중증 만성 치주염에서 전악 치료 접근법.

연구 모집단 및 임상 검사

60명의 연속적인 중증 만성 치주염 환자가 연구를 위해 모집되었습니다.

전체 구강 임상 치주 검사에는 제3대구치를 제외하고 치아당 6개 부위에서 프로빙 깊이, 임상 부착 수준 및 치태 지수 측정이 포함되었습니다. 유두 출혈 지수는 전체 구강에 대해 기록되었습니다. 임상 치주 매개변수는 기준선과 치료 후 1개월, 3개월 및 6개월에 기록되었습니다. 각 참가자의 디지털 파노라마 방사선 사진을 사용하여 치조골 손실을 평가했습니다.

중증 만성 치주염의 진단은 1999년 치주 질환 및 상태 분류를 위한 국제 워크샵에서 제안한 임상 및 방사선 진단 기준을 기반으로 합니다. 이 사람들은 PD ≥6 mm 및 CAL ≥5 mm인 부위에 인접하지 않은 치아가 최소 4개 있었습니다. 그들은 또한 플라크 축적량에 상응하는 최소 2개 사분면에서 50% 이상의 치조골 손실을 보였습니다.

모든 임상 측정, GCF 및 플라크 샘플링 및 모든 치료는 표준화된 방식(단일 맹검 시험)으로 동일한 보정되고 훈련된 조사자(BA)에 의해 수행되었습니다.

치료

베이스라인 방문에서, 비수술적 치주 치료 직전 GCF 및 치은연하 플라크 샘플을 환자당 수집하고 모든 그룹에서 임상 치주 측정치를 기록하였다.

Q-SRP 그룹에서 SRP는 오른쪽 상단 사분면에서 시작하여 1주 간격으로 4회 방문에 걸쳐 시계 방향으로 계속되었습니다. SRP는 다양한 수동 치주 큐렛을 사용하여 수행되었습니다. 시각적 및 촉각적으로 모든 침전물이 없어질 때까지 치아 표면을 계측했습니다. 재검사는 오른쪽 아래 사분면에서 SRP 완료 후 1, 3 및 6개월에 수행되었습니다.

FMUD군에서 치은연하조직제거술은 오전에는 상악, 오후에는 하악에 시행하였다. 시술은 같은 날 2회 방문(45분 간격)으로 완료되었습니다. 모든 치주 부위는 수정되지 않은 삽입물과 수정된 삽입물이 있는 피에조세라믹 초음파 기구로 괴사조직을 제거했습니다. 치근 표면이 시각적으로나 촉각적으로 깨끗하고 매끈해질 때까지 각 치아에 기구를 설치했습니다. 재검사는 전악 치은연하 데브리드맨 완료 후 1, 3, 6개월에 시행하였다.

FMD 그룹에서 초음파 치은연하 데브리드만은 클로르헥시딘을 사용한 집중적인 항균 체제와 결합되었습니다. 1% 클로르헥시딘 젤로 혀의 등을 1분 동안 닦았습니다. 환자들은 0.2% 클로르헥시딘 용액으로 1분 동안 두 번 헹구도록 지시받았다. 각 편도선에 0.2% 클로르헥시딘 스프레이를 4번 뿌렸습니다. 무딘 바늘로 모든 포켓의 1% 클로르헥시딘 젤로 치은연하 세척을 반복했습니다. 이 치은 연하 적용은 8일째에 반복되었습니다. 치료 후 14일 동안 환자는 0.2% 클로르헥시딘 용액으로 1일 2회 1분 동안 헹구고 0.2% 클로르헥시딘 분무기로 편도선을 1일 2회 분무하도록 지시하였다. 재검사는 휴약기간 14일 후 1, 3, 6개월에 시행하였다.

표준 구강 위생 지침은 Q-SRP 그룹의 첫 번째 세션과 FMD 및 FMUD 그룹의 초음파 괴사 조직 제거 완료 직후 모든 환자에게 제공되었습니다.

GCF 샘플링

GCF는 PD ≥6 mm, CAL ≥5 mm 및 기준선에서 눈에 보이는 염증 징후가 있는 단일 뿌리 치아의 인접하지 않은 두 치간 부위의 협측 측면에서 샘플링되었습니다. 재샘플링은 처리 후 1개월, 3개월 및 6개월에 반복하였다. 표준화된 여과지 스트립을 GCF 샘플링에 사용했습니다. 흡수된 유체 부피는 미리 보정된 전자 장치로 측정되었습니다. 종이 스트립은 추가 분석을 위해 -40ºC에 보관되었습니다.

치은연하 플라크 샘플링

GCF 수집 후, 단일 뿌리 치아의 가장 깊은 PD(≥5mm)가 있는 사분면당 하나의 부위에서 베이스라인 및 치료 후 1개월, 3개월 및 6개월에 2개의 표준화된 no.30 무균 종이를 사용하여 치은연하 플라크 샘플을 수집했습니다. 포인트들. 풀링된 샘플은 추가 분석을 위해 -40ºC에 보관되었습니다.

GCF에서 calprotectin, osteocalcin 및 NTx 수준 측정.

2개의 종이 스트립을 모아서 0.05% 폴리소르베이트 20을 함유하는 300 마이크로리터 인산염 완충 식염수에 넣고 오비탈 진탕기에서 실온에서 20분 동안 배양했습니다. 종이 스트립의 액체는 +4ºC에서 5분 동안 13,000rpm으로 원심분리하여 회수했습니다. GCF 샘플의 Calprotectin, osteocalcin 및 NTx 수준은 제조업체의 지침에 따라 상용 키트를 사용하여 ELISA로 측정했습니다. 플레이트는 ELISA 판독기를 사용하여 기준 파장으로 650nm를 사용하여 450nm에서 측정되었습니다. 사이토카인 농도는 표준 곡선에서 계산되었습니다. GCF 결과는 샘플링 시간당 두 사이트의 총량으로 표현되었습니다.

치은연하 플라크에서 표적 세균의 분자 검출.

정량적 실시간 PCR(qPCR) 방법은 치은연하 플라그에서 선택된 치주 병원균의 정량적 검출을 위해 사용되었습니다. 제조업체의 지침에 따라 High Pure PCR Template Preparation Kit를 사용하여 페이퍼포인트의 총 미생물 DNA를 추출했습니다. LightCycler FastStart DNA Master SYBR Green I 키트는 제조업체의 지침에 따라 표적 올리고뉴클레오티드 검출에 사용되었습니다. 실시간 PCR 프로토콜은 특정 프라이머 세트를 고려하여 구성되었습니다. 샘플에서 표적 올리고뉴클레오티드의 계산을 위해 표준 곡선을 구성했습니다.

통계 분석

반복 측정 분산 분석(ANOVA)을 사용하여 임상, 미생물 및 생화학적 매개변수의 그룹 내 및 그룹 간 차이를 감지했습니다. 공분산 분석은 기준선 데이터의 잠재적인 차이를 조정하는 세 치료 그룹 간의 매개변수 개선을 비교하기 위해 사용되었으며 Bonferroni 테스트는 사후에 수행되었습니다. 유의 수준은 p <0.05로 설정되었습니다.