- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT06250517
Impatto del sistema di perfusione polmonare ex vivo sul microbioma degli innesti polmonari e sulla loro reazione infiammatoria. (ExBioma)
È noto che le interazioni del microbioma dell’innesto e del ricevente sono in grado di modulare le risposte immunitarie, inducendo resilienza o esacerbazione di vari processi infiammatori o fibrotici, pertanto variazioni del microbioma polmonare sono associate a cambiamenti immunologici nel polmone trapiantato.
L'obiettivo principale è comprendere l'impatto di nuovi sistemi per il condizionamento e il miglioramento degli innesti polmonari subottimali con perfusione ex vivo (EVLP) sul microbioma polmonare e la sua associazione con l'infiammazione dei tessuti.
L’ipotesi è che la manipolazione degli innesti polmonari e la perfusione con antibiotici ad ampio spettro durante il condizionamento EVLP modifichi il microbioma polmonare, condizionando un ambiente meno pro-infiammatorio.
La metodologia: questo è uno studio osservazionale prospettico a centro singolo. Saranno inclusi nello studio 7 donatori consecutivi cerebralmente morti che non soddisfano i criteri per essere donatori di polmone. Verranno effettuati:
- P1. Rilevamento: il donatore senza criteri per essere un donatore di polmone o rifiutato da tutte le équipe di trapianto.
- P2. Estrazione.
- P3. Conservazione a freddo: il polmone sinistro sarà conservato a freddo
- P4. Conservazione EVLP: il polmone destro verrà preparato e condizionato per 3 ore utilizzando EVLP
I seguenti campioni verranno prelevati in due momenti:
- T0: Al termine dell'estrazione
- Lavaggio broncoalveolare (BAL): prima del clampaggio tracheale, il BAL verrà prelevato dal bronco principale sinistro mediante broncoscopia. Il BAL verrà eseguito sul polmone destro appena prima di iniziare P4.
- Biopsia polmonare: verrà eseguita la biopsia polmonare del lobo inferiore di entrambi gli innesti
- Liquido di conservazione o liquido di perfusione: 20 ml di liquido di conservazione a contatto con l'innesto sinistro prima della conservazione, come controllo di sterilità (P3) e 20 ml di liquido di perfusione prima del condizionamento, come controllo di sterilità (P4).
- T1: Al termine dei protocolli di conservazione (P3 o P4).
- B.A.L.
- Biopsia polmonare: lobo inferiore sinistro.
- Liquido di conservazione o liquido di infusione: 20 ml di liquido di conservazione a contatto con l'innesto sinistro o 20 ml di liquido di perfusione.
A causa della manipolazione degli innesti durante l'estrazione e dell'uso della tecnica, che prevede l'estubazione del donatore e la successiva intubazione degli innesti, nonché la perfusione per un minimo di 3 ore con antibiotici, l'uso dell'EVLP potrebbe alterare il microbioma del innesti. Questa alterazione potrebbe avere un impatto sull’ottenimento di organi vitali per il trapianto, nell’immediato periodo postoperatorio così come sui risultati a lungo termine. Non esistono studi che analizzino il cambiamento del microbioma dopo il condizionamento con EVLP o la sua relazione con i parametri infiammatori.
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Intervento / Trattamento
Descrizione dettagliata
PRELIEVO E CONSERVAZIONE DEI CAMPIONI
- BAL:
- Tecnica: Il broncoscopio verrà inserito nel segmento 6, verranno instillate aliquote di soluzione salina sterile. La procedura verrà ripetuta nei segmenti 3 e 5, nel caso del polmone destro, e nel segmento 6 e lingula nel polmone sinistro. Per ogni innesto verranno completati 20-30 cc di BAL.
- Conservazione: i campioni verranno congelati immediatamente dopo la raccolta e trasferiti al laboratorio con un accumulatore di freddo per garantire che non si scongelino.
- Analisi: verrà analizzato il microbioma polmonare.
- Biopsia polmonare:
- Tecnica: verrà eseguita una biopsia polmonare di almeno 2 cm3 utilizzando una sutura automatica non assorbibile.
