- ICH GCP
- Yhdysvaltain kliinisten tutkimusten rekisteri
- Kliininen tutkimus NCT01856205
Suonensisäisen immunoglobuliinin turvallisuus- ja tehokkuustutkimus japanilaisen enkefaliitin hoidossa
Satunnaistettu kaksoissokko lumekontrolloitu koe suonensisäisen immunoglobuliinin (IVIG) turvallisuuden ja tehon arvioimiseksi lapsilla, joilla on japanilainen enkefaliitti Nepalissa
Tutkimuksen yleiskatsaus
Tila
Interventio / Hoito
Yksityiskohtainen kuvaus
Japanilainen enkefaliitti (JE) on maailmanlaajuisesti merkittävin epidemia-enkefaliitti, joka aiheuttaa vuosittain noin 35-50 000 tapausta ja 10-15 000 kuolemaa. Puolella selviytyneistä on vakavia neuropsykiatrisia jälkitauteja, mikä muodostaa suuren sosioekonomisen taakan yhteisöille, joilla ei ole siihen varaa. JE-viruksella (JEV, suvun flavivirus, perhe Flaviviridae) on 50 nm:n lipoproteiinivaippa, joka ympäröi nukleokapsidia, joka koostuu ydinproteiinista ja 11 KB:stä yksijuosteista positiivista RNA:ta. Genomissa on 5' ja 3' transloimattomat alueet (UTR) ja yksi avoin lukukehys, joka koodaa geenejä kolmelle rakenneproteiinille (ydin - C, esikalvo - prM ja vaippa - E) ja 7 ei-rakenneproteiinia (NS) . E-proteiini on kriittinen viruksen kiinnittymiselle ja soluihin pääsylle, ja se on yhdessä NS1:n ja NS3:n kanssa immuunivasteen pääkohde.
JEV on niveljalkaisten välityksellä leviävä virus (arbovirus), jonka hyttyset, erityisesti Culex-lajit, välittävät lintujen, sikojen ja muiden selkärankaisten välillä. Lähes kaikki Aasian osien väestöstä saa tartunnan varhaisessa aikuisiässä, mutta vain pienelle osalle (noin 1:lle 300:sta) kehittyy kliinisiä piirteitä. Nämä voivat vaihdella epäspesifisestä kuumeisesta sairaudesta vaikeaan meningoenkefaliittiin, jossa kohtaukset ja kohonneen kallonsisäisen paineen kliiniset merkit ovat yleisiä ja joilla on huono ennuste. Lisäksi JEV aiheuttaa poliomyeliitin kaltaisen velttohalvauksen. JEV:n neljän genotyypin jakautumisen Aasiassa uskottiin selittävän kliinistä epidemiologiaa, mutta nyt sen uskotaan heijastavan viruksen alkuperää Kaakkois-Aasiassa ja levinneen täältä. Kuitenkin hienovaraiset erot genomissa voivat olla tärkeitä määritettäessä flavivirusten neurologisia esityksiä.
Vaikka JEV:tä vastaan on rokotteita, ne eivät ole saatavilla monille niitä tarvitseville ihmisille kustannuksiin ja tuotantoon liittyvien ongelmien vuoksi. Näiden vaikeuksien voittamiseksi edistytään, ja uusia rokotteita käytetään yhä enemmän. Itse asiassa Nepal on ollut eturintamassa yhden annoksen elävän heikennetyn SA14-14-2-rokotteen käytössä JE:tä varten. Se kuitenkin leviää edelleen Aasiaan, eikä hoitoa ole. Interferoni-α (IFN-α), jota tuotetaan osana synnynnäistä vastetta JEV-infektiolle ja jolla on antiviraalista aktiivisuutta virusta vastaan, pidettiin lupaavimpana hoitona. Satunnaistettu lumekontrolloitu tutkimus osoitti kuitenkin, että rekombinantti IFN-α2a annoksella 10 miljoonaa yksikköä/m2/vrk ei parantanut tulosta. JE:n patogeneesi on epätäydellisesti ymmärretty, mutta verrattuna muihin positiivisiin sense-RNA-viruksen enkefaliteihin, siihen liittyy todennäköisesti viruksen sytopatologian ja immunopatologian yhdistelmä. Steroidien roolia JEV:ssä on tutkittu yhdessä satunnaistetussa lumekontrolloidussa tutkimuksessa Thaimaassa, joista ei ollut mitään hyötyä.
IVIG tarjoaa tällä hetkellä yhden parhaista mahdollisuuksista parantaa JE:n tulosta. Sitä on oletettavasti käytetty potilailla, joilla on flavivirusenkefaliitti, mukaan lukien JE, ja sen oletetaan vaikuttavan kahdella tavalla: maissa, joissa flavivirukset ovat endeemisiä, valmistettu IVIG sisältää korkeat tiitterit spesifistä neutraloivaa vasta-ainetta, koska suurin osa väestöstä on altistunut virukselle. ja siten niillä on vasta-aineita. Lisäksi IVIG:llä on epäspesifisiä anti-inflammatorisia ominaisuuksia, erityisesti tulehdusta edistävien sytokiinien suppression kautta (esim. Kawasakin taudissa). Pyrimme tutkimaan IVIG:n roolia JE:ssä ja tarkastelemaan myös sen vaikutuksia tulehdusta edistäviin sytokiineihin.
Vasta-aineen rooli suojassa vakavia sairauksia vastaan japanilaisessa enkefaliitissa: JE:n humoraalinen immuunivaste on karakterisoitu hyvin. Kun sairaus johtuu primaarisesta infektiosta (eli kun JEV on ensimmäinen flavivirus, jolla yksilö on infektoitunut), seerumissa ja aivo-selkäydinnesteessä esiintyy nopea ja voimakas IgM-vaste muutaman päivän kuluessa tartunnasta. Päivään 7 mennessä useimmilla potilailla on kohonneet tiitterit. Yritykset eristää virus ovat yleensä negatiivisia tällaisilla potilailla. IgM-vasteen saavuttamatta jättäminen liittyy kuitenkin positiiviseen viruksen eristykseen ja kuolemaan. JEV-vasta-aine todennäköisesti suojaa isäntää rajoittamalla viruksen replikaatiota vireemisen vaiheen aikana, ennen kuin virus ylittää veri-aivoesteen. Muista flaviviruksista saadut todisteet viittaavat siihen, että se voi myös rajoittaa vaurioita vakiintuneen enkefaliitin aikana neutraloimalla ekstrasellulaarisen viruksen ja helpottamalla infektoituneiden solujen hajoamista vasta-aineriippuvaisen solun sytotoksisuuden vaikutuksesta.
Eloonjääneiden potilaiden immunoglobuliiniluokka vaihtuu, ja 30 päivän sisällä useimmilla on IgG:tä seerumissa ja CSF:ssä. Oireeton JEV-infektio liittyy myös seerumin kohonneeseen IgM-arvoon, mutta ei CSF:ään. Potilailla, joilla on sekundaarinen infektio (esim. ne, jotka ovat saaneet aiemmin erilaisen flaviviruksen, esimerkiksi dengue-infektion tai keltakuumerokotteen, on anamnastinen vaste flavivirusryhmän yhteisille antigeeneille. Tälle vasta-aineaktivaation toissijaiselle mallille on tunnusomaista varhainen IgG:n nousu ja sitä seuraava hidas IgM:n nousu.
Tulehdus japanilaisessa enkefaliitissa: JE:n ruumiinavauksessa aivot ovat yleensä turvottuneet, ja parenkyyma on tukkeutunut. Pikkuaivotyrä ja uncaltyrä ovat yleisiä. Histopatologisesti JE:lle on tunnusomaista perivaskulaarinen tulehdus, johon liittyy makrofagien, neutrofiilien ja lymfosyyttien kerääntyminen. Erityisesti selkäytimen tyviganglioiden ja etusarvien solut kärsivät, mikä tarjoaa patologisen korrelaation Parkinsonin taudille ja poliomyeliitin kaltaiselle velttohalvaukselle, jota voidaan havaita. Viruksen antigeeni on pääasiassa hermosoluissa, vaikka myös mikrogliasolut, astrosyytit ja verisuonten endoteelisolut ovat infektoituneita. Kun eloonjäämistä pidennetään yli 7 päivää, soluttomat nekroottiset vyöhykkeet näkyvät yleensä pienten tai keskikokoisten valtimoiden alueella, joita ympäröi turvotus.
Immunopatologia japanilaisessa enkefaliitissa: JE:n patogeneesi ei ole täysin ymmärretty, mutta saatavilla oleva näyttö osoittaa, että kuten useiden muiden positiivisten sense-RNA-viruksen enkefaliittien kohdalla, mukaan lukien lymohoctyic chorio meningitis virus (LCMV) hiirillä Sindbis-virus, dengue-virus, keltakuumevirus ja Länsi-Niilin virus, siellä on immuunivälitteisiä vaurioita sekä viruksen sytopatologia.
