- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT06250517
Impacto del sistema de perfusión pulmonar ex vivo sobre el microbioma de los injertos pulmonares y su reacción inflamatoria. (ExBioma)
Se sabe que las interacciones del microbioma del injerto y del receptor son capaces de modular respuestas inmunes, induciendo resiliencia o exacerbación de diversos procesos inflamatorios o fibróticos, por lo que variaciones en el microbioma pulmonar se asocian con cambios inmunológicos en el pulmón trasplantado.
El principal objetivo es comprender el impacto de nuevos sistemas de acondicionamiento y mejora de los injertos pulmonares subóptimos con perfusión ex vivo (EVLP) sobre el microbioma pulmonar y su asociación con la inflamación tisular.
La hipótesis es que la manipulación de injertos de pulmón y la perfusión con antibióticos de amplio espectro durante el acondicionamiento con EVLP cambia el microbioma pulmonar, condicionando un entorno menos proinflamatorio.
La metodología: Se trata de un estudio observacional prospectivo unicéntrico. Se incluirán en el estudio 7 donantes consecutivos en muerte cerebral que no cumplan los criterios para ser donantes de pulmón. Se llevarán a cabo:
- P1. Detección: El donante sin criterios para ser donante de pulmón o rechazado por todos los equipos de trasplante.
- P2. Extracción.
- P3. Preservación en frío: el pulmón izquierdo se conservará en frío.
- P4. Conservación de EVLP: el pulmón derecho se preparará y acondicionará durante 3 horas utilizando EVLP
Se tomarán las siguientes muestras en dos momentos:
- T0: Al final de la extracción
- Lavado broncoalveolar (BAL): antes del pinzamiento traqueal, se extraerá BAL del bronquio principal izquierdo mediante broncoscopia. El BAL se realizará en el pulmón derecho justo antes de iniciar P4.
- Biopsia de pulmón: Se realizará biopsia de pulmón del lóbulo inferior de ambos injertos.
- Líquido de preservación o líquido de perfusión: 20 mL de líquido de perfusión que está en contacto con el injerto izquierdo antes del almacenamiento, como control de esterilidad (P3) y 20 mL de líquido de perfusión antes del acondicionamiento, como control de esterilidad (P4).
- T1: Al finalizar los protocolos de conservación (P3 o P4).
- B.A.L.
- Biopsia de pulmón: lóbulo inferior izquierdo.
- Líquido de preservación o líquido de infusión: 20 mL de líquido de preservación que esté en contacto con el injerto izquierdo o 20 mL de líquido de perfusión.
Debido a la manipulación de los injertos durante la extracción y utilización de la técnica, que implica extubar al donante y posteriormente intubar nuevamente los injertos, así como la perfusión durante un mínimo de 3 horas con antibióticos, el uso de EVLP podría alterar el microbioma del injertos. Esta alteración podría impactar en la obtención de órganos viables para trasplante, tanto en el postoperatorio inmediato como en los resultados a largo plazo. No existen estudios que analicen el cambio en el microbioma tras el acondicionamiento con EVLP ni su relación con parámetros inflamatorios.
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
TOMA Y ALMACENAMIENTO DE MUESTRAS
- Balón:
- Técnica: Se insertará el broncoscopio en el segmento 6 y se instilarán alícuotas de solución salina estéril. El procedimiento se repetirá en los segmentos 3 y 5, en el caso del pulmón derecho, y en el segmento 6 y língula en el pulmón izquierdo. Se completarán 20-30 cc de BAL por cada injerto.
- Almacenamiento: Las muestras se congelarán inmediatamente después de su recolección y se trasladarán al laboratorio con un acumulador de frío para garantizar que no se descongelen.
- Análisis: Se analizará el microbioma pulmonar.
- Biopsia de pulmón:
- Técnica: Se tomará una biopsia de pulmón de un mínimo de 2 cm3 mediante sutura automática no absorbible.
- Almacenamiento: Las muestras se conservarán en un reactivo de solución de estabilización de ARN (QIAGEN), que permite mantener las muestras a temperatura ambiente hasta que se congelen, evitando la degradación del ARN.
- Análisis: Secuenciación de ARN de transcripción de señales inflamatorias.
