Auswirkungen des Puckens und Nestbaus auf Schmerzen und Stress bei Neugeborenen

Diese Studie wurde konzipiert, um die Wirkung von Puck- und Nestmethoden auf Schmerz- und Stresslevel bei Neugeborenen zu untersuchen, die eine nasale CPAP-Behandlung erhalten. Die Studie war als randomisierte und experimentelle Studie geplant. Die Studienpopulation umfasst alle Neugeborenen, die im Neugeborenen-Intensivpflegebereich eines städtischen Krankenhauses eine nasale CPAP/nicht-invasive mechanische Beatmung benötigen. Die Studie besteht aus zwei Interventionsgruppen. Insgesamt 100 neugeborene Patienten (Puck-Gruppe = 50, Nest-Gruppe = 50) werden nach Einholung der Zustimmung von den Eltern der Neugeborenen, bei denen eine transiente Tachypnoe diagnostiziert wurde, die in der 35. Schwangerschaftswoche oder später geboren wurden, die im NICU eine nasale CPAP/nicht-invasive mechanische Beatmungsbehandlung erhalten und die Einschlusskriterien der Studie erfüllen, in die Studie aufgenommen. Umweltbedingungen, die bei Neugeborenen Stress verursachen könnten (Lärm, Hitze, Beleuchtung usw.), werden auf optimalem Niveau gehalten. Bei der Platzierung auf nCPAP wird das Kind in Rückenlage positioniert, um Brustbewegungen und Atemmuster besser beobachten zu können. Um die Durchgängigkeit der Atemwege des Kindes zu gewährleisten, wird mit Hilfe von Nackenrollen eine leichte Überstreckungsposition erreicht. Atemnot bei Neugeborenen unter nCPAP, Stress aufgrund des positiven Luftdrucks und Schmerzen, die durch den Druck der Nasenkanüle auf die Nasenlöcher verursacht werden, werden von zwei Forschern mithilfe der ALPS-Neo Neonatal Pain and Stress Assessment Scale (ALPS-Neo) bewertet. In der Puck-Gruppe werden Speichelproben vor der Anwendung der Puck-Methode (t1), während der Anwendung (t2) und 30 Minuten nach der Anwendung der Puck-Methode (t3) gesammelt. Herzfrequenz, Atemfrequenz, partielle Sauerstoffdruckwerte, Schmerz- und Stresslevel (ALPS-Neo) werden von zwei Forschern aufgezeichnet. In der Nest-Gruppe werden ebenfalls Speichelproben vor der Anwendung der Nest-Methode (t1), während der Anwendung (t2) und 30 Minuten nach der Anwendung der Wickelmethode (t3) gesammelt. Herzfrequenz, Atemfrequenz, partielle Sauerstoffdruckwerte, Schmerz- und Stresslevel (ALPS-Neo) werden von zwei Forschern aufgezeichnet. Der Speichelprobensammelprozess wird durchgeführt, indem die Wattetupferrolle aus dem Innentubus entfernt und an einem Ende unter der Zunge des Babys oder in den Mundwinkeln (2,5 cm), wo Speichel gesammelt werden kann, für etwa 2 Minuten gehalten wird, bis der Tupfer gründlich mit Speichel gesättigt ist (0,012-3.000 ug/dL). Die Wattetupferrolle wird am trockenen Ende gehalten und der nasse Teil wird zurück in den Innentubus gelegt, der Tubusverschluss wird geschlossen, und Barcodes mit dem Namen des Patienten werden auf jede entnommene Probe geklebt. Die gesammelten Speichelproben werden nummeriert und bei -20°C im Kühlschrank auf der Neugeborenen-Intensivstation gelagert. Am selben Tag werden sie unter Kühlkettenbedingungen mit Forschungserlaubnis in das Forschungslabor (KUYAM) überführt, und die Probengröße in den Studiengruppen wird vervollständigt. Sie werden bei -80°C gelagert, bis die ELISA-Studienzeit erreicht ist. Der Speichelprobensammelprozess wird durchgeführt, indem die Wattetupferrolle aus dem Innentubus entfernt und an einem Ende unter der Zunge des Babys oder in den Mundwinkeln (2,5 cm), wo Speichel gesammelt werden kann, für etwa 2 Minuten gehalten wird, bis der Tupfer gründlich mit Speichel gesättigt ist (0,012-3.000 ug/dL). Die gesamte ELISA-Studie wird im Forschungslabor der Kütahya Gesundheitswissenschaften Universität (KUYAM) durchgeführt, und die gesammelten Proben werden für den ELISA-Mitarbeiter verblindet. Speichelproben werden erneut bei 1000 g für 2 Minuten zentrifugiert, um Mucine und andere Partikel zu entfernen, die die Antikörperbindung stören und die Ergebnisse beeinflussen könnten. Wenn alle Proben Raumtemperatur erreicht haben, pipettieren Sie 25 µL Standard und Probe in jede Vertiefung der im Kit enthaltenen 96-Well-Platte. Als nächstes fügen Sie mit einer Mikropipette 200 µL Assay-Verdünnungsmittel zur 96-Well-Platte hinzu und inkubieren bei Raumtemperatur für 1 Stunde bei 500 U/min. Nach Abschluss der Inkubation 4-mal mit 300 µL Waschpuffer waschen. Nach Abschluss des Waschens fügen Sie 200 µL TMB-Substratlösung zu jeder Vertiefung, die Probe und Standards enthält, hinzu und inkubieren bei Raumtemperatur im Dunkeln bei 500 U/min für 25 Minuten. Nach Abschluss des Inkubationsprozesses werden 50 µL Reaktionsstopplösung zu jeder Vertiefung hinzugefügt. Zu diesem Zeitpunkt wird beobachtet, dass die Reaktion in den Vertiefungen von Grün zu Gelb wechselt, und nachdem alle Vertiefungen gelb geworden sind, wird eine spektrophotometrische Messung bei einer Wellenlänge von 450 nm durchgeführt. Die Gesamtkonzentrationen werden aus den Absorptionswerten für Standards und Proben berechnet, und die Cortisolspiegel werden in µg/dL angegeben.