- ICH GCP
- Amerikanska kliniska prövningsregistret
- Klinisk prövning NCT06250517
Inverkan av Ex-vivo lungperfusionssystemet på mikrobiomet hos lungtransplantat och deras inflammatoriska reaktion. (ExBioma)
Det är känt att interaktionerna mellan transplantatet och mottagarmikrobiomet kan modulera immunsvar, inducera motståndskraft eller exacerbation av olika inflammatoriska eller fibrotiska processer, därför är variationer i lungmikrobiomet associerade med immunologiska förändringar i den transplanterade lungan.
Huvudsyftet är att förstå effekten av nya system för att konditionera och förbättra suboptimala lungtransplantat med ex vivo perfusion (EVLP) på lungmikrobiomet och dess samband med vävnadsinflammation.
Hypotesen är att manipulation av lungtransplantat och perfusion med bredspektrumantibiotika under EVLP-konditionering förändrar lungmikrobiomet, vilket ger en mindre pro-inflammatorisk miljö.
Metodiken: Detta är en prospektiv observationsstudie med ett centrum. 7 på varandra följande hjärndöda donatorer som inte uppfyller kriterierna för att vara lungdonatorer kommer att inkluderas i studien. De kommer att genomföras:
- P1. Detektion: Donatorn utan kriterier för att vara lungdonator eller avvisad av alla transplantationsteam.
- P2. Extraktion.
- P3. Kylkonservering: Vänster lunga kommer att kallkonserveras
- P4. EVLP-konservering: Höger lunga förbereds och konditioneras i 3 timmar med EVLP
Följande prover kommer att tas vid två tillfällen:
- T0: Vid slutet av extraktionen
- Bronkoalveolär sköljning (BAL): Innan trakeal fastklämning kommer BAL att tas från den vänstra huvudbronkusen med hjälp av bronkoskopi. BAL kommer att utföras på höger lunga precis innan P4 startar.
- Lungbiopsi: Lungbiopsi av den nedre loben av båda transplantaten kommer att utföras
- Konserveringsvätska eller perfusionsvätska: 20 ml konserveringsvätska som är i kontakt med vänster transplantat före lagring, som sterilitetskontroll (P3) och 20 ml perfusionsvätska före konditionering, som sterilitetskontroll (P4).
- T1: I slutet av konserveringsprotokollen (P3 eller P4).
- B.A.L.
- Lungbiopsi: vänster nedre lob.
- Konserveringsvätska eller infusionsvätska: 20 mL konserveringsvätska som är i kontakt med det vänstra transplantatet eller 20 mL perfusionsvätska.
På grund av manipuleringen av transplantaten under extraktion och användning av tekniken, vilket innebär att givaren extuberas och därefter intuberas igen transplantaten, samt perfusion i minst 3 timmar med antibiotika, kan användningen av EVLP förändra mikrobiomet hos transplantatet. transplantat. Denna förändring kan påverka erhållandet av livsdugliga organ för transplantation, såväl under den omedelbara postoperativa perioden som i de långsiktiga resultaten. Det finns inga studier som analyserar förändringen i mikrobiomet efter konditionering med EVLP eller dess samband med inflammatoriska parametrar.
Studieöversikt
Status
Betingelser
Intervention / Behandling
Detaljerad beskrivning
PROVTAGNING OCH FÖRVARING
- BAL:
- Teknik: Bronkoskopet kommer att sättas in i segment 6, alikvoter av steril koksaltlösning kommer att instilleras. Proceduren kommer att upprepas i segment 3 och 5, när det gäller höger lunga, och i segment 6 och lingula i vänster lunga. 20-30cc BAL kommer att fyllas i för varje transplantat.
- Förvaring: Proverna kommer att frysas omedelbart efter insamling och överföras till laboratoriet med en kylackumulator för att säkerställa att de inte tinar.
- Analys: Lungmikrobiomet kommer att analyseras.
- Lungbiopsi:
- Teknik: Lungbiopsi på minst 2 cm3 kommer att tas med icke-absorberbar automatisk sutur.
- Förvaring: Proverna kommer att bevaras i RNA Stabilization Solution Reagent (QIAGEN), vilket gör att prover kan förvaras i rumstemperatur tills de fryses, vilket undviker RNA-nedbrytning.
- Analys: RNA-sekvensering av transkription av inflammatoriska signaler.
- Ex vivo perfusion flytande lösning:
- Teknik: Ta prover sterila med en 20cc spruta.
- Förvaring: Proverna kommer att frysas omedelbart efter insamling och överföras till laboratoriet med en kylackumulator för att säkerställa att de inte tinar.
