Tato stránka byla automaticky přeložena a přesnost překladu není zaručena. Podívejte se prosím na anglická verze pro zdrojový text.

Vliv ex-vivo plicního perfuzního systému na mikrobiom plicních štěpů a jejich zánětlivá reakce. (ExBioma)

31. ledna 2024 aktualizováno: Irene Bello, Vall d'Hebron Institute Research

Je známo, že interakce štěpu a mikrobiomu příjemce jsou schopné modulovat imunitní reakce, indukovat odolnost nebo exacerbaci různých zánětlivých nebo fibrotických procesů, proto jsou variace v plicním mikrobiomu spojeny s imunologickými změnami v transplantované plíci.

Hlavním cílem je porozumět dopadu nových systémů pro úpravu a zlepšení suboptimálních plicních štěpů s ex vivo perfuzí (EVLP) na plicní mikrobiom a jeho souvislost se zánětem tkáně.

Hypotézou je, že manipulace s plicními štěpy a perfuze širokospektrými antibiotiky během kondicionování EVLP mění plicní mikrobiom a kondicionují méně prozánětlivé prostředí.

Metodika: Jedná se o jednocentrickou prospektivní observační studii. Do studie bude zahrnuto 7 po sobě jdoucích dárců s mozkovou smrtí, kteří nesplňují kritéria pro dárce plic. Budou prováděny:

  • P1. Detekce: Dárce bez kritérií být dárcem plic nebo odmítnutý všemi transplantačními týmy.
  • P2. Extrakce.
  • P3. Konzervace za studena: Levá plíce bude konzervována za studena
  • P4. Konzervace EVLP: Pravá plíce bude připravena a kondicionována po dobu 3 hodin pomocí EVLP

Následující vzorky budou odebrány ve dvou časech:

  • T0: Na konci extrakce
  • Bronchoalveolární laváž (BAL): Před tracheální svorkou bude BAL odebrán z levého hlavního bronchu pomocí bronchoskopie. BAL se provede na pravé plíci těsně před zahájením P4.
  • Plicní biopsie: Bude provedena plicní biopsie dolního laloku obou štěpů
  • Konzervační tekutina nebo perfuzní tekutina: 20 ml konzervační tekutiny, která je v kontaktu s levým štěpem před uskladněním, jako kontrola sterility (P3) a 20 ml perfuzní tekutiny před kondicionováním, jako kontrola sterility (P4).
  • T1: Na konci konzervačních protokolů (P3 nebo P4).
  • B.A.L.
  • Biopsie plic: levý dolní lalok.
  • Konzervační tekutina nebo infuzní tekutina: 20 ml konzervační tekutiny, která je v kontaktu s levým štěpem, nebo 20 ml perfuzní tekutiny.

Vzhledem k manipulaci se štěpy při extrakci a použití techniky, která zahrnuje extubaci dárce a následně opětovnou intubaci štěpů, stejně jako perfuzi po dobu minimálně 3 hodin antibiotiky, by použití EVLP mohlo změnit mikrobiom dárce. štěpy. Tato změna by mohla ovlivnit získání životaschopných orgánů pro transplantaci, a to v bezprostředním pooperačním období i v dlouhodobých výsledcích. Neexistují žádné studie, které by analyzovaly změnu v mikrobiomu po kondicionování pomocí EVLP nebo její vztah k zánětlivým parametrům.