Pro-inflammatoriset sytokiinivasteet japanilaisessa enkefaliitissa: Kuten jäljempänä kohdassa Esitutkimukset on kuvattu, on kasautuvaa näyttöä siitä, että tulehdusta edistävä sytokiinivaste voi vaikuttaa merkittävästi JE:n immunopatologiaan. Tutkituista sytokiineista interleukiini (IL)-6, IL-8 kemokiini (CXC-motiivi) ligandi (CXCL-8) ja tuumorinekroositekijä (TNF)-a näyttävät liittyvän kohtalokkaaseen lopputulokseen. On myös uutta näyttöä muiden sytokiinien ja kemokiinien merkityksestä muiden flavivirusten, erityisesti Länsi-Niilin viruksen, aiheuttamassa enkefaliitissa. On olemassa useita mekanismeja, joilla pro-inflammatorinen vaste voi olla haitallinen. Viimeaikaiset tutkimukset ovat osoittaneet, että IL-6, jota hermosolut, mikrogliat, astrosyytit ja rekrytoidut makrofagit tuottavat vasteena viruksen aiheuttamalle keskushermostoinfektiolle, lisää veri-aivoesteen (BBB) läpäisevyyttä, mikä johtaa interstitiaaliseen aivoturvotukseen ja kohonneeseen kallonsisäiseen turvotukseen. paine. TNF-a:ta tuottavat mikrogliat, astrosyytit ja makrofagit. Sen useita tulehdusta edistäviä ominaisuuksia ovat luokan I ja II MHC-ekspression säätely, soluadheesiomolekyylien lisääntyminen, BBB:n lisääntynyt läpäisevyys ja indusoituvan typpioksidisyntaasin (iNOS) lisääntyminen, mikä johtaa typpioksidin (NO) tuotantoon. Suurina pitoisuuksina NO on suoraan myrkyllistä keskushermostosoluille aiheuttaen oksidatiivisia vaurioita ja apoptoosia. Viimeaikaiset todisteet viittaavat siihen, että varhaiset sytokiini- ja kemokiinivasteet voivat myös olla tärkeitä määritettäessä, pääseekö virus edes veri-aivoesteen läpi päästäkseen keskushermostoon. Yhdessä Länsi-Niilin virusinfektiotutkimuksessa hiiret, joista puuttui Toll-tyyppinen reseptori 3 (Tlr3), joka tunnistaa viruksen kaksijuosteisen RNA:n, olivat suhteellisen vastustuskykyisiä tappavalle infektiolle. Tämä liittyi vähentyneeseen sytokiinien tuotantoon (erityisesti TNF-a ja IL-6) ja lisääntyneeseen viruskuormaan periferiassa villityypin hiiriin verrattuna. TNF-a-reseptori 1 -signaloinnin havaittiin olevan elintärkeä veri-aivoesteen vaarantumiselle viruksen Tlr3-stimuloinnin yhteydessä. Sen lisäksi, että keskushermoston tulehdusvaste vaikuttaa viruksen infektoituneisiin soluihin, se voi myös vahingoittaa ei-infektoituneita soluja aiheuttaen sivullisen solukuoleman. Kemokiinireseptorin CCR5 ja sen ligandin CCL5 (tunnetaan myös nimellä RANTES, säädelty aktivoituessa, normaalisti T-solut ilmentyvät ja erittyvät) merkitys flavivirusten aiheuttamassa keskushermoston tulehduksessa osoitti äskettäin niiden huomattavalla ylössäätelyllä Westin hiirimallissa. Niilin virusinfektio. Tämä liittyi CD4+- ja CD8+-T-solujen keskushermostoon, luonnolliseen tappajaan (NK)1.1+ solut ja makrofagit, jotka ilmentävät reseptoria. CCR5:n merkitys patogeneesissä vahvistettiin kuolleisuustutkimuksilla, joissa CCR5-/- hiirten infektio oli nopeasti ja tasaisesti tappava. Tärkeää on, että äskettäinen tutkimuksemme (katso alla) havaitsi, että CCL5 oli kohonnut myös JE-potilaiden plasmassa, missä korkeammat tasot liittyivät kuolemaan.
Vaikka kliiniset tutkimukset ihmisillä, joilla on JE, ja rinnakkaiset tutkimukset flavivirusenkefaliitin eläinmalleilla viittaavat siihen, että kohonneet proinflammatoriset sytokiinit näyttävät olevan tärkeitä ja liittyvät huonoon lopputulokseen JE:ssä, ei ole selvää, onnistuuko tämän vahvan tulehdusreaktion hallinta. parantaa tulosta. Suoritamme kaksoissokkoutetun lumekontrolloidun pilottitutkimuksen IVIG:n turvallisuudesta, siedettävyydestä ja tehon immunologisista markkereista JE:tä sairastavilla lapsilla Nepalissa, mitä seuraa laajempi tehokkuustutkimus.
Esitutkimukset: Professori Solomon on tutkinut JE:tä ja siihen liittyviä flaviviruksia vuodesta 1994 lähtien. Ryhmänsä ja yhteistyökumppaneidensa tuella hän on osoittanut, että JEV on tärkein virusenkefaliitin aiheuttaja Vietnamissa, kuten useimmissa Etelä- ja Kaakkois-Aasiassa. Hän osoitti, että kohtaukset ja kohonnut kallonsisäinen paine ovat yleisiä infektion kliinisiä ilmentymiä. Hän kehitti ja kenttätestaa yhteistyössä malesialaisten kollegoiden kanssa yksinkertaisen nopean diagnostisen testin JE:n diagnosoimiseksi maaseutuympäristöissä, joissa sitä esiintyy. Tämä testi pystyi myös erottamaan JE:n denguesta - Aasiassa kiertävästä flaviviruksesta. Vaikka denguekuume tunnetaan paremmin verenvuototaudin aiheuttajana, professori Solomon ja hänen tiiminsä osoittivat, että se on myös tärkeä neurologisten sairauksien syy. Professori Solomon osoitti myös, että JEV:llä voi esiintyä enkefaliitin lisäksi poliomyeliitin kaltainen akuutti veltto halvaus, joka on myös viime aikoina tunnistettu Länsi-Niilin virustartunnan saaneilla aikuisilla. Perustuen in vitro ja in vivo -tietoihin sekä vaiheen I/II ihmisillä tehtyihin tutkimuksiin, Prof Solomon suoritti satunnaistetun lumekontrolloidun tutkimuksen interferoni α-2b:stä lapsilla, joilla oli JE (ainoa JE:lle koskaan tehty viruslääketutkimus). Tutkimus kuitenkin osoitti, että se ei parantanut tulosta. Aloittaakseen viruksen geneettisen monimuotoisuuden mahdollisen vaikutuksen tutkimisen JE:n kliiniseen epidemiologiaan, professori Solomon tutki viruksen molekyylikehitystä Aasiassa ja osoitti, että virus on todennäköisesti peräisin Indonesian ja Malesian alueelta ja kehittynyt täällä erilaisiksi genotyypeiksi. , joista viimeisin levisi myöhemmin Aasiaan.
Liverpool-ryhmä on hiljattain alkanut tutkia JE:n tulehdusta. Äskettäinen patologinen tutkimus ihmisillä ja hiirimallilla vahvistaa tulehdusvasteen tärkeyden ja viittaa siihen, että verisuonten endoteeli saattaa vaurioitua. Tutkimus pro-inflammatorisista ja anti-inflammatorisista sytokiineista ihmisillä, joilla on JE, on osoittanut, että CSF-tasot interleukiini (IL)-6, tuumorinekroositekijä (TNF)-α, interferoni (IFN)-α ja kemokiini CXCL8 (IL- 8) olivat korkeampia kuolleilla kuin henkiin jääneillä. IFN-y ja typpioksidi (NO) havaittiin myös kuolemaan johtaneiden tapausten ja eloonjääneiden aivo-selkäydinnesteestä. Nämä havainnot laajentavat muiden tutkijoiden havaintoja TNF-α:sta ja CXCL8:sta, mikä osoittaa, että vahva tulehdusta edistävä vaste JE:ssä liittyy huonoon tulokseen. Osoitettiin myös, että CCL5 (RANTES) ilmentyy JE:tä sairastavien ihmisten plasmassa ja että korkeat plasmatasot liittyvät kuolemaan johtavaan sairauteen. Kliiniset tiedot muista flavivirusenkefaliteista tukevat käsitystä, että tulehdus voi myötävaikuttaa patogeneesiin. Esimerkiksi länsi-Niilin viruksella infektoituneille immunosuppressoituneille elinsiirtopotilaille kehittyy keskushermostosairaus myöhemmin kuin immunokompetenteille potilaille. Sytokiinit eivät toimi eristyksissä, ja todellakin biologisen vasteen pluripotenssi ja redundanssi on yksi niiden ominaispiirteistä. Viimeaikaiset mikrosirukokeet osoittavat, että monet molekyylit ovat säädellyt voimakkaasti keskushermoston tulehdustiloissa. Lisäksi Liverpool-ryhmä on tutkinut vasta-ainevasteiden ja lopputuloksen välistä suhdetta. Yhdessä muiden tutkijoiden kanssa olemme osoittaneet, että vasta-aineen läsnäolo seerumissa ja CSF:ssä liittyy eloonjäämiseen.
JE Nepalissa: Japanilainen enkefaliitti rekisteröitiin ensimmäisen kerran Nepalissa vuonna 1978, ja se on tällä hetkellä endeeminen 24 alueella. Sen ensimmäisestä esiintymisestä lähtien on ollut yli 26 667 tapausta ja 5 381 kuolemaa. Varhaiskuolleisuusluvut olivat jopa 60 %, mutta viime aikoina ne ovat parantuneet noin 20 %:iin alle 15-vuotiailla. Sairastuvuuden uskotaan olevan noin 50 %. Taudin aiheuttaman huolen seurauksena rokotettiin JE:tä vastaan vuonna 1999 3 piirissä, ja nyt se on laajennettu koskemaan suurinta osaa sairastuneista piireistä. Lisäksi hallitus rokotti noin 200 000 sikaa Terain vyöhykkeellä vuonna 2001. Näistä onnistumisista huolimatta JE-tapauksia on edelleen vireillä. Vuonna 2006 varmistettuja tapauksia oli 292 ja etiologiaa tuntematonta AES-tapausta 1481. Nämä luvut saattavat ali edustaa todellista tapausten määrää, jotka johtuvat logistisista ongelmista, kuolemantapauksista ennen sairaalahoitoa ja JE-diagnoosin vahvistamisvaikeuksista parillisilla seerumi- ja CSF-näytteillä. Äskettäinen JE:n eläinisäntien serovalvonta Nepalissa osoittaa selvästi, että virusta on edelleen luonnossa ja se todennäköisesti säilyy. Seroprevalenssi oli 48 % (102/212) sioilla, 27 % (15/56) ankoilla ja 50 % (6/12) hevosilla yhteensä 280 seerumista, jotka kerättiin 10 alueelta, joista 44 % oli kaiken kaikkiaan positiivisia. Tästä syystä JE on edelleen suuri kansanterveysongelma Nepalissa, ja parempia hoitoja on kipeästi kehitettävä. Tällä hetkellä IVIG:tä käytetään Nepalissa useiden lasten sairauksien hoitoon, mukaan lukien Guillain-Barrén oireyhtymä, idiopaattinen trombosytopeeninen purppura.
Perusteet IVIG:n käytölle JE:ssä: Tällä hetkellä ei ole antiviraalista tai immunomoduloivaa hoitoa JE:lle tai edes millekään flavivirusenkefaliitille. Kuten edellä on esitetty, ainoat suoritetut kokeet, joissa käytettiin alfa-interferonia ja deksametasonia, eivät osoittaneet mitään hyötyä. Prekliinisissä tutkimuksissa ja ihmisillä tehdyissä havainnointitutkimuksissa (katso alla) saatujen tietojen perusteella IVIG tarjoaa tällä hetkellä parhaan toivon hoidosta virustenvastaisten ja tulehdusta ehkäisevien ominaisuuksiensa ansiosta.