- Analys: Mikrobiomanalys
- Konserverande flytande lösning:
- Teknik: Ta prover sterila med en 20cc spruta.
- Förvaring: Proverna kommer att frysas omedelbart efter insamling och överföras till laboratoriet med en kylackumulator för att säkerställa att de inte tinar.
- Analys: Mikrobiom och cytokinanalys
Alla prover kommer att förvaras i frys vid -80
- Mikrobiomanalys För analys av mikrobiell mångfald kommer den variabla V4-regionen av 16S-genen att amplifieras från bakteriellt DNA genom PCR. Amplikoner kommer att sekvenseras med Illumina (MiSeq) teknologi. Prover kommer att bearbetas och mer än 10 000 300bp-sekvenser per sekvens per prov kommer att genereras.
Genuttrycksanalys RNA-extraktion kommer att utföras med det kommersiella RNeasy Mini Kit (QIAGEN). Genuttrycksanalys kommer att utföras med kvantitativ PCR (qPCR) med hjälp av den fördesignade TransplantRejection-panelen från SignArray (AnyGenes®, Paris, Frankrike) som inkluderar 84 gener som har beskrivits vara relaterade till immunsvaret vid transplantatavstötning. Dessa är: Gener som ingår i panelen: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86, CTLA4, CD, T4GF14, CXCR3, STAT , CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2, IL2RA, 5 IL, 4 IL, 5 , IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28, CD8A, FCMA, FAS1A, FAS , GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10.
- Cytokinanalys Bestämningen av cytokiner i perfusionsvätskan kommer att utföras med hjälp av immunanalyser baserade på Luminex™ xMAP™-teknologi (multi-analytprofilering) som möjliggör samtidig kvantifiering och detektering av olika utsöndrade proteiner (cytokiner, kemokiner, tillväxtfaktorer, etc.) .) Vi kommer att använda paneler utformade specifikt för genprodukterna av intresse.
Cytokinnivåer mäts med en immunanalys baserad på Luminex™ xMAP™-teknologi som möjliggör multiparametrisk analys av de olika cytokinerna. För detta ändamål utformas en personlig cytokinpanel baserad på den publicerade litteraturen om effekten av statiner på produktionen av cytokiner och andra proinflammatoriska kemokiner på systemisk nivå, samt bibliografiska bevis på de cytokiner som är involverade i lungtransplantation. Cytokinerna som analyseras i panelen utformad för detta ändamål är IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP- 1 alfa (CCL3), TNF alfa, VEGF-D (Custom Procartaplex Multiplex Panel, Invitrogen, ThermoFisher Scientific, MA, USA). Den immunologiska analysen kommer att utföras med hjälp av programvaran Invitrogen ProcartaPlex Analyst 1.0, som levereras med reagenserna.
- Bioinformatisk analys av sekvenserna För att få fram den mikrobiella sammansättningen av varje prov kommer vi att använda programvaran QIIME. QIIME är en mjukvarupipeline som använder fylogenetisk information och multivariat statistisk teknik för att jämföra mikrobiella samhällen och avgöra till exempel om de är statistiskt olika. Programmet identifierar också de arter som bidrar mest till dessa skillnader och upptäcker mönster av olika typer som kännetecknar specifika grupper av prover.
Studietyp
Inskrivning (Beräknad)
Fas
- Inte tillämpbar
Kontakter och platser
Studiekontakt
- Namn: Irene Bello Rodríguez, Professor
- Telefonnummer: +34620664172
- E-post: irene.bello.rodriguez@gmail.com
Studera Kontakt Backup
- Namn: Alberto Sandiumenge Camps, Professor
- Telefonnummer: +34639955585
- E-post: albertosandiumenge@gmail.com
Studieorter
-
-
-
Barcelona, Spanien, 08036
- Rekrytering
- Hospital Clinic de Barcelona
-
Kontakt:
- Irene bello, Prof
- Telefonnummer: +34620664172
- E-post: irene.bello.rodriguez@gmail.com
-
Kontakt:
- Alberto Sandiumenge, Prof
- Telefonnummer: +34639955585
- E-post: albertosandiumenge@gmail.com
-
-
Deltagandekriterier
Urvalskriterier
Åldrar som är berättigade till studier
- Vuxen
- Äldre vuxen
Tar emot friska volontärer
Beskrivning
Inklusionskriterier:
- hjärndödsgivare och donatorer efter hjärt-cirkulationsdöd avvisade för lungtransplantation
Exklusions kriterier:
- Ensidig lunginflammation
- Bristande samtycke för donatorns familj.
Studieplan
Hur är studien utformad?
