- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT01856205
Sicherheits- und Wirksamkeitsstudie von intravenösem Immunglobulin zur Behandlung von Japanischer Enzephalitis
Eine randomisierte, doppelblinde, placebokontrollierte Studie zur Bewertung der Sicherheit und Wirksamkeit von intravenösem Immunglobulin (IVIG) bei Kindern mit japanischer Enzephalitis in Nepal
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Die Japanische Enzephalitis (JE) ist die wichtigste epidemische Enzephalitis weltweit und verursacht jährlich etwa 35-50.000 Fälle und 10-15.000 Todesfälle. Die Hälfte der Überlebenden hat schwere neuropsychiatrische Folgen, was eine große sozioökonomische Belastung für Gemeinden darstellt, die es sich nicht leisten können. Das JE-Virus (JEV, Genus Flavivirus, Familie Flaviviridae) hat eine 50 nm große Lipoproteinhülle, die ein Nukleokapsid umgibt, das aus Kernprotein und 11 KB einzelsträngiger Positiv-Sense-RNA besteht. Das Genom hat 5'- und 3'-untranslatierte Regionen (UTR) und einen einzelnen offenen Leserahmen, der Gene für drei Strukturproteine (Kern – C, Prämembran – prM und Hülle – E) und 7 nicht-strukturelle (NS) Proteine kodiert . Das E-Protein ist entscheidend für die virale Anheftung und den Eintritt in Zellen und zusammen mit NS1 und NS3 ein Hauptziel der Immunantwort.
JEV ist ein von Arthropoden übertragenes Virus (Arbovirus), das in einem enzootischen Zyklus zwischen Vögeln, Schweinen und anderen Wirbeltieren durch Stechmücken, insbesondere Culex-Arten, übertragen wird. Fast die gesamte Bevölkerung in den betroffenen Teilen Asiens wird im frühen Erwachsenenalter infiziert, aber nur ein kleiner Teil (etwa 1 von 300) entwickelt klinische Merkmale. Diese können von einer unspezifischen fieberhaften Erkrankung bis zu einer schweren Meningoenzephalitis reichen, bei der Krampfanfälle und klinische Anzeichen eines erhöhten Hirndrucks häufig sind und eine schlechte Prognose haben. Außerdem verursacht JEV eine Poliomyelitis-ähnliche schlaffe Lähmung. Es wurde angenommen, dass die Verteilung der vier Genotypen von JEV in ganz Asien die klinische Epidemiologie erklärt, aber jetzt wird angenommen, dass sie den Ursprung des Virus in Südostasien und die Ausbreitung von hier widerspiegelt. Subtile Unterschiede im Genom können jedoch bei der Bestimmung neurologischer Präsentationen von Flaviviren wichtig sein.
Obwohl es Impfstoffe gegen JEV gibt, sind sie für viele der Menschen, die sie benötigen, aufgrund von Kosten- und Produktionsproblemen nicht verfügbar. Bei der Überwindung dieser Schwierigkeiten werden Fortschritte erzielt, und neuere Impfstoffe werden zunehmend eingesetzt. Tatsächlich war Nepal führend bei der Verwendung einer Einzeldosis des attenuierten SA14-14-2-Lebendimpfstoffs für JE. Sie breitet sich jedoch weiterhin in ganz Asien aus und es gibt keine Behandlung. Interferon-α (IFN-α), das als Teil der angeborenen Reaktion auf eine JEV-Infektion produziert wird und eine antivirale Aktivität gegen das Virus hat, wurde als die vielversprechendste Behandlung angesehen. Eine randomisierte placebokontrollierte Studie zeigte jedoch, dass rekombinantes IFN-α2a bei 10 Millionen Einheiten/m2/Tag das Ergebnis nicht verbesserte. Die Pathogenese von JE ist unvollständig verstanden, aber im Vergleich zu anderen viralen Enzephalitiden mit positiver Sense-RNA handelt es sich wahrscheinlich um eine Mischung aus viraler Zytopathologie und Immunpathologie. Die Rolle von Steroiden bei JEV wurde in einer randomisierten, placebokontrollierten Studie in Thailand untersucht. was keinen Vorteil zeigte.
IVIG bietet derzeit eine der besten Möglichkeiten zur Ergebnisverbesserung bei JE. Es wurde mutmaßlich bei Patienten mit Flavivirus-Enzephalitis, einschließlich JE, angewendet und soll auf zwei Arten wirken: IVIG, das in Ländern hergestellt wird, in denen Flaviviren endemisch sind, enthält hohe Titer an spezifischen neutralisierenden Antikörpern, da der Großteil der Bevölkerung dem Virus ausgesetzt war , und haben somit Antikörper. Darüber hinaus hat IVIG unspezifische entzündungshemmende Eigenschaften, insbesondere durch die Unterdrückung entzündungsfördernder Zytokine (z. B. bei der Kawasaki-Krankheit). Unser Ziel ist es, die Rolle von IVIG bei JE zu untersuchen und auch seine Auswirkungen auf entzündungsfördernde Zytokine zu untersuchen.
Die Rolle von Antikörpern beim Schutz vor schweren Erkrankungen bei Japanischer Enzephalitis: Die humorale Immunantwort bei JE ist gut charakterisiert worden. Wenn die Krankheit auf eine Primärinfektion zurückzuführen ist (d. h. wenn JEV das erste Flavivirus ist, mit dem eine Person infiziert wurde), tritt innerhalb von Tagen nach der Infektion eine schnelle und starke IgM-Antwort im Serum und CSF auf. Am Tag 7 haben die meisten Patienten erhöhte Titer. Versuche, das Virus zu isolieren, sind bei solchen Patienten normalerweise negativ. Das Ausbleiben einer IgM-Antwort ist jedoch mit einer positiven Virusisolierung und einem tödlichen Ausgang verbunden. Antikörper gegen JEV schützen wahrscheinlich den Wirt, indem sie die virale Replikation während der virämischen Phase einschränken, bevor das Virus die Blut-Hirn-Schranke passiert. Hinweise von anderen Flaviviren deuten darauf hin, dass es auch Schäden während einer etablierten Enzephalitis begrenzen kann, indem es extrazelluläre Viren neutralisiert und die Lyse infizierter Zellen durch Antikörper-abhängige zelluläre Zytotoxizität erleichtert.
Bei überlebenden Patienten kommt es zu einem Wechsel der Immunglobulinklasse, und innerhalb von 30 Tagen weisen die meisten IgG im Serum und Liquor auf. Eine asymptomatische Infektion mit JEV ist auch mit erhöhtem IgM im Serum, aber nicht im Liquor verbunden. Bei Patienten mit Sekundärinfektion (d. h. Personen, die zuvor mit einem anderen Flavivirus infiziert waren, z. B. Dengue-Infektion oder Gelbfieberimpfung), gibt es eine anamnastische Reaktion auf gemeinsame Antigene der Flavivirus-Gruppe. Dieses sekundäre Muster der Antikörperaktivierung ist durch einen frühen IgG-Anstieg mit einem anschließenden langsamen IgM-Anstieg gekennzeichnet.
Entzündung bei Japanischer Enzephalitis: Bei der Autopsie bei JE ist das Gehirn normalerweise ödematös, mit Stauung des Parenchyms. Kleinhirn- und unkalale Herniation sind häufig. Histopathologisch ist JE durch eine perivaskuläre Entzündung mit Rekrutierung von Makrophagen, Neutrophilen und Lymphozyten gekennzeichnet. Die Basalganglien und die Vorderhornzellen des Rückenmarks sind besonders betroffen, was ein pathologisches Korrelat für den Parkinsonismus und eine poliomyelitisähnliche schlaffe Lähmung darstellt, die beobachtet werden kann. Virales Antigen befindet sich überwiegend in Neuronen, obwohl auch Mikrogliazellen, Astrozyten und vaskuläre Endothelzellen infiziert sind. Wenn das Überleben länger als 7 Tage ist, werden azelluläre nekrotische Zonen beobachtet, normalerweise im Bereich kleiner oder mittelgroßer Arterien, die von Ödemen umgeben sind.
Immunpathologie bei Japanischer Enzephalitis: Die Pathogenese von JE ist unvollständig verstanden, aber verfügbare Beweise weisen darauf hin, dass, wie bei einer Reihe anderer positiver RNA-Virus-Enzephalitiden, einschließlich des lymohoctyic chorio meningitis virus (LCMV) bei Mäusen Sindbis-Virus, Dengue-Virus, Gelbfieber-Virus und West-Nil-Virus gibt es immunvermittelte Schäden sowie virale Zytopathologie.