IVIG:n vakiintuneet käyttötarkoitukset lapsille: IVIG on vakiintunut standardihoidoksi useille lapsuusiän immuunivälitteisille sairauksille, mukaan lukien Guillain-Barrén oireyhtymä, Kawasakin tauti, immuunitrombosytopenia ja dermatomyosiitti. Kawasakin taudissa IVIG säätelee T-solujen ja B-solujen aktivaatiota. Trombosytopeenisessa purppurassa FCγ-reseptorien salpauksen uskotaan olevan tärkeä, mikä voi johtaa erittyvien sytokiinien säätelyn vähenemiseen. Guillain-Barrén oireyhtymässä ja dermatomyosiitissa komplementin sitoutumisen estäminen ja membranolyyttisen hyökkäyksen kompleksin muodostumisen estäminen ovat mahdollisia IVIG-vaikutusmekanismeja. Lisäksi IVIG:tä on käytetty useiden lapsuuden virusinfektioiden hoidossa ja ennaltaehkäisyssä, joissa IVIG:n neutraloivien vasta-aineiden katsottiin olevan tärkeitä. IVIG:tä on käytetty hoitamaan ja myöhemmin ehkäisemään lapsia, joilla on hypo- tai agammaglobuliinimia ja krooninen enterovirusmeningoenkefaliitti. Tärkeää on, että lapset, joilla on X-kytketty agammaglobulinemia ja enterovirusmeningoenkefaliitti, joita hoidetaan intensiivisellä ja pitkittyneellä IVIG-hoidolla, ovat saavuttaneet pitkäaikaisen kliinisen ja virusperäisen remission (negatiivinen CSF-virusviljelmä ja PCR). Potilaat kuitenkin uusiutuivat, kun IVIG oli kapeneva, mikä osoittaa IVIG:n suuren hyödyllisen roolin tässä tilassa. IVIG-infuusion tsidovudiinihoidolla hoidetuilla vauvoilla ja lapsilla, joilla on AIDS, on osoitettu vähentävän vakavien bakteeri-infektioiden riskiä (16,9 % IVIG-ryhmä vs. 24,3 % lumeryhmä (suhteellinen riski, 0,60; 95 prosentin luottamusväli, 0,35-1,04; p = 0,07). RSV-infektioissa immunoglobuliinihoidon on osoitettu olevan turvallinen ja yleisesti hyvin siedetty satunnaistetussa kontrolloidussa tutkimuksessa (RCT), johon osallistui 102 aiemmin tervettä lasta, vaikka sairaalahoidon ja tehohoitopäivien vähentämisen hyödyllinen vaikutus oli vähäinen lapsilla. vakavan sairauden kanssa. Muita vakiintuneita indikaatioita passiiviseen immunisointiin IVIG:llä ovat parvovirus B19 -infektio.
IVIG:n käyttö flavivirusenkefaliitissa: On vahvaa näyttöä siitä, että JEV, kuten muutkin neurotrooppiset flavivirukset, saattaa olla herkempiä vasta-ainevälitteisille immuunivasteille soluvälitteisten immuunivasteiden sijaan. JEV:n ja muiden neurotrooppisten flavivirusten kohdalla viruksen puhdistuma ei riipu sytolyyttisestä T-soluaktiivisuudesta, toisin kuin ei-neurotrooppisilla viruksilla. Neuronit terminaalisesti erilaistuneina soluina eivät ilmennä MHC-1:tä, mikä saattaisi ne altistaa CD8 T-solujen aiheuttamalle lyysille ja korvaamattomuudelle. Eläintiedot tukevat vasta-ainevälitteisen immuniteetin merkitystä. Yhdessä tutkimuksessa Konishi et. al. immunisoidut hiiret plasmidi-DNA:illa, jotka koodaavat JEV-proteiineja, jotka indusoivat neutraloivia vasta-ainevasteita tai sytotoksisia T-lymfosyyttivasteita, ja sitten altistettiin tappaville intraperitoneaalisille virusannoksille. He osoittivat, että neutraloiva vasta-aine estää viruksen leviämisen perifeerisestä kohdasta aivoihin ja että vasta-ainevälitteiset suojamekanismit olivat tehokkaampia kuin sytotoksiset T-soluvasteet. Nämä havainnot tukivat aikaisempaa työtä, joka osoitti, että vaippaproteiinin vastaiset vasta-aineet ovat kriittisin suojakomponentti JEV-altistusmallissa, ja uudempia passiivisia vasta-aineiden siirtokokeita. In vitro -tutkimukset hiirillä osoittavat IVIG:n suojaavan roolin, kun sitä annetaan ennaltaehkäisevästi estämään flavivirusta aiheuttamasta puutiaisaivotulehdusta, ja suojaavan vaikutuksen, kun sitä käytetään hoitona. Useiden eri ryhmien työssä spesifistä Länsi-Niilin viruksen vastaista vasta-ainetta sisältävän IVIG:n käyttö vireemisen vaiheen aikana, ennen kuin virus oli päässyt keskushermostoon, osoitti dramaattisen 100 %:n eloonjäämisen. Vastaavalla työllä puutiaisaivotulehduksen kanssa oli 100 %:n vaikutus eloonjäämiseen. Nyt on olemassa hyviä tietoja, että flavivirusenkefaliitin eläinmalleissa vasta-aineen perifeerinen antaminen neutraloi viruksen jopa sen jälkeen, kun se on päässyt keskushermostoon.
Kliiniset tiedot: Koska prekliiniset tiedot tukevat vasta-ainehoidon roolia flavivirusenkefaliitissa, vasta-ainehoitoa (IVIG:n muodossa) on käytetty myötätuntoisesti myös JE:ssä ja Länsi-Niilin enkefaliitissa. Lisäksi IVIG:tä tutkitaan parhaillaan Länsi-Niilin enkefaliitin varalta National Institutes of Healthin (NIH) rahoittamassa satunnaistetussa lumekontrolloidussa tutkimuksessa Yhdysvalloissa (jonka professori Solomon kuuluu tieteelliseen ohjauskomiteaan).
IVIG:tä käytettiin 49-vuotiaalla Vietnamista palaavalla matkustajalla, joka toimitti JE:n italialaiseen sairaalaan. IVIG:tä on myös käytetty Länsi-Niilin virusinfektioiden hoitoon viidellä potilaalla Israelissa ja kolmella Yhdysvalloissa. IVIG arvioitiin myös lumekontrolloidussa länsi-Niilin virusinfektiotutkimuksessa Yhdysvalloissa ilman vakavia haittavaikutuksia.
Annoksen perustelut: Yleisimmin käytetty IVIG-annos on 2 g/kg, joko yhtenä infuusiona tai jaettuna 400 mg/kg viiden päivän ajan. Kawasakin taudissa 2 g/kg yhtenä kymmenen tunnin infuusiona on hyvin siedetty, ja sen on osoitettu olevan tehokkain annostus. Guillain-Barrén oireyhtymässä lapsilla ja aikuisilla lääkettä annetaan useimmiten yli 5 päivän ajan, ja tätä hoitoa on käytetty potilailla, joilla on flavivirusenkefaliitti, ja sitä käytetään tässä tutkimuksessa.
Lääkkeet ja interventio: Lapset, jotka täyttävät osallistumiskriteerit, määrätään satunnaisesti saamaan IVIG:tä (Reliance Biophamaceuticals Pvt. Ltd.) annoksella 400 mg/kg/vrk 5 päivän ajan tai vastaava tilavuus 0,9 % normaalia suolaliuosta käyttäen vakiintunutta tekniikkaa nestekäsittelyn suorittamiseksi kaksoissokkomenetelmällä.
Lääkkeen esittely: Käytämme Immunorel™-immunoglobuliinia, jota valmistaa Reliance Biophamaceuticals Pvt. Ltd., valmistettu Kiinassa ja se on saatavilla Yetichem Pharmacysta, Sundhara, Kathmandu ja Shriran Pharmacy, Maharajgunj, Kathmandu. Tämä on tällä hetkellä Nepalissa eniten käytetty IVIG-tuote.
Kuten useimmissa muissa Aasian osissa, JE:n seroprevalenssi Kiinassa on korkea. 10-vuotiaana noin kolmanneksella lapsista on neutraloivia vasta-aineita JEV:tä vastaan, ja aikuisikään mennessä suurin osa väestöstä on altistunut. On olemassa laajaa tietoa, joka osoittaa, että IVIG alueilta, joilla flavivirukset ovat endeemisiä, sisältää merkittäviä määriä neutraloivaa vasta-ainetta. Esimerkiksi Israelista peräisin oleva IVIG sisältää kohtalaista tai korkeaa neutraloivaa vasta-ainetta Länsi-Niilin virukselle. Vaikka Länsi-Niilin virus on kiertänyt Yhdysvalloissa vasta muutaman vuoden, joistakin IVIG-eristä on löydetty korkeita neutraloivia vasta-aineita.
Anti-JEV-neutraloiva vasta-aine IVIG:ssä Aasiasta: Olemme äskettäin tutkineet neutraloivien vasta-aineiden tiittereitä useissa IVIG-tuotteissa Intiasta ja Kiinasta käyttämällä plakin vähentämisneutralointimääritystä (PRNT)50. Tässä tutkimuksessa havaitsimme, että Iso-Britanniasta peräisin oleva IVIG ei sisältänyt vasta-ainetta, ja JEV:tä vastaan rokotetun laboratoriotyöntekijän seerumi sisälsi pienen määrän neutraloivaa vasta-ainetta. Sitä vastoin Bharratin, Hualanin, Sichunin ja Reliance-yhtiöiden valmistaman IVIG:n neutraloivat vasta-ainetiitterit olivat yli 1:400, ja Reliancella oli suurin titteri, lähes 1:750.
Immunorel™ on pakattu kirkkaisiin ja värittömiin injektiopulloihin, ja niitä on saatavana 2 pakkauskokona, joista jokainen sisältää IVIG:n annoksena 0,05 g/ml (eli 50 mg/ml). Saatavilla olevat injektiopullot ovat 50 ml (sisältää 2,5 g) ja 100 ml (5,0 g).
Lapset saavat siten 400 mg/kg/vrk IVIG:tä, joka vastaa 8 ml/kg/vrk Immunorel™-liuosta tai 8 ml/kg/vrk 0,9 % normaalia suolaliuosta.
