- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT01856205
Sikkerhets- og effektstudie av intravenøst immunglobulin for å behandle japansk encefalitt
En randomisert dobbeltblind placebokontrollert studie for å vurdere sikkerheten og effekten av intravenøst immunglobulin (IVIG) hos barn med japansk encefalitt i Nepal
Studieoversikt
Status
Forhold
Intervensjon / Behandling
Detaljert beskrivelse
Japansk encefalitt (JE) er den viktigste epidemiske encefalitten på verdensbasis, og forårsaker ca. 35-50 000 tilfeller og 10-15 000 dødsfall årlig. Halvparten av de overlevende har alvorlige nevropsykiatriske følgetilstander, som utgjør en stor sosioøkonomisk belastning for lokalsamfunn som har dårlig råd til det. JE-virus (JEV, slekt flavivirus, familie Flaviviridae) har en 50 nm lipoproteinkonvolutt som omgir et nukleokapsid bestående av kjerneprotein og 11 KB enkelttrådet positiv sanse-RNA. Genomet har 5' og 3' utranslaterte regioner (UTR), og en enkelt åpen leseramme som koder for gener for tre strukturelle proteiner (kjerne - C, pre-membran - prM og konvolutt - E) og 7 ikke-strukturelle (NS) proteiner . E-proteinet er kritisk for viral binding og inntreden i celler, og er sammen med NS1 og NS3 et hovedmål for immunresponsen.
JEV er et leddyrbåren virus (arbovirus), som overføres i en enzootisk syklus mellom fugler, griser og andre virveldyr av mygg, spesielt Culex-arter. Nesten hele befolkningen i berørte deler av Asia er infisert av tidlig voksen alder, men bare en liten andel (omtrent 1 av 300) utvikler kliniske trekk. Disse kan variere fra en uspesifikk febril sykdom til en alvorlig meningoencefalitt, der anfall og kliniske tegn på økt intrakranielt trykk er vanlige, og har en dårlig prognose. I tillegg forårsaker JEV en poliomyelitt-lignende slapp lammelse. Fordelingen av de fire genotypene av JEV over Asia ble antatt å forklare den kliniske epidemiologien, men antas nå å være en refleksjon av virusets opprinnelse i Sørøst-Asia, og spredt herfra. Imidlertid kan subtile forskjeller i genomet være viktige for å bestemme nevrologiske presentasjoner av flavivirus.
Selv om det finnes vaksiner mot JEV, er de ikke tilgjengelige for mange av menneskene som trenger dem, på grunn av problemer med kostnader og produksjon. Det gjøres fremskritt for å overvinne disse vanskelighetene, og nyere vaksiner brukes i økende grad. Faktisk har Nepal vært i forkant av bruken av en enkeltdose av levende svekket SA14-14-2-vaksine for JE. Fortsetter imidlertid å spre seg over Asia, og det er ingen behandling. Interferon-α (IFN-α), som produseres som en del av den medfødte responsen på JEV-infeksjon, og som har antiviral aktivitet mot viruset, ble antatt å være den mest lovende behandlingen. En randomisert placebokontrollert studie viste imidlertid at rekombinant IFN-α2a ved 10 millioner enheter/m2/dag ikke forbedret resultatet. Patogenesen til JE er ufullstendig forstått, men sammenlignet med andre positive sanse RNA virale encefalitider, vil sannsynligvis involvere en blanding av viral cytopatologi og immunopatologi. Rollen til steroider i JEV har blitt undersøkt i en randomisert placebokontrollert studie i Thailand, som ikke viste noen fordel.
IVIG tilbyr for tiden en av de beste mulighetene for å forbedre resultatet i JE. Det har blitt brukt presumptivt hos pasienter med flavivirusencefalitt, inkludert JE, og er postulert å virke på to måter: IVIG produsert i land der flavivirus er endemiske inneholder høye titere av spesifikt nøytraliserende antistoff, fordi mesteparten av befolkningen har blitt eksponert for viruset , og har dermed antistoffer. I tillegg har IVIG ikke-spesifikke anti-inflammatoriske egenskaper, spesielt gjennom undertrykkelse av pro-inflammatoriske cytokiner (f.eks. ved Kawasaki sykdom). Vi tar sikte på å undersøke rollen til IVIG i JE, og også se på effektene på pro-inflammatoriske cytokiner.
Antistoffets rolle i beskyttelse mot alvorlig sykdom ved japansk encefalitt: Den humorale immunresponsen i JE har vært godt karakterisert. Når sykdom skyldes primær infeksjon (dvs. når JEV er det første flaviviruset som et individ har blitt infisert med) oppstår en rask og potent IgM-respons i serum og CSF innen dager etter infeksjon. På dag 7 har de fleste pasientene forhøyede titere. Forsøk på å isolere virus er vanligvis negative hos slike pasienter. Imidlertid er unnlatelse av å montere en IgM-respons assosiert med positiv virusisolasjon og et dødelig utfall. Antistoff mot JEV beskytter sannsynligvis verten ved å begrense viral replikasjon under den viremiske fasen, før viruset krysser blod-hjernebarrieren. Bevis fra andre flavivirus tyder på at det også kan begrense skade under etablert encefalitt ved å nøytralisere ekstracellulært virus og lette lysis av infiserte celler ved antistoffavhengig cellulær cytotoksisitet.
Hos overlevende pasienter skjer immunglobulinklassebytte, og innen 30 dager har de fleste IgG i serum og CSF. Asymptomatisk infeksjon med JEV er også assosiert med forhøyet IgM i serum, men ikke CSF. Hos pasienter med sekundær infeksjon (dvs. de som tidligere har blitt infisert med et annet flavivirus, for eksempel dengue-infeksjon eller gulfebervaksinasjon), er det en anamnastisk respons på flavivirusgruppens vanlige antigener. Dette sekundære mønsteret av antistoffaktivering er preget av en tidlig økning i IgG med en påfølgende langsom økning i IgM.
Betennelse ved japansk encefalitt: Ved obduksjon i JE er hjernen vanligvis ødematøs, med overbelastning av parenkymet. Cerebellar og uncal herniering er vanlig. Histopatologisk er JE preget av perivaskulær inflammasjon med rekruttering av makrofager, nøytrofiler og lymfocytter. De basale gangliene og fremre hornceller i ryggmargen er spesielt påvirket, og gir en patologisk korrelasjon for Parkinsonisme og poliomyelitt-lignende slappe lammelser, som kan sees. Viralt antigen er hovedsakelig i nevroner, selv om mikrogliaceller, astrocytter og vaskulære endotelceller også er infisert. Når overlevelsen er forlenget utover 7 dager ses acellulære nekrotiske soner, vanligvis i området av små eller mellomstore arterier som er omgitt av ødem.
Immunopatologi ved japansk encefalitt: Patogenesen til JE er ufullstendig forstått, men tilgjengelig bevis tyder på at, som med en rekke andre positive sanse RNA virale encefalitter inkludert lymohoctyic chorio meningitis virus (LCMV) i mus Sindbis virus, dengue virus, gulfeber virus og West Nile virus, det er immun-mediert skade så vel som viral cytopatologi.
Proinflammatoriske cytokinresponser ved japansk encefalitt: Som beskrevet nedenfor under foreløpige studier, er det akkumulerende bevis for at den proinflammatoriske cytokinresponsen kan gi et viktig bidrag til immunopatologi ved JE. Blant cytokiner som er studert, ser det ut til at interleukin (IL)-6, IL-8 kjemokin (CXC-motiv) ligand (CXCL-8) og tumornekrosefaktor (TNF)-a er assosiert med et dødelig utfall. Det er også nye bevis på betydningen av andre cytokiner og kjemokiner i encefalitt forårsaket av andre flavivirus, spesielt West Nile-virus. Det er flere mekanismer hvorved den pro-inflammatoriske responsen kan være skadelig. Nyere studier har vist at IL-6, som produseres av nevroner, mikroglia, astrocytter og rekrutterte makrofager som respons på viral CNS-infeksjon, forårsaker økt permeabilitet av blod-hjernebarrieren (BBB), som fører til interstitielt cerebralt ødem og økt intrakranielt press. TNF-α produseres av mikroglia, astrocytter og makrofager. Dens multiple pro-inflammatoriske egenskaper inkluderer oppregulering av klasse I og II MHC-ekspresjon, oppregulering av cellulære adhesjonsmolekyler, økt permeabilitet av BBB og oppregulering av induserbar nitrogenoksidsyntase (iNOS), som fører til produksjon av nitrogenoksid (NO). Ved høye konsentrasjoner er NO direkte giftig for CNS-celler, og forårsaker oksidativ skade og apoptose. Nyere bevis tyder på at de tidlige cytokin- og kjemokinresponsene også kan være viktige for å avgjøre om viruset til og med kommer inn over blod-hjernebarrieren for å komme inn i CNS. I en studie av West Nile-virusinfeksjon var mus med mangel på Toll-lignende reseptor 3(Tlr3), som gjenkjenner viralt dobbelttrådet RNA, relativt motstandsdyktige mot dødelig infeksjon. Dette var assosiert med redusert cytokinproduksjon (spesielt TNF-α og IL-6), og økt viral belastning i periferien, sammenlignet med villtype mus. TNF-α-reseptor 1-signalering ble funnet å være avgjørende for kompromittering av blod-hjernebarriere ved Tlr3-stimulering av viruset. I tillegg til å påvirke viralt infiserte celler, kan den inflammatoriske responsen i CNS også skade ikke-infiserte celler for å forårsake tilstedeværende celledød. Betydningen av kjemokinreseptoren CCR5, og dens ligand CCL5 (også kjent som RANTES, regulert ved aktivering, normalt T-celle uttrykt og utskilt) i CNS-betennelse forårsaket av flavivirus ble nylig vist ved deres fremtredende oppregulering i en musemodell av West Nilevirusinfeksjon. Dette var assosiert med CNS-infiltrasjon av CD4+ og CD8+ T-celler, Natural Killer (NK)1.1+ celler og makrofager som uttrykker reseptoren. Betydningen av CCR5 i patogenesen ble fastslått ved dødelighetsstudier der infeksjon av CCR5-/- mus var raskt og jevnt dødelig. Viktigere, vår nylige studie (se nedenfor) fant at CCL5 også var forhøyet i plasma hos mennesker med JE, der høyere nivåer var assosiert med et dødelig utfall.
