- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT01856205
Badanie bezpieczeństwa i skuteczności dożylnej immunoglobuliny w leczeniu japońskiego zapalenia mózgu
Randomizowane, podwójnie ślepe, kontrolowane placebo badanie mające na celu ocenę bezpieczeństwa i skuteczności dożylnego podawania immunoglobulin (IVIG) u dzieci z japońskim zapaleniem mózgu w Nepalu
Przegląd badań
Status
Warunki
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
Japońskie zapalenie mózgu (JE) jest najważniejszą epidemią zapalenia mózgu na świecie, powodującą około 35-50 000 przypadków i 10-15 000 zgonów rocznie. Połowa osób, które przeżyły, ma poważne następstwa neuropsychiatryczne, co stanowi duże obciążenie społeczno-ekonomiczne dla społeczności, których na to nie stać. Wirus JE (JEV, rodzaj flavivirus, rodzina Flaviviridae) ma otoczkę lipoproteinową o długości 50 nm otaczającą nukleokapsyd składający się z białka rdzeniowego i 11 KB jednoniciowego RNA o dodatniej polaryzacji. Genom ma nieulegające translacji regiony 5' i 3' (UTR) oraz pojedynczą otwartą ramkę odczytu kodującą geny dla trzech białek strukturalnych (rdzeń - C, przedbłonowy - prM i otoczka - E) oraz 7 białek niestrukturalnych (NS) . Białko E ma kluczowe znaczenie dla przyczepiania się wirusa i wnikania do komórek, a wraz z NS1 i NS3 jest głównym celem odpowiedzi immunologicznej.
JEV jest wirusem przenoszonym przez stawonogi (arbowirus), przenoszonym w cyklu enzootycznym między ptakami, świniami i innymi kręgowcami przez komary, zwłaszcza gatunki Culex. Prawie cała populacja w dotkniętych chorobą częściach Azji jest zarażona we wczesnej dorosłości, ale tylko niewielka część (około 1 na 300) rozwija objawy kliniczne. Mogą one obejmować zarówno niespecyficzne choroby przebiegające z gorączką, jak i ciężkie zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych, w którym częste są napady padaczkowe i kliniczne objawy podwyższonego ciśnienia wewnątrzczaszkowego, co wiąże się ze złym rokowaniem. Ponadto JEV powoduje porażenie wiotkie podobne do poliomyelitis. Uważano, że rozmieszczenie czterech genotypów JEV w Azji wyjaśnia epidemiologię kliniczną, ale obecnie uważa się, że jest to odzwierciedlenie pochodzenia wirusa w Azji Południowo-Wschodniej i rozprzestrzenienia się stąd. Jednak subtelne różnice w genomie mogą być ważne w określaniu neurologicznych prezentacji flawiwirusów.
Chociaż istnieją szczepionki przeciwko JEV, nie są one dostępne dla wielu osób, które ich potrzebują, z powodu problemów związanych z kosztami i produkcją. Czyni się postępy w przezwyciężaniu tych trudności i coraz częściej stosuje się nowsze szczepionki. W rzeczywistości Nepal przoduje w stosowaniu pojedynczej dawki żywej atenuowanej szczepionki SA14-14-2 przeciwko JE. Jednak nadal rozprzestrzenia się w Azji i nie ma leczenia. Za najbardziej obiecujące leczenie uznano interferon-α (IFN-α), który jest wytwarzany w ramach wrodzonej odpowiedzi na zakażenie JEV i który wykazuje działanie przeciwwirusowe przeciwko wirusowi. Jednak randomizowane badanie kontrolowane placebo wykazało, że rekombinowany IFN-α2a w dawce 10 milionów jednostek/m2/dzień nie poprawił wyniku. Patogeneza JEV nie jest w pełni poznana, ale w porównaniu z innymi wirusowymi zapaleniami mózgu z dodatnim sensem RNA prawdopodobnie obejmuje mieszaninę wirusowej cytopatologii i immunopatologii. Rola steroidów w JEV została zbadana w jednym randomizowanym badaniu kontrolowanym placebo w Tajlandii, które nie przyniosły żadnych korzyści.
IVIG oferuje obecnie jedną z najlepszych możliwości poprawy wyniku w JE. Przypuszczalnie stosowano go u pacjentów z zapaleniem mózgu wywołanym przez flawiwirusy, w tym JE, i postuluje się, że działa na dwa sposoby: IVIG produkowany w krajach, w których flawiwirusy są endemiczne, zawiera wysokie miana specyficznych przeciwciał neutralizujących, ponieważ większość populacji była narażona na wirusa , a więc mają przeciwciała. Ponadto IVIG ma niespecyficzne właściwości przeciwzapalne, szczególnie poprzez hamowanie cytokin prozapalnych (np. w chorobie Kawasaki). Naszym celem jest zbadanie roli IVIG w JE, a także przyjrzenie się jego wpływowi na cytokiny prozapalne.
Rola przeciwciał w ochronie przed ciężką chorobą w japońskim zapaleniu mózgu: Humoralna odpowiedź immunologiczna w JE została dobrze scharakteryzowana. Gdy choroba jest spowodowana pierwotną infekcją (tj. gdy JEV jest pierwszym flawiwirusem, którym dana osoba została zakażona), w surowicy i płynie mózgowo-rdzeniowym pojawia się szybka i silna odpowiedź IgM w ciągu kilku dni od zakażenia. Do 7 dnia większość pacjentów ma podwyższone miana. Próby izolacji wirusa są u takich pacjentów zwykle ujemne. Jednak niepowodzenie w uzyskaniu odpowiedzi IgM wiąże się z pozytywną izolacją wirusa i wynikiem śmiertelnym. Przeciwciało przeciwko JEV prawdopodobnie chroni gospodarza, ograniczając replikację wirusa podczas fazy wiremii, zanim wirus przekroczy barierę krew-mózg. Dowody z innych flawiwirusów sugerują, że może również ograniczać uszkodzenia podczas ustalonego zapalenia mózgu poprzez neutralizację wirusa pozakomórkowego i ułatwianie lizy zakażonych komórek przez cytotoksyczność komórkową zależną od przeciwciał.
U pacjentów, którzy przeżyli, następuje zmiana klasy immunoglobulin iw ciągu 30 dni większość z nich ma IgG w surowicy i płynie mózgowo-rdzeniowym. Bezobjawowe zakażenie JEV jest również związane z podwyższonym poziomem IgM w surowicy, ale nie z CSF. U pacjentów z wtórnym zakażeniem (tj. u osób, które wcześniej były zakażone innym flawiwirusem, na przykład zakażeniem wirusem dengi lub szczepionką przeciw żółtej gorączce), występuje anamnastyczna odpowiedź na wspólne antygeny z grupy flawiwirusów. Ten wtórny wzorzec aktywacji przeciwciał charakteryzuje się wczesnym wzrostem IgG z późniejszym powolnym wzrostem IgM.
Zapalenie w japońskim zapaleniu mózgu: podczas sekcji zwłok w JE mózg jest zwykle obrzęknięty, z przekrwieniem miąższu. Częste są przepukliny móżdżku i uncal. Histopatologicznie JE charakteryzuje się zapaleniem okołonaczyniowym z rekrutacją makrofagów, neutrofili i limfocytów. Szczególnie dotknięte są zwoje podstawy i komórki rogów przednich rdzenia kręgowego, co stanowi patologiczny korelat dla parkinsonizmu i wiotkiego porażenia podobnego do poliomyelitis, które można zaobserwować. Antygen wirusowy znajduje się głównie w neuronach, chociaż zakażone są również komórki mikrogleju, astrocyty i komórki śródbłonka naczyń. Gdy przeżycie przedłuża się powyżej 7 dni, obserwuje się bezkomórkowe strefy martwicze, zwykle w okolicy małych lub średnich tętnic, które są otoczone obrzękiem.
Immunopatologia w japońskim zapaleniu mózgu: Patogeneza JE nie jest w pełni poznana, ale dostępne dowody wskazują, że podobnie jak w przypadku wielu innych wirusowych zapaleń mózgu z dodatnim RNA, w tym wirusa lymohoctyic chorio opon mózgowo-rdzeniowych (LCMV) u myszy, wirus Sindbis, wirus dengi, wirus żółtej febry i Wirus Zachodniego Nilu, występuje uszkodzenie o podłożu immunologicznym, jak również cytopatologia wirusowa.