Pro-inflammatorische Zytokin-Reaktionen bei Japanischer Enzephalitis: Wie weiter unten unter „Vorläufige Studien“ beschrieben, gibt es immer mehr Beweise dafür, dass die pro-inflammatorische Zytokin-Reaktion einen wichtigen Beitrag zur Immunpathologie bei JE leisten kann. Unter den untersuchten Zytokinen scheinen Interleukin (IL)-6, IL-8-Chemokin (CXC-Motiv)-Ligand (CXCL-8) und Tumornekrosefaktor (TNF)-α mit einem tödlichen Ausgang assoziiert zu sein. Es gibt auch neue Beweise für die Bedeutung anderer Zytokine und Chemokine bei Enzephalitis, die durch andere Flaviviren, insbesondere das West-Nil-Virus, verursacht wird. Es gibt mehrere Mechanismen, durch die die entzündungsfördernde Reaktion schädlich sein kann. Jüngste Studien haben gezeigt, dass IL-6, das von Neuronen, Mikroglia, Astrozyten und rekrutierten Makrophagen als Reaktion auf eine virale ZNS-Infektion produziert wird, eine erhöhte Permeabilität der Blut-Hirn-Schranke (BBB) verursacht, was zu einem interstitiellen Hirnödem und einem erhöhten intrakraniellen Anstieg führt Druck. TNF-α wird von Mikroglia, Astrozyten und Makrophagen produziert. Zu seinen vielfältigen entzündungsfördernden Eigenschaften gehören die Hochregulierung der MHC-Expression der Klassen I und II, die Hochregulierung zellulärer Adhäsionsmoleküle, die erhöhte Permeabilität der BHS und die Hochregulierung der induzierbaren Stickoxidsynthase (iNOS), was zur Produktion von Stickstoffmonoxid (NO) führt. Bei hohen Konzentrationen ist NO direkt toxisch für ZNS-Zellen und verursacht oxidative Schäden und Apoptose. Neuere Erkenntnisse deuten darauf hin, dass die frühen Reaktionen von Zytokinen und Chemokinen auch wichtig sein können, um zu bestimmen, ob das Virus überhaupt durch die Blut-Hirn-Schranke in das ZNS eindringt. In einer Studie zur West-Nil-Virusinfektion waren Mäuse mit einem Mangel an Toll-like-Rezeptor 3 (Tlr3), der virale doppelsträngige RNA erkennt, relativ resistent gegen eine tödliche Infektion. Dies war im Vergleich zu Wildtypmäusen mit einer verringerten Zytokinproduktion (insbesondere TNF-α und IL-6) und einer erhöhten Viruslast in der Peripherie verbunden. Es wurde festgestellt, dass die TNF-α-Rezeptor-1-Signalübertragung für die Beeinträchtigung der Blut-Hirn-Schranke nach Tlr3-Stimulation durch das Virus von entscheidender Bedeutung ist. Zusätzlich zur Beeinflussung viral infizierter Zellen kann die Entzündungsreaktion im ZNS auch nicht infizierte Zellen schädigen, um den Zelltod von Zuschauern zu verursachen. Die Bedeutung des Chemokinrezeptors CCR5 und seines Liganden CCL5 (auch bekannt als RANTES, reguliert nach Aktivierung, normalerweise T-Zell-exprimiert und sezerniert) bei ZNS-Entzündungen, die durch Flaviviren verursacht werden, wurde kürzlich durch ihre markante Hochregulierung in einem Mausmodell von West gezeigt Nilvirus-Infektion. Dies war mit einer ZNS-Infiltration von CD4+- und CD8+-T-Zellen, Natural Killer (NK)1.1+, verbunden Zellen und Makrophagen, die den Rezeptor exprimieren. Die Bedeutung von CCR5 in der Pathogenese wurde durch Mortalitätsstudien festgestellt, in denen die Infektion von CCR5-/--Mäusen schnell und einheitlich tödlich war. Wichtig ist, dass unsere jüngste Studie (siehe unten) herausgefunden hat, dass CCL5 auch im Plasma von Menschen mit JE erhöht war, wo höhere Werte mit einem tödlichen Ausgang verbunden waren.
Obwohl klinische Studien an Menschen mit JE und parallele Studien in Tiermodellen von Flavivirus-Enzephalitis darauf hindeuten, dass erhöhte entzündungsfördernde Zytokine wichtig zu sein scheinen und mit einem schlechten Ergebnis bei JE verbunden sind, ist nicht klar, ob die Kontrolle dieser starken entzündungsfördernden Reaktion dies bewirken wird das Ergebnis verbessern. Wir werden eine doppelblinde, placebokontrollierte Pilotstudie zur Sicherheit, Verträglichkeit und immunologischen Markern der Wirksamkeit von IVIG bei Kindern mit JE in Nepal durchführen, gefolgt von einer größeren Wirksamkeitsstudie.
Vorstudien: Professor Solomon untersucht JE und verwandte Flaviviren seit 1994. Mit der Unterstützung seiner Gruppe und seiner Mitarbeiter hat er gezeigt, dass JEV die wichtigste Ursache für virale Enzephalitis in Vietnam ist, wie es in den meisten Teilen Süd- und Südostasiens der Fall ist. Er zeigte, dass Krampfanfälle und erhöhter Hirndruck häufige klinische Manifestationen einer Infektion sind. In Zusammenarbeit mit Kollegen in Malaysia entwickelte und erprobte er einen einfachen diagnostischen Schnelltest zur Diagnose von JE in den ländlichen Umgebungen, in denen es auftritt. Dieser Test war auch in der Lage, JE von Dengue zu unterscheiden – einem verwandten Flavivirus, das in Asien zirkuliert. Obwohl Dengue eher als Ursache für hämorrhagische Erkrankungen bekannt ist, zeigten Prof. Solomon und sein Team, dass es auch eine wichtige Ursache für neurologische Erkrankungen ist. Prof. Solomon zeigte auch, dass JEV neben einer Enzephalitis auch eine Poliomyelitis-ähnliche akute schlaffe Lähmung aufweisen kann, die in jüngerer Zeit auch bei mit dem West-Nil-Virus infizierten Erwachsenen festgestellt wurde. Basierend auf In-vitro- und In-vivo-Daten führte Prof. Solomon zusammen mit Phase-I/II-Studien am Menschen eine randomisierte placebokontrollierte Studie mit Interferon α-2b bei Kindern mit JE durch (die einzige antivirale Studie, die jemals für JE durchgeführt wurde). Die Studie zeigte jedoch, dass es das Ergebnis nicht verbesserte. Um mit der Erforschung des möglichen Beitrags der viralen genetischen Vielfalt zur klinischen Epidemiologie von JE zu beginnen, untersuchte Prof. Solomon die molekulare Evolution des Virus in ganz Asien und zeigte, dass das Virus wahrscheinlich aus der Region Indonesien und Malaysia stammt und sich hier zu den verschiedenen Genotypen entwickelt hat , von denen sich die jüngste später in ganz Asien ausbreitete.
Die Liverpool-Gruppe hat vor kurzem damit begonnen, Entzündungen bei JE zu untersuchen. Eine kürzlich durchgeführte pathologische Studie an Menschen und einem Mausmodell bestätigt die Bedeutung der Entzündungsreaktion und legt nahe, dass das vaskuläre Endothel geschädigt sein könnte. Eine Studie über entzündungsfördernde und entzündungshemmende Zytokine bei Menschen mit JE hat gezeigt, dass die Liquorspiegel von Interleukin(IL)-6, Tumornekrosefaktor (TNF)-α, Interferon (IFN)-α und dem Chemokin CXCL8 (IL- 8) waren bei verstorbenen Patienten höher als bei überlebenden. IFN-γ und Stickoxid (NO) wurden auch im Liquor von Todesfällen und Überlebenden nachgewiesen. Diese Ergebnisse erweitern die Beobachtungen anderer Forscher zu TNF-α und CXCL8, die darauf hindeuten, dass eine starke entzündungsfördernde Reaktion bei JE mit einem schlechten Ergebnis verbunden ist. Es wurde auch gezeigt, dass CCL5 (RANTES) im Plasma von Menschen mit JE exprimiert wird und dass hohe Plasmaspiegel mit tödlichen Erkrankungen assoziiert sind. Klinische Daten von anderen Flavivirus-Enzephalitiden unterstützen das Konzept, dass Entzündungen zur Pathogenese beitragen können. Zum Beispiel entwickeln immunsupprimierte Transplantationspatienten, die mit dem West-Nil-Virus infiziert sind, später eine ZNS-Erkrankung als immunkompetente Patienten. Zytokine wirken nicht isoliert, und tatsächlich ist die Pluripotenz und Redundanz der biologischen Reaktion eines ihrer charakteristischen Merkmale. Jüngste Microarray-Experimente zeigen, dass ein breites Spektrum von Molekülen bei ZNS-Entzündungszuständen hochreguliert wird. Darüber hinaus hat die Liverpool-Gruppe die Beziehung zwischen Antikörperreaktionen und Ergebnis untersucht. Zusammen mit anderen Forschern haben wir gezeigt, dass das Vorhandensein von Antikörpern im Serum und Liquor mit dem Überleben verbunden ist.
JE in Nepal: Japanische Enzephalitis wurde erstmals 1978 in Nepal festgestellt und ist derzeit in 24 Distrikten endemisch. Seit seinem ersten Erscheinen gab es über 26.667 Fälle und 5381 Todesfälle. Die frühen Sterblichkeitsraten wurden mit bis zu 60 % angegeben, aber in letzter Zeit haben sie sich bei den unter 15-Jährigen auf etwa 20 % verbessert. Die Morbidität wird auf etwa 50 % geschätzt. Aufgrund der Besorgnis über die Krankheit gab es 1999 in 3 Distrikten eine Impfung gegen JE, die nun auf die Mehrheit der betroffenen Distrikte ausgedehnt wurde. Darüber hinaus hat die Regierung im Jahr 2001 rund 200 000 Schweine in der Terai-Zone geimpft. Trotz dieser Erfolge gibt es immer noch Fälle von JE. Im Jahr 2006 gab es 292 bestätigte Fälle und 1481 AES-Fälle unbekannter Ätiologie. Diese Zahlen können die tatsächlichen Fallzahlen aufgrund logistischer Probleme, Todesfälle vor Krankenhauseinweisung und Schwierigkeiten bei der Bestätigung der Diagnose von JE mit gepaarten Seren und Liquorproben unterschätzen. Die kürzlich durchgeführte Seroüberwachung in den tierischen Wirten für JE in Nepal zeigt deutlich, dass das Virus in freier Wildbahn immer noch vorhanden ist und wahrscheinlich bleiben wird. Die Seroprävalenz betrug 48 % (102/212), bei Schweinen, 27 % (15/56) bei Enten und 50 % (6/12) bei Pferden aus insgesamt 280 Seren, die aus 10 Distrikten gesammelt wurden, von denen 44 % insgesamt positiv waren. Daher ist JE immer noch ein großes Problem der öffentlichen Gesundheit in Nepal, und es besteht ein dringender Bedarf, bessere Behandlungen zu entwickeln. Derzeit wird IVIG in Nepal zur Behandlung einer Reihe von pädiatrischen Erkrankungen eingesetzt, darunter das Guillain-Barré-Syndrom und idiopathische thrombozytopenische Purpura.
Begründung für die Anwendung von IVIG bei JE: Derzeit gibt es keine antivirale oder immunmodulatorische Behandlung für JE oder tatsächlich irgendeine Flavivirus-Enzephalitis. Wie oben beschrieben, zeigten die einzigen durchgeführten Studien mit Interferon alpha und mit Dexamethason keinen Nutzen. Basierend auf Daten aus vorklinischen Studien und Beobachtungsstudien am Menschen (siehe unten) bietet IVIG aufgrund seiner antiviralen und entzündungshemmenden Eigenschaften derzeit die größte Hoffnung auf eine Behandlung.
