Подходы к лечению полного рта при тяжелом хроническом пародонтите.

Исследуемая популяция и клиническое обследование

В исследование было включено 60 последовательных пациентов с тяжелым хроническим пародонтитом.

Клиническое пародонтологическое обследование всей полости рта включало измерение глубины зондирования, уровня клинического прикрепления и индекса зубного налета в 6 местах на зуб, кроме третьих моляров. Индекс кровоточивости сосочков регистрировали для всей полости рта. Клинические пародонтальные параметры регистрировались в начале лечения, а также через 1, 3 и 6 месяцев после лечения. Потеря альвеолярной кости оценивалась с помощью цифровой панорамной рентгенограммы у каждого участника.

Диагноз тяжелого хронического пародонтита был основан на клинических и рентгенологических диагностических критериях, предложенных в 1999 г. на Международном семинаре по классификации заболеваний и состояний пародонта. У этих людей было как минимум четыре несмежных зуба с участками с PD ≥6 мм и CAL ≥5 мм. У них также была потеря альвеолярной кости ≥50%, по крайней мере, в двух квадрантах, что было соразмерно количеству накопления зубного налета.

Все клинические измерения, сбор проб GCF и бляшек, а также все виды лечения проводились одним и тем же квалифицированным и обученным исследователем (B.A.) стандартизированным способом (простое слепое исследование).

Уход

Во время исходного визита, непосредственно перед нехирургическим лечением пародонта, образцы GCF и поддесневого зубного налета были собраны у каждого пациента, а клинические пародонтальные измерения были зарегистрированы во всех группах.

В группе Q-SRP SRP начинали с верхнего правого квадранта и продолжали по часовой стрелке в течение четырех посещений с интервалом в 1 неделю. SRP был выполнен с использованием ассортимента ручных пародонтальных кюреток. Поверхности зубов подвергались инструментальной обработке до тех пор, пока визуально и тактильно на них не было никаких отложений. Повторные осмотры проводились через 1, 3 и 6 месяцев после завершения СРП в правом нижнем квадранте.

В группе FMUD поддесневая обработка выполнялась на верхней челюсти во время утреннего сеанса и на нижней челюсти во время дневного сеанса. Процедура была выполнена в два визита (с интервалом 45 минут) в один и тот же день. Все участки пародонта были обработаны пьезокерамическим ультразвуковым инструментом с немодифицированными и модифицированными вставками. Каждый зуб подвергался инструментальной обработке до тех пор, пока поверхность корня не стала визуально и тактильно чистой и гладкой. Повторные осмотры проводились через 1, 3 и 6 месяцев после завершения полной ротовой поддесневой дебридманизации.

В группе ящура ультразвуковой поддесневой дебридмэн сочетали с интенсивным антимикробным режимом с хлоргексидином. Спинка языка смазывалась гелем с 1% хлоргексидином в течение 1 минуты. Пациентам было рекомендовано дважды полоскать рот по 1 минуте 0,2% раствором хлоргексидина. Каждую миндалину опрыскивали четыре раза 0,2% раствором хлоргексидина. Повторное поддесневое орошение 1% гелем хлоргексидина всех карманов тупоконечной иглой. Эту поддесневую аппликацию повторили на 8-й день. В течение 14 дней после лечения пациентам было рекомендовано полоскать рот 2 раза в день по 1 мин 0,2% раствором хлоргексидина и опрыскивать миндалины 2 раза в день 0,2% раствором хлоргексидина. Повторные осмотры проводились через 1, 3 и 6 месяцев после 14-дневного периода вымывания.

Стандартные инструкции по гигиене полости рта были даны всем пациентам сразу после первого сеанса группы Q-SRP и завершения ультразвуковой обработки в группах ящура и FMUD.

отбор проб ГКМ

Образцы GCF были взяты из щечных аспектов двух несмежных интерпроксимальных участков в однокорневых зубах с PD ≥ 6 мм, CAL ≥ 5 мм и видимыми признаками воспаления на исходном уровне. Повторный отбор проб повторяли через 1 месяц, 3 месяца и 6 месяцев после лечения. Для отбора проб ГКФ использовали стандартные полоски фильтровальной бумаги. Объем абсорбированной жидкости измеряли с помощью предварительно откалиброванного электронного прибора. Бумажные полоски хранили при температуре -40 ◦ C для дальнейшего анализа.

Взятие проб поддесневого зубного налета

После сбора GCF образцы поддесневого зубного налета были собраны с одного участка в каждом квадранте с самым глубоким PD (≥5 мм) однокорневых зубов в начале исследования и через 1 месяц, 3 месяца и 6 месяцев после лечения с использованием двух стандартизированных стерильных бумаг № 30. точки. Объединенные образцы хранили при температуре -40 ◦ C для дальнейшего анализа.

Измерение уровней кальпротектина, остеокальцина и NTx в GCF.

Две бумажные полоски объединяли, помещали в 300 мкл фосфатно-солевого буфера, содержащего 0,05% полисорбата 20, и инкубировали в течение 20 минут при комнатной температуре на орбитальном шейкере. Жидкость из бумажных полосок извлекали центрифугированием при 13 000 об/мин в течение 5 минут при +4°С. Уровни кальпротектина, остеокальцина и NTx в образцах GCF измеряли с помощью ELISA с использованием коммерческих наборов в соответствии с рекомендациями производителя. Планшеты измеряли при 450 нм с длиной волны 650 нм в качестве эталонной длины волны с использованием считывателя ELISA. Концентрации цитокинов рассчитывали по стандартной кривой. Результаты GCF были выражены в виде общих количеств на двух участках за время отбора проб.

Молекулярное обнаружение целевых бактерий в поддесневом налете.

Метод количественной ПЦР в реальном времени (кПЦР) использовался для количественного обнаружения выбранных пародонтальных патогенов в поддесневом налете. Общую микробную ДНК на бумажных штифтах экстрагировали с использованием набора для подготовки шаблонов для ПЦР High Pure в соответствии с инструкциями производителя. Набор LightCycler FastStart DNA Master SYBR Green I Kit использовали для обнаружения целевых олигонуклеотидов в соответствии с инструкциями производителя. Протоколы ПЦР в реальном времени были созданы с учетом конкретных наборов праймеров. Были построены стандартные кривые для расчета целевых олигонуклеотидов в образцах.

Статистический анализ

Для выявления внутри- и межгрупповых различий клинических, микробиологических и биохимических показателей использовали дисперсионный анализ повторных измерений (ANOVA). Анализ ковариации использовали для сравнения улучшений параметров между тремя группами лечения с поправкой на потенциальную разницу в исходных данных, а тест Бонферрони выполняли апостериорно. Уровень значимости был установлен на уровне p < 0,05.