Prozapalne odpowiedzi cytokinowe w japońskim zapaleniu mózgu: Jak wyszczególniono poniżej w części Badania wstępne, istnieje coraz więcej dowodów na to, że prozapalna odpowiedź cytokinowa może mieć istotny wkład w immunopatologię w JE. Spośród badanych cytokin interleukina (IL)-6, ligand chemokiny IL-8 (motyw CXC) (CXCL-8) i czynnik martwicy nowotworu (TNF)-α wydają się być związane ze zgonem. Istnieją również nowe dowody na znaczenie innych cytokin i chemokin w zapaleniu mózgu wywołanym przez inne flawiwirusy, zwłaszcza wirusa Zachodniego Nilu. Istnieje kilka mechanizmów, dzięki którym odpowiedź prozapalna może być szkodliwa. Ostatnie badania wykazały, że IL-6, która jest wytwarzana przez neurony, mikroglej, astrocyty i rekrutowane makrofagi w odpowiedzi na wirusową infekcję OUN, powoduje zwiększoną przepuszczalność bariery krew-mózg (BBB), co prowadzi do śródmiąższowego obrzęku mózgu i podwyższonego ciśnienia wewnątrzczaszkowego. nacisk. TNF-α jest wytwarzany przez mikroglej, astrocyty i makrofagi. Jego liczne właściwości prozapalne obejmują regulację w górę ekspresji MHC klasy I i II, regulację w górę cząsteczek adhezji komórkowej, zwiększoną przepuszczalność BBB i regulację w górę indukowalnej syntazy tlenku azotu (iNOS), co prowadzi do produkcji tlenku azotu (NO). W wysokich stężeniach NO jest bezpośrednio toksyczny dla komórek OUN, powodując uszkodzenia oksydacyjne i apoptozę. Ostatnie dowody sugerują, że wczesne odpowiedzi cytokin i chemokin mogą być również ważne w określaniu, czy wirus w ogóle przechodzi przez barierę krew-mózg, aby dostać się do OUN. W jednym badaniu zakażenia wirusem Zachodniego Nilu myszy z niedoborem receptora Toll-podobnego 3 (Tlr3), który rozpoznaje wirusowe dwuniciowe RNA, były stosunkowo odporne na śmiertelną infekcję. Wiązało się to ze zmniejszoną produkcją cytokin (zwłaszcza TNF-α i IL-6) oraz zwiększonym wiremią na obwodzie w porównaniu z myszami typu dzikiego. Stwierdzono, że sygnalizacja receptora 1 TNF-α ma kluczowe znaczenie dla naruszenia bariery krew-mózg po stymulacji Tlr3 przez wirusa. Oprócz wpływu na komórki zakażone wirusem, odpowiedź zapalna w OUN może również uszkadzać komórki niezainfekowane, powodując śmierć komórek postronnych. Znaczenie receptora chemokiny CCR5 i jego ligandu CCL5 (znanego również jako RANTES, regulowanego przez aktywację, normalnie wyrażanego i wydzielanego przez limfocyty T) w zapaleniu OUN wywołanym przez flawiwirusy zostało ostatnio wykazane przez ich znaczną regulację w górę w mysim modelu Westa. Infekcja wirusem Nilu. Było to związane z naciekiem OUN komórek T CD4+ i CD8+, Natural Killer (NK)1.1+ komórki i makrofagi wyrażające receptor. Znaczenie CCR5 w patogenezie ustalono na podstawie badań śmiertelności, w których infekcja myszy CCR5-/- była szybko i jednakowo śmiertelna. Co ważne, nasze ostatnie badanie (patrz poniżej) wykazało, że CCL5 był również podwyższony w osoczu ludzi z JE, gdzie wyższe poziomy były związane ze skutkiem śmiertelnym.
Chociaż badania kliniczne na ludziach z JE i równoległe badania na modelach zwierzęcych zapalenia mózgu wywołanego przez flawiwirus sugerują, że podwyższony poziom cytokin prozapalnych wydaje się być ważny i związany ze złym rokowaniem w JE, nie jest jasne, czy kontrola tej silnej odpowiedzi prozapalnej będzie poprawić wynik. Przeprowadzimy pilotażowe badanie kontrolowane placebo z podwójnie ślepą próbą dotyczące bezpieczeństwa, tolerancji i immunologicznych markerów skuteczności IVIG u dzieci z JE w Nepalu, a następnie większe badanie skuteczności.
Badania wstępne: Profesor Solomon bada JE i pokrewne flawiwirusy od 1994 roku. Przy wsparciu swojej grupy i współpracowników wykazał, że JEV jest najważniejszą przyczyną wirusowego zapalenia mózgu w Wietnamie, podobnie jak w większości krajów Azji Południowej i Południowo-Wschodniej. Wykazał, że napady padaczkowe i podwyższone ciśnienie śródczaszkowe są częstymi objawami klinicznymi infekcji. We współpracy z kolegami z Malezji opracował i przetestował prosty, szybki test diagnostyczny do diagnozowania JE na obszarach wiejskich, gdzie występuje. Ten test był również w stanie odróżnić JE od dengi - pokrewnego flawiwirusa, który krąży w Azji. Chociaż denga jest lepiej znana jako przyczyna choroby krwotocznej, prof. Solomon i jego zespół wykazali, że jest ona również ważną przyczyną chorób neurologicznych. Profesor Solomon wykazał również, że poza zapaleniem mózgu, JEV może objawiać się ostrym porażeniem wiotkim podobnym do poliomyelitis, które niedawno rozpoznano również u dorosłych zakażonych wirusem Zachodniego Nilu. Na podstawie danych in vitro i in vivo oraz badań I/II fazy na ludziach prof. Solomon przeprowadził randomizowaną, kontrolowaną placebo próbę interferonu α-2b u dzieci z JE (jedyne badanie przeciwwirusowe, jakie kiedykolwiek przeprowadzono w przypadku JE). Jednak badanie wykazało, że nie poprawiło to wyniku. Aby rozpocząć badanie możliwego wkładu wirusowej różnorodności genetycznej w epidemiologię kliniczną JE, profesor Solomon zbadał ewolucję molekularną wirusa w Azji i wykazał, że wirus prawdopodobnie pochodzi z regionu Indonezji i Malezji i ewoluował tutaj w różne genotypy , z których najnowsza rozprzestrzeniła się następnie po Azji.
Grupa z Liverpoolu niedawno zaczęła badać zapalenie w JE. Niedawne badanie patologiczne przeprowadzone na ludziach i modelu mysim potwierdza znaczenie odpowiedzi zapalnej i sugeruje, że może dojść do uszkodzenia śródbłonka naczyniowego. Badanie cytokin prozapalnych i przeciwzapalnych u ludzi z JE wykazało, że poziomy interleukiny (IL)-6 w płynie mózgowo-rdzeniowym, czynnika martwicy nowotworów (TNF)-α, interferonu (IFN)-α i chemokiny CXCL8 (IL- 8) były wyższe u pacjentów, którzy zmarli niż u tych, którzy przeżyli. IFN-γ i tlenek azotu (NO) wykryto również w CSF przypadków śmiertelnych i osób, które przeżyły. Odkrycia te poszerzają obserwacje innych badaczy dotyczące TNF-α i CXCL8, wskazując, że silna odpowiedź prozapalna w JE jest związana ze złym rokowaniem. Wykazano również, że CCL5 (RANTES) ulega ekspresji w osoczu ludzi z JE i że wysokie poziomy w osoczu są związane ze śmiertelną chorobą. Dane kliniczne z innych flawiwirusowych zapaleń mózgu potwierdzają koncepcję, że stan zapalny może przyczyniać się do patogenezy. Na przykład u pacjentów po przeszczepach z obniżoną odpornością zakażonych wirusem Zachodniego Nilu choroba OUN rozwija się później niż u pacjentów z prawidłową odpornością. Cytokiny nie działają w izolacji i rzeczywiście pluripotencja i redundancja odpowiedzi biologicznej jest jedną z ich charakterystycznych cech. Niedawne eksperymenty z mikromacierzami pokazują, że w stanach zapalnych OUN dochodzi do zwiększonej regulacji w szerokim zakresie cząsteczek. Ponadto grupa z Liverpoolu zbadała związek między odpowiedziami przeciwciał a wynikiem. Wraz z innymi badaczami wykazaliśmy, że obecność przeciwciał w surowicy i płynie mózgowo-rdzeniowym jest związana z przeżyciem.
JE w Nepalu: Japońskie zapalenie mózgu zostało po raz pierwszy odnotowane w Nepalu w 1978 roku i obecnie występuje endemicznie w 24 dystryktach. Od jego pierwszego pojawienia się odnotowano ponad 26 667 przypadków i 5381 zgonów. Dane dotyczące wczesnej śmiertelności sięgały nawet 60%, ale ostatnio poprawiły się do około 20% u osób poniżej 15 roku życia. Uważa się, że zachorowalność wynosi około 50%. W wyniku obaw związanych z tą chorobą w 1999 r. przeprowadzono szczepienia przeciwko JE w 3 dystryktach, które obecnie zostały rozszerzone na większość dotkniętych dystryktów. Ponadto rząd zaszczepił około 200 000 świń w strefie Terai w 2001 roku. Pomimo tych sukcesów wciąż trwają przypadki JE. W 2006 roku odnotowano 292 potwierdzone przypadki i 1481 przypadków AES o nieznanej etiologii. Liczby te mogą nie odzwierciedlać faktycznej liczby przypadków z powodu problemów logistycznych, zgonów przed przyjęciem do szpitala i trudności w potwierdzeniu rozpoznania JE za pomocą sparowanych próbek surowicy i płynu mózgowo-rdzeniowego. Niedawny nadzór serologiczny u żywicieli zwierzęcych JE w Nepalu wyraźnie pokazuje, że wirus jest nadal obecny na wolności i prawdopodobnie pozostanie. Seroprewalencja wyniosła 48% (102/212) u świń, 27% (15/56) u kaczek i 50% (6/12) u koni z łącznie 280 surowic pobranych z 10 okręgów, z których 44% było ogólnie pozytywnych. Dlatego JE jest nadal głównym problemem zdrowia publicznego w Nepalu i istnieje pilna potrzeba opracowania lepszych metod leczenia. Obecnie IVIG jest stosowany w Nepalu w leczeniu szeregu schorzeń pediatrycznych, w tym zespołu Guillain-Barré, idiopatycznej plamicy małopłytkowej.
Uzasadnienie zastosowania IVIG w JE: Obecnie nie ma leczenia przeciwwirusowego ani immunomodulującego JE ani żadnego zapalenia mózgu wywołanego przez flawiwirusy. Jak wskazano powyżej, jedyne przeprowadzone badania z użyciem interferonu alfa i deksametazonu nie wykazały żadnych korzyści. Na podstawie danych z badań przedklinicznych i badań obserwacyjnych na ludziach (patrz poniżej), IVIG daje obecnie największą nadzieję na leczenie, dzięki swoim właściwościom przeciwwirusowym i przeciwzapalnym.