Etablierte pädiatrische Anwendungen von IVIG: IVIG hat sich als Standardbehandlung für eine Reihe von immunvermittelten Erkrankungen im Kindesalter etabliert, einschließlich Guillain-Barré-Syndrom, Kawasaki-Krankheit, Immunthrombozytopenie und Dermatomyositis. Bei der Kawasaki-Krankheit wird die Aktivierung von T- und B-Zellen durch IVIG herunterreguliert. Bei thrombozytopenischer Purpura wird angenommen, dass die Blockade von FCγ-Rezeptoren wichtig ist, was zu einer Herunterregulierung von sekretorischen Zytokinen führen kann. Beim Guillain-Barré-Syndrom und Dermatomyositis sind die Hemmung der Komplementbindung und die Verhinderung der membranolytischen Angriffskomplexbildung mögliche Mechanismen der IVIG-Wirkung. Darüber hinaus wurde IVIG bei der Behandlung und Prophylaxe einer Reihe von Virusinfektionen im Kindesalter eingesetzt, bei denen die neutralisierenden Antikörper im IVIG als wichtig angesehen wurden. IVIG wurde zur Behandlung und später zur Prophylaxe von Kindern mit Hypo- oder Agammaglobulinämie mit chronischer enteroviraler Meningoenzephalitis eingesetzt. Wichtig ist, dass Kinder mit X-chromosomaler Agammaglobulinämie und mit enteroviraler Meningoenzephalitis, die mit einer intensiven und verlängerten IVIG-Therapie behandelt wurden, eine lang anhaltende klinische und virale Remission erreicht haben (negative CSF-Viruskultur und PCR). Die Patienten erlitten jedoch einen Rückfall, als IVIG ausgeschlichen wurde, was auf eine wichtige vorteilhafte Rolle von IVIG bei dieser Erkrankung hinweist. Es hat sich gezeigt, dass die IVIG-Infusion bei Säuglingen und Kindern mit AIDS, die mit einer Zidovudin-Therapie behandelt wurden, das Risiko schwerer bakterieller Infektionen verringert (16,9 % der IVIG-Gruppe vs 0,07). Bei Infektionen mit dem respiratorischen Synzytialvirus (RSV) hat sich die Immunglobulintherapie in einer randomisierten kontrollierten Studie (RCT) mit 102 zuvor gesunden Kindern als sicher und im Allgemeinen gut verträglich erwiesen, obwohl die positive Wirkung der Reduzierung von Krankenhausaufenthalten und Tagen auf der Intensivstation bei Kindern marginal war mit schwerer Erkrankung. Andere etablierte Indikationen für die passive Immunisierung mit IVIG sind Parvovirus-B19-Infektionen.
Verwendung von IVIG bei Flavivirus-Enzephalitis: Es gibt starke Hinweise darauf, dass JEV, wie andere neurotrope Flaviviren, möglicherweise anfälliger für Antikörper-vermittelte als für zellvermittelte Immunantworten ist. Bei JEV und anderen neurotropen Flaviviren ist die Virusclearance im Gegensatz zu nicht-neurotropen Viren nicht von der zytolytischen T-Zellaktivität abhängig. Neuronen exprimieren als terminal differenzierte Zellen kein MHC-1, was sie einer Lyse durch CD8-T-Zellen und einem Nicht-Ersatz aussetzen würde. Tierdaten unterstützen die Bedeutung der Antikörper-vermittelten Immunität. In einer Studie haben Konishi et. Al. immunisierte Mäuse mit Plasmid-DNAs, die JEV-Proteine codieren, die neutralisierende Antikörperreaktionen oder zytotoxische T-Lymphozytenreaktionen induzieren, und dann mit tödlichen intraperitonealen Virusdosen herausgefordert. Sie zeigten, dass neutralisierende Antikörper die Virusverbreitung von der peripheren Stelle zum Gehirn verhindern und dass Antikörper-vermittelte Schutzmechanismen effizienter waren als die zytotoxischen T-Zell-Antworten. Diese Ergebnisse unterstützten frühere Arbeiten, die zeigten, dass Anti-Hüllprotein-Antikörper die kritischste Schutzkomponente in einem JEV-Challenge-Modell sind, sowie neuere Experimente zum passiven Antikörpertransfer. In-vitro-Studien an Mäusen zeigen eine schützende Rolle von IVIG, das prophylaktisch verabreicht wird, um zu verhindern, dass das Flavivirus eine durch Zecken übertragene Enzephalitis verursacht, und eine schützende Wirkung, wenn es als Behandlung verwendet wird. In der Arbeit mehrerer verschiedener Gruppen zeigte die Verwendung von IVIG, das spezifische Anti-West-Nil-Virus-Antikörper enthielt, während der virämischen Phase, bevor das Virus in das ZNS eingedrungen war, eine dramatische Überlebensrate von 100 %. Eine ähnliche Arbeit mit durch Zecken übertragener Enzephalitis hatte eine 100-prozentige Wirkung auf das Überleben. Es gibt jetzt gute Daten, dass in Tiermodellen der Flavivirus-Enzephalitis die periphere Verabreichung von Antikörpern das Virus neutralisiert, selbst nachdem es in das Zentralnervensystem eingedrungen ist.
Klinische Daten: Aufgrund der präklinischen Daten, die eine Rolle der Antikörperbehandlung bei Flavivirus-Enzephalitis belegen, wurde die Antikörperbehandlung (in Form von IVIG) auch auf Compassionate-Basis bei JE und West-Nil-Enzephalitis eingesetzt. Darüber hinaus wird IVIG derzeit in einer von den National Institutes of Health (NIH) gesponserten, randomisierten, Placebo-kontrollierten Studie in den Vereinigten Staaten auf West-Nil-Enzephalitis untersucht (für die Prof. Solomon Mitglied des wissenschaftlichen Lenkungsausschusses ist).
IVIG wurde bei einem 49-jährigen Reisenden angewendet, der aus Vietnam zurückkehrte und sich mit JE in einem italienischen Krankenhaus vorstellte. IVIG wurde auch zur Behandlung von Infektionen mit dem West-Nil-Virus bei fünf Patienten in Israel und drei in den Vereinigten Staaten eingesetzt. IVIG wurde auch in einer placebokontrollierten Studie zur West-Nil-Virusinfektion in den Vereinigten Staaten ohne schwerwiegende Nebenwirkungen des Medikaments untersucht.
Begründung für die Dosis: Die am häufigsten verwendete IVIG-Dosis beträgt 2 g/kg, entweder als einzelne Infusion oder verteilt auf 400 mg/kg über fünf Tage. Bei der Kawasaki-Krankheit werden 2 g/kg als einzelne 10-stündige Infusion gut vertragen und haben sich als das wirksamste Regime erwiesen. Beim Guillain-Barré-Syndrom bei Kindern und Erwachsenen wird das Medikament am häufigsten über 5 Tage verabreicht, und dies ist das Regime, das bei Patienten mit Flavivirus-Enzephalitis angewendet wurde und in dieser Studie verwendet wird.
Medikament und Intervention: Kinder, die die Aufnahmekriterien erfüllen, werden nach dem Zufallsprinzip IVIG (Reliance Biopharmaceuticals Pvt. Ltd.) in einer Dosis von 400 mg/kg/Tag für 5 Tage oder einem äquivalenten Volumen von 0,9 % normaler Kochsalzlösung unter Verwendung einer etablierten Technik zur doppelblinden Flüssigkeitsbehandlung.
Arzneimittelpräsentation: Wir werden Immunorel™ intravenöses Immunglobulin verwenden, das von Reliance Biopharmaceuticals Pvt. Ltd. und wird in China hergestellt und ist über die Yetichem Pharmacy, Sundhara, Kathmandu und die Shriran Pharmacy, Maharajgunj, Kathmandu, erhältlich. Dies ist das derzeit am häufigsten verwendete IVIG-Produkt in Nepal.
Wie in den meisten anderen Teilen Asiens ist die Seroprävalenz von JE in China hoch. Im Alter von 10 Jahren hat etwa ein Drittel der Kinder neutralisierende Antikörper gegen JEV, und im Erwachsenenalter ist die Mehrheit der Bevölkerung exponiert. Es gibt umfangreiche Daten, die zeigen, dass IVIG aus Gebieten, in denen Flaviviren endemisch sind, erhebliche Mengen an neutralisierenden Antikörpern enthält. Beispielsweise enthält IVIG aus Israel mäßige bis hohe Konzentrationen an neutralisierenden Antikörpern gegen das West-Nil-Virus. Obwohl das West-Nil-Virus erst seit wenigen Jahren in den Vereinigten Staaten zirkuliert, wurden in einigen IVIG-Chargen hohe Konzentrationen an neutralisierenden Antikörpern gefunden.
Neutralisierender Anti-JEV-Antikörper in IVIG aus Asien: Wir haben kürzlich die Titer neutralisierender Antikörper in einer Reihe von IVIG-Produkten aus Indien und China mit dem Plaque-Reduktions-Neutralisations-Assay (PRNT)50 untersucht. In dieser Studie fanden wir heraus, dass IVIG aus dem Vereinigten Königreich keine Antikörper enthielt und Serum von einem Labormitarbeiter, der gegen JEV geimpft worden war, eine kleine Menge neutralisierender Antikörper enthielt. Im Gegensatz dazu hatten die von den Unternehmen Bharrat, Hualan, Sichun und Reliance hergestellten IVIG neutralisierende Antikörpertiter von mehr als 1 zu 400, wobei Reliance mit fast 1 zu 750 den höchsten Titer aufwies.
Immunorel™ ist in durchsichtigen und farblosen Durchstechflaschen verpackt und in 2 Packungsgrößen erhältlich, die jeweils IVIG in einer Dosis von 0,05 g/ml (dh 50 mg/ml) enthalten. Die verfügbaren Fläschchen sind 50 ml (mit 2,5 g) und 100 ml (5,0 g).