Selv om kliniske studier på mennesker med JE, og parallelle studier i dyremodeller av flavivirusencefalitt tyder på at forhøyede pro-inflammatoriske cytokiner ser ut til å være viktige og assosiert med et dårlig utfall i JE, er det ikke klart om kontroll av denne sterke pro-inflammatoriske responsen vil forbedre resultatet. Vi vil gjennomføre en pilotdobbeltblind placebokontrollert studie på sikkerhet, tolerabilitet og immunologiske markører for effekt av IVIG hos barn med JE i Nepal, etterfulgt av en større effektstudie.
Foreløpige studier: Professor Solomon har studert JE og relaterte flavivirus siden 1994. Med støtte fra sin gruppe og samarbeidspartnere har han vist at JEV er den viktigste årsaken til viral encefalitt i Vietnam, slik det er i det meste av Sør- og Sørøst-Asia. Han viste at anfall og økt intrakranielt trykk er vanlige kliniske manifestasjoner av infeksjon. I samarbeid med kolleger i Malaysia utviklet og felttestet han en enkel rask diagnostisk test for diagnostisering av JE i landlige omgivelser der den forekommer. Denne testen var også i stand til å skille JE fra dengue - et relatert flavivirus som sirkulerer i Asia. Selv om dengue er bedre kjent som en årsak til hemorragisk sykdom, viste prof Solomon og teamet hans at det også er en viktig årsak til nevrologisk sykdom. Prof Solomon viste også at i tillegg til hjernebetennelse, kan JEV presentere seg med en poliomyelitt-lignende akutt slapp lammelse, som også nylig har blitt gjenkjent hos voksne infisert med West Nile-virus. Basert på in vitro og in vivo data, sammen med fase I/II studier på mennesker, gjennomførte Prof Solomon en randomisert placebokontrollert studie av interferon α-2b hos barn med JE (den eneste antivirale studien som noen gang er utført for JE). Studien viste imidlertid at det ikke forbedret resultatet. For å begynne å utforske det mulige bidraget fra viralt genetisk mangfold til den kliniske epidemiologien til JE, undersøkte Prof Solomon den molekylære utviklingen av viruset over Asia, og viste at viruset sannsynligvis har sin opprinnelse i Indonesia og Malaysia-regionen, og utviklet seg her til de forskjellige genotypene , hvorav den siste spredte seg over Asia.
Liverpool-gruppen har nylig begynt å undersøke betennelse i JE. En fersk patologisk studie på mennesker og en musemodell bekrefter viktigheten av den inflammatoriske responsen, og antyder at det kan være skade på det vaskulære endotelet. En studie av pro-inflammatoriske og anti-inflammatoriske cytokiner hos mennesker med JE har vist at CSF-nivåer av interleukin(IL)-6, tumornekrosefaktor (TNF)-α, interferon (IFN)-α og kjemokinet CXCL8 (IL- 8) var høyere hos pasienter som døde enn hos de som overlevde. IFN-γ og nitrogenoksid (NO) ble også påvist i CSF av dødelige tilfeller og overlevende. Disse funnene utvider observasjonene fra andre etterforskere på TNF-α og CXCL8, noe som indikerer at en sterk pro-inflammatorisk respons i JE er assosiert med et dårlig resultat. Det ble også vist at CCL5 (RANTES) kommer til uttrykk i plasma hos mennesker med JE, og at høye plasmanivåer er assosiert med dødelig sykdom. Kliniske data fra andre flavivirusencefalitider støtter konseptet om at betennelse kan bidra til patogenesen. For eksempel utvikler immunsupprimerte transplantasjonspasienter infisert med West Nile-virus CNS-sykdom senere enn immunkompetente pasienter. Cytokiner virker ikke isolert, og pluripotensen og redundansen til biologisk respons er faktisk et av deres karakteristiske trekk. Nylige mikroarray-eksperimenter viser at et bredt spekter av molekyler er oppregulert i CNS-inflammatoriske tilstander. I tillegg har Liverpool-gruppen studert forholdet mellom antistoffresponser og utfall. Sammen med andre etterforskere har vi vist at tilstedeværelsen av antistoff i serum og CSF er assosiert med overlevelse.
JE i Nepal: Japansk encefalitt ble først registrert i Nepal i 1978 og er for tiden endemisk i 24 distrikter. Siden den første opptredenen har det vært over 26 667 tilfeller og 5381 dødsfall. Tallene for tidlig dødelighet ble oppgitt til opptil 60 %, men nylig har de forbedret seg til omtrent 20 % hos de under 15 år. Sykeligheten antas å være rundt 50 %. Som følge av bekymring for sykdommen ble det i 1999 vaksinert mot JE i 3 distrikter, denne er nå utvidet til å dekke flertallet av de berørte distriktene. I tillegg vaksinerte regjeringen rundt 200 000 griser i Terai-sonen i 2001. Til tross for disse suksessene er det fortsatt pågående tilfeller av JE. I 2006 var det 292 bekreftede tilfeller og 1481 AES-tilfeller med ukjent etiologi. Disse tallene kan underrepresentere det faktiske antallet tilfeller på grunn av logistiske problemer, dødsfall før sykehusinnleggelse og vanskeligheter med å bekrefte diagnosen JE med parede sera- og CSF-prøver. Nylig seroovervåking i dyrevertene for JE i Nepal viser tydelig at viruset fortsatt er tilstede i naturen og sannsynligvis vil forbli. Seroprevalens var 48 % (102/212), hos griser, 27 % (15/56) hos ender og 50 % (6/12) hos hester fra totalt 280 sera samlet fra 10 distrikter, hvorav 44 % totalt sett var positive. Derfor er JE fortsatt et stort folkehelseproblem i Nepal, og det er et presserende behov for å utvikle bedre behandlinger. For tiden brukes IVIG i Nepal til å behandle en rekke pediatriske tilstander, inkludert Guillain-Barré syndrom, idiopatisk trombocytopenisk purpura.
Begrunnelse for bruk av IVIG i JE: Det er for tiden ingen antiviral eller immunmodulerende behandling for JE eller faktisk noen flavivirusencefalitt. Som skissert ovenfor, viste de eneste forsøkene som ble utført, ved bruk av interferon alfa og ved bruk av deksametason, ingen fordel. Basert på data fra prekliniske studier og observasjonsstudier på mennesker (se nedenfor), gir IVIG for tiden det beste håpet for behandling, gjennom sine antivirale og antiinflammatoriske egenskaper.
Etablert pediatrisk bruk av IVIG: IVIG har blitt etablert som standardbehandling for en rekke immunmedierte sykdommer i barndommen, inkludert Guillain-Barré syndrom, Kawasakis sykdom, immun trombocytopeni og dermatomyositt. Ved Kawasakis sykdom nedreguleres T-celle- og B-celleaktivering av IVIG. Ved trombocytopenisk purpura antas blokkering av FCγ-reseptorer å være viktig, noe som kan resultere i nedregulering av sekretoriske cytokiner. Ved Guillain-Barrés syndrom og dermatomyositt er hemming av komplementbinding og forebygging av membranolytisk angrepskompleksdannelse mulige mekanismer for IVIG-virkning. I tillegg har IVIG blitt brukt i behandling og profylakse av en rekke virusinfeksjoner i barndommen der de nøytraliserende antistoffene i IVIG ble antatt å være viktige. IVIG har blitt brukt til å behandle, og senere for å gi profylakse, for barn med hypo- eller agammaglobulinamia med kronisk enteroviral meningoencefalitt. Viktigere er at barn med X-bundet agammaglobulinemi og med enteroviral meningoencefalitt behandlet med intensiv og langvarig IVIG-behandling har oppnådd langvarig klinisk og viral remisjon (negativ CSF-viruskultur og PCR). Pasientene fikk imidlertid tilbakefall da IVIG ble nedtrappet, noe som indikerer en stor fordelaktig rolle for IVIG i denne tilstanden. IVIG-infusjon hos spedbarn og barn med AIDS behandlet med zidovudinbehandling har vist seg å redusere risikoen for alvorlige bakterielle infeksjoner (16,9 % IVIG-gruppe mot 24,3 % placebogruppe (relativ risiko, 0,60; 95 prosent konfidensintervall, 0,35 til 1,04; p = 0,07). Ved infeksjoner med respiratorisk syncytialvirus (RSV) har immunglobulinbehandling vist seg å være trygg og generelt godt tolerert i en randomisert kontrollert studie (RCT) med 102 tidligere friske barn, selv om den gunstige effekten av å redusere sykehusinnleggelse og intensivavdelingsdag var marginal hos barn med alvorlig sykdom. Andre etablerte indikasjoner for passiv immunisering med IVIG inkluderer parvovirus B19-infeksjon.