Ugruntowane zastosowania IVIG w pediatrii: IVIG uznano za standardowe leczenie wielu dziecięcych chorób o podłożu immunologicznym, w tym zespołu Guillain-Barré, choroby Kawasaki, małopłytkowości immunologicznej i zapalenia skórno-mięśniowego. W chorobie Kawasaki aktywacja limfocytów T i B jest regulowana w dół przez IVIG. W plamicy małopłytkowej uważa się, że istotna jest blokada receptorów FCγ, co może skutkować obniżeniem poziomu cytokin sekrecyjnych. W zespole Guillain-Barré i zapaleniu skórno-mięśniowym hamowanie wiązania dopełniacza i zapobieganie atakowi membranolitycznemu tworzenia kompleksów są możliwymi mechanizmami działania IVIG. Ponadto IVIG stosowano w leczeniu i profilaktyce wielu dziecięcych infekcji wirusowych, w przypadku których uważano, że ważne są przeciwciała neutralizujące zawarte w IVIG. IVIG stosowano w leczeniu, a później w profilaktyce, u dzieci z hipo- lub agammaglobulinamią z przewlekłym enterowirusowym zapaleniem opon mózgowo-rdzeniowych. Co ważne, dzieci z agammaglobulinemią sprzężoną z chromosomem X i enterowirusowym zapaleniem opon mózgowo-rdzeniowych leczone intensywną i długotrwałą terapią IVIG osiągnęły długotrwałą remisję kliniczną i wirusologiczną (ujemny posiew wirusa w płynie mózgowo-rdzeniowym i PCR). Jednak pacjenci nawrócili, gdy IVIG zmniejszano, co wskazuje na główną korzystną rolę IVIG w tym stanie. Wykazano, że infuzja IVIG u niemowląt i dzieci z AIDS leczonych zydowudyną zmniejsza ryzyko poważnych infekcji bakteryjnych (16,9% grupa IVIG vs 24,3% grupa placebo (względne ryzyko, 0,60; 95-procentowy przedział ufności, 0,35 do 1,04; p = 0,07). W zakażeniach syncytialnym wirusem oddechowym (RSV) wykazano, że terapia immunoglobulinami jest bezpieczna i ogólnie dobrze tolerowana w randomizowanym badaniu kontrolowanym (RCT) z udziałem 102 wcześniej zdrowych dzieci, chociaż korzystny wpływ ograniczenia hospitalizacji i dni na oddziale intensywnej terapii był marginalny u dzieci z ciężką chorobą. Inne ustalone wskazania do biernej immunizacji IVIG obejmują zakażenie parwowirusem B19.
Stosowanie IVIG w zapaleniu mózgu wywołanym przez flawiwirusy: Istnieją mocne dowody sugerujące, że JEV, podobnie jak inne neurotropowe flawiwirusy, może być bardziej podatny na odpowiedź immunologiczną za pośrednictwem przeciwciał niż komórek. W przypadku JEV i innych neurotropowych flawiwirusów klirens wirusa nie zależy od aktywności limfocytów T cytolitycznych, w przeciwieństwie do wirusów nieneurotropowych. Neurony, jako komórki ostatecznie zróżnicowane, nie wykazują ekspresji MHC-1, co mogłoby spowodować ich lizę przez limfocyty T CD8 i niewymianę. Dane na zwierzętach potwierdzają znaczenie odporności, w której pośredniczą przeciwciała. W jednym badaniu Konishi i in. glin. immunizowane myszy plazmidowymi DNA kodującymi białka JEV, które indukują neutralizujące odpowiedzi przeciwciał lub odpowiedzi cytotoksycznych limfocytów T, a następnie prowokowane śmiertelnymi dootrzewnowymi dawkami wirusa. Wykazali, że przeciwciało neutralizujące zapobiega rozprzestrzenianiu się wirusa z miejsca obwodowego do mózgu, a mechanizmy ochrony, w których pośredniczą przeciwciała, są skuteczniejsze niż odpowiedzi cytotoksycznych limfocytów T. Odkrycia te potwierdziły wcześniejsze prace pokazujące, że przeciwciała przeciwko białku otoczki są najbardziej krytycznym składnikiem ochronnym w modelu prowokacji JEV, a także nowsze eksperymenty z pasywnym transferem przeciwciał. Badania in vitro na myszach wykazały ochronną rolę IVIG podawanej profilaktycznie w celu zapobieżenia wywołaniu przez flawiwirusa zapalenia mózgu przenoszonego przez kleszcze oraz działanie ochronne, gdy jest stosowane jako leczenie. W pracy kilku różnych grup zastosowanie IVIG zawierającego specyficzne przeciwciała przeciwko wirusowi Zachodniego Nilu podczas fazy wiremii, zanim wirus wszedł do OUN, wykazało dramatyczne 100% przeżycie. Podobna praca z kleszczowym zapaleniem mózgu miała 100% wpływ na przeżywalność. Istnieją obecnie dobre dane, że w zwierzęcych modelach zapalenia mózgu wywołanego przez flawiwirusa obwodowe podanie przeciwciała neutralizuje wirusa nawet po jego przedostaniu się do ośrodkowego układu nerwowego.
Dane kliniczne: Ze względu na dane przedkliniczne potwierdzające rolę leczenia przeciwciałami w zapaleniu mózgu wywołanym przez flawiwirusy, leczenie przeciwciałami (w postaci IVIG) stosowano również z współczucia w JE i zapaleniu mózgu Zachodniego Nilu. Ponadto IVIG jest obecnie badany pod kątem zapalenia mózgu Zachodniego Nilu w sponsorowanym przez National Institutes of Health (NIH) randomizowanym badaniu kontrolowanym placebo w Stanach Zjednoczonych (w którym prof. Solomon jest członkiem Naukowego Komitetu Sterującego).
IVIG zastosowano u 49-letniego podróżnika wracającego z Wietnamu, który zgłosił się z JE do włoskiego szpitala. IVIG był również stosowany w leczeniu zakażeń wirusem Zachodniego Nilu u pięciu pacjentów w Izraelu i trzech w Stanach Zjednoczonych. IVIG oceniano również w kontrolowanym placebo badaniu dotyczącym zakażenia wirusem Zachodniego Nilu w Stanach Zjednoczonych, bez poważnych działań niepożądanych leku.
Uzasadnienie dawki: Najczęściej stosowaną dawką IVIG jest 2 g/kg, podawane jako pojedyncza infuzja lub podzielone jako 400 mg/kg przez pięć dni. W chorobie Kawasaki dawka 2 g/kg w pojedynczym dziesięciogodzinnym wlewie jest dobrze tolerowana i wykazano, że jest to najskuteczniejszy schemat leczenia. W zespole Guillaina-Barrégo u dzieci i dorosłych lek podaje się najczęściej przez 5 dni i taki właśnie schemat stosowano u pacjentów z zapaleniem mózgu wywołanym przez flawiwirusy i będzie on stosowany w niniejszym badaniu.
Lek i interwencja: Dzieci, które spełniają kryteria wstępne, zostaną losowo przydzielone do grupy IVIG (Reliance Biophamaceuticals Pvt. Ltd.) w dawce 400 mg/kg/dobę przez 5 dni lub równoważnej objętości 0,9% normalnej soli fizjologicznej, stosując ustaloną technikę podawania płynów w sposób podwójnie ślepy.
Prezentacja leku: Użyjemy dożylnej immunoglobuliny Immunorel™, która jest produkowana przez Reliance Biophamaceuticals Pvt. Ltd. i jest produkowany w Chinach i jest dostępny w Yetichem Pharmacy, Sundhara, Kathmandu i Shriran Pharmacy, Maharajgunj, Kathmandu. Jest to obecnie najczęściej stosowany produkt IVIG w Nepalu.
Podobnie jak w większości innych części Azji, seroprewalencja JE w Chinach jest wysoka. W wieku 10 lat około jedna trzecia dzieci ma neutralizujące przeciwciała przeciwko JEV, a w wieku dorosłym większość populacji jest narażona. Istnieją obszerne dane wskazujące, że IVIG z obszarów endemicznych występowania flawiwirusów zawiera znaczne ilości przeciwciał neutralizujących. Na przykład preparat IVIG z Izraela zawiera umiarkowane do wysokiego poziomy przeciwciał neutralizujących wirusa Zachodniego Nilu. Chociaż wirus Zachodniego Nilu krąży w Stanach Zjednoczonych dopiero od kilku lat, w niektórych seriach IVIG wykryto wysoki poziom przeciwciał neutralizujących.
Przeciwciało neutralizujące anty-JEV w IVIG z Azji: Niedawno zbadaliśmy miana przeciwciał neutralizujących w szeregu produktów IVIG z Indii i Chin, stosując test neutralizacji redukcji płytki nazębnej (PRNT)50. W tym badaniu stwierdziliśmy, że IVIG z Wielkiej Brytanii nie zawiera przeciwciał, a surowica pracownika laboratorium, który został zaszczepiony przeciwko JEV, zawierała niewielką ilość przeciwciał neutralizujących. Natomiast IVIG produkowane przez firmy Bharrat, Hualan, Sichun i Reliance miały miana przeciwciał neutralizujących większe niż 1 na 400, przy czym Reliance miał największe miano, prawie 1 na 750.
Immunorel™ jest pakowany w przezroczyste i bezbarwne fiolki i jest dostępny w 2 wielkościach opakowań, z których każde zawiera IVIG w dawce 0,05 g/ml (tj. 50 mg/ml). Dostępne fiolki to 50 ml (zawierające 2,5 g) i 100 ml (5,0 g).
Dzieci otrzymają zatem 400 mg/kg/dobę IVIG, co odpowiada 8 ml/kg/dobę roztworu Immunorel™ lub 8 ml/kg/dobę 0,9% soli fizjologicznej.