Kinder erhalten somit 400 mg/kg/Tag IVIG, was 8 ml/kg/Tag Immunorel™-Lösung oder 8 ml/kg/Tag 0,9 % normaler Kochsalzlösung entspricht.
Pharmakokinetik: Verteilungsstudien wurden mit einer Reihe von IVIG-Präparaten durchgeführt. In einer Studie mit Patienten, die eine aseptische Meningitis (als Komplikation der Infusion) entwickelten, stieg der Serumspiegel nach intravenöser Gabe von 2 g/kg in 2 getrennten Dosen um das Fünffache an und fiel dann um 50 % während der nächsten 72 Stunden, da die extravaskuläre Umverteilung dauerte Ort. Nach 21–28 Tagen wurden die Werte vor der Behandlung erreicht. Die Halbwertszeit betrug 18–32 Tage und war ähnlich wie bei nativem Immunglobulin. In den ersten 48 Stunden nach der Infusion stieg die CSF-Konzentration um das 1,5- bis 7-fache, kehrte aber innerhalb einer Woche auf den Normalwert zurück. Bei Patienten mit viraler Meningoenzephalitis oder sogar Enzephalomyelitis ist mit einer ZNS-Penetration zu rechnen, da es zu einem Zusammenbruch der Blut-Hirn-Schranke kommt. Der Metabolismus von IVIG findet in den Zellen des retikuloendothelialen Systems statt, wo Immunglobuline und Immunglobulinkomplexe abgebaut werden.
Studien mit Immunorel® an gesunden Probanden zeigten, dass Spitzenkonzentrationen im Serum unmittelbar nach intravenöser Injektion auftreten und dosisabhängig sind. Innerhalb von 24 Stunden können bis zu 30 % einer Dosis durch Katabolismus und Verteilung entfernt werden. Daten zur Verteilung deuten darauf hin, dass sich IVIg im gesamten intravaskulären (60 %) und extravaskulären (40 %) Raum verteilt. Die Serumhalbwertszeit von Immunglobulin liegt zwischen 21 und 29 Tagen.
Reaktionen im Zusammenhang mit intravenösem Immunglobulin: Reaktionen auf intravenöses Immunglobulin hängen in der Regel von der Infusionsgeschwindigkeit ab und treten am ehesten während der ersten Stunde der Infusion auf. Während der Infusion überwachen wir regelmäßig die Vitalfunktionen und den Allgemeinzustand des Patienten. Zu den berichteten Reaktionen gehören Bauchschmerzen, Kopfschmerzen, Engegefühl in der Brust, Gesichtsrötung oder Blässe, Hitzegefühl, Dyspnoe, nicht urtikarielle Hautausschläge, Juckreiz, Hypotonie, Übelkeit oder Erbrechen. Sollte eine dieser Reaktionen während der Infusion von IVIG auftreten, wird die Infusion vorübergehend unterbrochen, bis sich der Patient klinisch bessert (5 bis 10 Minuten), und dann vorsichtig und langsamer wieder aufgenommen. Bei einigen Patienten können verzögerte Nebenwirkungen von IVIG wie Übelkeit, Erbrechen, Brustschmerzen, Schüttelfrost, Schwindel oder schmerzende Beine auftreten. Diese Nebenwirkungen treten auf, nachdem die Infusion beendet wurde, normalerweise jedoch innerhalb von 24 Stunden. Echte Überempfindlichkeitsreaktionen auf IVIG wie Urtikaria, Angioödem, Bronchospasmus oder Hypotonie treten sehr selten auf. Sollte sich nach IVIG eine anaphylaktische Reaktion entwickeln, wird die Infusion abgebrochen und eine Behandlung mit Adrenalin, Sauerstoff, Antihistaminika und Steroiden eingeleitet. Hämolytische Anämie und Neutropenie wurden in seltenen Fällen im Zusammenhang mit einer IVIG-Behandlung berichtet. Leichte und mäßige Erhöhungen der Serumtransaminasen (AST, ALT, Gamma-GT) wurden bei einer kleinen Anzahl von Patienten, die IVIG erhielten, beobachtet. Solche Veränderungen waren vorübergehend und nicht mit der Übertragung von Hepatitis verbunden. Seltene Komplikationen, ein aseptisches Meningitis-Syndrom (AMS), Thrombophlebitis, Nierenfunktionsstörungen und akutes Nierenversagen, sind bei Patienten aufgetreten, die IVIG erhielten. Leber- und Nierenfunktion werden während der Studie überwacht.
Reaktionen im Zusammenhang mit Immunorel™:
ich. Primäre Immunschwäche: Bei Patienten mit Immunschwächesyndrom, die IVIG in einer monatlichen Dosis von 400 mg/kg Körpergewicht erhielten, waren die berichteten Reaktionen Unwohlsein, Schwächegefühl, Fieber, Schüttelfrost, Kopfschmerzen, Übelkeit, Erbrechen, Engegefühl in der Brust, Dyspnoe und Brust , Rücken- oder Hüftschmerzen. In einigen Fällen wurde auch über ein leichtes Erythem an der Infusionsstelle berichtet.
ii. Idiopathische thrombozytopenische Purpura (ITP): Bei der Behandlung von erwachsenen und pädiatrischen Patienten mit ITP in einer Dosis von 400 mg/kg Körpergewicht wurden die systemischen Reaktionen nur bei weniger als 3 % der Patienten beobachtet. Die anderen Symptome, die alle mild und vorübergehend waren, umfassen Engegefühl in der Brust, ein Gefühl von Tachykardie und ein brennendes Gefühl im Kopf. In einer Dosis von 1000 mg/kg Körpergewicht entweder als Einzeldosis oder als zwei Dosen an aufeinanderfolgenden Tagen zur Behandlung von erwachsenen und pädiatrischen Patienten mit ITP. Nebenwirkungen wurden nur bei weniger als 10 % der Patienten festgestellt.
iii. Knochenmarktransplantation: Bei einer Dosis von 500 mg/kg Körpergewicht 7 Tage und 2 Tage vor der Transplantation und wöchentlich bis Tag 90 nach der Transplantation wurden bei weniger als 7 % der Patienten Nebenwirkungen berichtet. Alle Reaktionen wurden als leicht eingestuft, einschließlich Kopfschmerzen, Hitzewallungen, Fieber und leichten Rückenbeschwerden.
iv. Nieren: Erhöhungen von Kreatinin und Blut-Harnstoff-Stickstoff (BUN) können bereits ein bis zwei Tage nach einer Infusion beobachtet werden. Eine Progression zu Oligurie oder Anurie kann eine Dialyse erforderlich machen. Nach der IVIG-Therapie wurden gelegentlich schwerwiegende Nebenwirkungen berichtet, darunter: akutes Nierenversagen, akute tubuläre Nekrose, proximale tubuläre Nephropathie und osmotische Nephose. Die Korrektur des Volumenmangels durch die Verwendung geeigneter Flüssigkeiten vor Beginn der IVIG-Therapie ist daher unerlässlich. Die Messung des Blut-Harnstoff-Stickstoffs (BUN) und/oder des Serum-Kreatinins sollte vor der ersten IVIG-Infusion und danach in angemessenen Abständen unter Überwachung der Urinausscheidung durchgeführt werden.
iv. Allgemein: Reaktionen auf IVIG hängen von der Infusionsgeschwindigkeit ab. Sehr selten können anaphylaktoide Reaktionen bei Patienten ohne Vorgeschichte schwerer allergischer Reaktionen auf entweder intramuskuläres oder intravenöses Immunglobulin auftreten.
Mutagenität, Karzinogenität und Beeinträchtigung der Fruchtbarkeit: Reproduktionsstudien an Tieren wurden mit Gamma IV™ nicht durchgeführt. Daher ist nicht bekannt, ob IVIG bei Verabreichung an Schwangere den Fötus schädigen oder die Reproduktionsfähigkeit beeinträchtigen kann.
Wechselwirkungen mit anderen Arzneimitteln: Die Wechselwirkung von IVIG mit anderen Arzneimitteln wurde nicht in entsprechenden Studien nachgewiesen. Passiv erworbene Antikörper können die Reaktion auf attenuierte Lebendimpfstoffe stören. Daher ist die Verabreichung solcher Impfstoffe, z.B. B. Poliomyelitis oder Masern, wird auf etwa sechs Monate nach der IVIG-Infusion verschoben. Aus dem gleichen Grund sollten Immunglobuline frühestens zwei Wochen nach einer Impfung verabreicht werden.
Kontraindikationen: IVIG ist bei Personen kontraindiziert, bei denen eine anaphylaktische oder schwere systemische Reaktion auf Immunglobulin (Mensch) bekannt ist. Personen mit selektivem lgA-Mangel sollten Gamma IV™ nicht erhalten, da bei diesen Personen Serverreaktionen auf das möglicherweise vorhandene lgA auftreten können.
Sicherheitshinweise: Das Produkt sollte nicht verwendet werden, wenn es trüb ist. Eingefrorene Lösungen sollten nicht verwendet werden. Einmal geöffnete Durchstechflaschen sollten entsorgt werden, auch wenn sie nur teilweise verwendet wurden. IVIG sollte nur intravenös verabreicht werden, da die intramuskuläre und subkutane Verabreichung nicht untersucht wurde.
Dosierung und Verabreichung: Im Allgemeinen wird empfohlen, IVIG allein mit einer anfänglichen Dosis von 0,01 bis 0,02 ml/kg Körpergewicht/Minute für 30 Minuten zu verabreichen. Bei guter Verträglichkeit kann die Dosis schrittweise auf maximal 0,08 ml/min erhöht werden. kg Körpergewicht/Minute. Es wird empfohlen, IVIG allein über eine separate Leitung zu verabreichen, ohne es mit anderen intravenösen Flüssigkeiten oder Medikamenten zu mischen, die die Patienten möglicherweise erhalten. IVIG ist mit Kochsalzlösung nicht kompatibel. Bei Bedarf kann IVIG mit 5 % Dextrose in Wasser verdünnt werden.