Bruk av IVIG ved flavivirusencefalitt: Det er sterke bevis som tyder på at JEV, i likhet med andre nevrotrope flavivirus, kan være mer mottakelig for antistoffmediert, i stedet for cellemediert immunrespons. For JEV og andre nevrotrope flavivirus er fjerning av virus ikke avhengig av cytolytisk T-celleaktivitet, i motsetning til ikke-nevrotrope virus. Nevroner, som terminalt differensierte celler, uttrykker ikke MHC-1, noe som vil utsette dem for lysis av CD8 T-celler og ikke-erstatning. Dyredata støtter viktigheten av antistoffmediert immunitet. I en studie har Konishi et. al. immuniserte mus med plasmid-DNA-er som koder for JEV-proteiner som induserer nøytraliserende antistoffresponser eller cytotoksiske T-lymfocyttresponser, og deretter utfordret med dødelige intraperitoneale doser av virus. De viste at nøytraliserende antistoff hindrer virusspredning fra det perifere stedet til hjernen, og at antistoffmedierte beskyttelsesmekanismer var mer effektive enn de cytotoksiske T-celleresponsene. Disse funnene støttet tidligere arbeid som viser at anti-kappeproteinantistoffer er den mest kritiske beskyttende komponenten i en JEV-utfordringsmodell, og nyere eksperimenter med passiv antistoffoverføring. In vitro-arbeid på mus viser en beskyttende rolle for IVIG gitt profylaktisk for å forhindre at flaviviruset forårsaker flått-encefalitt og en beskyttende effekt når det brukes som behandling. I arbeid av flere forskjellige grupper viste bruk av IVIG som inneholdt spesifikt anti-Vestnilvirus-antistoff i den viremiske fasen, før viruset kom inn i CNS, en dramatisk 100 % overlevelse. Tilsvarende arbeid med flåttbåren encefalitt hadde 100 % effekt på overlevelse. Det er nå gode data om at i dyremodeller av flavivirusencefalitt nøytraliserer perifer administrering av antistoff virus selv etter at det har kommet inn i sentralnervesystemet.
Kliniske data: På grunn av prekliniske data som støtter en rolle for antistoffbehandling ved flavivirusencefalitt, har antistoffbehandling (i form av IVIG) også blitt brukt på medfølende basis ved JE og West Nile-encefalitt. I tillegg blir IVIG for tiden undersøkt for West Nile-encefalitt i en National Institutes of Health (NIH) sponset randomisert placebokontrollert studie i USA (som Prof Solomon sitter i den vitenskapelige styringskomiteen for).
IVIG ble brukt i en 49 år gammel reisende som kom tilbake fra Vietnam som presenterte JE på et italiensk sykehus. IVIG har også blitt brukt til å behandle West Nile-virusinfeksjoner hos fem pasienter i Israel og tre i USA. IVIG ble også vurdert i en placebokontrollert studie for West Nile-virusinfeksjon i USA uten alvorlige bivirkninger av stoffet.
Begrunnelse for dose: Den mest brukte dosen av IVIG er 2 g/kg, enten gitt som en enkelt infusjon, eller delt på 400 mg/kg i fem dager. Ved Kawasaki sykdom tolereres 2 g/kg som en enkelt ti timers infusjon godt, og ble vist å være det mest effektive regimet. Ved Guillain-Barré syndrom hos barn og voksne gis legemidlet oftest over 5 dager, og dette er regimet som har blitt brukt hos pasienter med flavivirusencefalitt, og vil bli brukt i denne studien.
Legemiddel og intervensjon: Barn som oppfyller inngangskriteriene vil bli tilfeldig tildelt IVIG, (Reliance Biophamaceuticals Pvt. Ltd.) i en dose på 400 mg/kg/dag i 5 dager, eller et ekvivalent volum på 0,9 % normalt saltvann, ved bruk av en etablert teknikk for å gi væskebehandling på en dobbeltblind måte.
Legemiddelpresentasjon: Vi vil bruke Immunorel™ intravenøst immunglobulin, som produseres av Reliance Biophamaceuticals Pvt. Ltd., og produsert i Kina og er tilgjengelig gjennom Yetichem Pharmacy, Sundhara, Kathmandu og Shriran Pharmacy, Maharajgunj, Kathmandu. Dette er IVIG-produktet som for tiden brukes oftest i Nepal.
Som for de fleste andre deler av Asia, er seroprevalensen av JE i Kina høy. Ved 10 års alder har omtrent en tredjedel av barna nøytraliserende antistoffer mot JEV, og i voksen alder har majoriteten av befolkningen blitt eksponert. Det er omfattende data som viser at IVIG fra områder der flavivirus er endemiske inneholder betydelige mengder nøytraliserende antistoff. For eksempel inneholder IVIG fra Israel moderate til høye nivåer av nøytraliserende antistoff mot West Nile Virus. Selv om West Nile-viruset bare har sirkulert i USA i noen få år, er det funnet høye nivåer av nøytraliserende antistoffer i enkelte IVIG-partier.
Anti-JEV-nøytraliserende antistoff i IVIG fra Asia: Vi har nylig undersøkt de nøytraliserende antistofftitrene i en rekke IVIG-produkter fra India og Kina, ved å bruke plakkreduksjonsnøytraliseringsanalysen (PRNT)50. I denne studien fant vi at IVIG fra Storbritannia ikke inneholdt noe antistoff, og serum fra en laboratoriearbeider som var vaksinert mot JEV inneholdt en liten mengde nøytraliserende antistoff. I motsetning til dette hadde IVIG produsert av Bharrat, Hualan, Sichun og Reliance selskaper alle nøytraliserende antistofftitere på større enn 1 av 400, med Reliance som hadde den største titeren, nesten 1 av 750.
Immunorel™ er pakket i klare og fargeløse hetteglass og kommer i 2 pakningsstørrelser, som hver inneholder IVIG i en dose på 0,05 g/ml (dvs. 50 mg/ml). De tilgjengelige hetteglassene er 50 ml (inneholder 2,5 g) og 100 ml (5,0 g).
Barn vil dermed få 400 mg/kg/dag med IVIG som tilsvarer 8 ml/kg/dag med Immunorel™-løsning, eller 8 ml/kg/dag med 0,9 % vanlig saltvann.
Farmakokinetikk: Distribusjonsstudier er utført med en rekke IVIG-preparater. I en studie av pasienter som utviklet aseptisk meningitt (som en komplikasjon av infusjonen), etter å ha fått 2 g/kg intravenøst i 2 oppdelte doser, øker serumnivået fem ganger og synker deretter med 50 % i løpet av de neste 72 timene ettersom ekstravaskulær omfordeling tok til. plass. Etter 21-28 dager ble forbehandlingsnivåene nådd. Halveringstiden var 18-32 dager, og var lik naturlig immunglobulin. I løpet av de første 48 timene etter infusjonen økte CSF-konsentrasjonen 1,5 til 7 ganger, men returnerte til det normale innen en uke. CNS-penetrasjon kan forventes hos pasienter med viral meningoencefalitt eller til og med encefalomyelitt, da det vil være en nedbrytning av blod-hjerne-barrieren. Metabolisme av IVIG finner sted i cellene i retikuloendotelsystemet hvor immunglobuliner og immunglobulinkomplekser brytes ned.
Studier med Immunorel® hos normale forsøkspersoner viste at maksimale serumkonsentrasjoner oppstår umiddelbart etter intravenøs injeksjon, og er doserelatert. Innen 24 timer kan opptil 30 % av en dose fjernes ved katabolisme og distribusjon. Data vedrørende distribusjon tyder på at IVIg fordeler seg gjennom intravaskulære (60 %) og ekstravaskulære (40 %) rom. Serumhalveringstiden for immunglobulin varierer mellom 21 og 29 dager.