Farmakokinetyka: Badania dystrybucji przeprowadzono z zastosowaniem szeregu preparatów IVIG. W badaniu pacjentów, u których rozwinęło się aseptyczne zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych (jako powikłanie infuzji), po podaniu dożylnym 2 g/kg mc. miejsce. Po 21-28 dniach osiągnięto poziomy sprzed leczenia. Okres półtrwania wynosił 18-32 dni i był podobny do natywnej immunoglobuliny. W ciągu pierwszych 48 godzin po infuzji stężenie w płynie mózgowo-rdzeniowym wzrosło 1,5 do 7-krotnie, ale w ciągu tygodnia wróciło do normy. Penetracji ośrodkowego układu nerwowego można się spodziewać u pacjentów z wirusowym zapaleniem opon mózgowo-rdzeniowych lub nawet zapaleniem mózgu i rdzenia, ponieważ nastąpi przerwanie bariery krew-mózg. Metabolizm IVIG zachodzi w komórkach układu siateczkowo-śródbłonkowego, w których rozkładane są immunoglobuliny i kompleksy immunoglobulin.
Badania z użyciem Immunorel® u zdrowych ochotników wykazały, że maksymalne stężenie w surowicy występuje natychmiast po wstrzyknięciu dożylnym i jest zależne od dawki. W ciągu 24 godzin do 30% dawki może zostać usunięte w wyniku katabolizmu i dystrybucji. Dane dotyczące dystrybucji sugerują, że IVIg rozprowadza się w przestrzeni wewnątrznaczyniowej (60%) i pozanaczyniowej (40%). Okres półtrwania immunoglobulin w surowicy wynosi od 21 do 29 dni.
Reakcje związane z dożylną immunoglobuliną: Reakcje na dożylną immunoglobulinę są zwykle związane z szybkością infuzji i najczęściej występują w ciągu pierwszej godziny infuzji. Przez cały czas trwania infuzji będziemy regularnie monitorować parametry życiowe i ogólny stan pacjenta. Typy zgłaszanych reakcji obejmują ból brzucha, ból głowy, ucisk w klatce piersiowej, zaczerwienienie lub bladość twarzy, uczucie gorąca, duszność, wysypkę skórną inną niż pokrzywka, swędzenie, niedociśnienie, nudności lub wymioty. Jeśli którakolwiek z tych reakcji wystąpi podczas infuzji IVIG, infuzja zostanie czasowo zatrzymana do czasu poprawy stanu klinicznego pacjenta (5 do 10 minut), a następnie ostrożnie wznowiona z mniejszą szybkością. U niektórych pacjentów mogą wystąpić opóźnione reakcje niepożądane na IVIG, takie jak nudności, wymioty, ból w klatce piersiowej, dreszcze, zawroty głowy lub bóle nóg. Te działania niepożądane występują po zatrzymaniu infuzji, ale zwykle w ciągu 24 godzin. Prawdziwe reakcje nadwrażliwości na IVIG, takie jak pokrzywka, obrzęk naczynioruchowy, skurcz oskrzeli lub niedociśnienie, występują bardzo rzadko. W przypadku wystąpienia reakcji anafilaktycznej po IVIG, infuzja zostanie zatrzymana i zostanie wdrożone leczenie adrenaliną, tlenem, lekiem przeciwhistaminowym i sterydami. W rzadkich przypadkach w związku z leczeniem IVIG zgłaszano niedokrwistość hemolityczną i neutropenię. U niewielkiej liczby pacjentów otrzymujących IVIG obserwowano łagodne i umiarkowane zwiększenie aktywności aminotransferaz w surowicy (AST, ALT, gamma GT). Takie zmiany były przejściowe i nie były związane z przenoszeniem zapalenia wątroby. U pacjentów otrzymujących IVIG występowały rzadkie powikłania, takie jak zespół aseptycznego zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych (AMS), zakrzepowe zapalenie żył, zaburzenia czynności nerek i ostra niewydolność nerek. Czynność wątroby i nerek będzie monitorowana podczas badania.
Reakcje związane z Immunorelem™:
ja. Pierwotny niedobór odporności: U pacjentów z zespołem niedoboru odporności otrzymujących IVIG w dawce 400 mg/kg mc. miesięcznie zgłaszane reakcje obejmowały złe samopoczucie, uczucie omdlenia, gorączkę, dreszcze, ból głowy, nudności, wymioty, ucisk w klatce piersiowej, duszność i , ból pleców lub bioder. W niektórych przypadkach zgłaszano również łagodny rumień w miejscu infuzji.
II. Samoistna plamica małopłytkowa (ang. ITP): Podczas leczenia pacjentów dorosłych i dzieci z samoistną plamicą małopłytkową w dawce 400 mg/kg mc. reakcje ogólnoustrojowe obserwowano tylko u mniej niż 3% pacjentów. Inne objawy, które były łagodne i przemijające, to ucisk w klatce piersiowej, uczucie tachykardii i pieczenie w głowie. W dawce 1000 mg/kg masy ciała w pojedynczej dawce lub w dwóch dawkach podawanych w kolejnych dniach w leczeniu pacjentów dorosłych i dzieci z pierwotną małopłytkowością immunologiczną. Działania niepożądane odnotowano tylko u mniej niż 10% pacjentów.
iii. Przeszczep szpiku kostnego: po dawce 500 mg/kg masy ciała 7 dni i dwa dni przed przeszczepem oraz co tydzień do 90 dnia po przeszczepie, działania niepożądane zgłaszano u mniej niż 7% pacjentów. Wszystkie reakcje zostały sklasyfikowane jako łagodne i obejmowały ból głowy, uderzenia gorąca, gorączkę i lekki dyskomfort w plecach.
iv. Nerki: Zwiększenie stężenia kreatyniny i azotu mocznikowego we krwi (BUN) można zaobserwować już po jednym do dwóch dni po infuzji. Progresja do skąpomoczu lub bezmoczu może wymagać dializy. Ciężkie sporadyczne zdarzenia niepożądane zgłaszane po terapii IVIG obejmowały: ostrą niewydolność nerek, ostrą martwicę kanalików nerkowych, nefropatię kanalików proksymalnych i nerczycę osmotyczną. Korekta niedoboru płynów poprzez podanie odpowiednich płynów przed rozpoczęciem leczenia IVIG jest zatem niezbędna. Pomiar azotu mocznikowego we krwi (BUN) i/lub kreatyniny w surowicy należy wykonać przed pierwszą infuzją IVIG i ponownie w odpowiednich odstępach po niej, monitorując ilość wydalanego moczu.
iv. Ogólne: Reakcje na IVIG są związane z szybkością infuzji. Bardzo rzadko reakcje rzekomoanafilaktyczne mogą wystąpić u pacjentów, u których wcześniej nie występowały ciężkie reakcje alergiczne na immunoglobulinę podawaną domięśniowo lub dożylnie.
Mutagenność, rakotwórczość i upośledzenie płodności: Badania rozrodczości na zwierzętach nie zostały przeprowadzone z Gamma IV™. Dlatego nie wiadomo, czy IVIG podany kobiecie w ciąży może spowodować uszkodzenie płodu lub czy może wpływać na zdolność rozrodczą.
Interakcje z innymi lekami: W odpowiednich badaniach nie ustalono interakcji IVIG z innymi lekami. Biernie nabyte przeciwciała mogą zakłócać odpowiedź na żywe, atenuowane szczepionki. Dlatego podawanie takich szczepionek, m.in. poliomyelitis lub odrę, zostaną odroczone do około sześciu miesięcy po infuzji IVIG. Z tego samego powodu immunoglobulin nie należy podawać przez co najmniej dwa tygodnie po podaniu szczepionki.
Przeciwwskazania: IVIG jest przeciwwskazany u osób, u których wiadomo, że mają anafilaktyczną lub ciężką ogólnoustrojową odpowiedź na immunoglobulinę (ludzką). Osoby z selektywnymi niedoborami IgA nie powinny otrzymywać Gamma IV™, ponieważ u tych osób mogą wystąpić reakcje serwerowe na obecność IgA.
Ostrzeżenia dotyczące bezpieczeństwa: Produkt nie powinien być używany, jeśli jest mętny. Nie należy używać roztworów, które zostały zamrożone. Po otwarciu, nawet częściowo zużyte fiolki, należy je wyrzucić. IVIG należy podawać wyłącznie dożylnie, ponieważ droga domięśniowa i podskórna nie została oceniona.
Dawkowanie i podawanie: Ogólnie zaleca się podawanie samej IVIG z początkową szybkością 0,01 do 0,02 ml/kg masy ciała/minutę przez 30 minut, jeśli jest dobrze tolerowane, szybkość można stopniowo zwiększać do maksymalnie 0,08 ml/ kg masy ciała/minutę. Zaleca się podawanie IVIG przez oddzielną linię, bez mieszania z innymi płynami dożylnymi lub lekami, które mogą otrzymywać pacjenci. IVIG nie jest kompatybilny z solą fizjologiczną. W razie potrzeby rozcieńczenie IVIG można rozcieńczyć 5% roztworem glukozy w wodzie.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Faza 2
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
Bagmati
-
Kathmandu, Bagmati, Nepal, 44616
- Kanti Children's Hospital
-
-
Koshi
-
Dharan, Koshi, Nepal
- BP Koirala Institute of Health Sciences
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Dzieci w wieku od 1 do 14 lat, u których klinicznie rozpoznano zapalenie mózgu na podstawie historii gorączki trwającej krócej niż 14 dni, z zaburzeniami świadomości z lub bez nowych napadów padaczkowych w wywiadzie, ze stwierdzoną liczbą białych krwinek poniżej 1000 komórek/mm3 w płynie mózgowo-rdzeniowym bez organizmów w barwieniu Grama i CSF: stosunek glukozy w osoczu > 40% przyjęty w Szpitalu Dziecięcym Kanti i Instytucie Nauk o Zdrowiu BP Koirala w Nepalu.