- Conservazione: i campioni verranno conservati nel reagente della soluzione di stabilizzazione dell'RNA (QIAGEN), che consente di mantenere i campioni a temperatura ambiente fino al congelamento, evitando la degradazione dell'RNA.
- Analisi: sequenziamento dell'RNA della trascrizione dei segnali infiammatori.
- Soluzione liquida per perfusione ex vivo:
- Tecnica: Prelievo di campioni sterili con una siringa da 20 cc.
- Conservazione: i campioni verranno congelati immediatamente dopo la raccolta e trasferiti al laboratorio con un accumulatore di freddo per garantire che non si scongelino.
- Analisi: analisi del microbioma
- Soluzione liquida di conservazione:
- Tecnica: Prelievo di campioni sterili con una siringa da 20 cc.
- Conservazione: i campioni verranno congelati immediatamente dopo la raccolta e trasferiti al laboratorio con un accumulatore di freddo per garantire che non si scongelino.
- Analisi: analisi del microbioma e delle citochine
Tutti i campioni verranno conservati in un congelatore a -80
- Analisi del microbioma Per l'analisi della diversità microbica, la regione variabile V4 del gene 16S sarà amplificata dal DNA batterico mediante PCR. Gli ampliconi verranno sequenziati utilizzando la tecnologia Illumina (MiSeq). I campioni verranno elaborati e verranno generate più di 10.000 sequenze da 300 bp per sequenza per campione.
Analisi dell'espressione genica L'estrazione dell'RNA verrà eseguita utilizzando il kit commerciale RNeasy Mini (QIAGEN). L'analisi dell'espressione genica verrà eseguita mediante PCR quantitativa (qPCR) utilizzando il pannello TransplantRejection preimpostato di SignArray (AnyGenes®, Parigi, Francia) che include 84 geni che sono stati descritti come correlati alla risposta immunitaria nel rigetto del trapianto. Questi sono: Geni inclusi nel pannello: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86, CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44 , CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2, IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5 , IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28, CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA , GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10.
- Analisi delle citochine La determinazione delle citochine nel liquido di perfusione verrà effettuata utilizzando test immunologici basati sulla tecnologia Luminex™ xMAP™ (profilazione multi-analita) che consentono la quantificazione e la rilevazione simultanea di diverse proteine secrete (citochine, chemochine, fattori di crescita, ecc.) .) Utilizzeremo pannelli progettati specificamente per i prodotti genetici di interesse.
I livelli di citochine vengono misurati utilizzando un test immunologico basato sulla tecnologia Luminex™ xMAP™ che consente l'analisi multiparametrica delle diverse citochine. A tal fine, viene disegnato un pannello personalizzato di citochine basato sulla letteratura pubblicata sull’effetto delle statine sulla produzione di citochine e altre chemochine proinfiammatorie a livello sistemico, nonché sull’evidenza bibliografica sulle citochine coinvolte nel trapianto polmonare. Le citochine analizzate nel pannello predisposto a questo scopo sono IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP- 1 alfa (CCL3), TNF alfa, VEGF-D (pannello multiplex Procartaplex personalizzato, Invitrogen, ThermoFisher Scientific, MA, USA). L'analisi immunologica sarà effettuata utilizzando il software Invitrogen ProcartaPlex Analyst 1.0, fornito con i reagenti.
- Analisi bioinformatica delle sequenze Per ottenere la composizione microbica di ciascun campione, utilizzeremo il software QIIME. QIIME è una pipeline software che utilizza informazioni filogenetiche e tecniche statistiche multivariate per confrontare le comunità microbiche e determinare, ad esempio, se sono statisticamente diverse. Il programma identifica inoltre le specie che contribuiscono maggiormente a queste differenze e scopre modelli di vario tipo che caratterizzano specifici gruppi di campioni.