Farmakokinetiikka: Jakautumistutkimuksia on tehty useilla IVIG-valmisteilla. Tutkimuksessa potilailla, joille kehittyi aseptinen meningiitti (infuusion komplikaationa) saatuaan 2 g/kg suonensisäisesti kahteen annokseen jaettuna, seerumin taso nousee viisinkertaiseksi ja laskee sitten 50 % seuraavien 72 tunnin aikana, kun ekstravaskulaarinen uudelleenjakautuminen kesti. paikka. Esikäsittelytasot saavutettiin 21–28 päivän kuluttua. Puoliintumisaika oli 18-32 päivää ja oli samanlainen kuin natiivi immunoglobuliinilla. Ensimmäisen 48 tunnin aikana infuusion jälkeen CSF-pitoisuus nousi 1,5-7-kertaiseksi, mutta palautui normaaliksi viikon kuluessa. Keskushermoston tunkeutumista voidaan odottaa potilailla, joilla on virusperäinen meningoenkefaliitti tai jopa enkefalomyeliitti, koska veri-aivoeste hajoaa. IVIG:n metabolia tapahtuu retikuloendoteliaalijärjestelmän soluissa, joissa immunoglobuliinit ja immunoglobuliinikompleksit hajoavat.
Immunorel®-tutkimukset normaaleilla koehenkilöillä osoittivat, että seerumin huippupitoisuudet ilmaantuvat välittömästi suonensisäisen injektion jälkeen ja ovat annoksesta riippuvaisia. Jopa 30 % annoksesta voi poistua 24 tunnin kuluessa katabolian ja jakautumisen kautta. Jakaumatiedot viittaavat siihen, että IVIg jakautuu suonensisäisiin (60 %) ja ekstravaskulaarisiin (40 %) tiloihin. Immunoglobuliinin puoliintumisaika seerumissa on 21-29 päivää.
Laskimonsisäiseen immunoglobuliiniin liittyvät reaktiot: Suonensisäiseen immunoglobuliiniin liittyvät reaktiot liittyvät yleensä infuusionopeuteen, ja ne ilmenevät todennäköisimmin infuusion ensimmäisen tunnin aikana. Seuraamme potilaan elintoimintoja ja yleistilaa säännöllisesti koko infuusion ajan. Raportoituja reaktioita ovat vatsakipu, päänsärky, puristava tunne rinnassa, kasvojen punoitus tai kalpeus, kuumat tunteet, hengenahdistus, ei-urtikariallinen ihottuma, kutina, hypotensio, pahoinvointi tai oksentelu. Jos jokin näistä reaktioista kehittyy IVIG-infuusion aikana, infuusio keskeytetään tilapäisesti, kunnes potilas paranee kliinisesti (5–10 minuuttia), ja aloitetaan sitten varovaisesti uudelleen hitaammin. Joillekin potilaille saattaa ilmaantua viivästyneitä IVIG:n haittavaikutuksia, kuten pahoinvointia, oksentelua, rintakipua, jäykkyyttä, huimausta tai särkyä jaloissa. Nämä haittavaikutukset ilmenevät infuusion lopettamisen jälkeen, mutta yleensä 24 tunnin kuluessa. Todellisia yliherkkyysreaktioita IVIG:lle, kuten urtikariaa, angioedeemaa, bronkospasmia tai hypotensiota, esiintyy hyvin harvoin. Jos IVIG:n jälkeen kehittyy anafylaktinen reaktio, infuusio lopetetaan ja hoito aloitetaan adrenaliinilla, hapella, antihistamiinilla ja steroideilla. Hemolyyttistä anemiaa ja neutropeniaa on raportoitu harvoissa tapauksissa IVIG-hoidon yhteydessä. Seerumin transaminaasiarvojen (AST, ALT, gamma GT) lievää ja kohtalaista nousua on havaittu pienellä määrällä IVIG-hoitoa saaneita potilaita. Tällaiset muutokset olivat ohimeneviä eivätkä liittyneet hepatiitin leviämiseen. Harvinaisia komplikaatioita, kuten aseptinen meningiitti-oireyhtymä (AMS), tromboflebiitti, munuaisten vajaatoiminta ja akuutti munuaisten vajaatoiminta, on esiintynyt IVIG-hoitoa saaneilla potilailla. Maksan ja munuaisten toimintaa seurataan tutkimuksen aikana.
Immunorel™:iin liittyvät reaktiot:
i. Primaarinen immuunivajaus: Immuunivajausoireyhtymää sairastavilla potilailla, jotka saavat IVIG-hoitoa kuukausiannoksella 400 mg/kg, raportoidut reaktiot ovat olleet huonovointisuus, pyörtymisen tunne, kuume, vilunväristykset, päänsärky, pahoinvointi, oksentelu, puristava tunne rinnassa, hengenahdistus ja rintakehä , selkä- tai lonkkakipu. Joissakin tapauksissa on myös raportoitu lievää eryteemaa infuusiokohdassa.
ii. Idiopaattinen trombosytopeeninen purppura (ITP): ITP:tä sairastavien aikuis- ja lapsipotilaiden hoidossa annoksella 400 mg/kg ruumiinpainoa, systeemisiä reaktioita havaittiin vain alle 3 %:lla potilaista. Muita oireita, jotka olivat kaikki lieviä ja ohimeneviä, ovat puristava tunne rinnassa, takykardian tunne ja polttava tunne päässä. Annoksella 1000 mg/kg joko yhtenä annoksena tai kahtena annoksena peräkkäisinä päivinä ITP:tä sairastavien aikuis- ja lapsipotilaiden hoidossa. Haittavaikutuksia on havaittu vain alle 10 %:lla potilaista.
iii. Luuydinsiirto: Annoksella 500 mg/kg 7 päivää ja kaksi päivää ennen elinsiirtoa ja viikoittain 90. päivään siirron jälkeen haittavaikutuksia raportoitiin alle 7 %:lla potilaista. Kaikki reaktiot luokiteltiin lieviksi, mukaan lukien päänsärky, punoitus, kuume ja lievä selkäkipu.
iv. Munuaiset: Kreatiniinin ja veren ureatypen (BUN) nousua voidaan havaita jo 1-2 päivää infuusion jälkeen. Eteneminen oliguriaan tai anuriaan saattaa vaatia dialyysihoitoa. Vakavia satunnaisia haittavaikutuksia on raportoitu IVIG-hoidon jälkeen: akuutti munuaisten vajaatoiminta, akuutti tubulusnekroosi, proksimaalinen tubulusnefropatia ja osmoottinen nefoosi. Volyymivajeen korjaaminen käyttämällä sopivia nesteitä ennen IVIG-hoidon aloittamista on siksi välttämätöntä. Veren ureatypen (BUN) ja/tai seerumin kreatiniinin mittaus on suoritettava ennen IVIG-infuusiota ja uudelleen asianmukaisin väliajoin sen jälkeen sekä virtsan eritystä seuraten.
iv. Yleistä: IVIG-reaktiot liittyvät infuusionopeuteen. Hyvin harvoin anafylaktoidisia reaktioita voi esiintyä potilailla, joilla ei ole aiemmin ollut vakavia allergisia reaktioita lihakseen tai suonensisäiseen immunoglobuliiniin.
Mutageenisuus, karsinogeenisuus ja hedelmällisyyden heikkeneminen: Gamma IV™:llä ei ole tehty lisääntymistutkimuksia eläimillä. Siksi ei tiedetä, voiko IVIG aiheuttaa sikiövaurioita, kun se annetaan raskaana olevalle naiselle, tai voiko se vaikuttaa lisääntymiskykyyn.
Yhteisvaikutukset muiden lääkkeiden kanssa: IVIG:n yhteisvaikutuksia muiden lääkkeiden kanssa ei ole osoitettu asianmukaisissa tutkimuksissa. Passiivisesti hankittu vasta-aine voi häiritä vastetta eläville, heikennetyille rokotteille. Siksi tällaisten rokotteiden, esim. poliomyeliitti tai tuhkarokko, lykätään noin kuuden kuukauden ajan IVIG-infuusion jälkeen. Samoin immunoglobuliineja ei tule antaa vähintään kahteen viikkoon rokotteen antamisen jälkeen.
Vasta-aiheet: IVIG on vasta-aiheinen henkilöillä, joilla tiedetään olevan anafylaktinen tai vaikea systeeminen vaste immuuniglobuliinille (ihminen). Henkilöiden, joilla on selektiivisiä lgA-puutteita, ei pitäisi saada Gamma IV™ -valmistetta, koska nämä henkilöt voivat kokea palvelinreaktioita lgA:lle, joka saattaa olla läsnä.
Turvallisuusvaroitukset: Tuotetta ei saa käyttää, jos se on samea. Jäätyneitä liuoksia ei saa käyttää. Kun injektiopullo on avattu, vaikka se olisi vain osittain käytetty, se on hävitettävä. IVIG tulee antaa vain suonensisäisesti, koska lihaksensisäistä ja ihonalaista reittiä ei ole arvioitu.
Annostus ja antotapa: Yleisesti suositellaan, että IVIG annetaan sellaisenaan alkunopeudella 0,01-0,02 ml/kg/min 30 minuutin ajan. Jos lääke on hyvin siedetty, nopeutta voidaan vähitellen nostaa korkeintaan 0,08 ml/min. kg ruumiinpainoa/minuutti. IVIG suositellaan annettavaksi erillisen letkun kautta ilman sekoittamista muiden potilaiden mahdollisesti saamien suonensisäisten nesteiden tai lääkkeiden kanssa. IVIG ei ole yhteensopiva suolaliuoksen kanssa. Tarvittaessa laimennus, IVIG voidaan laimentaa 5 %:lla dekstroosia vedessä.
Opintotyyppi
Ilmoittautuminen (Todellinen)
Vaihe
- Vaihe 2
Yhteystiedot ja paikat
Opiskelupaikat
-
-
Bagmati
-
Kathmandu, Bagmati, Nepal, 44616
- Kanti Children's Hospital
-
-
Koshi
-
Dharan, Koshi, Nepal
- BP Koirala Institute of Health Sciences
-
-
Osallistumiskriteerit
Kelpoisuusvaatimukset
Opintokelpoiset iät
Hyväksyy terveitä vapaaehtoisia
Sukupuolet, jotka voivat opiskella
Kuvaus
Sisällyttämiskriteerit:
- 1–14-vuotiaat lapset, joilla on kliinisesti diagnosoitu enkefaliitti alle 14 päivää kestäneen kuumeen perusteella, tajunnanmuutos joko uusien kohtausten kanssa tai ilman, ja selkäydinnesteessä valkosolujen määrä alle 1000 solua/mm3 ei organismeja Gram-värjäyksessä ja CSF: plasman glukoosisuhde > 40 % otettu Kantin lastensairaalaan ja BP Koiralan terveystieteiden instituuttiin, Nepalissa.