Kryteria wyłączenia:
Bezpłciowe pasożyty Plasmodium falciparum we krwi
- Śpiączka pojawia się wtórnie do innych stanów ogólnoustrojowych, np. niewydolności wątroby, niewydolności serca, toksyn.
- Pacjenci, u których udokumentowano antybiotykoterapię przed przyjęciem do szpitala i u których częściowo leczone bakteryjne zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych jest bardziej prawdopodobne niż zapalenie mózgu
- Dzieci z prostymi drgawkami gorączkowymi, zdefiniowanymi jako pojedynczy napad trwający krócej niż 15 minut, po którym następuje pełne odzyskanie przytomności w ciągu 60 minut.
- Kobiety w ciąży lub karmiące piersią
- Dzieci z GCS 3/15, które otrzymywały sztuczną wentylację bez oznak spontanicznego oddychania i bez odruchu oczno-głowowego.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Potroić
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Komparator placebo: IVIG w JE (JE-dodatni)
Losowo przydzieliliśmy pacjentów do leczenia IVIG lub placebo.
Dzieci otrzymywały sól fizjologiczną lub dożylną immunoglobulinę (IVIG) [ImmunoRel™ (seria 20081217)] w dawce 400 mg/kg mc./dobę przez 5 dni lub równoważną objętość 0,9% soli fizjologicznej podawanej dożylnie w dawce od 0,01 do 0,02 ml/ kg masy ciała/minutę.
Wszyscy badacze, opiekunowie i uczestnicy byli zaślepieni badanym lekiem.
Druga zapieczętowana koperta była przechowywana z notatkami pacjenta na wypadek, gdyby lekarz pilnie potrzebował wiedzieć, jaki lek otrzymał pacjent.
|
Grupa IVIG otrzymywała 400 mg/kg/dobę dożylnie z szybkością 0,01 do 0,02 ml/kg masy ciała/minutę przez 5 dni lub pojawienie się efektu ubocznego lub zdarzeń niepożądanych. Grupa placebo otrzymywała dożylnie 0,9% roztwór soli fizjologicznej z podobną szybkością. |
|
Komparator placebo: IVIG w Non-JE (JE-ujemne)
Losowo przydzieliliśmy pacjentów do leczenia IVIG lub placebo.
Dzieci otrzymywały sól fizjologiczną lub dożylną immunoglobulinę (IVIG) [ImmunoRel™ (seria 20081217)] w dawce 400 mg/kg mc./dobę przez 5 dni lub równoważną objętość 0,9% soli fizjologicznej podawanej dożylnie w dawce od 0,01 do 0,02 ml/ kg masy ciała/minutę.
Wszyscy badacze, opiekunowie i uczestnicy byli zaślepieni badanym lekiem.
Druga zapieczętowana koperta była przechowywana z notatkami pacjenta na wypadek, gdyby lekarz pilnie potrzebował wiedzieć, jaki lek otrzymał pacjent.
|
Grupa IVIG otrzymywała 400 mg/kg/dobę dożylnie z szybkością 0,01 do 0,02 ml/kg masy ciała/minutę przez 5 dni lub pojawienie się efektu ubocznego lub zdarzeń niepożądanych. Grupa placebo otrzymywała dożylnie 0,9% roztwór soli fizjologicznej z podobną szybkością. |
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Dowody na skutki uboczne badanego leku, takie jak reakcja w miejscu infuzji, biegunka, wzrost ciśnienia krwi i zmiana wydalania moczu
Ramy czasowe: Co 12 godzin po podaniu badanego leku do wypisu, czyli średnio ósmego dnia (192 godziny) przyjęcia do szpitala
|
Pacjenci będą monitorowani pod kątem działań niepożądanych, takich jak odczyn w miejscu podania wlewu, biegunka, wzrost ciśnienia krwi (w mm Hg) i zmiany wydalania moczu (w ml/kg/godzinę) co 12 godzin od pierwszego dnia rozpoczęcia leczenia do śmierci lub wypisać.
Pacjentom podaje się badany lek średnio w pierwszym dniu przyjęcia.
Badany lek podaje się codziennie przez 5 dni.
Pacjenci są wypisywani średnio w ósmej dobie (192 godziny) przyjęcia do szpitala.
|
Co 12 godzin po podaniu badanego leku do wypisu, czyli średnio ósmego dnia (192 godziny) przyjęcia do szpitala
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Śmierć lub następstwa neurologiczne
Ramy czasowe: W momencie wypisu oczekiwana średnia ósmego dnia przyjęcia i ponownie po 6 miesiącach od wypisu
|
W chwili wypisu (przewidywana średnia z ósmego dnia przyjęcia) lub zgonu: czas do zgonu, wybudzenia ze śpiączki, samodzielnego siedzenia, samodzielnego stania, samodzielnego przejścia co najmniej 5 m i opuszczenia szpitala. Po 6 miesiącach od wypisu ze szpitala: historia dalszych napadów, zmiany w zachowaniu, objawy ustąpienia następstw neurologicznych, takie jak ocena zdolności samodzielnego siedzenia, samodzielnego stania, samodzielnego chodzenia co najmniej 5 metrów. |
W momencie wypisu oczekiwana średnia ósmego dnia przyjęcia i ponownie po 6 miesiącach od wypisu
|
Inne miary wyników
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Poziom JEV PRNT50 w surowicy (marker immunologiczny)
Ramy czasowe: Mierzono w 3 punktach czasowych: przed leczeniem (tuż przed pierwszą dawką badanego leku pierwszego dnia), w trakcie leczenia (tuż przed czwartą dawką czwartego dnia) i po leczeniu (jedna godzina po piątej dawce piątego dnia).
|
Leczenie wstępne miało miejsce bezpośrednio przed pierwszą dawką badanego leku pierwszego dnia, środkowe leczenie miało miejsce bezpośrednio przed 4. dawką, a leczenie po leczeniu miało miejsce 1 godzinę po podaniu piątej dawki badanego leku.
|
Mierzono w 3 punktach czasowych: przed leczeniem (tuż przed pierwszą dawką badanego leku pierwszego dnia), w trakcie leczenia (tuż przed czwartą dawką czwartego dnia) i po leczeniu (jedna godzina po piątej dawce piątego dnia).
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Śledczy
- Krzesło do nauki: Tom Solomon, MRCP, PhD, Director,Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK , Head- Liverpool Brain Infection Group
- Główny śledczy: Ajit Rayamajhi, MBBS, MD, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Liverpool, UK & Kanti Children's Hospital, Maharajgunj, Kathmandu, Nepal
- Dyrektor Studium: Sam Nightingale, MRCP, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Gainsborough M, Vaughn DW, Khanh VT. Japanese encephalitis. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2000 Apr;68(4):405-15. doi: 10.1136/jnnp.68.4.405. No abstract available.
- Tsai TF. New initiatives for the control of Japanese encephalitis by vaccination: minutes of a WHO/CVI meeting, Bangkok, Thailand, 13-15 October 1998. Vaccine. 2000 May 26;18 Suppl 2:1-25. doi: 10.1016/s0264-410x(00)00037-2.
- Innis BL. Japanese encephalitis. In: Porterfield JS, editor. Exotic Viral Infections. London: Chapman & Hall; 1995. p. 147-74.
- Sumiyoshi H, Mori C, Fuke I, Morita K, Kuhara S, Kondou J, Kikuchi Y, Nagamatu H, Igarashi A. Complete nucleotide sequence of the Japanese encephalitis virus genome RNA. Virology. 1987 Dec;161(2):497-510. doi: 10.1016/0042-6822(87)90144-9.
- Chambers TJ, Hahn CS, Galler R, Rice CM. Flavivirus genome organization, expression, and replication. Annu Rev Microbiol. 1990;44:649-88. doi: 10.1146/annurev.mi.44.100190.003245. No abstract available.
- Gajanana A, Thenmozhi V, Samuel PP, Reuben R. A community-based study of subclinical flavivirus infections in children in an area of Tamil Nadu, India, where Japanese encephalitis is endemic. Bull World Health Organ. 1995;73(2):237-44.
- HALSTEAD SB, GROSZ CR. Subclinical Japanese encephalitis. I. Infection of Americans with limited residence in Korea. Am J Hyg. 1962 Mar;75:190-201. No abstract available.
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Thao le TT, Gainsborough M, Nisalak A, Day NP, Kirkham FJ, Vaughn DW, Smith S, White NJ. Seizures and raised intracranial pressure in Vietnamese patients with Japanese encephalitis. Brain. 2002 May;125(Pt 5):1084-93. doi: 10.1093/brain/awf116.
- Solomon T, Kneen R, Dung NM, Khanh VC, Thuy TT, Ha DQ, Day NP, Nisalak A, Vaughn DW, White NJ. Poliomyelitis-like illness due to Japanese encephalitis virus. Lancet. 1998 Apr 11;351(9109):1094-7. doi: 10.1016/S0140-6736(97)07509-0.
- Chen WR, Tesh RB, Rico-Hesse R. Genetic variation of Japanese encephalitis virus in nature. J Gen Virol. 1990 Dec;71 ( Pt 12):2915-22. doi: 10.1099/0022-1317-71-12-2915.
- Chen WR, Rico-Hesse R, Tesh RB. A new genotype of Japanese encephalitis virus from Indonesia. Am J Trop Med Hyg. 1992 Jul;47(1):61-9. doi: 10.4269/ajtmh.1992.47.61.
- Gould EA. Evolution of the Japanese encephalitis serocomplex viruses. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:391-404. Review.
- Solomon T, Ni H, Beasley DW, Ekkelenkamp M, Cardosa MJ, Barrett AD. Origin and evolution of Japanese encephalitis virus in southeast Asia. J Virol. 2003 Mar;77(5):3091-8. doi: 10.1128/jvi.77.5.3091-3098.2003.