- Solución líquida de perfusión ex vivo:
- Técnica: Toma de muestras esterilizadas con jeringa de 20 cc.
- Almacenamiento: Las muestras se congelarán inmediatamente después de su recolección y se trasladarán al laboratorio con un acumulador de frío para garantizar que no se descongelen.
- Análisis: análisis del microbioma.
- Solución líquida de conservación:
- Técnica: Toma de muestras esterilizadas con jeringa de 20 cc.
- Almacenamiento: Las muestras se congelarán inmediatamente después de su recolección y se trasladarán al laboratorio con un acumulador de frío para garantizar que no se descongelen.
- Análisis: análisis de microbioma y citocinas.
Todas las muestras se almacenarán en un congelador a -80
- Análisis del microbioma Para el análisis de la diversidad microbiana, la región variable V4 del gen 16S se amplificará a partir de ADN bacteriano mediante PCR. Los amplicones se secuenciarán utilizando tecnología Illumina (MiSeq). Se procesarán muestras y se generarán más de 10.000 secuencias de 300 pb por secuencia por muestra.
La extracción de ARN del análisis de expresión génica se realizará utilizando el Mini kit comercial RNeasy (QIAGEN). El análisis de la expresión génica se realizará mediante PCR cuantitativa (qPCR) utilizando el panel TransplantRejection prediseñado de SignArray (AnyGenes®, París, Francia) que incluye 84 genes que se ha descrito que están relacionados con la respuesta inmune en el rechazo de trasplantes. Estos son: Genes incluidos en el panel: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86, CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44. , CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2, IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5. , IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28, CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA , GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10.
- Análisis de citocinas La determinación de citocinas en el líquido de perfusión se realizará mediante inmunoensayos basados en la tecnología Luminex™ xMAP™ (multi-analyte profiling) que permiten la cuantificación y detección simultánea de diferentes proteínas secretadas (citocinas, quimiocinas, factores de crecimiento, etc.) .) Utilizaremos paneles diseñados específicamente para los productos genéticos de interés.
Los niveles de citocinas se miden mediante un inmunoensayo basado en la tecnología Luminex™ xMAP™ que permite el análisis multiparamétrico de las diferentes citocinas. Para ello se diseña un panel personalizado de citocinas basado en la literatura publicada sobre el efecto de las estatinas en la producción de citocinas y otras quimiocinas proinflamatorias a nivel sistémico, así como en la evidencia bibliográfica sobre las citocinas implicadas en el trasplante de pulmón. Las citocinas analizadas en el panel diseñado al efecto son IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP- 1 alfa (CCL3), TNF alfa, VEGF-D (Panel Multiplex Procartaplex personalizado, Invitrogen, ThermoFisher Scientific, MA, EE. UU.). El análisis inmunológico se realizará mediante el software Invitrogen ProcartaPlex Analyst 1.0, suministrado con los reactivos.
- Análisis bioinformático de las secuencias Para obtener la composición microbiana de cada muestra utilizaremos el software QIIME. QIIME es una línea de software que utiliza información filogenética y técnicas estadísticas multivariadas para comparar comunidades microbianas y determinar, por ejemplo, si son estadísticamente diferentes. El programa también identifica las especies que más contribuyen a estas diferencias y descubre patrones de varios tipos que caracterizan a grupos específicos de muestras.
Tipo de estudio
Inscripción (Estimado)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: Irene Bello Rodríguez, Professor
- Número de teléfono: +34620664172
- Correo electrónico: irene.bello.rodriguez@gmail.com
Copia de seguridad de contactos de estudio
- Nombre: Alberto Sandiumenge Camps, Professor
- Número de teléfono: +34639955585
- Correo electrónico: albertosandiumenge@gmail.com
Ubicaciones de estudio
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Barcelona, España, 08036
- Reclutamiento
- Hospital Clinic de Barcelona
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Contacto:
- Irene bello, Prof
- Número de teléfono: +34620664172
- Correo electrónico: irene.bello.rodriguez@gmail.com
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Contacto:
- Alberto Sandiumenge, Prof
- Número de teléfono: +34639955585
- Correo electrónico: albertosandiumenge@gmail.com
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
- Adulto
- Adulto Mayor
Acepta Voluntarios Saludables
Descripción
Criterios de inclusión:
- Donantes en muerte cerebral y donantes tras muerte cardio circulatoria rechazados para trasplante de pulmón
Criterio de exclusión:
- Neumonía unilateral
- Falta de consentimiento de la familia del donante.