Studientyp
Einschreibung (Tatsächlich)
Phase
- Phase 2
Kontakte und Standorte
Studienorte
-
-
Bagmati
-
Kathmandu, Bagmati, Nepal, 44616
- Kanti Children's Hospital
-
-
Koshi
-
Dharan, Koshi, Nepal
- BP Koirala Institute of Health Sciences
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Kinder im Alter zwischen 1 und 14 Jahren mit klinisch diagnostizierter Enzephalitis aufgrund von weniger als 14 Tagen anhaltendem Fieber in der Vorgeschichte, Bewusstseinsveränderungen mit oder ohne neu aufgetretene Anfälle in der Vorgeschichte mit CSF-Befund einer Anzahl weißer Blutkörperchen von weniger als 1000 Zellen/mm3 ohne Organismen auf der Gram-Färbung und einem Liquor:Plasmaglukose-Verhältnis > 40 %, zugelassen im Kanti Children's Hospital und BP Koirala Institute of Health Sciences, Nepal.
Ausschlusskriterien:
Asexuelle Parasiten Plasmodium falciparum im Blut
- Koma erscheint sekundär zu anderen systemischen Zuständen, z. B. Leberversagen, Herzversagen, Toxinen.
- Patienten, die vor der Aufnahme eine dokumentierte Antibiotikabehandlung erhalten haben und bei denen eine teilweise behandelte bakterielle Meningitis wahrscheinlicher erscheint als eine Enzephalitis
- Kinder mit einfachen Fieberkrämpfen, definiert als ein einzelner Anfall, der weniger als 15 Minuten dauert, gefolgt von einer vollständigen Wiederherstellung des Bewusstseins innerhalb von 60 Minuten.
- Schwangere oder stillende Frauen
- Kinder mit einem GCS von 3/15, die künstlich beatmet wurden, ohne Anzeichen einer Spontanatmung und mit fehlendem okulozephalem Reflex.
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: Zufällig
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Verdreifachen
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
---|---|
Placebo-Komparator: IVIG bei JE (JE-positiv)
Wir teilten die Patienten nach dem Zufallsprinzip der Behandlung mit IVIG oder Placebo zu.
Kinder erhielten entweder Kochsalzlösung oder intravenöses Immunglobulin (IVIG) [ImmunoRel™ (Charge 20081217)] in einer Dosis von 400 mg/kg/Tag für 5 Tage oder ein äquivalentes Volumen von 0,9 % normaler Kochsalzlösung intravenös mit einer Rate von 0,01 bis 0,02 ml/ kg Körpergewicht/Minute.
Alle Prüfärzte, Pflegekräfte und Teilnehmer waren bezüglich des Studienmedikaments verblindet.
Ein zweiter versiegelter Umschlag wurde mit den Notizen des Patienten aufbewahrt, falls ein Arzt dringend wissen musste, welches Medikament ein Patient erhalten hatte.
|
Die IVIG-Gruppe erhielt 400 mg/kg/Tag intravenös mit einer Rate von 0,01 bis 0,02 ml/kg Körpergewicht/Minute für 5 Tage oder das Auftreten von Nebenwirkungen oder unerwünschten Ereignissen. Die Placebo-Gruppe erhielt 0,9 % Kochsalzlösung intravenös mit ähnlicher Rate. |
Placebo-Komparator: IVIG bei Nicht-JE (JE-negativ)
Wir teilten die Patienten nach dem Zufallsprinzip der Behandlung mit IVIG oder Placebo zu.
Kinder erhielten entweder Kochsalzlösung oder intravenöses Immunglobulin (IVIG) [ImmunoRel™ (Charge 20081217)] in einer Dosis von 400 mg/kg/Tag für 5 Tage oder ein äquivalentes Volumen von 0,9 % normaler Kochsalzlösung intravenös mit einer Rate von 0,01 bis 0,02 ml/ kg Körpergewicht/Minute.
Alle Prüfärzte, Pflegekräfte und Teilnehmer waren bezüglich des Studienmedikaments verblindet.
Ein zweiter versiegelter Umschlag wurde mit den Notizen des Patienten aufbewahrt, falls ein Arzt dringend wissen musste, welches Medikament ein Patient erhalten hatte.
|
Die IVIG-Gruppe erhielt 400 mg/kg/Tag intravenös mit einer Rate von 0,01 bis 0,02 ml/kg Körpergewicht/Minute für 5 Tage oder das Auftreten von Nebenwirkungen oder unerwünschten Ereignissen. Die Placebo-Gruppe erhielt 0,9 % Kochsalzlösung intravenös mit ähnlicher Rate. |
Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Hinweise auf Nebenwirkungen des Studienmedikaments wie Reaktionen an der Infusionsstelle, Durchfall, Anstieg des Blutdrucks und Veränderung der Harnausscheidung
Zeitfenster: Alle 12 Stunden nach Verabreichung des Studienmedikaments bis zur Entlassung, was im Durchschnitt dem achten Tag (192 Stunden) der Krankenhauseinweisung entspricht
|
Die Patienten werden ab dem ersten Tag der Behandlung bis zum Tod alle 12 Stunden auf Nebenwirkungen wie Reaktionen an der Infusionsstelle, Durchfall, Blutdruckanstieg (in mm Hg) und Veränderung der Harnausscheidung (in ml/kg/Stunde) überwacht Entladung.
Im Durchschnitt wird den Patienten das Studienmedikament am ersten Tag der Aufnahme verabreicht.
Das Studienmedikament wird täglich für 5 Tage verabreicht.
Die Patienten werden im Durchschnitt am achten Tag (192 Stunden) der Krankenhausaufnahme entlassen.
|
Alle 12 Stunden nach Verabreichung des Studienmedikaments bis zur Entlassung, was im Durchschnitt dem achten Tag (192 Stunden) der Krankenhauseinweisung entspricht
|
Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Tod oder neurologische Folgen
Zeitfenster: Zum Zeitpunkt der Entlassung, voraussichtlich im Durchschnitt am achten Tag der Aufnahme und erneut 6 Monate nach der Entlassung
|
Zum Zeitpunkt der Entlassung (erwarteter Durchschnitt am achten Tag der Aufnahme) oder des Todes: Zeit bis zum Tod, um sich aus dem Koma zu erholen, selbstständig zu sitzen, selbstständig zu stehen, mindestens 5 m selbstständig zu gehen und das Krankenhaus zu verlassen. 6 Monate nach der Entlassung: Anamnese weiterer Anfälle, Verhaltensänderungen, Nachweis der Genesung von neurologischen Folgen wie Beurteilung der Fähigkeit, selbstständig zu sitzen, selbstständig zu stehen, mindestens 5 Meter selbstständig zu gehen. |
Zum Zeitpunkt der Entlassung, voraussichtlich im Durchschnitt am achten Tag der Aufnahme und erneut 6 Monate nach der Entlassung
|
Andere Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
---|---|---|
Serum-JEV-PRNT50-Spiegel (immunologischer Marker)
Zeitfenster: Gemessen zu 3 Zeitpunkten: vor der Behandlung (kurz vor der ersten Dosis des Studienmedikaments am ersten Tag), während der Behandlung (kurz vor der vierten Dosis am vierten Tag) und nach der Behandlung (eine Stunde nach der fünften Dosis am fünften Tag).
|
Die Vorbehandlung erfolgte unmittelbar vor der ersten Dosis des Studienmedikaments am ersten Tag, die Mittelbehandlung unmittelbar vor der 4. Dosis und die Nachbehandlung 1 Stunde nach Verabreichung der fünften Dosis des Studienmedikaments.
|
Gemessen zu 3 Zeitpunkten: vor der Behandlung (kurz vor der ersten Dosis des Studienmedikaments am ersten Tag), während der Behandlung (kurz vor der vierten Dosis am vierten Tag) und nach der Behandlung (eine Stunde nach der fünften Dosis am fünften Tag).
|
Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Ermittler
- Studienstuhl: Tom Solomon, MRCP, PhD, Director,Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK , Head- Liverpool Brain Infection Group
- Hauptermittler: Ajit Rayamajhi, MBBS, MD, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Liverpool, UK & Kanti Children's Hospital, Maharajgunj, Kathmandu, Nepal
- Studienleiter: Sam Nightingale, MRCP, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Gainsborough M, Vaughn DW, Khanh VT. Japanese encephalitis. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2000 Apr;68(4):405-15. doi: 10.1136/jnnp.68.4.405. No abstract available.
- Tsai TF. New initiatives for the control of Japanese encephalitis by vaccination: minutes of a WHO/CVI meeting, Bangkok, Thailand, 13-15 October 1998. Vaccine. 2000 May 26;18 Suppl 2:1-25. doi: 10.1016/s0264-410x(00)00037-2.
- Innis BL. Japanese encephalitis. In: Porterfield JS, editor. Exotic Viral Infections. London: Chapman & Hall; 1995. p. 147-74.
- Sumiyoshi H, Mori C, Fuke I, Morita K, Kuhara S, Kondou J, Kikuchi Y, Nagamatu H, Igarashi A. Complete nucleotide sequence of the Japanese encephalitis virus genome RNA. Virology. 1987 Dec;161(2):497-510. doi: 10.1016/0042-6822(87)90144-9.
- Chambers TJ, Hahn CS, Galler R, Rice CM. Flavivirus genome organization, expression, and replication. Annu Rev Microbiol. 1990;44:649-88. doi: 10.1146/annurev.mi.44.100190.003245. No abstract available.
- Gajanana A, Thenmozhi V, Samuel PP, Reuben R. A community-based study of subclinical flavivirus infections in children in an area of Tamil Nadu, India, where Japanese encephalitis is endemic. Bull World Health Organ. 1995;73(2):237-44.
- HALSTEAD SB, GROSZ CR. Subclinical Japanese encephalitis. I. Infection of Americans with limited residence in Korea. Am J Hyg. 1962 Mar;75:190-201. No abstract available.
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Thao le TT, Gainsborough M, Nisalak A, Day NP, Kirkham FJ, Vaughn DW, Smith S, White NJ. Seizures and raised intracranial pressure in Vietnamese patients with Japanese encephalitis. Brain. 2002 May;125(Pt 5):1084-93. doi: 10.1093/brain/awf116.