- Shope RE. Concepts of control of Japanese encephalitis and dengue. Southeast Asian J Trop Med Public Health. 1997;28 Suppl 2:131-4.
- Solomon T. Vaccines against Japanese encephalitis. In: Jong EC, Zuckerman JN, editors. Travelers' vaccines. Ontario, Canada: B.C. Decker; 2004. p. 219-56.
- Monath TP. Japanese encephalitis vaccines: current vaccines and future prospects. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:105-38. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_6.
- Bista MB, Banerjee MK, Shin SH, Tandan JB, Kim MH, Sohn YM, Ohrr HC, Tang JL, Halstead SB. Efficacy of single-dose SA 14-14-2 vaccine against Japanese encephalitis: a case control study. Lancet. 2001 Sep 8;358(9284):791-5. doi: 10.1016/s0140-6736(01)05967-0.
- Solomon T, Dung NM, Wills B, Kneen R, Gainsborough M, Diet TV, Thuy TT, Loan HT, Khanh VC, Vaughn DW, White NJ, Farrar JJ. Interferon alfa-2a in Japanese encephalitis: a randomised double-blind placebo-controlled trial. Lancet. 2003 Mar 8;361(9360):821-6. doi: 10.1016/s0140-6736(03)12709-2.
- Griffin DE. Immune responses to RNA-virus infections of the CNS. Nat Rev Immunol. 2003 Jun;3(6):493-502. doi: 10.1038/nri1105.
- Irani DN. Central nervous system inflammation: can't live with it, can't live without it. Curr Opin Neurol. 2001 Jun;14(3):347-8. doi: 10.1097/00019052-200106000-00013. No abstract available.
- Kimura T, Griffin DE. Extensive immune-mediated hippocampal damage in mice surviving infection with neuroadapted Sindbis virus. Virology. 2003 Jun 20;311(1):28-39. doi: 10.1016/s0042-6822(03)00110-7.
- Hoke CH Jr, Vaughn DW, Nisalak A, Intralawan P, Poolsuppasit S, Jongsawas V, Titsyakorn U, Johnson RT. Effect of high-dose dexamethasone on the outcome of acute encephalitis due to Japanese encephalitis virus. J Infect Dis. 1992 Apr;165(4):631-7. doi: 10.1093/infdis/165.4.631.
- Caramello P, Canta F, Balbiano R, Lipani F, Ariaudo S, De Agostini M, Calleri G, Boglione L, Di Caro A. Role of intravenous immunoglobulin administration in Japanese encephalitis. Clin Infect Dis. 2006 Dec 15;43(12):1620-1. doi: 10.1086/509644. No abstract available.
- Agrawal AG, Petersen LR. Human immunoglobulin as a treatment for West Nile virus infection. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):1-4. doi: 10.1086/376871. Epub 2003 Jun 23. No abstract available.
- Burke DS, Lorsomrudee W, Leake CJ, Hoke CH, Nisalak A, Chongswasdi V, Laorakpongse T. Fatal outcome in Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1985 Nov;34(6):1203-10. doi: 10.4269/ajtmh.1985.34.1203.
- Solomon T, Thao LT, Dung NM, Kneen R, Hung NT, Nisalak A, Vaughn DW, Farrar J, Hien TT, White NJ, Cardosa MJ. Rapid diagnosis of Japanese encephalitis by using an immunoglobulin M dot enzyme immunoassay. J Clin Microbiol. 1998 Jul;36(7):2030-4. doi: 10.1128/JCM.36.7.2030-2034.1998.
- Solomon T, Vaughn DW. Pathogenesis and clinical features of Japanese encephalitis and West Nile virus infections. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:171-94. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_9. No abstract available.
- Burke DS, Nisalak A, Lorsomrudee W, Ussery MA, Laorpongse T. Virus-specific antibody-producing cells in blood and cerebrospinal fluid in acute Japanese encephalitis. J Med Virol. 1985 Nov;17(3):283-92. doi: 10.1002/jmv.1890170310.
- Desai A, Shankar SK, Ravi V, Chandramuki A, Gourie-Devi M. Japanese encephalitis virus antigen in the human brain and its topographic distribution. Acta Neuropathol. 1995;89(4):368-73. doi: 10.1007/BF00309631.
- Shankar SK, Rao TV, Mruthyunjayanna BP, Gourie Devi M, Deshpande DH. Autopsy study of brains during an epidemic of Japanese encephalitis in Karnataka. Indian J Med Res. 1983 Sep;78:431-40. No abstract available.
- Li ZS, Hong SF, Gong NL. Immunohistochemical study on Japanese B encephalitis. Chin Med J (Engl). 1988 Oct;101(10):768-71. No abstract available.
- Johnson RT, Burke DS, Elwell M, Leake CJ, Nisalak A, Hoke CH, Lorsomrudee W. Japanese encephalitis: immunocytochemical studies of viral antigen and inflammatory cells in fatal cases. Ann Neurol. 1985 Nov;18(5):567-73. doi: 10.1002/ana.410180510.
- MIYAKE M. THE PATHOLOGY OF JAPANESE ENCEPHALITIS. A REVIEW. Bull World Health Organ. 1964;30(2):153-60.
- Solomon T. Flavivirus encephalitis. N Engl J Med. 2004 Jul 22;351(4):370-8. doi: 10.1056/NEJMra030476. No abstract available.
- McMinn PC. The molecular basis of virulence of the encephalitogenic flaviviruses. J Gen Virol. 1997 Nov;78 ( Pt 11):2711-22. doi: 10.1099/0022-1317-78-11-2711. No abstract available.
- Doherty PC, Zinkernagel RM. T-cell-mediated immunopathology in viral infections. Transplant Rev. 1974;19(0):89-120. doi: 10.1111/j.1600-065x.1974.tb00129.x. No abstract available.
- Rowell JF, Griffin DE. Contribution of T cells to mortality in neurovirulent Sindbis virus encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 2002 Jun;127(1-2):106-14. doi: 10.1016/s0165-5728(02)00108-x.
- Atrasheuskaya A, Petzelbauer P, Fredeking TM, Ignatyev G. Anti-TNF antibody treatment reduces mortality in experimental dengue virus infection. FEMS Immunol Med Microbiol. 2003 Jan 21;35(1):33-42. doi: 10.1111/j.1574-695X.2003.tb00646.x.
- Liu T, Chambers TJ. Yellow fever virus encephalitis: properties of the brain-associated T-cell response during virus clearance in normal and gamma interferon-deficient mice and requirement for CD4+ lymphocytes. J Virol. 2001 Mar;75(5):2107-18. doi: 10.1128/JVI.75.5.2107-2118.2001.
- Wang Y, Lobigs M, Lee E, Mullbacher A. CD8+ T cells mediate recovery and immunopathology in West Nile virus encephalitis. J Virol. 2003 Dec;77(24):13323-34. doi: 10.1128/jvi.77.24.13323-13334.2003.
- Wang T, Town T, Alexopoulou L, Anderson JF, Fikrig E, Flavell RA. Toll-like receptor 3 mediates West Nile virus entry into the brain causing lethal encephalitis. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1366-73. doi: 10.1038/nm1140. Epub 2004 Nov 21.
- Diamond MS, Klein RS. West Nile virus: crossing the blood-brain barrier. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1294-5. doi: 10.1038/nm1204-1294. No abstract available.
- Chambers TJ, Diamond MS. Pathogenesis of flavivirus encephalitis. Adv Virus Res. 2003;60:273-342. doi: 10.1016/s0065-3527(03)60008-4.
- Myint KS, Gibbons RV, Perng GC, Solomon T. Unravelling the neuropathogenesis of Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2007 Oct;101(10):955-6. doi: 10.1016/j.trstmh.2007.04.004. Epub 2007 Jun 4.
- Glass WG, McDermott DH, Lim JK, Lekhong S, Yu SF, Frank WA, Pape J, Cheshier RC, Murphy PM. CCR5 deficiency increases risk of symptomatic West Nile virus infection. J Exp Med. 2006 Jan 23;203(1):35-40. doi: 10.1084/jem.20051970. Epub 2006 Jan 17.
- Glass WG, Lim JK, Cholera R, Pletnev AG, Gao JL, Murphy PM. Chemokine receptor CCR5 promotes leukocyte trafficking to the brain and survival in West Nile virus infection. J Exp Med. 2005 Oct 17;202(8):1087-98. doi: 10.1084/jem.20042530.
- Bhowmick S, Duseja R, Das S, Appaiahgiri MB, Vrati S, Basu A. Induction of IP-10 (CXCL10) in astrocytes following Japanese encephalitis. Neurosci Lett. 2007 Feb 27;414(1):45-50. doi: 10.1016/j.neulet.2006.11.070. Epub 2007 Jan 8.
- Ghoshal A, Das S, Ghosh S, Mishra MK, Sharma V, Koli P, Sen E, Basu A. Proinflammatory mediators released by activated microglia induces neuronal death in Japanese encephalitis. Glia. 2007 Apr 1;55(5):483-96. doi: 10.1002/glia.20474.
- Li Y, Fu L, Gonzales DM, Lavi E. Coronavirus neurovirulence correlates with the ability of the virus to induce proinflammatory cytokine signals from astrocytes and microglia. J Virol. 2004 Apr;78(7):3398-406. doi: 10.1128/jvi.78.7.3398-3406.2004.
- Allan SM, Rothwell NJ. Inflammation in central nervous system injury. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2003 Oct 29;358(1438):1669-77. doi: 10.1098/rstb.2003.1358.
- Van Wagoner NJ, Benveniste EN. Interleukin-6 expression and regulation in astrocytes. J Neuroimmunol. 1999 Dec;100(1-2):124-39. doi: 10.1016/s0165-5728(99)00187-3.