Přehled studie

Detailní popis

ODBĚR A SKLADOVÁNÍ VZORKU

  • BAL:
  • Technika: Bronchoskop bude vložen do segmentu 6, budou nakapány alikvoty sterilního fyziologického roztoku. Postup se bude opakovat v segmentech 3 a 5 v případě pravé plíce a v segmentu 6 a lingule v levé plíci. Pro každý štěp bude doplněno 20-30 ccm BAL.
  • Skladování: Vzorky budou ihned po odběru zmraženy a přeneseny do laboratoře se studeným akumulátorem, aby nedošlo k jejich rozmrznutí.
  • Analýza: Bude analyzován plicní mikrobiom.
  • Biopsie plic:
  • Technika: Provede se odběr plicní biopsie o velikosti minimálně 2 cm3 pomocí nevstřebatelné automatické sutury.
  • Skladování: Vzorky budou uchovávány v RNA Stabilizačním roztoku Reagent (QIAGEN), který umožňuje uchovávat vzorky při pokojové teplotě až do zmrazení, čímž se zabrání degradaci RNA.
  • Analýza: RNA sekvenování transkripce zánětlivých signálů.
  • Ex vivo perfuzní kapalný roztok:
  • Technika: Odebírání vzorků sterilně pomocí 20cc stříkačky.
  • Skladování: Vzorky budou ihned po odběru zmraženy a přeneseny do laboratoře se studeným akumulátorem, aby nedošlo k jejich rozmrznutí.
  • Analýza: Analýza mikrobiomů
  • Konzervační tekutý roztok:
  • Technika: Odebírání vzorků sterilně pomocí 20cc stříkačky.
  • Skladování: Vzorky budou ihned po odběru zmraženy a přeneseny do laboratoře se studeným akumulátorem, aby nedošlo k jejich rozmrznutí.
  • Analýza: Analýza mikrobiomů a cytokinů

Všechny vzorky budou uloženy v mrazáku při -80

- Analýza mikrobiomu Pro analýzu mikrobiální diverzity bude variabilní oblast V4 genu 16S amplifikována z bakteriální DNA pomocí PCR. Amplikony budou sekvenovány pomocí technologie Illumina (MiSeq). Vzorky budou zpracovány a bude generováno více než 10 000 300bp sekvencí na sekvenci na vzorek.

Analýza genové exprese Extrakce RNA bude provedena pomocí komerční sady RNeasy Mini Kit (QIAGEN). Analýza genové exprese bude provedena pomocí kvantitativní PCR (qPCR) s použitím předem navrženého panelu TransplantRejection od SignArray (AnyGenes®, Paříž, Francie), který obsahuje 84 genů, u kterých bylo popsáno, že souvisejí s imunitní odpovědí při odmítnutí transplantátu. Jsou to: Geny zahrnuté v panelu: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD86, CTLA4, CXCR3, STAT4, T4GF , CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL12A, IL13, IL16, IL1B, IL2, IL2, IL23IL, IL , IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CASP8, CCR2, CCR3, CD14, CD28, CD8FAA, FAS, CD81A, GZMASLG, FAS , GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10.

- Analýza cytokinů Stanovení cytokinů v perfuzní tekutině bude provedeno pomocí imunotestů založených na technologii Luminex™ xMAP™ (profilování více analytů), které umožňují současnou kvantifikaci a detekci různých vylučovaných proteinů (cytokiny, chemokiny, růstové faktory atd.). .) Použijeme panely navržené speciálně pro genové produkty, které nás zajímají.

Hladiny cytokinů se měří pomocí imunotestu založeného na technologii Luminex™ xMAP™, která umožňuje multiparametrickou analýzu různých cytokinů. Za tímto účelem je navržen personalizovaný panel cytokinů na základě publikované literatury o účinku statinů na produkci cytokinů a dalších prozánětlivých chemokinů na systémové úrovni a také bibliografických důkazů o cytokinech účastnících se transplantace plic. Cytokiny analyzované v panelu navrženém pro tento účel jsou IFN gama, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP- 1 alfa (CCL3), TNF alfa, VEGF-D (Custom Procartaplex Multiplex Panel, Invitrogen, ThermoFisher Scientific, MA, USA). Imunologická analýza bude provedena pomocí softwaru Invitrogen ProcartaPlex Analyst 1.0 dodávaného s reagenciemi.

- Bioinformatická analýza sekvencí K získání mikrobiálního složení každého vzorku použijeme software QIIME. QIIME je softwarový kanál, který využívá fylogenetické informace a vícerozměrné statistické techniky k porovnání mikrobiálních komunit a například k určení, zda se statisticky liší. Program také identifikuje druhy, které k těmto rozdílům nejvíce přispívají, a objevuje vzory různých typů, které charakterizují konkrétní skupiny vzorků.