Poissulkemiskriteerit:
Aseksuaaliset Plasmodium falciparum -loiset veressä
- Kooma näyttää olevan toissijainen muihin systeemisiin sairauksiin, kuten maksan vajaatoimintaan, sydämen vajaatoimintaan, myrkkyihin.
- Potilaat, joilla on dokumentoitu antibioottihoito ennen vastaanottoa ja joilla osittain hoidettu bakteeriperäinen aivokalvontulehdus on todennäköisempi kuin enkefaliitti
- Lapset, joilla on yksinkertaisia kuumekuristuksia, jotka määritellään yhdeksi alle 15 minuuttia kestäväksi kohtaukseksi, jota seuraa täydellinen tajunnan toipuminen 60 minuutin kuluessa.
- Raskaana olevat tai imettävät naiset
- Lapset, joiden GCS oli 3/15, jotka saivat keinotekoista ventilaatiota ilman spontaanin hengityksen merkkejä ja joilla ei ollut okulokefaalista refleksiä.
Opintosuunnitelma
Miten tutkimus on suunniteltu?
Suunnittelun yksityiskohdat
- Ensisijainen käyttötarkoitus: Hoito
- Jako: Satunnaistettu
- Inventiomalli: Rinnakkaistehtävä
- Naamiointi: Kolminkertaistaa
Aseet ja interventiot
Osallistujaryhmä / Arm |
Interventio / Hoito |
---|---|
Placebo Comparator: IVIG in JE (JE-positiivinen)
Jaoimme satunnaisesti potilaat IVIG- tai lumelääkehoitoon.
Lapset saivat joko suolaliuosta tai suonensisäistä immunoglobuliinia (IVIG) [ImmunoRel™ (erä 20081217)] annoksena 400 mg/kg/vrk 5 päivän ajan tai vastaavan tilavuuden 0,9 % normaalia suolaliuosta laskimoon 0,01-0,02 ml/vrk. kg ruumiinpainoa/minuutti.
Kaikki tutkijat, hoidon tarjoajat ja osallistujat sokeutuivat tutkimuslääkkeestä.
Toisessa sinetöidyssä kirjekuoressa oli potilaan muistiinpanoja siltä varalta, että lääkärin tarvitsi kiireesti tietää, mitä lääkettä potilas oli saanut.
|
IVIG-ryhmä sai 400 mg/kg/vrk suonensisäisesti nopeudella 0,01-0,02 ml/kg ruumiinpainoa/min 5 päivän ajan tai sivuvaikutusten tai haittatapahtumien ilmaantuessa. Lumeryhmä sai 0,9 % suolaliuosta suonensisäisesti samalla nopeudella. |
Placebo Comparator: IVIG ei-JE:ssä (JE-negatiivinen)
Jaoimme satunnaisesti potilaat IVIG- tai lumelääkehoitoon.
Lapset saivat joko suolaliuosta tai suonensisäistä immunoglobuliinia (IVIG) [ImmunoRel™ (erä 20081217)] annoksena 400 mg/kg/vrk 5 päivän ajan tai vastaavan tilavuuden 0,9 % normaalia suolaliuosta laskimoon 0,01-0,02 ml/vrk. kg ruumiinpainoa/minuutti.
Kaikki tutkijat, hoidon tarjoajat ja osallistujat sokeutuivat tutkimuslääkkeestä.
Toisessa sinetöidyssä kirjekuoressa oli potilaan muistiinpanoja siltä varalta, että lääkärin tarvitsi kiireesti tietää, mitä lääkettä potilas oli saanut.
|
IVIG-ryhmä sai 400 mg/kg/vrk suonensisäisesti nopeudella 0,01-0,02 ml/kg ruumiinpainoa/min 5 päivän ajan tai sivuvaikutusten tai haittatapahtumien ilmaantuessa. Lumeryhmä sai 0,9 % suolaliuosta suonensisäisesti samalla nopeudella. |
Mitä tutkimuksessa mitataan?
Ensisijaiset tulostoimenpiteet
Tulosmittaus |
Toimenpiteen kuvaus |
Aikaikkuna |
---|---|---|
Näyttöä tutkimuslääkkeen sivuvaikutuksista, kuten infuusiokohdan reaktiosta, ripulista, verenpaineen noususta ja virtsan erityksen muutoksesta
Aikaikkuna: 12 tunnin välein tutkimuslääkkeen annon jälkeen kotiutukseen saakka, joka on keskimäärin kahdeksas päivä (192 tuntia) sairaalahoitoa
|
Potilaita seurataan sivuvaikutusten, kuten infuusiokohdan reaktion, ripulin, verenpaineen nousun (mm Hg) ja virtsaamismäärän (ml/kg/tunti) varalta 12 tunnin välein hoidon ensimmäisestä päivästä kuolemaan asti tai purkaa.
Potilaalle annetaan tutkimuslääkettä keskimäärin ensimmäisenä vastaanottopäivänä.
Tutkimuslääkettä annetaan päivittäin 5 päivän ajan.
Potilaat kotiutetaan keskimäärin kahdeksantena sairaalahoitopäivänä (192 tuntia).
|
12 tunnin välein tutkimuslääkkeen annon jälkeen kotiutukseen saakka, joka on keskimäärin kahdeksas päivä (192 tuntia) sairaalahoitoa
|
Toissijaiset tulostoimenpiteet
Tulosmittaus |
Toimenpiteen kuvaus |
Aikaikkuna |
---|---|---|
Kuolema tai neurologiset seuraukset
Aikaikkuna: Kotiuttamishetkellä odotettu keskiarvo kahdeksantena vastaanottopäivänä ja uudelleen 6 kuukauden kuluttua kotiuttamisesta
|
Kotiutumisen yhteydessä (arvioitu kahdeksannen vastaanottopäivän keskiarvo) tai kuolema: Aika kuolemaan, koomasta toipumiseen, itsenäiseen istumiseen, itsenäiseen seisomiseen, vähintään 5 metrin kävelyyn itsenäisesti ja sairaalasta poistumiseen. Kuuden kuukauden kuluttua kotiutumisen jälkeen: aiempia kohtauksia, käyttäytymismuutoksia, todisteita neurologisten seurausten toipumisesta, kuten kyvystä istua itsenäisesti, seisoa itsenäisesti, kävellä vähintään 5 metriä itsenäisesti. |
Kotiuttamishetkellä odotettu keskiarvo kahdeksantena vastaanottopäivänä ja uudelleen 6 kuukauden kuluttua kotiuttamisesta
|
Muut tulostoimenpiteet
Tulosmittaus |
Toimenpiteen kuvaus |
Aikaikkuna |
---|---|---|
Seerumin JEV PRNT50 taso (immunologinen merkkiaine)
Aikaikkuna: Mitattu 3 ajankohtana: esihoito (juuri ennen ensimmäistä tutkimuslääkeannosta ensimmäisenä päivänä), hoidon puoliväli (juuri ennen neljättä annosta neljäntenä päivänä) ja hoidon jälkeen (tunti viidennen annoksen jälkeen viidentenä päivänä).
|
Esikäsittely oli välittömästi ennen ensimmäistä tutkimuslääkkeen annosta ensimmäisenä päivänä, keskihoito oli välittömästi ennen neljättä annosta ja jälkihoito oli 1 tunti tutkimuslääkkeen viidennen annoksen antamisen jälkeen.
|
Mitattu 3 ajankohtana: esihoito (juuri ennen ensimmäistä tutkimuslääkeannosta ensimmäisenä päivänä), hoidon puoliväli (juuri ennen neljättä annosta neljäntenä päivänä) ja hoidon jälkeen (tunti viidennen annoksen jälkeen viidentenä päivänä).
|
Yhteistyökumppanit ja tutkijat
Sponsori
Tutkijat
- Opintojen puheenjohtaja: Tom Solomon, MRCP, PhD, Director,Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK , Head- Liverpool Brain Infection Group
- Päätutkija: Ajit Rayamajhi, MBBS, MD, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Liverpool, UK & Kanti Children's Hospital, Maharajgunj, Kathmandu, Nepal
- Opintojohtaja: Sam Nightingale, MRCP, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK
Julkaisuja ja hyödyllisiä linkkejä
Yleiset julkaisut
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Gainsborough M, Vaughn DW, Khanh VT. Japanese encephalitis. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2000 Apr;68(4):405-15. doi: 10.1136/jnnp.68.4.405. No abstract available.
- Tsai TF. New initiatives for the control of Japanese encephalitis by vaccination: minutes of a WHO/CVI meeting, Bangkok, Thailand, 13-15 October 1998. Vaccine. 2000 May 26;18 Suppl 2:1-25. doi: 10.1016/s0264-410x(00)00037-2.
- Innis BL. Japanese encephalitis. In: Porterfield JS, editor. Exotic Viral Infections. London: Chapman & Hall; 1995. p. 147-74.
- Sumiyoshi H, Mori C, Fuke I, Morita K, Kuhara S, Kondou J, Kikuchi Y, Nagamatu H, Igarashi A. Complete nucleotide sequence of the Japanese encephalitis virus genome RNA. Virology. 1987 Dec;161(2):497-510. doi: 10.1016/0042-6822(87)90144-9.
- Chambers TJ, Hahn CS, Galler R, Rice CM. Flavivirus genome organization, expression, and replication. Annu Rev Microbiol. 1990;44:649-88. doi: 10.1146/annurev.mi.44.100190.003245. No abstract available.
- Gajanana A, Thenmozhi V, Samuel PP, Reuben R. A community-based study of subclinical flavivirus infections in children in an area of Tamil Nadu, India, where Japanese encephalitis is endemic. Bull World Health Organ. 1995;73(2):237-44.
- HALSTEAD SB, GROSZ CR. Subclinical Japanese encephalitis. I. Infection of Americans with limited residence in Korea. Am J Hyg. 1962 Mar;75:190-201. No abstract available.