- Frei K, Malipiero UV, Leist TP, Zinkernagel RM, Schwab ME, Fontana A. On the cellular source and function of interleukin 6 produced in the central nervous system in viral diseases. Eur J Immunol. 1989 Apr;19(4):689-94. doi: 10.1002/eji.1830190418.
- Morris MM, Dyson H, Baker D, Harbige LS, Fazakerley JK, Amor S. Characterization of the cellular and cytokine response in the central nervous system following Semliki Forest virus infection. J Neuroimmunol. 1997 Apr;74(1-2):185-97. doi: 10.1016/s0165-5728(96)00786-2.
- Brett FM, Mizisin AP, Powell HC, Campbell IL. Evolution of neuropathologic abnormalities associated with blood-brain barrier breakdown in transgenic mice expressing interleukin-6 in astrocytes. J Neuropathol Exp Neurol. 1995 Nov;54(6):766-75. doi: 10.1097/00005072-199511000-00003.
- Paul R, Koedel U, Winkler F, Kieseier BC, Fontana A, Kopf M, Hartung HP, Pfister HW. Lack of IL-6 augments inflammatory response but decreases vascular permeability in bacterial meningitis. Brain. 2003 Aug;126(Pt 8):1873-82. doi: 10.1093/brain/awg171. Epub 2003 Jun 23.
- Abraham CS, Deli MA, Joo F, Megyeri P, Torpier G. Intracarotid tumor necrosis factor-alpha administration increases the blood-brain barrier permeability in cerebral cortex of the newborn pig: quantitative aspects of double-labelling studies and confocal laser scanning analysis. Neurosci Lett. 1996 Apr 19;208(2):85-8. doi: 10.1016/0304-3940(96)12546-5.
- Munoz-Fernandez MA, Fresno M. The role of tumour necrosis factor, interleukin 6, interferon-gamma and inducible nitric oxide synthase in the development and pathology of the nervous system. Prog Neurobiol. 1998 Oct;56(3):307-40. doi: 10.1016/s0301-0082(98)00045-8.
- Griffin DE, Hardwick JM. Perspective: virus infections and the death of neurons. Trends Microbiol. 1999 Apr;7(4):155-60. doi: 10.1016/s0966-842x(99)01470-5.
- Winter PM, Dung NM, Loan HT, Kneen R, Wills B, Thu le T, House D, White NJ, Farrar JJ, Hart CA, Solomon T. Proinflammatory cytokines and chemokines in humans with Japanese encephalitis. J Infect Dis. 2004 Nov 1;190(9):1618-26. doi: 10.1086/423328. Epub 2004 Sep 29.
- Solomon T, Dung NM, Vaughn DW, Kneen R, Thao LT, Raengsakulrach B, Loan HT, Day NP, Farrar J, Myint KS, Warrell MJ, James WS, Nisalak A, White NJ. Neurological manifestations of dengue infection. Lancet. 2000 Mar 25;355(9209):1053-9. doi: 10.1016/S0140-6736(00)02036-5.
- Leis AA, Stokic DS, Polk JL, Dostrow V, Winkelmann M. A poliomyelitis-like syndrome from West Nile virus infection. N Engl J Med. 2002 Oct 17;347(16):1279-80. doi: 10.1056/NEJM2002c021587. Epub 2002 Sep 23. No abstract available.
- Solomon T, Winter PM. Neurovirulence and host factors in flavivirus encephalitis--evidence from clinical epidemiology. Arch Virol Suppl. 2004;(18):161-70. doi: 10.1007/978-3-7091-0572-6_14.
- German AC, Myint KS, Mai NT, Pomeroy I, Phu NH, Tzartos J, Winter P, Collett J, Farrar J, Barrett A, Kipar A, Esiri MM, Solomon T. A preliminary neuropathological study of Japanese encephalitis in humans and a mouse model. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2006 Dec;100(12):1135-45. doi: 10.1016/j.trstmh.2006.02.008. Epub 2006 Jun 30.
- Ravi V, Parida S, Desai A, Chandramuki A, Gourie-Devi M, Grau GE. Correlation of tumor necrosis factor levels in the serum and cerebrospinal fluid with clinical outcome in Japanese encephalitis patients. J Med Virol. 1997 Feb;51(2):132-6.
- Singh A, Kulshreshtha R, Mathur A. Secretion of the chemokine interleukin-8 during Japanese encephalitis virus infection. J Med Microbiol. 2000 Jul;49(7):607-612. doi: 10.1099/0022-1317-49-7-607.
- Iwamoto M, Jernigan DB, Guasch A, Trepka MJ, Blackmore CG, Hellinger WC, Pham SM, Zaki S, Lanciotti RS, Lance-Parker SE, DiazGranados CA, Winquist AG, Perlino CA, Wiersma S, Hillyer KL, Goodman JL, Marfin AA, Chamberland ME, Petersen LR; West Nile Virus in Transplant Recipients Investigation Team. Transmission of West Nile virus from an organ donor to four transplant recipients. N Engl J Med. 2003 May 29;348(22):2196-203. doi: 10.1056/NEJMoa022987.
- Chabas D, Baranzini SE, Mitchell D, Bernard CC, Rittling SR, Denhardt DT, Sobel RA, Lock C, Karpuj M, Pedotti R, Heller R, Oksenberg JR, Steinman L. The influence of the proinflammatory cytokine, osteopontin, on autoimmune demyelinating disease. Science. 2001 Nov 23;294(5547):1731-5. doi: 10.1126/science.1062960.
- Lock C, Hermans G, Pedotti R, Brendolan A, Schadt E, Garren H, Langer-Gould A, Strober S, Cannella B, Allard J, Klonowski P, Austin A, Lad N, Kaminski N, Galli SJ, Oksenberg JR, Raine CS, Heller R, Steinman L. Gene-microarray analysis of multiple sclerosis lesions yields new targets validated in autoimmune encephalomyelitis. Nat Med. 2002 May;8(5):500-8. doi: 10.1038/nm0502-500.
- Solomon T. Japanese encephalitis: Clinical features & pathogenesis. 55th Annual Meeting of the American Society of Tropical Medicine and Hygiene; 2006; Atlanta, Georgia; 2006.
- Edelman R, Schneider RJ, Vejjajiva A, Pornpibul R, Voodhikul P. Persistence of virus-specific IgM and clinical recovery after Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1976 Sep;25(5):733-8. doi: 10.4269/ajtmh.1976.25.733.
- Burke DS, Nisalak A, Ussery MA, Laorakpongse T, Chantavibul S. Kinetics of IgM and IgG responses to Japanese encephalitis virus in human serum and cerebrospinal fluid. J Infect Dis. 1985 Jun;151(6):1093-9. doi: 10.1093/infdis/151.6.1093.
- Kumar R, Mathur A, Kumar A, Sharma S, Chakraborty S, Chaturvedi UC. Clinical features & prognostic indicators of Japanese encephalitis in children in Lucknow (India). Indian J Med Res. 1990 Sep;91:321-7.
- Libraty DH, Nisalak A, Endy TP, Suntayakorn S, Vaughn DW, Innis BL. Clinical and immunological risk factors for severe disease in Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2002 Mar-Apr;96(2):173-8. doi: 10.1016/s0035-9203(02)90294-4.
- Bista MB, Shrestha JM. Epidemiological situation of Japanese encephalitis in Nepal. JNMA J Nepal Med Assoc. 2005 Apr-Jun;44(158):51-6.
- Rayamajhi A, Singh R, Prasad R, Khanal B, Singhi S. Clinico-laboratory profile and outcome of Japanese encephalitis in Nepali children. Ann Trop Paediatr. 2006 Dec;26(4):293-301. doi: 10.1179/146532806X152818.
- Tandan JB, Ohrr H, Sohn YM, Yoksan S, Ji M, Nam CM, Halstead SB. Single dose of SA 14-14-2 vaccine provides long-term protection against Japanese encephalitis: a case-control study in Nepalese children 5 years after immunization. drjbtandan@yahoo.com. Vaccine. 2007 Jun 28;25(27):5041-5. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.04.052. Epub 2007 May 8.
- Pant GR. A serological survey of pigs, horses, and ducks in Nepal for evidence of infection with Japanese encephalitis virus. Ann N Y Acad Sci. 2006 Oct;1081:124-9. doi: 10.1196/annals.1373.013.
- Leung DY, Burns JC, Newburger JW, Geha RS. Reversal of lymphocyte activation in vivo in the Kawasaki syndrome by intravenous gammaglobulin. J Clin Invest. 1987 Feb;79(2):468-72. doi: 10.1172/JCI112835.
- Clarkson SB, Bussel JB, Kimberly RP, Valinsky JE, Nachman RL, Unkeless JC. Treatment of refractory immune thrombocytopenic purpura with an anti-Fc gamma-receptor antibody. N Engl J Med. 1986 May 8;314(19):1236-9. doi: 10.1056/NEJM198605083141907. No abstract available.
- Buchwald B, Ahangari R, Weishaupt A, Toyka KV. Intravenous immunoglobulins neutralize blocking antibodies in Guillain-Barre syndrome. Ann Neurol. 2002 Jun;51(6):673-80. doi: 10.1002/ana.10205.
- Quartier P, Foray S, Casanova JL, Hau-Rainsard I, Blanche S, Fischer A. Enteroviral meningoencephalitis in X-linked agammaglobulinemia: intensive immunoglobulin therapy and sequential viral detection in cerebrospinal fluid by polymerase chain reaction. Pediatr Infect Dis J. 2000 Nov;19(11):1106-8. doi: 10.1097/00006454-200011000-00020. No abstract available.