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Irene Bello Rodríguez, Professor
- Numero di telefono: +34620664172
- Email: irene.bello.rodriguez@gmail.com
Backup dei contatti dello studio
- Nome: Alberto Sandiumenge Camps, Professor
- Numero di telefono: +34639955585
- Email: albertosandiumenge@gmail.com
Luoghi di studio
-
-
-
Barcelona, Spagna, 08036
- Reclutamento
- Hospital Clinic de Barcelona
-
Contatto:
- Irene bello, Prof
- Numero di telefono: +34620664172
- Email: irene.bello.rodriguez@gmail.com
-
Contatto:
- Alberto Sandiumenge, Prof
- Numero di telefono: +34639955585
- Email: albertosandiumenge@gmail.com
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Adulto
- Adulto più anziano
Accetta volontari sani
Descrizione
Criterio di inclusione:
- donatori con morte cerebrale e donatori dopo morte cardiocircolatoria rifiutati per trapianto polmonare
Criteri di esclusione:
- Polmonite unilaterale
- Mancanza di consenso da parte della famiglia del donatore.
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Trattamento
- Assegnazione: Non randomizzato
- Modello interventistico: Assegnazione parallela
- Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
|
Sperimentale: EVLP
|
Il polmone destro verrà perfuso per 3 ore con EVLP
|
|
Comparatore attivo: Conservazione a freddo
|
Il polmone sinistro verrà conservato a freddo come da protocollo abituale
|
Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
|
Variazione delle singole unità tassonomiche operative (OTU) nel parenchima polmonare dopo la perfusione polmonare exvivo durante 3 ore
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
|
Analizzare il microbioma polmonare e la diversità alfa prima dell'uso della perfusione polmonare exvivo e dopo aver confrontato i campioni micrologici
|
Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
|
|
Analisi con PCR quantitativa dell'espressione genetica di 84 geni correlati alla risposta immunitaria nel trapianto di polmone dopo perfusione polmonare per 3 ore nel sistema di perfusione polmonare exvivo.
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
|
Analizzare con PCR quantitativa l'espressione genetica di 84 geni correlati alla risposta immunitaria nel trapianto polmonare: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 in campioni polmonari prima e dopo l'uso della perfusione polmonare exvivo, confrontando loro
|
Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
|
|
Analizzare la concentrazione di citochine infiammatorie dopo la perfusione polmonare exvivo
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
|
Analizzare la concentrazione di citochine infiammatorie: IFN gamma,IL-1 beta,IL-6,IL-8 (CXCL8),IL-18,IP-10 (CXCL10),MCP-1 (CCL2),MIP-1 alfa (CCL3 ), TNF alfa,VEGF-D, con la tecnica Luminex xMAP, in soluzione di perfusione prima e dopo l'uso della perfusione polmonare exvivo e confronto tra loro
|
Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
|
|
Cambiamento nelle singole unità tassonomiche operative (OTU) nel parenchima polmonare dopo la conservazione a freddo
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di cella frigorifera
|
Analizzare il microbioma polmonare e la diversità alfa prima e dopo la conservazione a freddo e confrontare i campioni micrologici.
|
Dopo 3 ore di cella frigorifera
|
|
Analisi della concentrazione di citochine infiammatorie dopo la conservazione a freddo
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di cella frigorifera
|
Analizzare la concentrazione di citochine infiammatorie: IFN gamma,IL-1 beta,IL-6,IL-8 (CXCL8),IL-18,IP-10 (CXCL10),MCP-1 (CCL2),MIP-1 alfa (CCL3 ), TNF alfa,VEGF-D, con tecnica Luminex xMAP, in soluzione di perfusione prima e dopo la conservazione a freddo e confronto
|
Dopo 3 ore di cella frigorifera
|
|
Analisi con PCR quantitativa dell'espressione genetica di 84 geni correlati alla risposta immunitaria nel trapianto di polmone dopo conservazione frigorifera
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di cella frigorifera
|
Analizzare con PCR quantitativa l'espressione genetica di 84 geni correlati alla risposta immunitaria nel trapianto polmonare: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 in campioni polmonari prima e dopo la conservazione a freddo, confrontandoli
|
Dopo 3 ore di cella frigorifera
|
Collaboratori e investigatori
Sponsor
Collaboratori
Investigatori
- Direttore dello studio: Irene Bello Rodríguez, Professor, Hospital Clinic of Barcelona
Studiare le date dei record
Studia le date principali
Inizio studio (Effettivo)
Completamento primario (Stimato)
Completamento dello studio (Stimato)
Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
Primo Inserito (Stimato)
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Stimato)
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Termini MeSH pertinenti aggiuntivi
Altri numeri di identificazione dello studio
- ExBioma
Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)
Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?
Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio
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