- Solomon T, Kneen R, Dung NM, Khanh VC, Thuy TT, Ha DQ, Day NP, Nisalak A, Vaughn DW, White NJ. Poliomyelitis-like illness due to Japanese encephalitis virus. Lancet. 1998 Apr 11;351(9109):1094-7. doi: 10.1016/S0140-6736(97)07509-0.
- Chen WR, Tesh RB, Rico-Hesse R. Genetic variation of Japanese encephalitis virus in nature. J Gen Virol. 1990 Dec;71 ( Pt 12):2915-22. doi: 10.1099/0022-1317-71-12-2915.
- Chen WR, Rico-Hesse R, Tesh RB. A new genotype of Japanese encephalitis virus from Indonesia. Am J Trop Med Hyg. 1992 Jul;47(1):61-9. doi: 10.4269/ajtmh.1992.47.61.
- Gould EA. Evolution of the Japanese encephalitis serocomplex viruses. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:391-404. Review.
- Solomon T, Ni H, Beasley DW, Ekkelenkamp M, Cardosa MJ, Barrett AD. Origin and evolution of Japanese encephalitis virus in southeast Asia. J Virol. 2003 Mar;77(5):3091-8. doi: 10.1128/jvi.77.5.3091-3098.2003.
- Shope RE. Concepts of control of Japanese encephalitis and dengue. Southeast Asian J Trop Med Public Health. 1997;28 Suppl 2:131-4.
- Solomon T. Vaccines against Japanese encephalitis. In: Jong EC, Zuckerman JN, editors. Travelers' vaccines. Ontario, Canada: B.C. Decker; 2004. p. 219-56.
- Monath TP. Japanese encephalitis vaccines: current vaccines and future prospects. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:105-38. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_6.
- Bista MB, Banerjee MK, Shin SH, Tandan JB, Kim MH, Sohn YM, Ohrr HC, Tang JL, Halstead SB. Efficacy of single-dose SA 14-14-2 vaccine against Japanese encephalitis: a case control study. Lancet. 2001 Sep 8;358(9284):791-5. doi: 10.1016/s0140-6736(01)05967-0.
- Solomon T, Dung NM, Wills B, Kneen R, Gainsborough M, Diet TV, Thuy TT, Loan HT, Khanh VC, Vaughn DW, White NJ, Farrar JJ. Interferon alfa-2a in Japanese encephalitis: a randomised double-blind placebo-controlled trial. Lancet. 2003 Mar 8;361(9360):821-6. doi: 10.1016/s0140-6736(03)12709-2.
- Griffin DE. Immune responses to RNA-virus infections of the CNS. Nat Rev Immunol. 2003 Jun;3(6):493-502. doi: 10.1038/nri1105.
- Irani DN. Central nervous system inflammation: can't live with it, can't live without it. Curr Opin Neurol. 2001 Jun;14(3):347-8. doi: 10.1097/00019052-200106000-00013. No abstract available.
- Kimura T, Griffin DE. Extensive immune-mediated hippocampal damage in mice surviving infection with neuroadapted Sindbis virus. Virology. 2003 Jun 20;311(1):28-39. doi: 10.1016/s0042-6822(03)00110-7.
- Hoke CH Jr, Vaughn DW, Nisalak A, Intralawan P, Poolsuppasit S, Jongsawas V, Titsyakorn U, Johnson RT. Effect of high-dose dexamethasone on the outcome of acute encephalitis due to Japanese encephalitis virus. J Infect Dis. 1992 Apr;165(4):631-7. doi: 10.1093/infdis/165.4.631.
- Caramello P, Canta F, Balbiano R, Lipani F, Ariaudo S, De Agostini M, Calleri G, Boglione L, Di Caro A. Role of intravenous immunoglobulin administration in Japanese encephalitis. Clin Infect Dis. 2006 Dec 15;43(12):1620-1. doi: 10.1086/509644. No abstract available.
- Agrawal AG, Petersen LR. Human immunoglobulin as a treatment for West Nile virus infection. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):1-4. doi: 10.1086/376871. Epub 2003 Jun 23. No abstract available.
- Burke DS, Lorsomrudee W, Leake CJ, Hoke CH, Nisalak A, Chongswasdi V, Laorakpongse T. Fatal outcome in Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1985 Nov;34(6):1203-10. doi: 10.4269/ajtmh.1985.34.1203.
- Solomon T, Thao LT, Dung NM, Kneen R, Hung NT, Nisalak A, Vaughn DW, Farrar J, Hien TT, White NJ, Cardosa MJ. Rapid diagnosis of Japanese encephalitis by using an immunoglobulin M dot enzyme immunoassay. J Clin Microbiol. 1998 Jul;36(7):2030-4. doi: 10.1128/JCM.36.7.2030-2034.1998.
- Solomon T, Vaughn DW. Pathogenesis and clinical features of Japanese encephalitis and West Nile virus infections. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:171-94. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_9. No abstract available.
- Burke DS, Nisalak A, Lorsomrudee W, Ussery MA, Laorpongse T. Virus-specific antibody-producing cells in blood and cerebrospinal fluid in acute Japanese encephalitis. J Med Virol. 1985 Nov;17(3):283-92. doi: 10.1002/jmv.1890170310.
- Desai A, Shankar SK, Ravi V, Chandramuki A, Gourie-Devi M. Japanese encephalitis virus antigen in the human brain and its topographic distribution. Acta Neuropathol. 1995;89(4):368-73. doi: 10.1007/BF00309631.
- Shankar SK, Rao TV, Mruthyunjayanna BP, Gourie Devi M, Deshpande DH. Autopsy study of brains during an epidemic of Japanese encephalitis in Karnataka. Indian J Med Res. 1983 Sep;78:431-40. No abstract available.
- Li ZS, Hong SF, Gong NL. Immunohistochemical study on Japanese B encephalitis. Chin Med J (Engl). 1988 Oct;101(10):768-71. No abstract available.
- Johnson RT, Burke DS, Elwell M, Leake CJ, Nisalak A, Hoke CH, Lorsomrudee W. Japanese encephalitis: immunocytochemical studies of viral antigen and inflammatory cells in fatal cases. Ann Neurol. 1985 Nov;18(5):567-73. doi: 10.1002/ana.410180510.
- MIYAKE M. THE PATHOLOGY OF JAPANESE ENCEPHALITIS. A REVIEW. Bull World Health Organ. 1964;30(2):153-60.
- Solomon T. Flavivirus encephalitis. N Engl J Med. 2004 Jul 22;351(4):370-8. doi: 10.1056/NEJMra030476. No abstract available.
- McMinn PC. The molecular basis of virulence of the encephalitogenic flaviviruses. J Gen Virol. 1997 Nov;78 ( Pt 11):2711-22. doi: 10.1099/0022-1317-78-11-2711. No abstract available.
- Doherty PC, Zinkernagel RM. T-cell-mediated immunopathology in viral infections. Transplant Rev. 1974;19(0):89-120. doi: 10.1111/j.1600-065x.1974.tb00129.x. No abstract available.
- Rowell JF, Griffin DE. Contribution of T cells to mortality in neurovirulent Sindbis virus encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 2002 Jun;127(1-2):106-14. doi: 10.1016/s0165-5728(02)00108-x.
- Atrasheuskaya A, Petzelbauer P, Fredeking TM, Ignatyev G. Anti-TNF antibody treatment reduces mortality in experimental dengue virus infection. FEMS Immunol Med Microbiol. 2003 Jan 21;35(1):33-42. doi: 10.1111/j.1574-695X.2003.tb00646.x.
- Liu T, Chambers TJ. Yellow fever virus encephalitis: properties of the brain-associated T-cell response during virus clearance in normal and gamma interferon-deficient mice and requirement for CD4+ lymphocytes. J Virol. 2001 Mar;75(5):2107-18. doi: 10.1128/JVI.75.5.2107-2118.2001.
- Wang Y, Lobigs M, Lee E, Mullbacher A. CD8+ T cells mediate recovery and immunopathology in West Nile virus encephalitis. J Virol. 2003 Dec;77(24):13323-34. doi: 10.1128/jvi.77.24.13323-13334.2003.
- Wang T, Town T, Alexopoulou L, Anderson JF, Fikrig E, Flavell RA. Toll-like receptor 3 mediates West Nile virus entry into the brain causing lethal encephalitis. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1366-73. doi: 10.1038/nm1140. Epub 2004 Nov 21.
- Diamond MS, Klein RS. West Nile virus: crossing the blood-brain barrier. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1294-5. doi: 10.1038/nm1204-1294. No abstract available.
- Chambers TJ, Diamond MS. Pathogenesis of flavivirus encephalitis. Adv Virus Res. 2003;60:273-342. doi: 10.1016/s0065-3527(03)60008-4.
- Myint KS, Gibbons RV, Perng GC, Solomon T. Unravelling the neuropathogenesis of Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2007 Oct;101(10):955-6. doi: 10.1016/j.trstmh.2007.04.004. Epub 2007 Jun 4.
- Glass WG, McDermott DH, Lim JK, Lekhong S, Yu SF, Frank WA, Pape J, Cheshier RC, Murphy PM. CCR5 deficiency increases risk of symptomatic West Nile virus infection. J Exp Med. 2006 Jan 23;203(1):35-40. doi: 10.1084/jem.20051970. Epub 2006 Jan 17.
- Glass WG, Lim JK, Cholera R, Pletnev AG, Gao JL, Murphy PM. Chemokine receptor CCR5 promotes leukocyte trafficking to the brain and survival in West Nile virus infection. J Exp Med. 2005 Oct 17;202(8):1087-98. doi: 10.1084/jem.20042530.
- Bhowmick S, Duseja R, Das S, Appaiahgiri MB, Vrati S, Basu A. Induction of IP-10 (CXCL10) in astrocytes following Japanese encephalitis. Neurosci Lett. 2007 Feb 27;414(1):45-50. doi: 10.1016/j.neulet.2006.11.070. Epub 2007 Jan 8.