- Spector SA, Gelber RD, McGrath N, Wara D, Barzilai A, Abrams E, Bryson YJ, Dankner WM, Livingston RA, Connor EM. A controlled trial of intravenous immune globulin for the prevention of serious bacterial infections in children receiving zidovudine for advanced human immunodeficiency virus infection. Pediatric AIDS Clinical Trials Group. N Engl J Med. 1994 Nov 3;331(18):1181-7. doi: 10.1056/NEJM199411033311802.
- Rodriguez WJ, Gruber WC, Welliver RC, Groothuis JR, Simoes EA, Meissner HC, Hemming VG, Hall CB, Lepow ML, Rosas AJ, Robertsen C, Kramer AA. Respiratory syncytial virus (RSV) immune globulin intravenous therapy for RSV lower respiratory tract infection in infants and young children at high risk for severe RSV infections: Respiratory Syncytial Virus Immune Globulin Study Group. Pediatrics. 1997 Mar;99(3):454-61. doi: 10.1542/peds.99.3.454.
- Keller MA, Stiehm ER. Passive immunity in prevention and treatment of infectious diseases. Clin Microbiol Rev. 2000 Oct;13(4):602-14. doi: 10.1128/CMR.13.4.602.
- Levine B, Hardwick JM, Trapp BD, Crawford TO, Bollinger RC, Griffin DE. Antibody-mediated clearance of alphavirus infection from neurons. Science. 1991 Nov 8;254(5033):856-60. doi: 10.1126/science.1658936.
- Griffin DE, Ubol S, Despres P, Kimura T, Byrnes A. Role of antibodies in controlling alphavirus infection of neurons. Curr Top Microbiol Immunol. 2001;260:191-200. doi: 10.1007/978-3-662-05783-4_10. No abstract available.
- Murali-Krishna K, Ravi V, Manjunath R. Protection of adult but not newborn mice against lethal intracerebral challenge with Japanese encephalitis virus by adoptively transferred virus-specific cytotoxic T lymphocytes: requirement for L3T4+ T cells. J Gen Virol. 1996 Apr;77 ( Pt 4):705-14. doi: 10.1099/0022-1317-77-4-705.
- Pan CH, Chen HW, Huang HW, Tao MH. Protective mechanisms induced by a Japanese encephalitis virus DNA vaccine: requirement for antibody but not CD8(+) cytotoxic T-cell responses. J Virol. 2001 Dec;75(23):11457-63. doi: 10.1128/JVI.75.23.11457-11463.2001.
- Beasley DW, Li L, Suderman MT, Guirakhoo F, Trent DW, Monath TP, Shope RE, Barrett AD. Protection against Japanese encephalitis virus strains representing four genotypes by passive transfer of sera raised against ChimeriVax-JE experimental vaccine. Vaccine. 2004 Sep 9;22(27-28):3722-6. doi: 10.1016/j.vaccine.2004.03.027.
- Konishi E, Ajiro N, Nukuzuma C, Mason PW, Kurane I. Comparison of protective efficacies of plasmid DNAs encoding Japanese encephalitis virus proteins that induce neutralizing antibody or cytotoxic T lymphocytes in mice. Vaccine. 2003 Sep 8;21(25-26):3675-83. doi: 10.1016/s0264-410x(03)00382-7.
- Kimura-Kuroda J, Yasui K. Protection of mice against Japanese encephalitis virus by passive administration with monoclonal antibodies. J Immunol. 1988 Nov 15;141(10):3606-10.
- Zhang MJ, Wang MJ, Jiang SZ, Ma WY. Passive protection of mice, goats, and monkeys against Japanese encephalitis with monoclonal antibodies. J Med Virol. 1989 Oct;29(2):133-8. doi: 10.1002/jmv.1890290211.
- Gupta AK, Lad VJ, Koshy AA. Protection of mice against experimental Japanese encephalitis virus infections by neutralizing anti-glycoprotein E monoclonal antibodies. Acta Virol. 2003;47(3):141-5.
- Ben-Nathan D, Lustig S, Tam G, Robinzon S, Segal S, Rager-Zisman B. Prophylactic and therapeutic efficacy of human intravenous immunoglobulin in treating West Nile virus infection in mice. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):5-12. doi: 10.1086/376870. Epub 2003 Jun 23.
- Diamond MS, Shrestha B, Marri A, Mahan D, Engle M. B cells and antibody play critical roles in the immediate defense of disseminated infection by West Nile encephalitis virus. J Virol. 2003 Feb;77(4):2578-86. doi: 10.1128/jvi.77.4.2578-2586.2003.
- Kreil TR, Eibl MM. Pre- and postexposure protection by passive immunoglobulin but no enhancement of infection with a flavivirus in a mouse model. J Virol. 1997 Apr;71(4):2921-7. doi: 10.1128/JVI.71.4.2921-2927.1997.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Roper GY, Wang H, Baldwin TJ, Koenig S, Johnson S, Nordstrom JL, Diamond MS. Humanized monoclonal antibody against West Nile virus envelope protein administered after neuronal infection protects against lethal encephalitis in hamsters. J Infect Dis. 2006 Nov 1;194(9):1300-8. doi: 10.1086/508293. Epub 2006 Sep 22.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Wang H, Julander JG, Hall JO, Li H, Nordstrom JL, Koenig S, Johnson S, Diamond MS. Defining limits of treatment with humanized neutralizing monoclonal antibody for West Nile virus neurological infection in a hamster model. Antimicrob Agents Chemother. 2007 Jul;51(7):2396-402. doi: 10.1128/AAC.00147-07. Epub 2007 Apr 23.
- Webb DB, Kendra JR, Gross E, Stamatakis JD. Infusion of intravenous immunoglobulin via implantable subcutaneous catheter. Lancet. 1991 Jun 29;337(8757):1617-8. doi: 10.1016/0140-6736(91)93323-2. No abstract available.
- Imbach P. Immune thrombocytopenic purpura and intravenous immunoglobulin. Cancer. 1991 Sep 15;68(6 Suppl):1422-5. doi: 10.1002/1097-0142(19910915)68:6+3.0.co;2-5.
- Dwyer JM. Manipulating the immune system with immune globulin. N Engl J Med. 1992 Jan 9;326(2):107-16. doi: 10.1056/NEJM199201093260206. No abstract available.
- Sullivan KM, Kopecky KJ, Jocom J, Fisher L, Buckner CD, Meyers JD, Counts GW, Bowden RA, Peterson FB, Witherspoon RP, et al. Immunomodulatory and antimicrobial efficacy of intravenous immunoglobulin in bone marrow transplantation. N Engl J Med. 1990 Sep 13;323(11):705-12. doi: 10.1056/NEJM199009133231103.
- Newburger JW, Takahashi M, Beiser AS, Burns JC, Bastian J, Chung KJ, Colan SD, Duffy CE, Fulton DR, Glode MP, et al. A single intravenous infusion of gamma globulin as compared with four infusions in the treatment of acute Kawasaki syndrome. N Engl J Med. 1991 Jun 6;324(23):1633-9. doi: 10.1056/NEJM199106063242305.
- Ooi MH, Wong SC, Clear D, Perera D, Krishnan S, Preston T, Tio PH, Willison HJ, Tedman B, Kneen R, Cardosa MJ, Solomon T. Adenovirus type 21-associated acute flaccid paralysis during an outbreak of hand-foot-and-mouth disease in Sarawak, Malaysia. Clin Infect Dis. 2003 Mar 1;36(5):550-9. doi: 10.1086/367648. Epub 2003 Feb 14.
- Chatterjee S, Chattopadhyay D, Bhattacharya MK, Mukherjee B. Serosurveillance for Japanese encephalitis in children in several districts of West Bengal, India. Acta Paediatr. 2004 Mar;93(3):390-3.
- Planitzer CB, Modrof J, Kreil TR. West Nile virus neutralization by US plasma-derived immunoglobulin products. J Infect Dis. 2007 Aug 1;196(3):435-40. doi: 10.1086/519392. Epub 2007 Jun 18.
- Rayamajhi A, Nightingale S, Bhatta NK, Singh R, Kneen R, Ledger E, Bista KP, Lewthwaite P, Mahaseth C, Turtle L, Robinson JS, Galbraith SE, Wnek M, Johnson BW, Faragher B, Griffiths MJ, Solomon T. A preliminary randomized double blind placebo-controlled trial of intravenous immunoglobulin for Japanese encephalitis in Nepal. PLoS One. 2015 Apr 17;10(4):e0122608. doi: 10.1371/journal.pone.0122608. eCollection 2015. Erratum In: PLoS One. 2015;10(8):e0136008. Kneen, Rachel [added].
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Oszacować)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Oszacować)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
- Choroby mózgu
- Choroby ośrodkowego układu nerwowego
- Choroby Układu Nerwowego
- Zakażenia wirusem RNA
- Choroby wirusowe
- Infekcje
- Zapalenie mózgu, arbowirus
- Zapalenie mózgu, wirusowe
- Choroby wirusowe ośrodkowego układu nerwowego
- Infekcje ośrodkowego układu nerwowego
- Zakaźne zapalenie mózgu
- Infekcje arbowirusowe
- Choroby przenoszone przez wektory
- Infekcje Flawiwirusowe
- Infekcje Flaviviridae
- Zapalenie mózgu, japoński
- Zapalenie mózgu
- Fizjologiczne skutki leków
- Czynniki immunologiczne
- Przeciwciała
- Immunoglobuliny
- Immunoglobuliny, dożylnie
- gamma-globuliny
- Globulina immunologiczna Rho(D).
Inne numery identyfikacyjne badania
- IVIG607
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .
Badania kliniczne na Japońskie zapalenie mózgu
-
Kocaeli UniversityAktywny, nie rekrutującyVaricella Zoster | Zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych wywołane wirusem ospy wietrznej | Varicella Encephalitis | Półpaśce neurologiczneTurcja (Türkiye)