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Tratamiento
- Asignación: No aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación paralela
- Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
|---|---|
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Experimental: EVLP
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El pulmón derecho se perfundirá durante 3 h con EVLP.
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Comparador activo: Conservación en frío
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El pulmón izquierdo se conservará en frío como protocolo habitual.
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Cambio en unidades taxonómicas operativas (OTU) individuales en el parénquima pulmonar después de la perfusión pulmonar exvivo durante 3 horas
Periodo de tiempo: Después de 3 horas de perfusión en perfusión pulmonar ex vivo
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Analizar el microbioma pulmonar y la diversidad alfa antes del uso de perfusión pulmonar exvivo y luego comparar las muestras micrológicas.
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Después de 3 horas de perfusión en perfusión pulmonar ex vivo
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Analizando con PCR cuantitativa la expresión genética de 84 genes relacionados con la respuesta inmune en trasplante de pulmón tras la perfusión pulmonar durante 3h en sistema de perfusión pulmonar exvivo.
Periodo de tiempo: Después de 3 horas de perfusión en perfusión pulmonar ex vivo
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Analizar con PCR cuantitativa la expresión genética de 84 genes relacionados con la respuesta inmune en trasplante de pulmón: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 en muestras de pulmón antes del uso de perfusión pulmonar exvivo y después, comparando a ellos
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Después de 3 horas de perfusión en perfusión pulmonar ex vivo
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Analizar la concentración de citoquinas inflamatorias después de la perfusión pulmonar exvivo.
Periodo de tiempo: Después de 3 horas de perfusión en perfusión pulmonar ex vivo
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Analizar la concentración de citoquinas inflamatorias: IFN gamma,IL-1 beta,IL-6,IL-8 (CXCL8),IL-18,IP-10 (CXCL10),MCP-1 (CCL2),MIP-1 alfa (CCL3 ), TNF alfa,VEGF-D, con técnica Luminex xMAP, en solución de perfusión antes y después del uso de perfusión pulmonar exvivo y comparándolos
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Después de 3 horas de perfusión en perfusión pulmonar ex vivo
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Cambio en unidades taxonómicas operativas (OTU) individuales en el parénquima pulmonar después del almacenamiento en frío
Periodo de tiempo: Después de 3 horas de almacenamiento en frío
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Analizar el microbioma pulmonar y la diversidad alfa antes y después del almacenamiento en frío y comparar las muestras micrológicas.
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Después de 3 horas de almacenamiento en frío
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Análisis de la concentración de citoquinas inflamatorias después del almacenamiento en frío.
Periodo de tiempo: Después de 3 horas de almacenamiento en frío
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Analizar la concentración de citoquinas inflamatorias: IFN gamma,IL-1 beta,IL-6,IL-8 (CXCL8),IL-18,IP-10 (CXCL10),MCP-1 (CCL2),MIP-1 alfa (CCL3 ), TNF alfa,VEGF-D, con técnica Luminex xMAP, en solución de perfusión antes y después del almacenamiento en frío y comparándolos
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Después de 3 horas de almacenamiento en frío
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Analizando con PCR cuantitativa la expresión genética de 84 genes relacionados con la respuesta inmune en trasplante de pulmón tras almacenamiento en frío
Periodo de tiempo: Después de 3 horas de almacenamiento en frío
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Analizar con PCR cuantitativa la expresión genética de 84 genes relacionados con la respuesta inmune en trasplante de pulmón: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 en muestras de pulmón antes y después del almacenamiento en frío, comparándolas
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Después de 3 horas de almacenamiento en frío
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Investigadores
- Director de estudio: Irene Bello Rodríguez, Professor, Hospital Clinic of Barcelona
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (Actual)
Finalización primaria (Estimado)
Finalización del estudio (Estimado)
Fechas de registro del estudio
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Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (Estimado)
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Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
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Términos MeSH relevantes adicionales
Otros números de identificación del estudio
- ExBioma
Plan de datos de participantes individuales (IPD)
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Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
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