Reaksjon assosiert med intravenøst immunglobulin: Reaksjoner på intravenøst immunglobulin har en tendens til å være relatert til infusjonshastigheten og er mest sannsynlig i løpet av den første timen av infusjonen. Vi vil overvåke pasientens vitale tegn og generelle status regelmessig gjennom hele infusjonen. Reaksjonstypene som er rapportert inkluderer magesmerter, hodepine, tetthet i brystet, rødme eller blekhet i ansiktet, varme følelser, dyspné, ikke-urtikarielt hudutslett, kløe, hypotensjon, kvalme eller oppkast. Skulle noen av disse reaksjonene utvikle seg under infusjon av IVIG, vil infusjonen stoppes midlertidig inntil pasienten forbedrer seg klinisk (5 til 10 minutter) og deretter gjenopptas forsiktig med en lavere hastighet. Noen pasienter kan utvikle forsinkede bivirkninger på IVIG som kvalme, oppkast, brystsmerter, rigor, svimmelhet eller verkende ben. Disse bivirkningene oppstår etter at infusjonen har stoppet, men vanligvis innen 24 timer. Ekte overfølsomhetsreaksjoner mot IVIG som urticaria, angioødem, bronkospasme eller hypotensjon forekommer svært sjelden. Skulle det utvikles en anafylaktisk reaksjon etter IVIG, vil infusjonen stoppes og behandling igangsettes med adrenalin, oksygen, antihistamin og steroider. Hemolytisk anemi og nøytropeni er rapportert i sjeldne tilfeller i forbindelse med IVIG-behandling. Milde og moderate økninger av serumtransaminaser (AST, ALAT, gamma GT) er observert hos et lite antall pasienter gitt IVIG. Slike endringer var forbigående og ikke assosiert med overføring av hepatitt. Sjeldne komplikasjoner et aseptisk meningittsyndrom (AMS), tromboflebitt, nyresvikt og akutt nyresvikt har forekommet hos pasienter som får IVIG. Lever- og nyrefunksjonen vil bli overvåket under studien.
Reaksjoner assosiert med Immunorel™:
Jeg. Primær immunsvikt: Hos pasienter med immunsviktsyndrom som får IVIG i en månedlig dose på 400 mg/kg kroppsvekt, har de rapporterte reaksjonene vært ubehag, følelse av besvimelse, feber, frysninger, hodepine, kvalme, oppkast, tetthet i brystet, dyspné og bryst. , rygg- eller hoftesmerter. Mildt erytem på infusjonsstedet er også rapportert i noen tilfeller.
ii. Idiopatisk trombocytopenisk purpura (ITP): Ved behandling av voksne og pediatriske pasienter med ITP i en dose på 400 mg/kg kroppsvekt ble de systemiske reaksjonene kun observert hos mindre enn 3 % av pasientene. De andre symptomene som alle var milde og forbigående inkluderer tetthet i brystet, en følelse av takykardi og en brennende følelse i hodet. Ved en dose på 1000 mg/kg kroppsvekt enten som en enkeltdose eller som to doser på påfølgende dager ved behandling av voksne og pediatriske pasienter med ITP. Bivirkninger er kun observert hos mindre enn 10 % av pasientene.
iii. Benmargstransplantasjon: Ved en dose på 500 mg/kg kroppsvekt 7 dager og to dager før transplantasjon og ukentlig til og med dag 90 etter transplantasjon, ble bivirkninger rapportert hos mindre enn 7 % av pasientene. Alle reaksjoner ble klassifisert som milde som inkluderer hodepine, rødme, feber og lett ubehag i ryggen.
iv. Nyre: Økning i kreatinin og blodureanitrogen (BUN) kan sees så snart som én til to dager etter en infusjon. Progresjon til oliguri eller anuri kan kreve dialyse. Alvorlige sporadiske bivirkninger er rapportert etter IVIG-behandling inkluderer: akutt nyresvikt, akutt tubulær nekrose, proksimal tubulær nefropati og osmotisk nefrose. Korrigering av volumdepletering ved å bruke passende væsker før oppstart av IVIG-behandling er derfor viktig. Måling av blodureanitrogen (BUN) og/eller serumkreatinin bør utføres før initial infusjon av IVIG og igjen med passende intervaller etterpå, med overvåking av urinproduksjon.
iv. Generelt: Reaksjoner på IVIG er relatert til infusjonshastigheten. Svært sjelden kan anafylaktoide reaksjoner forekomme hos pasienter som ikke tidligere har hatt alvorlige allergiske reaksjoner overfor enten intramuskulært eller intravenøst immunglobulin.
Mutagenisitet, karsinogenitet og svekkelse av fertilitet: Reproduksjonsstudier på dyr har ikke blitt utført med Gamma IV™. Det er derfor ikke kjent om IVIG kan forårsake fosterskader når det administreres til gravide eller kan påvirke reproduksjonskapasiteten.
Interaksjoner med andre legemidler: Interaksjonen mellom IVIG og andre legemidler har ikke blitt fastslått i passende studier. Passivt ervervet antistoff kan forstyrre responsen på levende, svekkede vaksiner. Derfor kan administrering av slike vaksiner, f.eks. poliomyelitt eller meslinger, vil bli utsatt til ca. seks måneder etter IVIG-infusjon. På samme måte bør immunglobuliner ikke administreres i minst to uker etter at en vaksine er gitt.
Kontraindikasjoner: IVIG er kontraindisert hos personer som er kjent for å ha en anafylaktisk eller alvorlig systemisk respons på immunglobulin (menneske). Personer med selektive lgA-mangler bør ikke motta Gamma IV™, siden disse individene kan oppleve serverreaksjoner på lgA som kan være tilstede.
Sikkerhetsadvarsler: Produktet bør ikke brukes hvis det er grumset. Løsninger som har vært frosset skal ikke brukes. Etter åpning, selv om de kun er delvis brukt, skal hetteglass kastes. IVIG skal kun administreres intravenøst da intramuskulær og subkutan vei ikke er evaluert.
Dosering og administrering: Generelt anbefales det at IVIG administreres alene med en starthastighet på 0,01 til 0,02 ml/kg kroppsvekt/minutt i 30 minutter, hvis det tolereres godt, kan hastigheten økes gradvis til maksimalt 0,08 ml/ kg kroppsvekt/minutt. IVIG anbefales å gis av en separat linje for seg selv uten å blandes med andre intravenøse væsker eller medisiner pasientene kan få. IVIG er ikke kompatibel med saltvann. Fortynningen om nødvendig, IVIG kan fortynnes med 5 % dekstrose i vann.
Studietype
Registrering (Faktiske)
Fase
- Fase 2
Kontakter og plasseringer
Studiesteder
-
-
Bagmati
-
Kathmandu, Bagmati, Nepal, 44616
- Kanti Children's Hospital
-
-
Koshi
-
Dharan, Koshi, Nepal
- BP Koirala Institute of Health Sciences
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Kjønn som er kvalifisert for studier
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
- Barn mellom 1 og 14 år som hadde klinisk diagnostisert encefalitt på grunnlag av feber som varte i mindre enn 14 dager, endret bevissthet med eller uten en historie med nye anfall med CSF-funn av hvite blodlegemer mindre enn 1000 celler/mm3 uten organismer på Gram-farging og en CSF: plasmaglukoseforhold > 40 % innlagt ved Kanti Children's Hospital og BP Koirala Institute of Health Sciences, Nepal.
Ekskluderingskriterier:
Aseksuelle Plasmodium falciparum-parasitter i blod
- Koma virker sekundært til andre systemiske tilstander, f.eks. leversvikt, hjertesvikt, toksiner.
- Pasienter som har dokumentert antibiotikabehandling før innleggelse og hvor delvis behandlet bakteriell meningitt forekommer mer sannsynlig enn encefalitt
- Barn med enkle feberkramper, definert som et enkelt anfall som varer mindre enn 15 minutter etterfulgt av full bevissthet innen 60 minutter.
- Gravide eller ammende kvinner
- Barn med GCS på 3/15, som fikk kunstig ventilasjon uten tegn til spontan respirasjon, og med fraværende okulocefal refleks.
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: Behandling
- Tildeling: Randomisert
- Intervensjonsmodell: Parallell tildeling
- Masking: Trippel
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Placebo komparator: IVIG i JE (JE-positiv)
Vi fordelte pasienter tilfeldig til behandling med IVIG eller placebo.
Barn fikk enten saltvann eller intravenøst immunglobulin (IVIG) [ImmunoRel™ (batch 20081217)] i en dose på 400 mg/kg/dag i 5 dager eller et ekvivalent volum på 0,9 % normalt saltvann gitt intravenøst med en hastighet på 0,01 til 0,02 ml/ kg kroppsvekt/minutt.
Alle etterforskere, omsorgspersoner og deltakere ble blindet for studiemedisinen.
En annen forseglet konvolutt ble oppbevart med pasientens notater i tilfelle en lege akutt trengte å vite hvilket medikament en pasient hadde mottatt.
|
IVIG-gruppen fikk 400 mg/kg/dag intravenøst med en hastighet på 0,01 til 0,02 ml/kg kroppsvekt/minutt i 5 dager eller forekomst av bivirkninger eller uønskede hendelser. Placebogruppen fikk 0,9 % saltvann intravenøst med tilsvarende hastighet. |
|
Placebo komparator: IVIG i ikke-JE(JE-negativ)
Vi fordelte pasienter tilfeldig til behandling med IVIG eller placebo.
