library of Medicine (NLM) för att säkerställa att de uppfyller specifika kvalitetskontrollstandarder innan de publiceras på den offentliga webbplatsen.

Studera stora datum

Studiestart (Faktisk)

1 juni 2021

Primärt slutförande (Beräknad)

1 april 2024

Avslutad studie (Beräknad)

1 juni 2024

Studieregistreringsdatum

Först inskickad

23 december 2023

Först inskickad som uppfyllde QC-kriterierna

31 januari 2024

Första postat (Beräknad)

9 februari 2024

Uppdateringar av studier

Senaste uppdatering publicerad (Beräknad)

9 februari 2024

Senaste inskickade uppdateringen som uppfyllde QC-kriterierna

31 januari 2024

Senast verifierad

1 januari 2024

Mer information

Termer relaterade till denna studie

Ytterligare relevanta MeSH-villkor

Andra studie-ID-nummer

  • ExBioma

Plan för individuella deltagardata (IPD)

Planerar du att dela individuella deltagardata (IPD)?

NEJ

Läkemedels- och apparatinformation, studiedokument

Studerar en amerikansk FDA-reglerad läkemedelsprodukt

Nej

Studerar en amerikansk FDA-reglerad produktprodukt

Nej

Denna information hämtades direkt från webbplatsen clinicaltrials.gov utan några ändringar. Om du har några önskemål om att ändra, ta bort eller uppdatera dina studieuppgifter, vänligen kontakta register@clinicaltrials.gov. Så snart en ändring har implementerats på clinicaltrials.gov, kommer denna att uppdateras automatiskt även på vår webbplats .

Prenumerera