Typ studie

Intervenční

Zápis (Odhadovaný)

7

Fáze

  • Nelze použít

Kontakty a umístění

Tato část poskytuje kontaktní údaje pro ty, kteří studii provádějí, a informace o tom, kde se tato studie provádí.

Studijní kontakt

Studijní záloha kontaktů

Studijní místa

Kritéria účasti

Výzkumníci hledají lidi, kteří odpovídají určitému popisu, kterému se říká kritéria způsobilosti. Některé příklady těchto kritérií jsou celkový zdravotní stav osoby nebo předchozí léčba.

Kritéria způsobilosti

Věk způsobilý ke studiu

  • Dospělý
  • Starší dospělý

Přijímá zdravé dobrovolníky

Ne

Popis

Kritéria pro zařazení:

  • dárci mozkové smrti a dárci po kardiocirkulační smrti odmítnutí k transplantaci plic

Kritéria vyloučení:

  • Jednostranný zápal plic
  • Nedostatek souhlasu pro rodinu dárce.

Studijní plán

Tato část poskytuje podrobnosti o studijním plánu, včetně toho, jak je studie navržena a co studie měří.

Jak je studie koncipována?

Detaily designu

  • Primární účel: Léčba
  • Přidělení: Nerandomizované
  • Intervenční model: Paralelní přiřazení
  • Maskování: Žádné (otevřený štítek)

Zbraně a zásahy

Skupina účastníků / Arm
Intervence / Léčba
Experimentální: EVLP
Pravá plíce bude perfundována po dobu 3 hodin pomocí EVLP
Aktivní komparátor: Konzervace za studena
Levá plíce bude konzervována za studena jako obvyklý protokol

Co je měření studie?

Primární výstupní opatření

Měření výsledku
Popis opatření
Časové okno
Změna jednotlivých operačních taxonomických jednotek (OTU) v plicním parenchymu po exvivo plicní perfuzi během 3 hodin
Časové okno: Po 3 hodinách perfuze in vivo perfuze plic
Analyzujte plicní mikrobiom a diverzitu alfa před použitím exvivo plicní perfuze a po porovnání mikrologických vzorků
Po 3 hodinách perfuze in vivo perfuze plic
Analýza pomocí kvantitativní PCR genetické exprese 84 genů souvisejících s imunitní odpovědí při transplantaci plic po perfuzi plic během 3 hodin in exvivo plicního perfuzního systému.
Časové okno: Po 3 hodinách perfuze in vivo perfuze plic
Pomocí kvantitativní PCR analyzujte genetickou expresi 84 genů souvisejících s imunitní odpovědí při transplantaci plic: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD80, , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL132A,IL16IL, IL12A,IL6IL IL , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CCR2, CD21 CASP48 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 ve vzorcích plic před použitím exvivo plicní perfuze a po, jim
Po 3 hodinách perfuze in vivo perfuze plic
Analyzujte koncentraci zánětlivých cytokinů po exvivo plicní perfuzi
Časové okno: Po 3 hodinách perfuze in vivo perfuze plic
Analyzujte koncentraci zánětlivých cytokinů: IFN gama, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alfa (CCL3 ), TNF alfa, VEGF-D, s technikou Luminex xMAP, v perfuzním roztoku před a po použití exvivo plicní perfuze a jejich porovnání
Po 3 hodinách perfuze in vivo perfuze plic
Změna jednotlivých provozních taxonomických jednotek (OTU) v plicním parenchymu po skladování v chladu
Časové okno: Po 3 hodinách skladování v chladu
Analyzujte plicní mikrobiom a diverzitu alfa před a po skladování v chladu a porovnejte mikrologické vzorky.
Po 3 hodinách skladování v chladu
Analýza koncentrace zánětlivých citokinů po skladování v chladu
Časové okno: Po 3 hodinách skladování v chladu
Analyzujte koncentraci zánětlivých cytokinů: IFN gama, IL-1 beta, IL-6, IL-8 (CXCL8), IL-18, IP-10 (CXCL10), MCP-1 (CCL2), MIP-1 alfa (CCL3 ), TNF alfa, VEGF-D, s technikou Luminex xMAP, v perfuzním roztoku před a po skladování v chladu a jejich porovnání
Po 3 hodinách skladování v chladu
Analýza pomocí kvantitativní PCR genetické exprese 84 genů souvisejících s imunitní odpovědí při transplantaci plic po skladování v chladu
Časové okno: Po 3 hodinách skladování v chladu
Pomocí kvantitativní PCR analyzujte genetickou expresi 84 genů souvisejících s imunitní odpovědí při transplantaci plic: CX3CR1, ICAM1, ITGA2, ITGAE, ITGAM, PECAM1, THBS1, THBS2, VCAM1, COL1A2, CCR5, CCR7, CD40, CD40LG, CD80, CD80, , CTLA4, CXCR3, STAT4, TGFB1, CD44, CTGF, MMP1, MMP2, MMP7, MMP9, BMP7, CCL11, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CSF2, CXCL10, IFNG, IL10, IL132A,IL16IL, IL12A,IL6IL IL , IL2RA, IL3, IL32, IL4, IL5, IL6, IL8, TNF, TGFB2, TGFB3, TIMP1, VEGFA, MS4A1, CXCL11, CXCL9, CXCR4, ADAM17, C3, CASP1, CASP3, CCR2, CD21 CASP48 , CD8A, FAS, FASLG, FCGR1A, GZMA, GZMB, NFKB1, NOS2, PRF1, PSMB9, STAT1, STAT6, TAP1, TLR3, TLR4, TLR9, TNFAIP3, TNFSF10 ve vzorcích plic před a po skladování v chladu, jejich porovnání
Po 3 hodinách skladování v chladu