Barn fikk enten saltvann eller intravenøst immunglobulin (IVIG) [ImmunoRel™ (batch 20081217)] i en dose på 400 mg/kg/dag i 5 dager eller et ekvivalent volum på 0,9 % normalt saltvann gitt intravenøst med en hastighet på 0,01 til 0,02 ml/ kg kroppsvekt/minutt.
Alle etterforskere, omsorgspersoner og deltakere ble blindet for studiemedisinen.
En annen forseglet konvolutt ble oppbevart med pasientens notater i tilfelle en lege akutt trengte å vite hvilket medikament en pasient hadde mottatt.
|
IVIG-gruppen fikk 400 mg/kg/dag intravenøst med en hastighet på 0,01 til 0,02 ml/kg kroppsvekt/minutt i 5 dager eller forekomst av bivirkninger eller uønskede hendelser. Placebogruppen fikk 0,9 % saltvann intravenøst med tilsvarende hastighet. |
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Bevis på bivirkninger av studiemedisin som reaksjon på infusjonsstedet, diaré, økning i blodtrykk og endring i urinproduksjon
Tidsramme: Hver 12. time etter administrering av studiemedikamentet frem til utskrivning, som er gjennomsnittlig åttende dag (192 timer) med sykehusinnleggelse
|
Pasienter vil bli overvåket for bivirkninger som reaksjoner på infusjonsstedet, diaré, blodtrykksøkning (i mm Hg) og endring i urinproduksjon (i ml/kg/time) hver 12. time fra første dag med behandlingsstart til død eller utflod.
Pasienten får i gjennomsnitt studiemedisinen den første dagen av innleggelsen.
Studiemedisinen administreres daglig i 5 dager.
Pasienter skrives ut i gjennomsnitt på den åttende dagen (192 timer) ved sykehusinnleggelse.
|
Hver 12. time etter administrering av studiemedikamentet frem til utskrivning, som er gjennomsnittlig åttende dag (192 timer) med sykehusinnleggelse
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Dødsfall eller nevrologiske følgetilstander
Tidsramme: Ved utskrivning, forventet gjennomsnittlig åttende dag innleggelse og igjen 6 måneder etter utskrivning
|
Ved utskrivningstidspunktet (forventet gjennomsnitt på åttende dag innleggelse) eller død: Tid til død, for å komme seg fra koma, for å sitte selvstendig, for å stå selvstendig, for å gå minst 5 m selvstendig og for å forlate sykehus. 6 måneder etter utskrivning: historie med ytterligere anfall, atferdsendringer, tegn på gjenoppretting av nevrologiske følgetilstander som vurdering av evnen til å sitte selvstendig, stå selvstendig, gå minst 5 meter uavhengig. |
Ved utskrivning, forventet gjennomsnittlig åttende dag innleggelse og igjen 6 måneder etter utskrivning
|
Andre resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Serum JEV PRNT50 nivå (immunologisk markør)
Tidsramme: Målt ved 3 tidspunkter: forbehandling (rett før første dose av studiemedisin på første dag), midt i behandling (like før fjerde dose på fjerde dag) og etterbehandling (en time etter femte dose på femte dag).
|
Forbehandling var rett før den første dosen av studiemedikamentet på den første dagen, midt i behandlingen var rett før den 4. dosen og etterbehandlingen var 1 time etter administrering av den femte dosen av studiemedikamentet.
|
Målt ved 3 tidspunkter: forbehandling (rett før første dose av studiemedisin på første dag), midt i behandling (like før fjerde dose på fjerde dag) og etterbehandling (en time etter femte dose på femte dag).
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Sponsor
Etterforskere
- Studiestol: Tom Solomon, MRCP, PhD, Director,Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK , Head- Liverpool Brain Infection Group
- Hovedetterforsker: Ajit Rayamajhi, MBBS, MD, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Liverpool, UK & Kanti Children's Hospital, Maharajgunj, Kathmandu, Nepal
- Studieleder: Sam Nightingale, MRCP, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Gainsborough M, Vaughn DW, Khanh VT. Japanese encephalitis. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2000 Apr;68(4):405-15. doi: 10.1136/jnnp.68.4.405. No abstract available.
- Tsai TF. New initiatives for the control of Japanese encephalitis by vaccination: minutes of a WHO/CVI meeting, Bangkok, Thailand, 13-15 October 1998. Vaccine. 2000 May 26;18 Suppl 2:1-25. doi: 10.1016/s0264-410x(00)00037-2.
- Innis BL. Japanese encephalitis. In: Porterfield JS, editor. Exotic Viral Infections. London: Chapman & Hall; 1995. p. 147-74.
- Sumiyoshi H, Mori C, Fuke I, Morita K, Kuhara S, Kondou J, Kikuchi Y, Nagamatu H, Igarashi A. Complete nucleotide sequence of the Japanese encephalitis virus genome RNA. Virology. 1987 Dec;161(2):497-510. doi: 10.1016/0042-6822(87)90144-9.
- Chambers TJ, Hahn CS, Galler R, Rice CM. Flavivirus genome organization, expression, and replication. Annu Rev Microbiol. 1990;44:649-88. doi: 10.1146/annurev.mi.44.100190.003245. No abstract available.
- Gajanana A, Thenmozhi V, Samuel PP, Reuben R. A community-based study of subclinical flavivirus infections in children in an area of Tamil Nadu, India, where Japanese encephalitis is endemic. Bull World Health Organ. 1995;73(2):237-44.
- HALSTEAD SB, GROSZ CR. Subclinical Japanese encephalitis. I. Infection of Americans with limited residence in Korea. Am J Hyg. 1962 Mar;75:190-201. No abstract available.
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Thao le TT, Gainsborough M, Nisalak A, Day NP, Kirkham FJ, Vaughn DW, Smith S, White NJ. Seizures and raised intracranial pressure in Vietnamese patients with Japanese encephalitis. Brain. 2002 May;125(Pt 5):1084-93. doi: 10.1093/brain/awf116.
- Solomon T, Kneen R, Dung NM, Khanh VC, Thuy TT, Ha DQ, Day NP, Nisalak A, Vaughn DW, White NJ. Poliomyelitis-like illness due to Japanese encephalitis virus. Lancet. 1998 Apr 11;351(9109):1094-7. doi: 10.1016/S0140-6736(97)07509-0.
- Chen WR, Tesh RB, Rico-Hesse R. Genetic variation of Japanese encephalitis virus in nature. J Gen Virol. 1990 Dec;71 ( Pt 12):2915-22. doi: 10.1099/0022-1317-71-12-2915.
- Chen WR, Rico-Hesse R, Tesh RB. A new genotype of Japanese encephalitis virus from Indonesia. Am J Trop Med Hyg. 1992 Jul;47(1):61-9. doi: 10.4269/ajtmh.1992.47.61.
- Gould EA. Evolution of the Japanese encephalitis serocomplex viruses. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:391-404. Review.
- Solomon T, Ni H, Beasley DW, Ekkelenkamp M, Cardosa MJ, Barrett AD. Origin and evolution of Japanese encephalitis virus in southeast Asia. J Virol. 2003 Mar;77(5):3091-8. doi: 10.1128/jvi.77.5.3091-3098.2003.
- Shope RE. Concepts of control of Japanese encephalitis and dengue. Southeast Asian J Trop Med Public Health. 1997;28 Suppl 2:131-4.
- Solomon T. Vaccines against Japanese encephalitis. In: Jong EC, Zuckerman JN, editors. Travelers' vaccines. Ontario, Canada: B.C. Decker; 2004. p. 219-56.
- Monath TP. Japanese encephalitis vaccines: current vaccines and future prospects. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:105-38. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_6.
- Bista MB, Banerjee MK, Shin SH, Tandan JB, Kim MH, Sohn YM, Ohrr HC, Tang JL, Halstead SB. Efficacy of single-dose SA 14-14-2 vaccine against Japanese encephalitis: a case control study. Lancet. 2001 Sep 8;358(9284):791-5. doi: 10.1016/s0140-6736(01)05967-0.
- Solomon T, Dung NM, Wills B, Kneen R, Gainsborough M, Diet TV, Thuy TT, Loan HT, Khanh VC, Vaughn DW, White NJ, Farrar JJ. Interferon alfa-2a in Japanese encephalitis: a randomised double-blind placebo-controlled trial. Lancet. 2003 Mar 8;361(9360):821-6. doi: 10.1016/s0140-6736(03)12709-2.
- Griffin DE. Immune responses to RNA-virus infections of the CNS. Nat Rev Immunol. 2003 Jun;3(6):493-502. doi: 10.1038/nri1105.
- Irani DN. Central nervous system inflammation: can't live with it, can't live without it. Curr Opin Neurol. 2001 Jun;14(3):347-8. doi: 10.1097/00019052-200106000-00013. No abstract available.
- Kimura T, Griffin DE. Extensive immune-mediated hippocampal damage in mice surviving infection with neuroadapted Sindbis virus. Virology. 2003 Jun 20;311(1):28-39. doi: 10.1016/s0042-6822(03)00110-7.
