Effets de l'emmaillotage et de la nidation sur la douleur et le stress chez les nouveau-nés

Cette étude a été conçue pour étudier l'effet des méthodes d'emmaillotage et de nidification sur les niveaux de douleur et de stress chez les nouveau-nés recevant une CPAP nasale. L'étude a été planifiée pour être randomisée et de nature expérimentale. La population de l'étude sera constituée de tous les nouveau-nés nécessitant une CPAP nasale/ventilation mécanique non invasive dans l'unité de soins intensifs néonatals d'un hôpital urbain. L'étude sera composée de deux groupes d'intervention. Un total de 100 patients nouveau-nés (groupe Emmaillotage = 50, groupe Nidification = 50) seront inclus dans l'étude après avoir obtenu le consentement des parents des nouveau-nés diagnostiqués avec une tachypnée transitoire, nés à 35 semaines de gestation ou plus, qui reçoivent un traitement par CPAP nasale/ventilateur mécanique non invasif en USIN et répondent aux critères d'inclusion de l'étude. Les conditions environnementales qui pourraient causer du stress aux nouveau-nés (bruit, chaleur, éclairage, etc.) seront maintenues à des niveaux optimaux. Lorsqu'il est placé sous nCPAP, le nourrisson sera positionné en décubitus dorsal pour mieux observer les mouvements thoraciques et les schémas respiratoires. Pour assurer la perméabilité des voies respiratoires du nourrisson, une légère position d'extension sera obtenue en utilisant des rouleaux cervicaux. La détresse respiratoire chez les nouveau-nés recevant la nCPAP, le stress dû à la pression d'air positive et la douleur causée par la pression de la canule nasale sur les narines seront évalués par deux chercheurs à l'aide de l'échelle d'évaluation de la douleur et du stress néonatal ALPS-Neo (ALPS-Neo). Dans le groupe emmaillotage, des échantillons de salive seront collectés avant l'application de la méthode d'emmaillotage (t1), pendant l'application (t2) et 30 minutes après l'application de la méthode d'emmaillotage (t3). La fréquence cardiaque, la fréquence respiratoire, les valeurs de pression partielle d'oxygène, les niveaux de douleur et de stress (ALPS-Neo) seront enregistrés par deux chercheurs. Dans le groupe Nidification, des échantillons de salive seront également collectés avant l'application de la méthode de nidification (t1), pendant l'application (t2) et 30 minutes après l'application de la méthode d'emmaillotage (t3). La fréquence cardiaque, la fréquence respiratoire, les valeurs de pression partielle d'oxygène, les niveaux de douleur et de stress (ALPS-Neo) seront enregistrés par deux chercheurs. Le processus de collecte d'échantillons de salive sera effectué en retirant le rouleau de coton du tube intérieur et en le tenant par une extrémité sous la langue du bébé ou dans les coins de la bouche (2,5 cm) où la salive peut être collectée pendant environ 2 minutes jusqu'à ce que le coton soit complètement saturé de salive (0,012-3,000 ug/dL). Le rouleau de coton sera tenu par son extrémité sèche et la partie humide sera replacée dans le tube intérieur, le bouchon du tube sera fermé, et des codes-barres avec le nom du patient écrit dessus seront apposés sur chaque échantillon prélevé. Les échantillons de salive collectés seront numérotés et stockés à -20°C dans le réfrigérateur de l'unité de soins intensifs néonatals. Le même jour, ils seront transférés au laboratoire de recherche (KUYAM) dans des conditions de chaîne du froid avec l'autorisation de recherche, et la taille de l'échantillon dans les groupes d'étude sera complétée. Ils seront stockés à -80°C jusqu'au moment de l'étude ELISA. Le processus de collecte d'échantillons de salive sera effectué en retirant le rouleau de coton du tube intérieur et en le tenant par une extrémité sous la langue du bébé ou dans les coins de la bouche (2,5 cm) où la salive peut être collectée pendant environ 2 minutes jusqu'à ce que le coton soit complètement saturé de salive (0,012-3,000 ug/dL). L'ensemble de l'étude ELISA sera menée au laboratoire de recherche de l'Université des sciences de la santé de Kütahya (KUYAM), et les échantillons collectés seront rendus anonymes pour le technicien ELISA. Les échantillons de salive seront à nouveau centrifugés à 1000 g pendant 2 minutes pour éliminer les mucines et autres particules qui pourraient interférer avec la liaison des anticorps et affecter les résultats. Lorsque tous les échantillons auront atteint la température ambiante, pipeter 25 µL de standard et d'échantillon dans chaque puits de la plaque à 96 puits incluse dans le kit. Ensuite, ajouter 200 µL de diluant de dosage à la plaque à 96 puits à l'aide d'une micropipette et incuber à température ambiante pendant 1 heure à 500 tr/min. Une fois l'incubation terminée, laver 4 fois avec 300 µL de tampon de lavage. Après le lavage, ajouter 200 µL de solution de substrat TMB à chaque puits contenant l'échantillon et les standards et incuber à température ambiante à l'abri de la lumière à 500 tr/min pendant 25 minutes. Une fois le processus d'incubation terminé, 50 µL de solution d'arrêt de la réaction seront ajoutés à chaque puits. À ce stade, la réaction dans les puits sera observée pour passer du vert au jaune, et après que tous les puits soient devenus jaunes, une mesure spectrophotométrique sera effectuée à une longueur d'onde de 450 nm. Les concentrations totales seront calculées à partir des valeurs d'absorbance pour les standards et les échantillons, et les niveaux de cortisol seront rapportés en µg/dL.