Designdetaljer
- Primärt syfte: Behandling
- Tilldelning: Icke-randomiserad
- Interventionsmodell: Parallellt uppdrag
- Maskning: Ingen (Open Label)
Vapen och interventioner
Deltagargrupp / Arm |
Intervention / Behandling |
|---|---|
|
Experimentell: EVLP
|
Höger lunga kommer att perfunderas i 3 timmar med EVLP
|
|
Aktiv komparator: Kallkonservering
|
Den vänstra lungan kommer att kallkonserveras som vanligt protokoll
|
Vad mäter studien?
Primära resultatmått
Resultatmått |
Åtgärdsbeskrivning |
Tidsram |
|---|---|---|
|
Förändring i individuella operationella taxonomiska enheter (OTU) i lungparenkym efter exvivo lungperfusion under 3 timmar
Tidsram: Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
|
Analysera lungmikrobiomet och alfadiversiteten före användning av exvivo lungperfusion och efter jämförelse av de mikrologiska proverna
|
Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
|
|
Analys med kvantitativ PCR av det genetiska uttrycket av 84 gener relaterade till immunsvar vid lungtransplantation efter lungperfusion under 3 timmar i exvivo lungperfusionssystem.
Tidsram: Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
|
Analysera med kvantitativ PCR av det genetiska uttrycket av 84 gener relaterade till immunsvar vid lungtransplantation: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, . , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CD1, CASP3, CASP8, CCR2CR, CD8. , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 i lungprover före användning av exvivo lungperfusion och efter, dem
|
Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
|
|
Analysera koncentrationen av inflammatoriska cytokiner efter exvivo lungperfusion
Tidsram: Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
|
Analysera koncentrationen av inflammatoriska cytokiner: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alfa (CCL3) ), TNF alfa,VEGF-D, med Luminex xMAP-teknik, i perfusionslösning före och efter användning av exvivo lungperfusion och jämför dem
|
Efter 3 timmars perfusion in ex vivo lungperfusion
|
|
Förändring i individuella operationella taxonomiska enheter (OTU) i lungparenkym efter kylförvaring
Tidsram: Efter 3 timmars kylförvaring
|
Analysera lungmikrobiomet och alfadiversiteten före och efter kylförvaringen och jämför de mikrologiska proverna.
|
Efter 3 timmars kylförvaring
|
|
Analysera koncentrationen av inflammatoriska citokiner efter kylförvaring
Tidsram: Efter 3 timmars kylförvaring
|
Analysera koncentrationen av inflammatoriska cytokiner: IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alfa (CCL3) ), TNF alfa,VEGF-D, med Luminex xMAP-teknik, i perfusionslösning före och efter kylförvaring och jämför dem
|
Efter 3 timmars kylförvaring
|
|
Analysera med kvantitativ PCR av det genetiska uttrycket av 84 gener relaterade till immunsvar vid lungtransplantation efter kylförvaring
Tidsram: Efter 3 timmars kylförvaring
|
Analysera med kvantitativ PCR av det genetiska uttrycket av 84 gener relaterade till immunsvar vid lungtransplantation: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, CD804, . , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CD1, CASP3, CASP8, CCR2CR, CD8. , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 i lungprover före och efter kylförvaringen, jämför dem
|
Efter 3 timmars kylförvaring
|
Samarbetspartners och utredare
Sponsor
Samarbetspartners
Utredare
- Studierektor: Irene Bello Rodríguez, Professor, Hospital Clinic of Barcelona
Studieavstämningsdatum
Studera stora datum
Studiestart (Faktisk)
Primärt slutförande (Beräknad)
Avslutad studie (Beräknad)
Studieregistreringsdatum
Först inskickad
Först inskickad som uppfyllde QC-kriterierna
Första postat (Beräknad)
Uppdateringar av studier
Senaste uppdatering publicerad (Beräknad)
Senaste inskickade uppdateringen som uppfyllde QC-kriterierna
Senast verifierad
Mer information
Termer relaterade till denna studie
Ytterligare relevanta MeSH-villkor
Andra studie-ID-nummer
- ExBioma
Plan för individuella deltagardata (IPD)
Planerar du att dela individuella deltagardata (IPD)?
Läkemedels- och apparatinformation, studiedokument
Studerar en amerikansk FDA-reglerad läkemedelsprodukt
Studerar en amerikansk FDA-reglerad produktprodukt
Denna information hämtades direkt från webbplatsen clinicaltrials.gov utan några ändringar. Om du har några önskemål om att ändra, ta bort eller uppdatera dina studieuppgifter, vänligen kontakta register@clinicaltrials.gov. Så snart en ändring har implementerats på clinicaltrials.gov, kommer denna att uppdateras automatiskt även på vår webbplats .