- Hoke CH Jr, Vaughn DW, Nisalak A, Intralawan P, Poolsuppasit S, Jongsawas V, Titsyakorn U, Johnson RT. Effect of high-dose dexamethasone on the outcome of acute encephalitis due to Japanese encephalitis virus. J Infect Dis. 1992 Apr;165(4):631-7. doi: 10.1093/infdis/165.4.631.
- Caramello P, Canta F, Balbiano R, Lipani F, Ariaudo S, De Agostini M, Calleri G, Boglione L, Di Caro A. Role of intravenous immunoglobulin administration in Japanese encephalitis. Clin Infect Dis. 2006 Dec 15;43(12):1620-1. doi: 10.1086/509644. No abstract available.
- Agrawal AG, Petersen LR. Human immunoglobulin as a treatment for West Nile virus infection. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):1-4. doi: 10.1086/376871. Epub 2003 Jun 23. No abstract available.
- Burke DS, Lorsomrudee W, Leake CJ, Hoke CH, Nisalak A, Chongswasdi V, Laorakpongse T. Fatal outcome in Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1985 Nov;34(6):1203-10. doi: 10.4269/ajtmh.1985.34.1203.
- Solomon T, Thao LT, Dung NM, Kneen R, Hung NT, Nisalak A, Vaughn DW, Farrar J, Hien TT, White NJ, Cardosa MJ. Rapid diagnosis of Japanese encephalitis by using an immunoglobulin M dot enzyme immunoassay. J Clin Microbiol. 1998 Jul;36(7):2030-4. doi: 10.1128/JCM.36.7.2030-2034.1998.
- Solomon T, Vaughn DW. Pathogenesis and clinical features of Japanese encephalitis and West Nile virus infections. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:171-94. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_9. No abstract available.
- Burke DS, Nisalak A, Lorsomrudee W, Ussery MA, Laorpongse T. Virus-specific antibody-producing cells in blood and cerebrospinal fluid in acute Japanese encephalitis. J Med Virol. 1985 Nov;17(3):283-92. doi: 10.1002/jmv.1890170310.
- Desai A, Shankar SK, Ravi V, Chandramuki A, Gourie-Devi M. Japanese encephalitis virus antigen in the human brain and its topographic distribution. Acta Neuropathol. 1995;89(4):368-73. doi: 10.1007/BF00309631.
- Shankar SK, Rao TV, Mruthyunjayanna BP, Gourie Devi M, Deshpande DH. Autopsy study of brains during an epidemic of Japanese encephalitis in Karnataka. Indian J Med Res. 1983 Sep;78:431-40. No abstract available.
- Li ZS, Hong SF, Gong NL. Immunohistochemical study on Japanese B encephalitis. Chin Med J (Engl). 1988 Oct;101(10):768-71. No abstract available.
- Johnson RT, Burke DS, Elwell M, Leake CJ, Nisalak A, Hoke CH, Lorsomrudee W. Japanese encephalitis: immunocytochemical studies of viral antigen and inflammatory cells in fatal cases. Ann Neurol. 1985 Nov;18(5):567-73. doi: 10.1002/ana.410180510.
- MIYAKE M. THE PATHOLOGY OF JAPANESE ENCEPHALITIS. A REVIEW. Bull World Health Organ. 1964;30(2):153-60.
- Solomon T. Flavivirus encephalitis. N Engl J Med. 2004 Jul 22;351(4):370-8. doi: 10.1056/NEJMra030476. No abstract available.
- McMinn PC. The molecular basis of virulence of the encephalitogenic flaviviruses. J Gen Virol. 1997 Nov;78 ( Pt 11):2711-22. doi: 10.1099/0022-1317-78-11-2711. No abstract available.
- Doherty PC, Zinkernagel RM. T-cell-mediated immunopathology in viral infections. Transplant Rev. 1974;19(0):89-120. doi: 10.1111/j.1600-065x.1974.tb00129.x. No abstract available.
- Rowell JF, Griffin DE. Contribution of T cells to mortality in neurovirulent Sindbis virus encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 2002 Jun;127(1-2):106-14. doi: 10.1016/s0165-5728(02)00108-x.
- Atrasheuskaya A, Petzelbauer P, Fredeking TM, Ignatyev G. Anti-TNF antibody treatment reduces mortality in experimental dengue virus infection. FEMS Immunol Med Microbiol. 2003 Jan 21;35(1):33-42. doi: 10.1111/j.1574-695X.2003.tb00646.x.
- Liu T, Chambers TJ. Yellow fever virus encephalitis: properties of the brain-associated T-cell response during virus clearance in normal and gamma interferon-deficient mice and requirement for CD4+ lymphocytes. J Virol. 2001 Mar;75(5):2107-18. doi: 10.1128/JVI.75.5.2107-2118.2001.
- Wang Y, Lobigs M, Lee E, Mullbacher A. CD8+ T cells mediate recovery and immunopathology in West Nile virus encephalitis. J Virol. 2003 Dec;77(24):13323-34. doi: 10.1128/jvi.77.24.13323-13334.2003.
- Wang T, Town T, Alexopoulou L, Anderson JF, Fikrig E, Flavell RA. Toll-like receptor 3 mediates West Nile virus entry into the brain causing lethal encephalitis. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1366-73. doi: 10.1038/nm1140. Epub 2004 Nov 21.
- Diamond MS, Klein RS. West Nile virus: crossing the blood-brain barrier. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1294-5. doi: 10.1038/nm1204-1294. No abstract available.
- Chambers TJ, Diamond MS. Pathogenesis of flavivirus encephalitis. Adv Virus Res. 2003;60:273-342. doi: 10.1016/s0065-3527(03)60008-4.
- Myint KS, Gibbons RV, Perng GC, Solomon T. Unravelling the neuropathogenesis of Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2007 Oct;101(10):955-6. doi: 10.1016/j.trstmh.2007.04.004. Epub 2007 Jun 4.
- Glass WG, McDermott DH, Lim JK, Lekhong S, Yu SF, Frank WA, Pape J, Cheshier RC, Murphy PM. CCR5 deficiency increases risk of symptomatic West Nile virus infection. J Exp Med. 2006 Jan 23;203(1):35-40. doi: 10.1084/jem.20051970. Epub 2006 Jan 17.
- Glass WG, Lim JK, Cholera R, Pletnev AG, Gao JL, Murphy PM. Chemokine receptor CCR5 promotes leukocyte trafficking to the brain and survival in West Nile virus infection. J Exp Med. 2005 Oct 17;202(8):1087-98. doi: 10.1084/jem.20042530.
- Bhowmick S, Duseja R, Das S, Appaiahgiri MB, Vrati S, Basu A. Induction of IP-10 (CXCL10) in astrocytes following Japanese encephalitis. Neurosci Lett. 2007 Feb 27;414(1):45-50. doi: 10.1016/j.neulet.2006.11.070. Epub 2007 Jan 8.
- Ghoshal A, Das S, Ghosh S, Mishra MK, Sharma V, Koli P, Sen E, Basu A. Proinflammatory mediators released by activated microglia induces neuronal death in Japanese encephalitis. Glia. 2007 Apr 1;55(5):483-96. doi: 10.1002/glia.20474.
- Li Y, Fu L, Gonzales DM, Lavi E. Coronavirus neurovirulence correlates with the ability of the virus to induce proinflammatory cytokine signals from astrocytes and microglia. J Virol. 2004 Apr;78(7):3398-406. doi: 10.1128/jvi.78.7.3398-3406.2004.
- Allan SM, Rothwell NJ. Inflammation in central nervous system injury. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2003 Oct 29;358(1438):1669-77. doi: 10.1098/rstb.2003.1358.
- Van Wagoner NJ, Benveniste EN. Interleukin-6 expression and regulation in astrocytes. J Neuroimmunol. 1999 Dec;100(1-2):124-39. doi: 10.1016/s0165-5728(99)00187-3.
- Frei K, Malipiero UV, Leist TP, Zinkernagel RM, Schwab ME, Fontana A. On the cellular source and function of interleukin 6 produced in the central nervous system in viral diseases. Eur J Immunol. 1989 Apr;19(4):689-94. doi: 10.1002/eji.1830190418.
- Morris MM, Dyson H, Baker D, Harbige LS, Fazakerley JK, Amor S. Characterization of the cellular and cytokine response in the central nervous system following Semliki Forest virus infection. J Neuroimmunol. 1997 Apr;74(1-2):185-97. doi: 10.1016/s0165-5728(96)00786-2.
- Brett FM, Mizisin AP, Powell HC, Campbell IL. Evolution of neuropathologic abnormalities associated with blood-brain barrier breakdown in transgenic mice expressing interleukin-6 in astrocytes. J Neuropathol Exp Neurol. 1995 Nov;54(6):766-75. doi: 10.1097/00005072-199511000-00003.