- Ghoshal A, Das S, Ghosh S, Mishra MK, Sharma V, Koli P, Sen E, Basu A. Proinflammatory mediators released by activated microglia induces neuronal death in Japanese encephalitis. Glia. 2007 Apr 1;55(5):483-96. doi: 10.1002/glia.20474.
- Li Y, Fu L, Gonzales DM, Lavi E. Coronavirus neurovirulence correlates with the ability of the virus to induce proinflammatory cytokine signals from astrocytes and microglia. J Virol. 2004 Apr;78(7):3398-406. doi: 10.1128/jvi.78.7.3398-3406.2004.
- Allan SM, Rothwell NJ. Inflammation in central nervous system injury. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2003 Oct 29;358(1438):1669-77. doi: 10.1098/rstb.2003.1358.
- Van Wagoner NJ, Benveniste EN. Interleukin-6 expression and regulation in astrocytes. J Neuroimmunol. 1999 Dec;100(1-2):124-39. doi: 10.1016/s0165-5728(99)00187-3.
- Frei K, Malipiero UV, Leist TP, Zinkernagel RM, Schwab ME, Fontana A. On the cellular source and function of interleukin 6 produced in the central nervous system in viral diseases. Eur J Immunol. 1989 Apr;19(4):689-94. doi: 10.1002/eji.1830190418.
- Morris MM, Dyson H, Baker D, Harbige LS, Fazakerley JK, Amor S. Characterization of the cellular and cytokine response in the central nervous system following Semliki Forest virus infection. J Neuroimmunol. 1997 Apr;74(1-2):185-97. doi: 10.1016/s0165-5728(96)00786-2.
- Brett FM, Mizisin AP, Powell HC, Campbell IL. Evolution of neuropathologic abnormalities associated with blood-brain barrier breakdown in transgenic mice expressing interleukin-6 in astrocytes. J Neuropathol Exp Neurol. 1995 Nov;54(6):766-75. doi: 10.1097/00005072-199511000-00003.
- Paul R, Koedel U, Winkler F, Kieseier BC, Fontana A, Kopf M, Hartung HP, Pfister HW. Lack of IL-6 augments inflammatory response but decreases vascular permeability in bacterial meningitis. Brain. 2003 Aug;126(Pt 8):1873-82. doi: 10.1093/brain/awg171. Epub 2003 Jun 23.
- Abraham CS, Deli MA, Joo F, Megyeri P, Torpier G. Intracarotid tumor necrosis factor-alpha administration increases the blood-brain barrier permeability in cerebral cortex of the newborn pig: quantitative aspects of double-labelling studies and confocal laser scanning analysis. Neurosci Lett. 1996 Apr 19;208(2):85-8. doi: 10.1016/0304-3940(96)12546-5.
- Munoz-Fernandez MA, Fresno M. The role of tumour necrosis factor, interleukin 6, interferon-gamma and inducible nitric oxide synthase in the development and pathology of the nervous system. Prog Neurobiol. 1998 Oct;56(3):307-40. doi: 10.1016/s0301-0082(98)00045-8.
- Griffin DE, Hardwick JM. Perspective: virus infections and the death of neurons. Trends Microbiol. 1999 Apr;7(4):155-60. doi: 10.1016/s0966-842x(99)01470-5.
- Winter PM, Dung NM, Loan HT, Kneen R, Wills B, Thu le T, House D, White NJ, Farrar JJ, Hart CA, Solomon T. Proinflammatory cytokines and chemokines in humans with Japanese encephalitis. J Infect Dis. 2004 Nov 1;190(9):1618-26. doi: 10.1086/423328. Epub 2004 Sep 29.
- Solomon T, Dung NM, Vaughn DW, Kneen R, Thao LT, Raengsakulrach B, Loan HT, Day NP, Farrar J, Myint KS, Warrell MJ, James WS, Nisalak A, White NJ. Neurological manifestations of dengue infection. Lancet. 2000 Mar 25;355(9209):1053-9. doi: 10.1016/S0140-6736(00)02036-5.
- Leis AA, Stokic DS, Polk JL, Dostrow V, Winkelmann M. A poliomyelitis-like syndrome from West Nile virus infection. N Engl J Med. 2002 Oct 17;347(16):1279-80. doi: 10.1056/NEJM2002c021587. Epub 2002 Sep 23. No abstract available.
- Solomon T, Winter PM. Neurovirulence and host factors in flavivirus encephalitis--evidence from clinical epidemiology. Arch Virol Suppl. 2004;(18):161-70. doi: 10.1007/978-3-7091-0572-6_14.
- German AC, Myint KS, Mai NT, Pomeroy I, Phu NH, Tzartos J, Winter P, Collett J, Farrar J, Barrett A, Kipar A, Esiri MM, Solomon T. A preliminary neuropathological study of Japanese encephalitis in humans and a mouse model. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2006 Dec;100(12):1135-45. doi: 10.1016/j.trstmh.2006.02.008. Epub 2006 Jun 30.
- Ravi V, Parida S, Desai A, Chandramuki A, Gourie-Devi M, Grau GE. Correlation of tumor necrosis factor levels in the serum and cerebrospinal fluid with clinical outcome in Japanese encephalitis patients. J Med Virol. 1997 Feb;51(2):132-6.
- Singh A, Kulshreshtha R, Mathur A. Secretion of the chemokine interleukin-8 during Japanese encephalitis virus infection. J Med Microbiol. 2000 Jul;49(7):607-612. doi: 10.1099/0022-1317-49-7-607.
- Iwamoto M, Jernigan DB, Guasch A, Trepka MJ, Blackmore CG, Hellinger WC, Pham SM, Zaki S, Lanciotti RS, Lance-Parker SE, DiazGranados CA, Winquist AG, Perlino CA, Wiersma S, Hillyer KL, Goodman JL, Marfin AA, Chamberland ME, Petersen LR; West Nile Virus in Transplant Recipients Investigation Team. Transmission of West Nile virus from an organ donor to four transplant recipients. N Engl J Med. 2003 May 29;348(22):2196-203. doi: 10.1056/NEJMoa022987.
- Chabas D, Baranzini SE, Mitchell D, Bernard CC, Rittling SR, Denhardt DT, Sobel RA, Lock C, Karpuj M, Pedotti R, Heller R, Oksenberg JR, Steinman L. The influence of the proinflammatory cytokine, osteopontin, on autoimmune demyelinating disease. Science. 2001 Nov 23;294(5547):1731-5. doi: 10.1126/science.1062960.
- Lock C, Hermans G, Pedotti R, Brendolan A, Schadt E, Garren H, Langer-Gould A, Strober S, Cannella B, Allard J, Klonowski P, Austin A, Lad N, Kaminski N, Galli SJ, Oksenberg JR, Raine CS, Heller R, Steinman L. Gene-microarray analysis of multiple sclerosis lesions yields new targets validated in autoimmune encephalomyelitis. Nat Med. 2002 May;8(5):500-8. doi: 10.1038/nm0502-500.
- Solomon T. Japanese encephalitis: Clinical features & pathogenesis. 55th Annual Meeting of the American Society of Tropical Medicine and Hygiene; 2006; Atlanta, Georgia; 2006.
- Edelman R, Schneider RJ, Vejjajiva A, Pornpibul R, Voodhikul P. Persistence of virus-specific IgM and clinical recovery after Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1976 Sep;25(5):733-8. doi: 10.4269/ajtmh.1976.25.733.
- Burke DS, Nisalak A, Ussery MA, Laorakpongse T, Chantavibul S. Kinetics of IgM and IgG responses to Japanese encephalitis virus in human serum and cerebrospinal fluid. J Infect Dis. 1985 Jun;151(6):1093-9. doi: 10.1093/infdis/151.6.1093.
- Kumar R, Mathur A, Kumar A, Sharma S, Chakraborty S, Chaturvedi UC. Clinical features & prognostic indicators of Japanese encephalitis in children in Lucknow (India). Indian J Med Res. 1990 Sep;91:321-7.
- Libraty DH, Nisalak A, Endy TP, Suntayakorn S, Vaughn DW, Innis BL. Clinical and immunological risk factors for severe disease in Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2002 Mar-Apr;96(2):173-8. doi: 10.1016/s0035-9203(02)90294-4.
- Bista MB, Shrestha JM. Epidemiological situation of Japanese encephalitis in Nepal. JNMA J Nepal Med Assoc. 2005 Apr-Jun;44(158):51-6.
- Rayamajhi A, Singh R, Prasad R, Khanal B, Singhi S. Clinico-laboratory profile and outcome of Japanese encephalitis in Nepali children. Ann Trop Paediatr. 2006 Dec;26(4):293-301. doi: 10.1179/146532806X152818.
- Tandan JB, Ohrr H, Sohn YM, Yoksan S, Ji M, Nam CM, Halstead SB. Single dose of SA 14-14-2 vaccine provides long-term protection against Japanese encephalitis: a case-control study in Nepalese children 5 years after immunization. drjbtandan@yahoo.com. Vaccine. 2007 Jun 28;25(27):5041-5. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.04.052. Epub 2007 May 8.
- Pant GR. A serological survey of pigs, horses, and ducks in Nepal for evidence of infection with Japanese encephalitis virus. Ann N Y Acad Sci. 2006 Oct;1081:124-9. doi: 10.1196/annals.1373.013.
- Leung DY, Burns JC, Newburger JW, Geha RS. Reversal of lymphocyte activation in vivo in the Kawasaki syndrome by intravenous gammaglobulin. J Clin Invest. 1987 Feb;79(2):468-72. doi: 10.1172/JCI112835.
- Clarkson SB, Bussel JB, Kimberly RP, Valinsky JE, Nachman RL, Unkeless JC. Treatment of refractory immune thrombocytopenic purpura with an anti-Fc gamma-receptor antibody. N Engl J Med. 1986 May 8;314(19):1236-9. doi: 10.1056/NEJM198605083141907. No abstract available.
- Buchwald B, Ahangari R, Weishaupt A, Toyka KV. Intravenous immunoglobulins neutralize blocking antibodies in Guillain-Barre syndrome. Ann Neurol. 2002 Jun;51(6):673-80. doi: 10.1002/ana.10205.