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Thao le TT, Gainsborough M, Nisalak A, Day NP, Kirkham FJ, Vaughn DW, Smith S, White NJ. Seizures and raised intracranial pressure in Vietnamese patients with Japanese encephalitis. Brain. 2002 May;125(Pt 5):1084-93. doi: 10.1093/brain/awf116.
- Solomon T, Kneen R, Dung NM, Khanh VC, Thuy TT, Ha DQ, Day NP, Nisalak A, Vaughn DW, White NJ. Poliomyelitis-like illness due to Japanese encephalitis virus. Lancet. 1998 Apr 11;351(9109):1094-7. doi: 10.1016/S0140-6736(97)07509-0.
- Chen WR, Tesh RB, Rico-Hesse R. Genetic variation of Japanese encephalitis virus in nature. J Gen Virol. 1990 Dec;71 ( Pt 12):2915-22. doi: 10.1099/0022-1317-71-12-2915.
- Chen WR, Rico-Hesse R, Tesh RB. A new genotype of Japanese encephalitis virus from Indonesia. Am J Trop Med Hyg. 1992 Jul;47(1):61-9. doi: 10.4269/ajtmh.1992.47.61.
- Gould EA. Evolution of the Japanese encephalitis serocomplex viruses. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:391-404. Review.
- Solomon T, Ni H, Beasley DW, Ekkelenkamp M, Cardosa MJ, Barrett AD. Origin and evolution of Japanese encephalitis virus in southeast Asia. J Virol. 2003 Mar;77(5):3091-8. doi: 10.1128/jvi.77.5.3091-3098.2003.
- Shope RE. Concepts of control of Japanese encephalitis and dengue. Southeast Asian J Trop Med Public Health. 1997;28 Suppl 2:131-4.
- Solomon T. Vaccines against Japanese encephalitis. In: Jong EC, Zuckerman JN, editors. Travelers' vaccines. Ontario, Canada: B.C. Decker; 2004. p. 219-56.
- Monath TP. Japanese encephalitis vaccines: current vaccines and future prospects. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:105-38. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_6.
- Bista MB, Banerjee MK, Shin SH, Tandan JB, Kim MH, Sohn YM, Ohrr HC, Tang JL, Halstead SB. Efficacy of single-dose SA 14-14-2 vaccine against Japanese encephalitis: a case control study. Lancet. 2001 Sep 8;358(9284):791-5. doi: 10.1016/s0140-6736(01)05967-0.
- Solomon T, Dung NM, Wills B, Kneen R, Gainsborough M, Diet TV, Thuy TT, Loan HT, Khanh VC, Vaughn DW, White NJ, Farrar JJ. Interferon alfa-2a in Japanese encephalitis: a randomised double-blind placebo-controlled trial. Lancet. 2003 Mar 8;361(9360):821-6. doi: 10.1016/s0140-6736(03)12709-2.
- Griffin DE. Immune responses to RNA-virus infections of the CNS. Nat Rev Immunol. 2003 Jun;3(6):493-502. doi: 10.1038/nri1105.
- Irani DN. Central nervous system inflammation: can't live with it, can't live without it. Curr Opin Neurol. 2001 Jun;14(3):347-8. doi: 10.1097/00019052-200106000-00013. No abstract available.
- Kimura T, Griffin DE. Extensive immune-mediated hippocampal damage in mice surviving infection with neuroadapted Sindbis virus. Virology. 2003 Jun 20;311(1):28-39. doi: 10.1016/s0042-6822(03)00110-7.
- Hoke CH Jr, Vaughn DW, Nisalak A, Intralawan P, Poolsuppasit S, Jongsawas V, Titsyakorn U, Johnson RT. Effect of high-dose dexamethasone on the outcome of acute encephalitis due to Japanese encephalitis virus. J Infect Dis. 1992 Apr;165(4):631-7. doi: 10.1093/infdis/165.4.631.
- Caramello P, Canta F, Balbiano R, Lipani F, Ariaudo S, De Agostini M, Calleri G, Boglione L, Di Caro A. Role of intravenous immunoglobulin administration in Japanese encephalitis. Clin Infect Dis. 2006 Dec 15;43(12):1620-1. doi: 10.1086/509644. No abstract available.
- Agrawal AG, Petersen LR. Human immunoglobulin as a treatment for West Nile virus infection. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):1-4. doi: 10.1086/376871. Epub 2003 Jun 23. No abstract available.
- Burke DS, Lorsomrudee W, Leake CJ, Hoke CH, Nisalak A, Chongswasdi V, Laorakpongse T. Fatal outcome in Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1985 Nov;34(6):1203-10. doi: 10.4269/ajtmh.1985.34.1203.
- Solomon T, Thao LT, Dung NM, Kneen R, Hung NT, Nisalak A, Vaughn DW, Farrar J, Hien TT, White NJ, Cardosa MJ. Rapid diagnosis of Japanese encephalitis by using an immunoglobulin M dot enzyme immunoassay. J Clin Microbiol. 1998 Jul;36(7):2030-4. doi: 10.1128/JCM.36.7.2030-2034.1998.
- Solomon T, Vaughn DW. Pathogenesis and clinical features of Japanese encephalitis and West Nile virus infections. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:171-94. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_9. No abstract available.
- Burke DS, Nisalak A, Lorsomrudee W, Ussery MA, Laorpongse T. Virus-specific antibody-producing cells in blood and cerebrospinal fluid in acute Japanese encephalitis. J Med Virol. 1985 Nov;17(3):283-92. doi: 10.1002/jmv.1890170310.
- Desai A, Shankar SK, Ravi V, Chandramuki A, Gourie-Devi M. Japanese encephalitis virus antigen in the human brain and its topographic distribution. Acta Neuropathol. 1995;89(4):368-73. doi: 10.1007/BF00309631.
- Shankar SK, Rao TV, Mruthyunjayanna BP, Gourie Devi M, Deshpande DH. Autopsy study of brains during an epidemic of Japanese encephalitis in Karnataka. Indian J Med Res. 1983 Sep;78:431-40. No abstract available.
- Li ZS, Hong SF, Gong NL. Immunohistochemical study on Japanese B encephalitis. Chin Med J (Engl). 1988 Oct;101(10):768-71. No abstract available.
- Johnson RT, Burke DS, Elwell M, Leake CJ, Nisalak A, Hoke CH, Lorsomrudee W. Japanese encephalitis: immunocytochemical studies of viral antigen and inflammatory cells in fatal cases. Ann Neurol. 1985 Nov;18(5):567-73. doi: 10.1002/ana.410180510.
- MIYAKE M. THE PATHOLOGY OF JAPANESE ENCEPHALITIS. A REVIEW. Bull World Health Organ. 1964;30(2):153-60.
- Solomon T. Flavivirus encephalitis. N Engl J Med. 2004 Jul 22;351(4):370-8. doi: 10.1056/NEJMra030476. No abstract available.
- McMinn PC. The molecular basis of virulence of the encephalitogenic flaviviruses. J Gen Virol. 1997 Nov;78 ( Pt 11):2711-22. doi: 10.1099/0022-1317-78-11-2711. No abstract available.
- Doherty PC, Zinkernagel RM. T-cell-mediated immunopathology in viral infections. Transplant Rev. 1974;19(0):89-120. doi: 10.1111/j.1600-065x.1974.tb00129.x. No abstract available.
- Rowell JF, Griffin DE. Contribution of T cells to mortality in neurovirulent Sindbis virus encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 2002 Jun;127(1-2):106-14. doi: 10.1016/s0165-5728(02)00108-x.
- Atrasheuskaya A, Petzelbauer P, Fredeking TM, Ignatyev G. Anti-TNF antibody treatment reduces mortality in experimental dengue virus infection. FEMS Immunol Med Microbiol. 2003 Jan 21;35(1):33-42. doi: 10.1111/j.1574-695X.2003.tb00646.x.
- Liu T, Chambers TJ. Yellow fever virus encephalitis: properties of the brain-associated T-cell response during virus clearance in normal and gamma interferon-deficient mice and requirement for CD4+ lymphocytes. J Virol. 2001 Mar;75(5):2107-18. doi: 10.1128/JVI.75.5.2107-2118.2001.
- Wang Y, Lobigs M, Lee E, Mullbacher A. CD8+ T cells mediate recovery and immunopathology in West Nile virus encephalitis. J Virol. 2003 Dec;77(24):13323-34. doi: 10.1128/jvi.77.24.13323-13334.2003.
- Wang T, Town T, Alexopoulou L, Anderson JF, Fikrig E, Flavell RA. Toll-like receptor 3 mediates West Nile virus entry into the brain causing lethal encephalitis. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1366-73. doi: 10.1038/nm1140. Epub 2004 Nov 21.
- Diamond MS, Klein RS. West Nile virus: crossing the blood-brain barrier. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1294-5. doi: 10.1038/nm1204-1294. No abstract available.
- Chambers TJ, Diamond MS. Pathogenesis of flavivirus encephalitis. Adv Virus Res. 2003;60:273-342. doi: 10.1016/s0065-3527(03)60008-4.
- Myint KS, Gibbons RV, Perng GC, Solomon T. Unravelling the neuropathogenesis of Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2007 Oct;101(10):955-6. doi: 10.1016/j.trstmh.2007.04.004. Epub 2007 Jun 4.
- Glass WG, McDermott DH, Lim JK, Lekhong S, Yu SF, Frank WA, Pape J, Cheshier RC, Murphy PM. CCR5 deficiency increases risk of symptomatic West Nile virus infection. J Exp Med. 2006 Jan 23;203(1):35-40. doi: 10.1084/jem.20051970. Epub 2006 Jan 17.
- Glass WG, Lim JK, Cholera R, Pletnev AG, Gao JL, Murphy PM. Chemokine receptor CCR5 promotes leukocyte trafficking to the brain and survival in West Nile virus infection. J Exp Med. 2005 Oct 17;202(8):1087-98. doi: 10.1084/jem.20042530.
- Bhowmick S, Duseja R, Das S, Appaiahgiri MB, Vrati S, Basu A. Induction of IP-10 (CXCL10) in astrocytes following Japanese encephalitis. Neurosci Lett. 2007 Feb 27;414(1):45-50. doi: 10.1016/j.neulet.2006.11.070. Epub 2007 Jan 8.
- Ghoshal A, Das S, Ghosh S, Mishra MK, Sharma V, Koli P, Sen E, Basu A. Proinflammatory mediators released by activated microglia induces neuronal death in Japanese encephalitis. Glia. 2007 Apr 1;55(5):483-96. doi: 10.1002/glia.20474.
- Li Y, Fu L, Gonzales DM, Lavi E. Coronavirus neurovirulence correlates with the ability of the virus to induce proinflammatory cytokine signals from astrocytes and microglia. J Virol. 2004 Apr;78(7):3398-406. doi: 10.1128/jvi.78.7.3398-3406.2004.
- Allan SM, Rothwell NJ. Inflammation in central nervous system injury. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2003 Oct 29;358(1438):1669-77. doi: 10.1098/rstb.2003.1358.
- Van Wagoner NJ, Benveniste EN. Interleukin-6 expression and regulation in astrocytes. J Neuroimmunol. 1999 Dec;100(1-2):124-39. doi: 10.1016/s0165-5728(99)00187-3.
- Frei K, Malipiero UV, Leist TP, Zinkernagel RM, Schwab ME, Fontana A. On the cellular source and function of interleukin 6 produced in the central nervous system in viral diseases. Eur J Immunol. 1989 Apr;19(4):689-94. doi: 10.1002/eji.1830190418.
- Morris MM, Dyson H, Baker D, Harbige LS, Fazakerley JK, Amor S. Characterization of the cellular and cytokine response in the central nervous system following Semliki Forest virus infection. J Neuroimmunol. 1997 Apr;74(1-2):185-97. doi: 10.1016/s0165-5728(96)00786-2.
- Brett FM, Mizisin AP, Powell HC, Campbell IL. Evolution of neuropathologic abnormalities associated with blood-brain barrier breakdown in transgenic mice expressing interleukin-6 in astrocytes. J Neuropathol Exp Neurol. 1995 Nov;54(6):766-75. doi: 10.1097/00005072-199511000-00003.
- Paul R, Koedel U, Winkler F, Kieseier BC, Fontana A, Kopf M, Hartung HP, Pfister HW. Lack of IL-6 augments inflammatory response but decreases vascular permeability in bacterial meningitis. Brain. 2003 Aug;126(Pt 8):1873-82. doi: 10.1093/brain/awg171. Epub 2003 Jun 23.
- Abraham CS, Deli MA, Joo F, Megyeri P, Torpier G. Intracarotid tumor necrosis factor-alpha administration increases the blood-brain barrier permeability in cerebral cortex of the newborn pig: quantitative aspects of double-labelling studies and confocal laser scanning analysis. Neurosci Lett. 1996 Apr 19;208(2):85-8. doi: 10.1016/0304-3940(96)12546-5.
- Munoz-Fernandez MA, Fresno M. The role of tumour necrosis factor, interleukin 6, interferon-gamma and inducible nitric oxide synthase in the development and pathology of the nervous system. Prog Neurobiol. 1998 Oct;56(3):307-40. doi: 10.1016/s0301-0082(98)00045-8.
- Griffin DE, Hardwick JM. Perspective: virus infections and the death of neurons. Trends Microbiol. 1999 Apr;7(4):155-60. doi: 10.1016/s0966-842x(99)01470-5.
- Winter PM, Dung NM, Loan HT, Kneen R, Wills B, Thu le T, House D, White NJ, Farrar JJ, Hart CA, Solomon T. Proinflammatory cytokines and chemokines in humans with Japanese encephalitis. J Infect Dis. 2004 Nov 1;190(9):1618-26. doi: 10.1086/423328. Epub 2004 Sep 29.
- Solomon T, Dung NM, Vaughn DW, Kneen R, Thao LT, Raengsakulrach B, Loan HT, Day NP, Farrar J, Myint KS, Warrell MJ, James WS, Nisalak A, White NJ. Neurological manifestations of dengue infection. Lancet. 2000 Mar 25;355(9209):1053-9. doi: 10.1016/S0140-6736(00)02036-5.
- Leis AA, Stokic DS, Polk JL, Dostrow V, Winkelmann M. A poliomyelitis-like syndrome from West Nile virus infection. N Engl J Med. 2002 Oct 17;347(16):1279-80. doi: 10.1056/NEJM2002c021587. Epub 2002 Sep 23. No abstract available.
- Solomon T, Winter PM. Neurovirulence and host factors in flavivirus encephalitis--evidence from clinical epidemiology. Arch Virol Suppl. 2004;(18):161-70. doi: 10.1007/978-3-7091-0572-6_14.
- German AC, Myint KS, Mai NT, Pomeroy I, Phu NH, Tzartos J, Winter P, Collett J, Farrar J, Barrett A, Kipar A, Esiri MM, Solomon T. A preliminary neuropathological study of Japanese encephalitis in humans and a mouse model. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2006 Dec;100(12):1135-45. doi: 10.1016/j.trstmh.2006.02.008. Epub 2006 Jun 30.
- Ravi V, Parida S, Desai A, Chandramuki A, Gourie-Devi M, Grau GE. Correlation of tumor necrosis factor levels in the serum and cerebrospinal fluid with clinical outcome in Japanese encephalitis patients. J Med Virol. 1997 Feb;51(2):132-6.
- Singh A, Kulshreshtha R, Mathur A. Secretion of the chemokine interleukin-8 during Japanese encephalitis virus infection. J Med Microbiol. 2000 Jul;49(7):607-612. doi: 10.1099/0022-1317-49-7-607.
- Iwamoto M, Jernigan DB, Guasch A, Trepka MJ, Blackmore CG, Hellinger WC, Pham SM, Zaki S, Lanciotti RS, Lance-Parker SE, DiazGranados CA, Winquist AG, Perlino CA, Wiersma S, Hillyer KL, Goodman JL, Marfin AA, Chamberland ME, Petersen LR; West Nile Virus in Transplant Recipients Investigation Team. Transmission of West Nile virus from an organ donor to four transplant recipients. N Engl J Med. 2003 May 29;348(22):2196-203. doi: 10.1056/NEJMoa022987.
- Chabas D, Baranzini SE, Mitchell D, Bernard CC, Rittling SR, Denhardt DT, Sobel RA, Lock C, Karpuj M, Pedotti R, Heller R, Oksenberg JR, Steinman L. The influence of the proinflammatory cytokine, osteopontin, on autoimmune demyelinating disease. Science. 2001 Nov 23;294(5547):1731-5. doi: 10.1126/science.1062960.
- Lock C, Hermans G, Pedotti R, Brendolan A, Schadt E, Garren H, Langer-Gould A, Strober S, Cannella B, Allard J, Klonowski P, Austin A, Lad N, Kaminski N, Galli SJ, Oksenberg JR, Raine CS, Heller R, Steinman L. Gene-microarray analysis of multiple sclerosis lesions yields new targets validated in autoimmune encephalomyelitis. Nat Med. 2002 May;8(5):500-8. doi: 10.1038/nm0502-500.
- Solomon T. Japanese encephalitis: Clinical features & pathogenesis. 55th Annual Meeting of the American Society of Tropical Medicine and Hygiene; 2006; Atlanta, Georgia; 2006.
- Edelman R, Schneider RJ, Vejjajiva A, Pornpibul R, Voodhikul P. Persistence of virus-specific IgM and clinical recovery after Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1976 Sep;25(5):733-8. doi: 10.4269/ajtmh.1976.25.733.
- Burke DS, Nisalak A, Ussery MA, Laorakpongse T, Chantavibul S. Kinetics of IgM and IgG responses to Japanese encephalitis virus in human serum and cerebrospinal fluid. J Infect Dis. 1985 Jun;151(6):1093-9. doi: 10.1093/infdis/151.6.1093.
- Kumar R, Mathur A, Kumar A, Sharma S, Chakraborty S, Chaturvedi UC. Clinical features & prognostic indicators of Japanese encephalitis in children in Lucknow (India). Indian J Med Res. 1990 Sep;91:321-7.
- Libraty DH, Nisalak A, Endy TP, Suntayakorn S, Vaughn DW, Innis BL. Clinical and immunological risk factors for severe disease in Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2002 Mar-Apr;96(2):173-8. doi: 10.1016/s0035-9203(02)90294-4.
- Bista MB, Shrestha JM. Epidemiological situation of Japanese encephalitis in Nepal. JNMA J Nepal Med Assoc. 2005 Apr-Jun;44(158):51-6.
- Rayamajhi A, Singh R, Prasad R, Khanal B, Singhi S. Clinico-laboratory profile and outcome of Japanese encephalitis in Nepali children. Ann Trop Paediatr. 2006 Dec;26(4):293-301. doi: 10.1179/146532806X152818.
- Tandan JB, Ohrr H, Sohn YM, Yoksan S, Ji M, Nam CM, Halstead SB. Single dose of SA 14-14-2 vaccine provides long-term protection against Japanese encephalitis: a case-control study in Nepalese children 5 years after immunization. drjbtandan@yahoo.com. Vaccine. 2007 Jun 28;25(27):5041-5. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.04.052. Epub 2007 May 8.
- Pant GR. A serological survey of pigs, horses, and ducks in Nepal for evidence of infection with Japanese encephalitis virus. Ann N Y Acad Sci. 2006 Oct;1081:124-9. doi: 10.1196/annals.1373.013.
- Leung DY, Burns JC, Newburger JW, Geha RS. Reversal of lymphocyte activation in vivo in the Kawasaki syndrome by intravenous gammaglobulin. J Clin Invest. 1987 Feb;79(2):468-72. doi: 10.1172/JCI112835.
- Clarkson SB, Bussel JB, Kimberly RP, Valinsky JE, Nachman RL, Unkeless JC. Treatment of refractory immune thrombocytopenic purpura with an anti-Fc gamma-receptor antibody. N Engl J Med. 1986 May 8;314(19):1236-9. doi: 10.1056/NEJM198605083141907. No abstract available.
- Buchwald B, Ahangari R, Weishaupt A, Toyka KV. Intravenous immunoglobulins neutralize blocking antibodies in Guillain-Barre syndrome. Ann Neurol. 2002 Jun;51(6):673-80. doi: 10.1002/ana.10205.
- Quartier P, Foray S, Casanova JL, Hau-Rainsard I, Blanche S, Fischer A. Enteroviral meningoencephalitis in X-linked agammaglobulinemia: intensive immunoglobulin therapy and sequential viral detection in cerebrospinal fluid by polymerase chain reaction. Pediatr Infect Dis J. 2000 Nov;19(11):1106-8. doi: 10.1097/00006454-200011000-00020. No abstract available.