Spolupracovníci a vyšetřovatelé

Zde najdete lidi a organizace zapojené do této studie.

Spolupracovníci

Vyšetřovatelé

  • Ředitel studie: Irene Bello Rodríguez, Professor, Hospital Clinic of Barcelona

Termíny studijních záznamů

Tato data sledují průběh záznamů studie a předkládání souhrnných výsledků na ClinicalTrials.gov. Záznamy ze studií a hlášené výsledky jsou před zveřejněním na veřejné webové stránce přezkoumány Národní lékařskou knihovnou (NLM), aby se ujistily, že splňují specifické standardy kontroly kvality.

Hlavní termíny studia

Začátek studia (Aktuální)

1. června 2021

Primární dokončení (Odhadovaný)

1. dubna 2024

Dokončení studie (Odhadovaný)

1. června 2024

Termíny zápisu do studia

První předloženo

23. prosince 2023

První předloženo, které splnilo kritéria kontroly kvality

31. ledna 2024

První zveřejněno (Odhadovaný)

9. února 2024

Aktualizace studijních záznamů

Poslední zveřejněná aktualizace (Odhadovaný)

9. února 2024

Odeslaná poslední aktualizace, která splnila kritéria kontroly kvality

31. ledna 2024

Naposledy ověřeno

1. ledna 2024

Více informací

Termíny související s touto studií

Další relevantní podmínky MeSH

Další identifikační čísla studie

  • ExBioma

Plán pro data jednotlivých účastníků (IPD)

Plánujete sdílet data jednotlivých účastníků (IPD)?

NE

Informace o lécích a zařízeních, studijní dokumenty

Studuje lékový produkt regulovaný americkým FDA

Ne

Studuje produkt zařízení regulovaný americkým úřadem FDA

Ne

Tyto informace byly beze změn načteny přímo z webu clinicaltrials.gov. Máte-li jakékoli požadavky na změnu, odstranění nebo aktualizaci podrobností studie, kontaktujte prosím register@clinicaltrials.gov. Jakmile bude změna implementována na clinicaltrials.gov, bude automaticky aktualizována i na našem webu .

Klinické studie na Selhání transplantace plic

Klinické studie na EVLP

Předplatit