- Quartier P, Foray S, Casanova JL, Hau-Rainsard I, Blanche S, Fischer A. Enteroviral meningoencephalitis in X-linked agammaglobulinemia: intensive immunoglobulin therapy and sequential viral detection in cerebrospinal fluid by polymerase chain reaction. Pediatr Infect Dis J. 2000 Nov;19(11):1106-8. doi: 10.1097/00006454-200011000-00020. No abstract available.
- Spector SA, Gelber RD, McGrath N, Wara D, Barzilai A, Abrams E, Bryson YJ, Dankner WM, Livingston RA, Connor EM. A controlled trial of intravenous immune globulin for the prevention of serious bacterial infections in children receiving zidovudine for advanced human immunodeficiency virus infection. Pediatric AIDS Clinical Trials Group. N Engl J Med. 1994 Nov 3;331(18):1181-7. doi: 10.1056/NEJM199411033311802.
- Rodriguez WJ, Gruber WC, Welliver RC, Groothuis JR, Simoes EA, Meissner HC, Hemming VG, Hall CB, Lepow ML, Rosas AJ, Robertsen C, Kramer AA. Respiratory syncytial virus (RSV) immune globulin intravenous therapy for RSV lower respiratory tract infection in infants and young children at high risk for severe RSV infections: Respiratory Syncytial Virus Immune Globulin Study Group. Pediatrics. 1997 Mar;99(3):454-61. doi: 10.1542/peds.99.3.454.
- Keller MA, Stiehm ER. Passive immunity in prevention and treatment of infectious diseases. Clin Microbiol Rev. 2000 Oct;13(4):602-14. doi: 10.1128/CMR.13.4.602.
- Levine B, Hardwick JM, Trapp BD, Crawford TO, Bollinger RC, Griffin DE. Antibody-mediated clearance of alphavirus infection from neurons. Science. 1991 Nov 8;254(5033):856-60. doi: 10.1126/science.1658936.
- Griffin DE, Ubol S, Despres P, Kimura T, Byrnes A. Role of antibodies in controlling alphavirus infection of neurons. Curr Top Microbiol Immunol. 2001;260:191-200. doi: 10.1007/978-3-662-05783-4_10. No abstract available.
- Murali-Krishna K, Ravi V, Manjunath R. Protection of adult but not newborn mice against lethal intracerebral challenge with Japanese encephalitis virus by adoptively transferred virus-specific cytotoxic T lymphocytes: requirement for L3T4+ T cells. J Gen Virol. 1996 Apr;77 ( Pt 4):705-14. doi: 10.1099/0022-1317-77-4-705.
- Pan CH, Chen HW, Huang HW, Tao MH. Protective mechanisms induced by a Japanese encephalitis virus DNA vaccine: requirement for antibody but not CD8(+) cytotoxic T-cell responses. J Virol. 2001 Dec;75(23):11457-63. doi: 10.1128/JVI.75.23.11457-11463.2001.
- Beasley DW, Li L, Suderman MT, Guirakhoo F, Trent DW, Monath TP, Shope RE, Barrett AD. Protection against Japanese encephalitis virus strains representing four genotypes by passive transfer of sera raised against ChimeriVax-JE experimental vaccine. Vaccine. 2004 Sep 9;22(27-28):3722-6. doi: 10.1016/j.vaccine.2004.03.027.
- Konishi E, Ajiro N, Nukuzuma C, Mason PW, Kurane I. Comparison of protective efficacies of plasmid DNAs encoding Japanese encephalitis virus proteins that induce neutralizing antibody or cytotoxic T lymphocytes in mice. Vaccine. 2003 Sep 8;21(25-26):3675-83. doi: 10.1016/s0264-410x(03)00382-7.
- Kimura-Kuroda J, Yasui K. Protection of mice against Japanese encephalitis virus by passive administration with monoclonal antibodies. J Immunol. 1988 Nov 15;141(10):3606-10.
- Zhang MJ, Wang MJ, Jiang SZ, Ma WY. Passive protection of mice, goats, and monkeys against Japanese encephalitis with monoclonal antibodies. J Med Virol. 1989 Oct;29(2):133-8. doi: 10.1002/jmv.1890290211.
- Gupta AK, Lad VJ, Koshy AA. Protection of mice against experimental Japanese encephalitis virus infections by neutralizing anti-glycoprotein E monoclonal antibodies. Acta Virol. 2003;47(3):141-5.
- Ben-Nathan D, Lustig S, Tam G, Robinzon S, Segal S, Rager-Zisman B. Prophylactic and therapeutic efficacy of human intravenous immunoglobulin in treating West Nile virus infection in mice. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):5-12. doi: 10.1086/376870. Epub 2003 Jun 23.
- Diamond MS, Shrestha B, Marri A, Mahan D, Engle M. B cells and antibody play critical roles in the immediate defense of disseminated infection by West Nile encephalitis virus. J Virol. 2003 Feb;77(4):2578-86. doi: 10.1128/jvi.77.4.2578-2586.2003.
- Kreil TR, Eibl MM. Pre- and postexposure protection by passive immunoglobulin but no enhancement of infection with a flavivirus in a mouse model. J Virol. 1997 Apr;71(4):2921-7. doi: 10.1128/JVI.71.4.2921-2927.1997.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Roper GY, Wang H, Baldwin TJ, Koenig S, Johnson S, Nordstrom JL, Diamond MS. Humanized monoclonal antibody against West Nile virus envelope protein administered after neuronal infection protects against lethal encephalitis in hamsters. J Infect Dis. 2006 Nov 1;194(9):1300-8. doi: 10.1086/508293. Epub 2006 Sep 22.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Wang H, Julander JG, Hall JO, Li H, Nordstrom JL, Koenig S, Johnson S, Diamond MS. Defining limits of treatment with humanized neutralizing monoclonal antibody for West Nile virus neurological infection in a hamster model. Antimicrob Agents Chemother. 2007 Jul;51(7):2396-402. doi: 10.1128/AAC.00147-07. Epub 2007 Apr 23.
- Webb DB, Kendra JR, Gross E, Stamatakis JD. Infusion of intravenous immunoglobulin via implantable subcutaneous catheter. Lancet. 1991 Jun 29;337(8757):1617-8. doi: 10.1016/0140-6736(91)93323-2. No abstract available.
- Imbach P. Immune thrombocytopenic purpura and intravenous immunoglobulin. Cancer. 1991 Sep 15;68(6 Suppl):1422-5. doi: 10.1002/1097-0142(19910915)68:6+3.0.co;2-5.
- Dwyer JM. Manipulating the immune system with immune globulin. N Engl J Med. 1992 Jan 9;326(2):107-16. doi: 10.1056/NEJM199201093260206. No abstract available.
- Sullivan KM, Kopecky KJ, Jocom J, Fisher L, Buckner CD, Meyers JD, Counts GW, Bowden RA, Peterson FB, Witherspoon RP, et al. Immunomodulatory and antimicrobial efficacy of intravenous immunoglobulin in bone marrow transplantation. N Engl J Med. 1990 Sep 13;323(11):705-12. doi: 10.1056/NEJM199009133231103.
- Newburger JW, Takahashi M, Beiser AS, Burns JC, Bastian J, Chung KJ, Colan SD, Duffy CE, Fulton DR, Glode MP, et al. A single intravenous infusion of gamma globulin as compared with four infusions in the treatment of acute Kawasaki syndrome. N Engl J Med. 1991 Jun 6;324(23):1633-9. doi: 10.1056/NEJM199106063242305.
- Ooi MH, Wong SC, Clear D, Perera D, Krishnan S, Preston T, Tio PH, Willison HJ, Tedman B, Kneen R, Cardosa MJ, Solomon T. Adenovirus type 21-associated acute flaccid paralysis during an outbreak of hand-foot-and-mouth disease in Sarawak, Malaysia. Clin Infect Dis. 2003 Mar 1;36(5):550-9. doi: 10.1086/367648. Epub 2003 Feb 14.
- Chatterjee S, Chattopadhyay D, Bhattacharya MK, Mukherjee B. Serosurveillance for Japanese encephalitis in children in several districts of West Bengal, India. Acta Paediatr. 2004 Mar;93(3):390-3.
- Planitzer CB, Modrof J, Kreil TR. West Nile virus neutralization by US plasma-derived immunoglobulin products. J Infect Dis. 2007 Aug 1;196(3):435-40. doi: 10.1086/519392. Epub 2007 Jun 18.
- Rayamajhi A, Nightingale S, Bhatta NK, Singh R, Kneen R, Ledger E, Bista KP, Lewthwaite P, Mahaseth C, Turtle L, Robinson JS, Galbraith SE, Wnek M, Johnson BW, Faragher B, Griffiths MJ, Solomon T. A preliminary randomized double blind placebo-controlled trial of intravenous immunoglobulin for Japanese encephalitis in Nepal. PLoS One. 2015 Apr 17;10(4):e0122608. doi: 10.1371/journal.pone.0122608. eCollection 2015. Erratum In: PLoS One. 2015;10(8):e0136008. Kneen, Rachel [added].
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn
Primärer Abschluss (Tatsächlich)
Studienabschluss (Tatsächlich)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Schätzen)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Schätzen)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Mehr Informationen
Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie
Schlüsselwörter
Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
- Erkrankungen des Gehirns
- Erkrankungen des zentralen Nervensystems
- Erkrankungen des Nervensystems
- RNA-Virusinfektionen
- Viruserkrankungen
- Infektionen
- Enzephalitis, Arbovirus
- Enzephalitis, viral
- Viruserkrankungen des zentralen Nervensystems
- Infektionen des zentralen Nervensystems
- Infektiöse Enzephalitis
- Arbovirus-Infektionen
- Vektor-übertragene Krankheiten
- Flavivirus-Infektionen
- Flaviviridae-Infektionen
- Enzephalitis, japanisch
- Enzephalitis
- Physiologische Wirkungen von Arzneimitteln
- Immunologische Faktoren
- Antikörper
- Immunglobuline
- Immunglobuline, intravenös
- Gamma-Globuline
- Rho(D) Immunglobulin
Andere Studien-ID-Nummern
- IVIG607
Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .