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Impatto del sistema di perfusione polmonare ex vivo sul microbioma degli innesti polmonari e sulla loro reazione infiammatoria. (ExBioma)

31 gennaio 2024 aggiornato da: Irene Bello, Vall d'Hebron Institute Research

È noto che le interazioni del microbioma dell’innesto e del ricevente sono in grado di modulare le risposte immunitarie, inducendo resilienza o esacerbazione di vari processi infiammatori o fibrotici, pertanto variazioni del microbioma polmonare sono associate a cambiamenti immunologici nel polmone trapiantato.

L'obiettivo principale è comprendere l'impatto di nuovi sistemi per il condizionamento e il miglioramento degli innesti polmonari subottimali con perfusione ex vivo (EVLP) sul microbioma polmonare e la sua associazione con l'infiammazione dei tessuti.

L’ipotesi è che la manipolazione degli innesti polmonari e la perfusione con antibiotici ad ampio spettro durante il condizionamento EVLP modifichi il microbioma polmonare, condizionando un ambiente meno pro-infiammatorio.

La metodologia: questo è uno studio osservazionale prospettico a centro singolo. Saranno inclusi nello studio 7 donatori consecutivi cerebralmente morti che non soddisfano i criteri per essere donatori di polmone. Verranno effettuati:

  • P1. Rilevamento: il donatore senza criteri per essere un donatore di polmone o rifiutato da tutte le équipe di trapianto.
  • P2. Estrazione.
  • P3. Conservazione a freddo: il polmone sinistro sarà conservato a freddo
  • P4. Conservazione EVLP: il polmone destro verrà preparato e condizionato per 3 ore utilizzando EVLP

I seguenti campioni verranno prelevati in due momenti:

  • T0: Al termine dell'estrazione
  • Lavaggio broncoalveolare (BAL): prima del clampaggio tracheale, il BAL verrà prelevato dal bronco principale sinistro mediante broncoscopia. Il BAL verrà eseguito sul polmone destro appena prima di iniziare P4.
  • Biopsia polmonare: verrà eseguita la biopsia polmonare del lobo inferiore di entrambi gli innesti
  • Liquido di conservazione o liquido di perfusione: 20 ml di liquido di conservazione a contatto con l'innesto sinistro prima della conservazione, come controllo di sterilità (P3) e 20 ml di liquido di perfusione prima del condizionamento, come controllo di sterilità (P4).
  • T1: Al termine dei protocolli di conservazione (P3 o P4).
  • B.A.L.
  • Biopsia polmonare: lobo inferiore sinistro.
  • Liquido di conservazione o liquido di infusione: 20 ml di liquido di conservazione a contatto con l'innesto sinistro o 20 ml di liquido di perfusione.

A causa della manipolazione degli innesti durante l'estrazione e dell'uso della tecnica, che prevede l'estubazione del donatore e la successiva intubazione degli innesti, nonché la perfusione per un minimo di 3 ore con antibiotici, l'uso dell'EVLP potrebbe alterare il microbioma del innesti. Questa alterazione potrebbe avere un impatto sull’ottenimento di organi vitali per il trapianto, nell’immediato periodo postoperatorio così come sui risultati a lungo termine. Non esistono studi che analizzino il cambiamento del microbioma dopo il condizionamento con EVLP o la sua relazione con i parametri infiammatori.

Panoramica dello studio

Descrizione dettagliata

PRELIEVO E CONSERVAZIONE DEI CAMPIONI

  • BAL:
  • Tecnica: Il broncoscopio verrà inserito nel segmento 6, verranno instillate aliquote di soluzione salina sterile. La procedura verrà ripetuta nei segmenti 3 e 5, nel caso del polmone destro, e nel segmento 6 e lingula nel polmone sinistro. Per ogni innesto verranno completati 20-30 cc di BAL.
  • Conservazione: i campioni verranno congelati immediatamente dopo la raccolta e trasferiti al laboratorio con un accumulatore di freddo per garantire che non si scongelino.
  • Analisi: verrà analizzato il microbioma polmonare.
  • Biopsia polmonare:
  • Tecnica: verrà eseguita una biopsia polmonare di almeno 2 cm3 utilizzando una sutura automatica non assorbibile.
  • Conservazione: i campioni verranno conservati nel reagente della soluzione di stabilizzazione dell'RNA (QIAGEN), che consente di mantenere i campioni a temperatura ambiente fino al congelamento, evitando la degradazione dell'RNA.
  • Analisi: sequenziamento dell'RNA della trascrizione dei segnali infiammatori.
  • Soluzione liquida per perfusione ex vivo:
  • Tecnica: Prelievo di campioni sterili con una siringa da 20 cc.
  • Conservazione: i campioni verranno congelati immediatamente dopo la raccolta e trasferiti al laboratorio con un accumulatore di freddo per garantire che non si scongelino.
  • Analisi: analisi del microbioma
  • Soluzione liquida di conservazione:
  • Tecnica: Prelievo di campioni sterili con una siringa da 20 cc.
  • Conservazione: i campioni verranno congelati immediatamente dopo la raccolta e trasferiti al laboratorio con un accumulatore di freddo per garantire che non si scongelino.
  • Analisi: analisi del microbioma e delle citochine

Tutti i campioni verranno conservati in un congelatore a -80

- Analisi del microbioma Per l'analisi della diversità microbica, la regione variabile V4 del gene 16S sarà amplificata dal DNA batterico mediante PCR. Gli ampliconi verranno sequenziati utilizzando la tecnologia Illumina (MiSeq). I campioni verranno elaborati e verranno generate più di 10.000 sequenze da 300 bp per sequenza per campione.

Analisi dell'espressione genica L'estrazione dell'RNA verrà eseguita utilizzando il kit commerciale RNeasy Mini (QIAGEN). L'analisi dell'espressione genica verrà eseguita mediante PCR quantitativa (qPCR) utilizzando il pannello TransplantRejection preimpostato di SignArray (AnyGenes®, Parigi, Francia) che include 84 geni che sono stati descritti come correlati alla risposta immunitaria nel rigetto del trapianto. Questi sono: Geni inclusi nel pannello: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86, CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44 , CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2, IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5 , IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28, CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA , GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10.

- Analisi delle citochine La determinazione delle citochine nel liquido di perfusione verrà effettuata utilizzando test immunologici basati sulla tecnologia Luminex™ xMAP™ (profilazione multi-analita) che consentono la quantificazione e la rilevazione simultanea di diverse proteine ​​secrete (citochine, chemochine, fattori di crescita, ecc.) .) Utilizzeremo pannelli progettati specificamente per i prodotti genetici di interesse.

I livelli di citochine vengono misurati utilizzando un test immunologico basato sulla tecnologia Luminex™ xMAP™ che consente l'analisi multiparametrica delle diverse citochine. A tal fine, viene disegnato un pannello personalizzato di citochine basato sulla letteratura pubblicata sull’effetto delle statine sulla produzione di citochine e altre chemochine proinfiammatorie a livello sistemico, nonché sull’evidenza bibliografica sulle citochine coinvolte nel trapianto polmonare. Le citochine analizzate nel pannello predisposto a questo scopo sono IFN gamma, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP- 1 alfa (CCL3), TNF alfa, VEGF-D (pannello multiplex Procartaplex personalizzato, Invitrogen, ThermoFisher Scientific, MA, USA). L'analisi immunologica sarà effettuata utilizzando il software Invitrogen ProcartaPlex Analyst 1.0, fornito con i reagenti.

- Analisi bioinformatica delle sequenze Per ottenere la composizione microbica di ciascun campione, utilizzeremo il software QIIME. QIIME è una pipeline software che utilizza informazioni filogenetiche e tecniche statistiche multivariate per confrontare le comunità microbiche e determinare, ad esempio, se sono statisticamente diverse. Il programma identifica inoltre le specie che contribuiscono maggiormente a queste differenze e scopre modelli di vario tipo che caratterizzano specifici gruppi di campioni.

Tipo di studio

Interventistico

Iscrizione (Stimato)

7

Fase

  • Non applicabile

Contatti e Sedi

Questa sezione fornisce i recapiti di coloro che conducono lo studio e informazioni su dove viene condotto lo studio.

Contatto studio

Backup dei contatti dello studio

Luoghi di studio

Criteri di partecipazione

I ricercatori cercano persone che corrispondano a una certa descrizione, chiamata criteri di ammissibilità. Alcuni esempi di questi criteri sono le condizioni generali di salute di una persona o trattamenti precedenti.

Criteri di ammissibilità

Età idonea allo studio

  • Adulto
  • Adulto più anziano

Accetta volontari sani

No

Descrizione

Criterio di inclusione:

  • donatori con morte cerebrale e donatori dopo morte cardiocircolatoria rifiutati per trapianto polmonare

Criteri di esclusione:

  • Polmonite unilaterale
  • Mancanza di consenso da parte della famiglia del donatore.

Piano di studio

Questa sezione fornisce i dettagli del piano di studio, compreso il modo in cui lo studio è progettato e ciò che lo studio sta misurando.

Come è strutturato lo studio?

Dettagli di progettazione

  • Scopo principale: Trattamento
  • Assegnazione: Non randomizzato
  • Modello interventistico: Assegnazione parallela
  • Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)

Armi e interventi

Gruppo di partecipanti / Arm
Intervento / Trattamento
Sperimentale: EVLP
Il polmone destro verrà perfuso per 3 ore con EVLP
Comparatore attivo: Conservazione a freddo
Il polmone sinistro verrà conservato a freddo come da protocollo abituale

Cosa sta misurando lo studio?

Misure di risultato primarie

Misura del risultato
Misura Descrizione
Lasso di tempo
Variazione delle singole unità tassonomiche operative (OTU) nel parenchima polmonare dopo la perfusione polmonare exvivo durante 3 ore
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
Analizzare il microbioma polmonare e la diversità alfa prima dell'uso della perfusione polmonare exvivo e dopo aver confrontato i campioni micrologici
Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
Analisi con PCR quantitativa dell'espressione genetica di 84 geni correlati alla risposta immunitaria nel trapianto di polmone dopo perfusione polmonare per 3 ore nel sistema di perfusione polmonare exvivo.
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
Analizzare con PCR quantitativa l'espressione genetica di 84 geni correlati alla risposta immunitaria nel trapianto polmonare: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 in campioni polmonari prima e dopo l'uso della perfusione polmonare exvivo, confrontando loro
Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
Analizzare la concentrazione di citochine infiammatorie dopo la perfusione polmonare exvivo
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
Analizzare la concentrazione di citochine infiammatorie: IFN gamma,IL-1 beta,IL-6,IL-8 (CXCL8),IL-18,IP-10 (CXCL10),MCP-1 (CCL2),MIP-1 alfa (CCL3 ), TNF alfa,VEGF-D, con la tecnica Luminex xMAP, in soluzione di perfusione prima e dopo l'uso della perfusione polmonare exvivo e confronto tra loro
Dopo 3 ore di perfusione in perfusione polmonare ex vivo
Cambiamento nelle singole unità tassonomiche operative (OTU) nel parenchima polmonare dopo la conservazione a freddo
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di cella frigorifera
Analizzare il microbioma polmonare e la diversità alfa prima e dopo la conservazione a freddo e confrontare i campioni micrologici.
Dopo 3 ore di cella frigorifera
Analisi della concentrazione di citochine infiammatorie dopo la conservazione a freddo
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di cella frigorifera
Analizzare la concentrazione di citochine infiammatorie: IFN gamma,IL-1 beta,IL-6,IL-8 (CXCL8),IL-18,IP-10 (CXCL10),MCP-1 (CCL2),MIP-1 alfa (CCL3 ), TNF alfa,VEGF-D, con tecnica Luminex xMAP, in soluzione di perfusione prima e dopo la conservazione a freddo e confronto
Dopo 3 ore di cella frigorifera
Analisi con PCR quantitativa dell'espressione genetica di 84 geni correlati alla risposta immunitaria nel trapianto di polmone dopo conservazione frigorifera
Lasso di tempo: Dopo 3 ore di cella frigorifera
Analizzare con PCR quantitativa l'espressione genetica di 84 geni correlati alla risposta immunitaria nel trapianto polmonare: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86 , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2 , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 in campioni polmonari prima e dopo la conservazione a freddo, confrontandoli
Dopo 3 ore di cella frigorifera

Collaboratori e investigatori

Qui è dove troverai le persone e le organizzazioni coinvolte in questo studio.

Investigatori

  • Direttore dello studio: Irene Bello Rodríguez, Professor, Hospital Clinic of Barcelona

Studiare le date dei record

Queste date tengono traccia dell'avanzamento della registrazione dello studio e dell'invio dei risultati di sintesi a ClinicalTrials.gov. I record degli studi e i risultati riportati vengono esaminati dalla National Library of Medicine (NLM) per assicurarsi che soddisfino specifici standard di controllo della qualità prima di essere pubblicati sul sito Web pubblico.

Studia le date principali

Inizio studio (Effettivo)

1 giugno 2021

Completamento primario (Stimato)

1 aprile 2024

Completamento dello studio (Stimato)

1 giugno 2024

Date di iscrizione allo studio

Primo inviato

23 dicembre 2023

Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità

31 gennaio 2024

Primo Inserito (Stimato)

9 febbraio 2024

Aggiornamenti dei record di studio

Ultimo aggiornamento pubblicato (Stimato)

9 febbraio 2024

Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC

31 gennaio 2024

Ultimo verificato

1 gennaio 2024

Maggiori informazioni

Termini relativi a questo studio

Termini MeSH pertinenti aggiuntivi

Altri numeri di identificazione dello studio

  • ExBioma

Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)

Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?

NO

Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio

Studia un prodotto farmaceutico regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti

No

Studia un dispositivo regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti

No

Queste informazioni sono state recuperate direttamente dal sito web clinicaltrials.gov senza alcuna modifica. In caso di richieste di modifica, rimozione o aggiornamento dei dettagli dello studio, contattare register@clinicaltrials.gov. Non appena verrà implementata una modifica su clinicaltrials.gov, questa verrà aggiornata automaticamente anche sul nostro sito web .

Prove cliniche su Fallimento del trapianto di polmone

Prove cliniche su EVLP

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