- Spector SA, Gelber RD, McGrath N, Wara D, Barzilai A, Abrams E, Bryson YJ, Dankner WM, Livingston RA, Connor EM. A controlled trial of intravenous immune globulin for the prevention of serious bacterial infections in children receiving zidovudine for advanced human immunodeficiency virus infection. Pediatric AIDS Clinical Trials Group. N Engl J Med. 1994 Nov 3;331(18):1181-7. doi: 10.1056/NEJM199411033311802.
- Rodriguez WJ, Gruber WC, Welliver RC, Groothuis JR, Simoes EA, Meissner HC, Hemming VG, Hall CB, Lepow ML, Rosas AJ, Robertsen C, Kramer AA. Respiratory syncytial virus (RSV) immune globulin intravenous therapy for RSV lower respiratory tract infection in infants and young children at high risk for severe RSV infections: Respiratory Syncytial Virus Immune Globulin Study Group. Pediatrics. 1997 Mar;99(3):454-61. doi: 10.1542/peds.99.3.454.
- Keller MA, Stiehm ER. Passive immunity in prevention and treatment of infectious diseases. Clin Microbiol Rev. 2000 Oct;13(4):602-14. doi: 10.1128/CMR.13.4.602.
- Levine B, Hardwick JM, Trapp BD, Crawford TO, Bollinger RC, Griffin DE. Antibody-mediated clearance of alphavirus infection from neurons. Science. 1991 Nov 8;254(5033):856-60. doi: 10.1126/science.1658936.
- Griffin DE, Ubol S, Despres P, Kimura T, Byrnes A. Role of antibodies in controlling alphavirus infection of neurons. Curr Top Microbiol Immunol. 2001;260:191-200. doi: 10.1007/978-3-662-05783-4_10. No abstract available.
- Murali-Krishna K, Ravi V, Manjunath R. Protection of adult but not newborn mice against lethal intracerebral challenge with Japanese encephalitis virus by adoptively transferred virus-specific cytotoxic T lymphocytes: requirement for L3T4+ T cells. J Gen Virol. 1996 Apr;77 ( Pt 4):705-14. doi: 10.1099/0022-1317-77-4-705.
- Pan CH, Chen HW, Huang HW, Tao MH. Protective mechanisms induced by a Japanese encephalitis virus DNA vaccine: requirement for antibody but not CD8(+) cytotoxic T-cell responses. J Virol. 2001 Dec;75(23):11457-63. doi: 10.1128/JVI.75.23.11457-11463.2001.
- Beasley DW, Li L, Suderman MT, Guirakhoo F, Trent DW, Monath TP, Shope RE, Barrett AD. Protection against Japanese encephalitis virus strains representing four genotypes by passive transfer of sera raised against ChimeriVax-JE experimental vaccine. Vaccine. 2004 Sep 9;22(27-28):3722-6. doi: 10.1016/j.vaccine.2004.03.027.
- Konishi E, Ajiro N, Nukuzuma C, Mason PW, Kurane I. Comparison of protective efficacies of plasmid DNAs encoding Japanese encephalitis virus proteins that induce neutralizing antibody or cytotoxic T lymphocytes in mice. Vaccine. 2003 Sep 8;21(25-26):3675-83. doi: 10.1016/s0264-410x(03)00382-7.
- Kimura-Kuroda J, Yasui K. Protection of mice against Japanese encephalitis virus by passive administration with monoclonal antibodies. J Immunol. 1988 Nov 15;141(10):3606-10.
- Zhang MJ, Wang MJ, Jiang SZ, Ma WY. Passive protection of mice, goats, and monkeys against Japanese encephalitis with monoclonal antibodies. J Med Virol. 1989 Oct;29(2):133-8. doi: 10.1002/jmv.1890290211.
- Gupta AK, Lad VJ, Koshy AA. Protection of mice against experimental Japanese encephalitis virus infections by neutralizing anti-glycoprotein E monoclonal antibodies. Acta Virol. 2003;47(3):141-5.
- Ben-Nathan D, Lustig S, Tam G, Robinzon S, Segal S, Rager-Zisman B. Prophylactic and therapeutic efficacy of human intravenous immunoglobulin in treating West Nile virus infection in mice. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):5-12. doi: 10.1086/376870. Epub 2003 Jun 23.
- Diamond MS, Shrestha B, Marri A, Mahan D, Engle M. B cells and antibody play critical roles in the immediate defense of disseminated infection by West Nile encephalitis virus. J Virol. 2003 Feb;77(4):2578-86. doi: 10.1128/jvi.77.4.2578-2586.2003.
- Kreil TR, Eibl MM. Pre- and postexposure protection by passive immunoglobulin but no enhancement of infection with a flavivirus in a mouse model. J Virol. 1997 Apr;71(4):2921-7. doi: 10.1128/JVI.71.4.2921-2927.1997.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Roper GY, Wang H, Baldwin TJ, Koenig S, Johnson S, Nordstrom JL, Diamond MS. Humanized monoclonal antibody against West Nile virus envelope protein administered after neuronal infection protects against lethal encephalitis in hamsters. J Infect Dis. 2006 Nov 1;194(9):1300-8. doi: 10.1086/508293. Epub 2006 Sep 22.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Wang H, Julander JG, Hall JO, Li H, Nordstrom JL, Koenig S, Johnson S, Diamond MS. Defining limits of treatment with humanized neutralizing monoclonal antibody for West Nile virus neurological infection in a hamster model. Antimicrob Agents Chemother. 2007 Jul;51(7):2396-402. doi: 10.1128/AAC.00147-07. Epub 2007 Apr 23.
- Webb DB, Kendra JR, Gross E, Stamatakis JD. Infusion of intravenous immunoglobulin via implantable subcutaneous catheter. Lancet. 1991 Jun 29;337(8757):1617-8. doi: 10.1016/0140-6736(91)93323-2. No abstract available.
- Imbach P. Immune thrombocytopenic purpura and intravenous immunoglobulin. Cancer. 1991 Sep 15;68(6 Suppl):1422-5. doi: 10.1002/1097-0142(19910915)68:6+3.0.co;2-5.
- Dwyer JM. Manipulating the immune system with immune globulin. N Engl J Med. 1992 Jan 9;326(2):107-16. doi: 10.1056/NEJM199201093260206. No abstract available.
- Sullivan KM, Kopecky KJ, Jocom J, Fisher L, Buckner CD, Meyers JD, Counts GW, Bowden RA, Peterson FB, Witherspoon RP, et al. Immunomodulatory and antimicrobial efficacy of intravenous immunoglobulin in bone marrow transplantation. N Engl J Med. 1990 Sep 13;323(11):705-12. doi: 10.1056/NEJM199009133231103.
- Newburger JW, Takahashi M, Beiser AS, Burns JC, Bastian J, Chung KJ, Colan SD, Duffy CE, Fulton DR, Glode MP, et al. A single intravenous infusion of gamma globulin as compared with four infusions in the treatment of acute Kawasaki syndrome. N Engl J Med. 1991 Jun 6;324(23):1633-9. doi: 10.1056/NEJM199106063242305.
- Ooi MH, Wong SC, Clear D, Perera D, Krishnan S, Preston T, Tio PH, Willison HJ, Tedman B, Kneen R, Cardosa MJ, Solomon T. Adenovirus type 21-associated acute flaccid paralysis during an outbreak of hand-foot-and-mouth disease in Sarawak, Malaysia. Clin Infect Dis. 2003 Mar 1;36(5):550-9. doi: 10.1086/367648. Epub 2003 Feb 14.
- Chatterjee S, Chattopadhyay D, Bhattacharya MK, Mukherjee B. Serosurveillance for Japanese encephalitis in children in several districts of West Bengal, India. Acta Paediatr. 2004 Mar;93(3):390-3.
- Planitzer CB, Modrof J, Kreil TR. West Nile virus neutralization by US plasma-derived immunoglobulin products. J Infect Dis. 2007 Aug 1;196(3):435-40. doi: 10.1086/519392. Epub 2007 Jun 18.
- Rayamajhi A, Nightingale S, Bhatta NK, Singh R, Kneen R, Ledger E, Bista KP, Lewthwaite P, Mahaseth C, Turtle L, Robinson JS, Galbraith SE, Wnek M, Johnson BW, Faragher B, Griffiths MJ, Solomon T. A preliminary randomized double blind placebo-controlled trial of intravenous immunoglobulin for Japanese encephalitis in Nepal. PLoS One. 2015 Apr 17;10(4):e0122608. doi: 10.1371/journal.pone.0122608. eCollection 2015. Erratum In: PLoS One. 2015;10(8):e0136008. Kneen, Rachel [added].
Opintojen ennätyspäivät
Opi tärkeimmät päivämäärät
Opiskelun aloitus
Ensisijainen valmistuminen (Todellinen)
Opintojen valmistuminen (Todellinen)
Opintoihin ilmoittautumispäivät
Ensimmäinen lähetetty
Ensimmäinen toimitettu, joka täytti QC-kriteerit
Ensimmäinen Lähetetty (Arvio)
Tutkimustietojen päivitykset
Viimeisin päivitys julkaistu (Arvio)
Viimeisin lähetetty päivitys, joka täytti QC-kriteerit
Viimeksi vahvistettu
Lisää tietoa
Tähän tutkimukseen liittyvät termit
Muita asiaankuuluvia MeSH-ehtoja
- Aivojen sairaudet
- Keskushermoston sairaudet
- Hermoston sairaudet
- RNA-virusinfektiot
- Virussairaudet
- Infektiot
- Enkefaliitti, arbovirus
- Enkefaliitti, virusperäinen
- Keskushermoston virustaudit
- Keskushermoston infektiot
- Tarttuva enkefaliitti
- Arbovirus-infektiot
- Vektorivälitteiset sairaudet
- Flavivirus-infektiot
- Flaviviridae-infektiot
- Enkefaliitti, japanilainen
- Enkefaliitti
- Huumeiden fysiologiset vaikutukset
- Immunologiset tekijät
- Vasta-aineet
- Immunoglobuliinit
- Immunoglobuliinit, suonensisäinen
- gammaglobuliinit
- Rho(D)-immuuniglobuliini
Muut tutkimustunnusnumerot
- IVIG607
Nämä tiedot haettiin suoraan verkkosivustolta clinicaltrials.gov ilman muutoksia. Jos sinulla on pyyntöjä muuttaa, poistaa tai päivittää tutkimustietojasi, ota yhteyttä register@clinicaltrials.gov. Heti kun muutos on otettu käyttöön osoitteessa clinicaltrials.gov, se päivitetään automaattisesti myös verkkosivustollemme .