Détection du biofilm parmi les isolats cliniques d'Escherichia Coli uropathogènes dans les hôpitaux universitaires du canal de Suez

résistance aux antibiotiques

Les tests de sensibilité seront effectués selon la méthode standard de diffusion sur disque Kirby-Bauer sur gélose Mueller Hinton et interprétés selon les directives du Clinical and Laboratory Standard Institute (CLSI). Les disques antibiotiques comprennent l'amoxicilline-clavulanate, la pipéracilline-tazobactam, le céfotaxime, la ceftazidime, l'aztréonam, l'imipénem, ​​la gentamicine, l'amikacine, la norfloxacine, la ciprofloxacine, la lévofloxacine, le triméthoprime-sulfaméthoxazole et la nitrofurantoïne.

Méthode sur gélose rouge du Congo (CRA)

Le milieu sera préparé en ajoutant 37 g de poudre d'infusion cœur-cerveau (BHI), 50 g de saccharose et 10 g d'agar à 900 ml d'eau distillée et autoclavé à 121°C pendant 15 minutes. Le rouge Congo sera préparé séparément en dissolvant 0,8 g de colorant rouge Congo dans 100 ml d'eau distillée sous forme de solution aqueuse concentrée et autoclavé à 121°C pendant 15 minutes, puis il sera ajouté au milieu précédent lorsqu'il aura refroidi à 55°C. La gélose rouge congo sera distribuée dans des plaques stériles. Les plaques seront inoculées par les bactéries testées et incubées en aérobiose pendant 24 à 48 heures à 37°C. Les résultats positifs seront indiqués par des colonies noires de consistance cristalline sèche. Les producteurs de slime faibles restent généralement roses.

Méthode sur plaque de culture tissulaire modifiée (MTCP)

Tous les isolats seront criblés pour leur capacité à former un biofilm par la méthode TCP avec une modification de la durée d'incubation qui sera étendue à 24 heures et l'ajout de glucose.