- Paul R, Koedel U, Winkler F, Kieseier BC, Fontana A, Kopf M, Hartung HP, Pfister HW. Lack of IL-6 augments inflammatory response but decreases vascular permeability in bacterial meningitis. Brain. 2003 Aug;126(Pt 8):1873-82. doi: 10.1093/brain/awg171. Epub 2003 Jun 23.
- Abraham CS, Deli MA, Joo F, Megyeri P, Torpier G. Intracarotid tumor necrosis factor-alpha administration increases the blood-brain barrier permeability in cerebral cortex of the newborn pig: quantitative aspects of double-labelling studies and confocal laser scanning analysis. Neurosci Lett. 1996 Apr 19;208(2):85-8. doi: 10.1016/0304-3940(96)12546-5.
- Munoz-Fernandez MA, Fresno M. The role of tumour necrosis factor, interleukin 6, interferon-gamma and inducible nitric oxide synthase in the development and pathology of the nervous system. Prog Neurobiol. 1998 Oct;56(3):307-40. doi: 10.1016/s0301-0082(98)00045-8.
- Griffin DE, Hardwick JM. Perspective: virus infections and the death of neurons. Trends Microbiol. 1999 Apr;7(4):155-60. doi: 10.1016/s0966-842x(99)01470-5.
- Winter PM, Dung NM, Loan HT, Kneen R, Wills B, Thu le T, House D, White NJ, Farrar JJ, Hart CA, Solomon T. Proinflammatory cytokines and chemokines in humans with Japanese encephalitis. J Infect Dis. 2004 Nov 1;190(9):1618-26. doi: 10.1086/423328. Epub 2004 Sep 29.
- Solomon T, Dung NM, Vaughn DW, Kneen R, Thao LT, Raengsakulrach B, Loan HT, Day NP, Farrar J, Myint KS, Warrell MJ, James WS, Nisalak A, White NJ. Neurological manifestations of dengue infection. Lancet. 2000 Mar 25;355(9209):1053-9. doi: 10.1016/S0140-6736(00)02036-5.
- Leis AA, Stokic DS, Polk JL, Dostrow V, Winkelmann M. A poliomyelitis-like syndrome from West Nile virus infection. N Engl J Med. 2002 Oct 17;347(16):1279-80. doi: 10.1056/NEJM2002c021587. Epub 2002 Sep 23. No abstract available.
- Solomon T, Winter PM. Neurovirulence and host factors in flavivirus encephalitis--evidence from clinical epidemiology. Arch Virol Suppl. 2004;(18):161-70. doi: 10.1007/978-3-7091-0572-6_14.
- German AC, Myint KS, Mai NT, Pomeroy I, Phu NH, Tzartos J, Winter P, Collett J, Farrar J, Barrett A, Kipar A, Esiri MM, Solomon T. A preliminary neuropathological study of Japanese encephalitis in humans and a mouse model. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2006 Dec;100(12):1135-45. doi: 10.1016/j.trstmh.2006.02.008. Epub 2006 Jun 30.
- Ravi V, Parida S, Desai A, Chandramuki A, Gourie-Devi M, Grau GE. Correlation of tumor necrosis factor levels in the serum and cerebrospinal fluid with clinical outcome in Japanese encephalitis patients. J Med Virol. 1997 Feb;51(2):132-6.
- Singh A, Kulshreshtha R, Mathur A. Secretion of the chemokine interleukin-8 during Japanese encephalitis virus infection. J Med Microbiol. 2000 Jul;49(7):607-612. doi: 10.1099/0022-1317-49-7-607.
- Iwamoto M, Jernigan DB, Guasch A, Trepka MJ, Blackmore CG, Hellinger WC, Pham SM, Zaki S, Lanciotti RS, Lance-Parker SE, DiazGranados CA, Winquist AG, Perlino CA, Wiersma S, Hillyer KL, Goodman JL, Marfin AA, Chamberland ME, Petersen LR; West Nile Virus in Transplant Recipients Investigation Team. Transmission of West Nile virus from an organ donor to four transplant recipients. N Engl J Med. 2003 May 29;348(22):2196-203. doi: 10.1056/NEJMoa022987.
- Chabas D, Baranzini SE, Mitchell D, Bernard CC, Rittling SR, Denhardt DT, Sobel RA, Lock C, Karpuj M, Pedotti R, Heller R, Oksenberg JR, Steinman L. The influence of the proinflammatory cytokine, osteopontin, on autoimmune demyelinating disease. Science. 2001 Nov 23;294(5547):1731-5. doi: 10.1126/science.1062960.
- Lock C, Hermans G, Pedotti R, Brendolan A, Schadt E, Garren H, Langer-Gould A, Strober S, Cannella B, Allard J, Klonowski P, Austin A, Lad N, Kaminski N, Galli SJ, Oksenberg JR, Raine CS, Heller R, Steinman L. Gene-microarray analysis of multiple sclerosis lesions yields new targets validated in autoimmune encephalomyelitis. Nat Med. 2002 May;8(5):500-8. doi: 10.1038/nm0502-500.
- Solomon T. Japanese encephalitis: Clinical features & pathogenesis. 55th Annual Meeting of the American Society of Tropical Medicine and Hygiene; 2006; Atlanta, Georgia; 2006.
- Edelman R, Schneider RJ, Vejjajiva A, Pornpibul R, Voodhikul P. Persistence of virus-specific IgM and clinical recovery after Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1976 Sep;25(5):733-8. doi: 10.4269/ajtmh.1976.25.733.
- Burke DS, Nisalak A, Ussery MA, Laorakpongse T, Chantavibul S. Kinetics of IgM and IgG responses to Japanese encephalitis virus in human serum and cerebrospinal fluid. J Infect Dis. 1985 Jun;151(6):1093-9. doi: 10.1093/infdis/151.6.1093.
- Kumar R, Mathur A, Kumar A, Sharma S, Chakraborty S, Chaturvedi UC. Clinical features & prognostic indicators of Japanese encephalitis in children in Lucknow (India). Indian J Med Res. 1990 Sep;91:321-7.
- Libraty DH, Nisalak A, Endy TP, Suntayakorn S, Vaughn DW, Innis BL. Clinical and immunological risk factors for severe disease in Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2002 Mar-Apr;96(2):173-8. doi: 10.1016/s0035-9203(02)90294-4.
- Bista MB, Shrestha JM. Epidemiological situation of Japanese encephalitis in Nepal. JNMA J Nepal Med Assoc. 2005 Apr-Jun;44(158):51-6.
- Rayamajhi A, Singh R, Prasad R, Khanal B, Singhi S. Clinico-laboratory profile and outcome of Japanese encephalitis in Nepali children. Ann Trop Paediatr. 2006 Dec;26(4):293-301. doi: 10.1179/146532806X152818.
- Tandan JB, Ohrr H, Sohn YM, Yoksan S, Ji M, Nam CM, Halstead SB. Single dose of SA 14-14-2 vaccine provides long-term protection against Japanese encephalitis: a case-control study in Nepalese children 5 years after immunization. drjbtandan@yahoo.com. Vaccine. 2007 Jun 28;25(27):5041-5. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.04.052. Epub 2007 May 8.
- Pant GR. A serological survey of pigs, horses, and ducks in Nepal for evidence of infection with Japanese encephalitis virus. Ann N Y Acad Sci. 2006 Oct;1081:124-9. doi: 10.1196/annals.1373.013.
- Leung DY, Burns JC, Newburger JW, Geha RS. Reversal of lymphocyte activation in vivo in the Kawasaki syndrome by intravenous gammaglobulin. J Clin Invest. 1987 Feb;79(2):468-72. doi: 10.1172/JCI112835.
- Clarkson SB, Bussel JB, Kimberly RP, Valinsky JE, Nachman RL, Unkeless JC. Treatment of refractory immune thrombocytopenic purpura with an anti-Fc gamma-receptor antibody. N Engl J Med. 1986 May 8;314(19):1236-9. doi: 10.1056/NEJM198605083141907. No abstract available.
- Buchwald B, Ahangari R, Weishaupt A, Toyka KV. Intravenous immunoglobulins neutralize blocking antibodies in Guillain-Barre syndrome. Ann Neurol. 2002 Jun;51(6):673-80. doi: 10.1002/ana.10205.
- Quartier P, Foray S, Casanova JL, Hau-Rainsard I, Blanche S, Fischer A. Enteroviral meningoencephalitis in X-linked agammaglobulinemia: intensive immunoglobulin therapy and sequential viral detection in cerebrospinal fluid by polymerase chain reaction. Pediatr Infect Dis J. 2000 Nov;19(11):1106-8. doi: 10.1097/00006454-200011000-00020. No abstract available.
- Spector SA, Gelber RD, McGrath N, Wara D, Barzilai A, Abrams E, Bryson YJ, Dankner WM, Livingston RA, Connor EM. A controlled trial of intravenous immune globulin for the prevention of serious bacterial infections in children receiving zidovudine for advanced human immunodeficiency virus infection. Pediatric AIDS Clinical Trials Group. N Engl J Med. 1994 Nov 3;331(18):1181-7. doi: 10.1056/NEJM199411033311802.
- Rodriguez WJ, Gruber WC, Welliver RC, Groothuis JR, Simoes EA, Meissner HC, Hemming VG, Hall CB, Lepow ML, Rosas AJ, Robertsen C, Kramer AA. Respiratory syncytial virus (RSV) immune globulin intravenous therapy for RSV lower respiratory tract infection in infants and young children at high risk for severe RSV infections: Respiratory Syncytial Virus Immune Globulin Study Group. Pediatrics. 1997 Mar;99(3):454-61. doi: 10.1542/peds.99.3.454.
- Keller MA, Stiehm ER. Passive immunity in prevention and treatment of infectious diseases. Clin Microbiol Rev. 2000 Oct;13(4):602-14. doi: 10.1128/CMR.13.4.602.
- Levine B, Hardwick JM, Trapp BD, Crawford TO, Bollinger RC, Griffin DE. Antibody-mediated clearance of alphavirus infection from neurons. Science. 1991 Nov 8;254(5033):856-60. doi: 10.1126/science.1658936.
- Griffin DE, Ubol S, Despres P, Kimura T, Byrnes A. Role of antibodies in controlling alphavirus infection of neurons. Curr Top Microbiol Immunol. 2001;260:191-200. doi: 10.1007/978-3-662-05783-4_10. No abstract available.
- Murali-Krishna K, Ravi V, Manjunath R. Protection of adult but not newborn mice against lethal intracerebral challenge with Japanese encephalitis virus by adoptively transferred virus-specific cytotoxic T lymphocytes: requirement for L3T4+ T cells. J Gen Virol. 1996 Apr;77 ( Pt 4):705-14. doi: 10.1099/0022-1317-77-4-705.
- Pan CH, Chen HW, Huang HW, Tao MH. Protective mechanisms induced by a Japanese encephalitis virus DNA vaccine: requirement for antibody but not CD8(+) cytotoxic T-cell responses. J Virol. 2001 Dec;75(23):11457-63. doi: 10.1128/JVI.75.23.11457-11463.2001.
- Beasley DW, Li L, Suderman MT, Guirakhoo F, Trent DW, Monath TP, Shope RE, Barrett AD. Protection against Japanese encephalitis virus strains representing four genotypes by passive transfer of sera raised against ChimeriVax-JE experimental vaccine. Vaccine. 2004 Sep 9;22(27-28):3722-6. doi: 10.1016/j.vaccine.2004.03.027.
- Konishi E, Ajiro N, Nukuzuma C, Mason PW, Kurane I. Comparison of protective efficacies of plasmid DNAs encoding Japanese encephalitis virus proteins that induce neutralizing antibody or cytotoxic T lymphocytes in mice. Vaccine. 2003 Sep 8;21(25-26):3675-83. doi: 10.1016/s0264-410x(03)00382-7.
- Kimura-Kuroda J, Yasui K. Protection of mice against Japanese encephalitis virus by passive administration with monoclonal antibodies. J Immunol. 1988 Nov 15;141(10):3606-10.
- Zhang MJ, Wang MJ, Jiang SZ, Ma WY. Passive protection of mice, goats, and monkeys against Japanese encephalitis with monoclonal antibodies. J Med Virol. 1989 Oct;29(2):133-8. doi: 10.1002/jmv.1890290211.
- Gupta AK, Lad VJ, Koshy AA. Protection of mice against experimental Japanese encephalitis virus infections by neutralizing anti-glycoprotein E monoclonal antibodies. Acta Virol. 2003;47(3):141-5.
- Ben-Nathan D, Lustig S, Tam G, Robinzon S, Segal S, Rager-Zisman B. Prophylactic and therapeutic efficacy of human intravenous immunoglobulin in treating West Nile virus infection in mice. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):5-12. doi: 10.1086/376870. Epub 2003 Jun 23.
- Diamond MS, Shrestha B, Marri A, Mahan D, Engle M. B cells and antibody play critical roles in the immediate defense of disseminated infection by West Nile encephalitis virus. J Virol. 2003 Feb;77(4):2578-86. doi: 10.1128/jvi.77.4.2578-2586.2003.
- Kreil TR, Eibl MM. Pre- and postexposure protection by passive immunoglobulin but no enhancement of infection with a flavivirus in a mouse model. J Virol. 1997 Apr;71(4):2921-7. doi: 10.1128/JVI.71.4.2921-2927.1997.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Roper GY, Wang H, Baldwin TJ, Koenig S, Johnson S, Nordstrom JL, Diamond MS. Humanized monoclonal antibody against West Nile virus envelope protein administered after neuronal infection protects against lethal encephalitis in hamsters. J Infect Dis. 2006 Nov 1;194(9):1300-8. doi: 10.1086/508293. Epub 2006 Sep 22.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Wang H, Julander JG, Hall JO, Li H, Nordstrom JL, Koenig S, Johnson S, Diamond MS. Defining limits of treatment with humanized neutralizing monoclonal antibody for West Nile virus neurological infection in a hamster model. Antimicrob Agents Chemother. 2007 Jul;51(7):2396-402. doi: 10.1128/AAC.00147-07. Epub 2007 Apr 23.
- Webb DB, Kendra JR, Gross E, Stamatakis JD. Infusion of intravenous immunoglobulin via implantable subcutaneous catheter. Lancet. 1991 Jun 29;337(8757):1617-8. doi: 10.1016/0140-6736(91)93323-2. No abstract available.
- Imbach P. Immune thrombocytopenic purpura and intravenous immunoglobulin. Cancer. 1991 Sep 15;68(6 Suppl):1422-5. doi: 10.1002/1097-0142(19910915)68:6+3.0.co;2-5.
- Dwyer JM. Manipulating the immune system with immune globulin. N Engl J Med. 1992 Jan 9;326(2):107-16. doi: 10.1056/NEJM199201093260206. No abstract available.
- Sullivan KM, Kopecky KJ, Jocom J, Fisher L, Buckner CD, Meyers JD, Counts GW, Bowden RA, Peterson FB, Witherspoon RP, et al. Immunomodulatory and antimicrobial efficacy of intravenous immunoglobulin in bone marrow transplantation. N Engl J Med. 1990 Sep 13;323(11):705-12. doi: 10.1056/NEJM199009133231103.
- Newburger JW, Takahashi M, Beiser AS, Burns JC, Bastian J, Chung KJ, Colan SD, Duffy CE, Fulton DR, Glode MP, et al. A single intravenous infusion of gamma globulin as compared with four infusions in the treatment of acute Kawasaki syndrome. N Engl J Med. 1991 Jun 6;324(23):1633-9. doi: 10.1056/NEJM199106063242305.
- Ooi MH, Wong SC, Clear D, Perera D, Krishnan S, Preston T, Tio PH, Willison HJ, Tedman B, Kneen R, Cardosa MJ, Solomon T. Adenovirus type 21-associated acute flaccid paralysis during an outbreak of hand-foot-and-mouth disease in Sarawak, Malaysia. Clin Infect Dis. 2003 Mar 1;36(5):550-9. doi: 10.1086/367648. Epub 2003 Feb 14.
- Chatterjee S, Chattopadhyay D, Bhattacharya MK, Mukherjee B. Serosurveillance for Japanese encephalitis in children in several districts of West Bengal, India. Acta Paediatr. 2004 Mar;93(3):390-3.
- Planitzer CB, Modrof J, Kreil TR. West Nile virus neutralization by US plasma-derived immunoglobulin products. J Infect Dis. 2007 Aug 1;196(3):435-40. doi: 10.1086/519392. Epub 2007 Jun 18.
- Rayamajhi A, Nightingale S, Bhatta NK, Singh R, Kneen R, Ledger E, Bista KP, Lewthwaite P, Mahaseth C, Turtle L, Robinson JS, Galbraith SE, Wnek M, Johnson BW, Faragher B, Griffiths MJ, Solomon T. A preliminary randomized double blind placebo-controlled trial of intravenous immunoglobulin for Japanese encephalitis in Nepal. PLoS One. 2015 Apr 17;10(4):e0122608. doi: 10.1371/journal.pone.0122608. eCollection 2015. Erratum In: PLoS One. 2015;10(8):e0136008. Kneen, Rachel [added].
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart
Primær fullføring (Faktiske)
Studiet fullført (Faktiske)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Anslag)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Anslag)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
- Hjernesykdommer
- Sykdommer i sentralnervesystemet
- Sykdommer i nervesystemet
- RNA-virusinfeksjoner
- Virussykdommer
- Infeksjoner
- Encefalitt, Arbovirus
- Encefalitt, viral
- Virale sykdommer i sentralnervesystemet
- Infeksjoner i sentralnervesystemet
- Infeksiøs encefalitt
- Arbovirus infeksjoner
- Vektorbårne sykdommer
- Flavivirus infeksjoner
- Flaviviridae-infeksjoner
- Encefalitt, japansk
- Encefalitt
- Fysiologiske effekter av legemidler
- Immunologiske faktorer
- Antistoffer
- Immunoglobuliner
- Immunglobuliner, intravenøst
- gamma-globuliner
- Rho(D) immunglobulin
Andre studie-ID-numre
- IVIG607
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .