- ICH GCP
- Amerikanska kliniska prövningsregistret
- Klinisk prövning NCT01856205
Säkerhets- och effektivitetsstudie av intravenöst immunglobulin för att behandla japansk encefalit
En randomiserad dubbelblind placebokontrollerad studie för att bedöma säkerheten och effekten av intravenöst immunglobulin (IVIG) hos barn med japansk encefalit i Nepal
Studieöversikt
Status
Betingelser
Intervention / Behandling
Detaljerad beskrivning
Japansk encefalit (JE) är den viktigaste epidemiska encefaliten i världen och orsakar cirka 35-50 000 fall och 10-15 000 dödsfall årligen. Hälften av de överlevande har allvarliga neuropsykiatriska följdsjukdomar, vilket utgör en stor socioekonomisk börda för samhällen som har dåligt råd. JE-virus (JEV, släktet flavivirus, familjen Flaviviridae) har ett 50 nm lipoproteinhölje som omger en nukleokapsid som består av kärnprotein och 11 KB enkelsträngat positiv-sens RNA. Genomet har 5' och 3' otranslaterade regioner (UTR), och en enda öppen läsram som kodar gener för tre strukturella proteiner (kärna - C, pre-membran - prM och hölje - E) och 7 icke-strukturella (NS) proteiner . E-proteinet är avgörande för viral vidhäftning och inträde i celler, och tillsammans med NS1 och NS3 är det ett viktigt mål för immunsvaret.
JEV är ett leddjursburet virus (arbovirus), som överförs i en enzootisk cykel mellan fåglar, grisar och andra ryggradsdjur av myggor, särskilt Culex-arter. Nästan hela befolkningen i drabbade delar av Asien är infekterade av tidig vuxen ålder, men endast en liten del (cirka 1 av 300) utvecklar kliniska drag. Dessa kan variera från en ospecifik febersjukdom till en allvarlig meningoencefalit, där anfall och kliniska tecken på förhöjt intrakraniellt tryck är vanliga och har en dålig prognos. Dessutom orsakar JEV en poliomyelitliknande slapp förlamning. Fördelningen av de fyra genotyperna av JEV över Asien ansågs förklara den kliniska epidemiologin, men tros nu vara en återspegling av virusets ursprung i Sydostasien och sprids härifrån. Men subtila skillnader i genomet kan vara viktiga för att bestämma neurologiska presentationer av flavivirus.
Även om det finns vacciner mot JEV, är de inte tillgängliga för många av de människor som behöver dem, på grund av problem med kostnader och produktion. Framsteg görs för att övervinna dessa svårigheter, och nyare vacciner används alltmer. Nepal har faktiskt varit i framkant när det gäller användningen av en enstaka dos av levande försvagat SA14-14-2-vaccin för JE. Fortsätter dock att sprida sig över Asien, och det finns ingen behandling. Interferon-α (IFN-α), som produceras som en del av det medfödda svaret på JEV-infektion, och som har antiviral aktivitet mot viruset, ansågs vara den mest lovande behandlingen. En randomiserad placebokontrollerad studie visade dock att rekombinant IFN-α2a vid 10 miljoner enheter/m2/dag inte förbättrade resultatet. Patogenesen av JE är ofullständigt förstått, men i jämförelse med andra positiva sens RNA virala encefalitider, kommer sannolikt att involvera en blandning av viral cytopatologi och immunopatologi. Steroidernas roll i JEV har undersökts i en randomiserad placebokontrollerad studie i Thailand, som inte visade någon nytta.
IVIG erbjuder för närvarande en av de bästa möjligheterna för att förbättra resultatet i JE. Det har använts presumtivt hos patienter med flavivirusencefalit, inklusive JE, och antas verka på två sätt: IVIG som produceras i länder där flavivirus är endemiska innehåller höga titrar av specifik neutraliserande antikropp, eftersom större delen av befolkningen har exponerats för viruset och har därför antikroppar. Dessutom har IVIG ospecifika antiinflammatoriska egenskaper, särskilt genom undertryckandet av pro-inflammatoriska cytokiner (t.ex. vid Kawasakis sjukdom). Vi siktar på att undersöka IVIGs roll i JE, och även titta på dess effekter på pro-inflammatoriska cytokiner.
Antikropparnas roll i skydd mot allvarlig sjukdom vid japansk encefalit: Det humorala immunsvaret i JE har karakteriserats väl. När sjukdomen beror på primär infektion (dvs när JEV är det första flaviviruset som en individ har infekterats med) inträffar ett snabbt och potent IgM-svar i serum och CSF inom dagar efter infektion. På dag 7 har de flesta patienter förhöjda titrar. Försök att isolera virus är vanligtvis negativa hos sådana patienter. Men misslyckandet med att montera ett IgM-svar är associerat med positiv virusisolering och ett dödligt resultat. Antikropp mot JEV skyddar troligen värden genom att begränsa viral replikation under den viremiska fasen, innan viruset passerar blod-hjärnbarriären. Bevis från andra flavivirus tyder på att det också kan begränsa skador under etablerad encefalit genom att neutralisera extracellulärt virus och underlätta lys av infekterade celler genom antikroppsberoende cellulär cytotoxicitet.
Hos överlevande patienter sker byte av immunglobulinklass, och inom 30 dagar har de flesta IgG i serum och CSF. Asymtomatisk infektion med JEV är också associerad med förhöjt IgM i serumet, men inte CSF. Hos patienter med sekundär infektion (dvs. de som tidigare har infekterats med ett annat flavivirus, till exempel dengueinfektion eller vaccination mot gula febern) finns ett anamnastiskt svar på flavivirusgruppens vanliga antigener. Detta sekundära mönster av antikroppsaktivering kännetecknas av en tidig ökning av IgG med en efterföljande långsam ökning av IgM.
Inflammation vid japansk encefalit: Vid obduktion i JE är hjärnan vanligen ödematös, med överbelastning av parenkymet. Cerebellärt och uncal herniation är vanliga. Histopatologiskt kännetecknas JE av perivaskulär inflammation med rekrytering av makrofager, neutrofiler och lymfocyter. De basala ganglierna och de främre horncellerna i ryggmärgen är särskilt påverkade, vilket ger en patologisk korrelation för Parkinsonism och poliomyelit-liknande slapp förlamning, som kan ses. Viralt antigen finns övervägande i neuroner även om mikrogliaceller, astrocyter och vaskulära endotelceller också är infekterade. När överlevnaden förlängs mer än 7 dagar ses acellulära nekrotiska zoner, vanligtvis i området för små eller medelstora artärer som är omgivna av ödem.
Immunopatologi vid japansk encefalit: Patogenesen av JE är ofullständigt förstådd, men tillgängliga bevis tyder på att, liksom med ett antal andra positiva RNA virala encefalitider inklusive lymohoctyic chorio meningitisvirus (LCMV) hos möss Sindbis-virus, denguevirus, gula febervirus och West Nile-virus, det finns immunförmedlad skada såväl som viral cytopatologi.
Pro-inflammatoriska cytokinsvar vid japansk encefalit: Som beskrivs nedan under Preliminära studier, finns det ackumulerande bevis för att det proinflammatoriska cytokinsvaret kan ge ett viktigt bidrag till immunopatologi vid JE. Bland de studerade cytokinerna verkar interleukin (IL)-6, IL-8 kemokin (CXC motiv) ligand (CXCL-8) och tumörnekrosfaktor (TNF)-a vara associerade med ett dödligt resultat. Det finns också nya bevis på betydelsen av andra cytokiner och kemokiner vid encefalit orsakad av andra flavivirus, särskilt West Nile-virus. Det finns flera mekanismer genom vilka det pro-inflammatoriska svaret kan vara skadligt. Nyligen genomförda studier har visat att IL-6, som produceras av neuroner, mikroglia, astrocyter och rekryterade makrofager som svar på viral CNS-infektion, orsakar en ökad permeabilitet av blod-hjärnbarriären (BBB), vilket leder till interstitiellt cerebralt ödem och förhöjt intrakraniellt tryck. TNF-α produceras av mikroglia, astrocyter och makrofager. Dess multipla pro-inflammatoriska egenskaper inkluderar uppreglering av klass I och II MHC uttryck, uppreglering av cellulära adhesionsmolekyler, ökad permeabilitet av BBB och uppreglering av inducerbart kväveoxidsyntas (iNOS), vilket leder till produktion av kväveoxid (NO). Vid höga koncentrationer är NO direkt giftigt för CNS-celler, vilket orsakar oxidativ skada och apoptos. Nya bevis tyder på att de tidiga cytokin- och kemokinsvaren också kan vara viktiga för att avgöra om viruset ens tar sig in över blod-hjärnbarriären för att komma in i CNS. I en studie av West Nile-virusinfektion var möss med brist på Toll-like receptor 3(Tlr3), som känner igen viralt dubbelsträngat RNA, relativt resistenta mot dödlig infektion. Detta var associerat med minskad cytokinproduktion (särskilt TNF-α och IL-6) och ökad virusbelastning i periferin, jämfört med vildtypsmöss. TNF-α-receptor 1-signalering visade sig vara avgörande för att blod-hjärnbarriären kompromitteras vid Tlr3-stimulering av viruset. Förutom att påverka viralt infekterade celler, kan det inflammatoriska svaret i CNS också skada icke-infekterade celler för att orsaka åskådares celldöd. Vikten av kemokinreceptorn CCR5 och dess ligand CCL5 (även känd som RANTES, reglerad vid aktivering, normalt uttryckt och utsöndrad T-cell) i CNS-inflammation orsakad av flavivirus visades nyligen genom deras framträdande uppreglering i en musmodell av West Nilvirusinfektion. Detta associerades med CNS-infiltration av CD4+ och CD8+ T-celler, Natural Killer (NK)1.1+ celler och makrofager som uttrycker receptorn. Betydelsen av CCR5 i patogenesen fastställdes genom mortalitetsstudier där infektion av CCR5-/- möss var snabbt och jämnt dödlig. Viktigt är att vår senaste studie (se nedan) fann att CCL5 också var förhöjd i plasma hos människor med JE, där högre nivåer var associerade med ett dödligt resultat.
Även om kliniska studier på människor med JE och parallella studier i djurmodeller av flavivirusencefalit tyder på att förhöjda pro-inflammatoriska cytokiner verkar vara viktiga och associerade med ett dåligt resultat i JE, är det inte klart om kontroll av detta starka pro-inflammatoriska svar kommer att förbättra resultatet. Vi kommer att genomföra en dubbelblind, placebokontrollerad pilotstudie på säkerhet, tolerabilitet och immunologiska markörer för effekt av IVIG hos barn med JE i Nepal, följt av en större effektstudie.
Preliminära studier: Professor Solomon har studerat JE och relaterade flavivirus sedan 1994. Med stöd av sin grupp och samarbetspartners har han visat att JEV är den viktigaste orsaken till viral encefalit i Vietnam, precis som det är i större delen av Syd- och Sydostasien. Han visade att anfall och förhöjt intrakraniellt tryck är vanliga kliniska manifestationer av infektion. I samarbete med kollegor i Malaysia utvecklade och testade han ett enkelt snabbt diagnostiskt test för att diagnostisera JE på landsbygden där det förekommer. Detta test kunde också skilja JE från dengue - ett relaterat flavivirus som cirkulerar i Asien. Även om dengue är mer känd som en orsak till hemorragisk sjukdom, visade prof Solomon och hans team att det också är en viktig orsak till neurologisk sjukdom. Prof Solomon visade också att JEV, förutom hjärninflammation, kan uppvisa en poliomyelitliknande akut slapp förlamning, som också nyligen har upptäckts hos vuxna infekterade med West Nile-virus. Baserat på in vitro- och in vivo-data, tillsammans med fas I/II-studier på människor, genomförde Prof Solomon en randomiserad placebokontrollerad studie av interferon α-2b på barn med JE (den enda antivirala studien som någonsin genomförts för JE). Studien visade dock att det inte förbättrade resultatet. För att börja utforska det möjliga bidraget från viral genetisk mångfald till den kliniska epidemiologin av JE, undersökte professor Solomon virusets molekylära utveckling över Asien och visade att viruset troligen har sitt ursprung i Indonesien och Malaysia-regionen och här utvecklats till de olika genotyperna. , varav den senaste spreds sedan över Asien.
Liverpool-gruppen har på senare tid börjat undersöka inflammation i JE. En nyligen genomförd patologisk studie på människor och en musmodell bekräftar vikten av det inflammatoriska svaret och antyder att det kan finnas skador på det vaskulära endotelet. En studie av pro-inflammatoriska och antiinflammatoriska cytokiner hos människor med JE har visat att CSF-nivåer av interleukin(IL)-6, tumörnekrosfaktor (TNF)-α, interferon (IFN)-α och kemokinet CXCL8 (IL- 8) var högre hos patienter som dog än hos dem som överlevde. IFN-y och kväveoxid (NO) upptäcktes också i CSF av dödliga fall och överlevande. Dessa fynd utökar observationerna från andra utredare på TNF-α och CXCL8, vilket indikerar att ett starkt pro-inflammatoriskt svar i JE är associerat med ett dåligt resultat. Det visades också att CCL5 (RANTES) uttrycks i plasma från människor med JE, och att höga plasmanivåer är associerade med dödlig sjukdom. Kliniska data från andra flavivirusencefalitider stödjer konceptet att inflammation kan bidra till patogenesen. Till exempel utvecklar immunsupprimerade transplantationspatienter infekterade med West Nile-virus CNS-sjukdom senare än immunkompetenta patienter. Cytokiner verkar inte isolerat, och pluripotensen och redundansen av biologiskt svar är faktiskt en av deras karakteristiska egenskaper. Nyligen genomförda mikroarrayexperiment visar att ett brett spektrum av molekyler är uppreglerade i CNS-inflammatoriska tillstånd. Dessutom har Liverpool-gruppen studerat sambandet mellan antikroppssvar och resultat. Tillsammans med andra utredare har vi visat att närvaron av antikroppar i serum och CSF är associerad med överlevnad.
JE i Nepal: Japansk encefalit registrerades första gången i Nepal 1978 och är för närvarande endemisk i 24 distrikt. Sedan dess första framträdande har det förekommit över 26 667 fall och 5 381 dödsfall. Siffrorna för den tidiga dödligheten angavs till upp till 60 %, men på senare tid har de förbättrats till cirka 20 % för personer under 15 år. Sjukligheten tros ligga runt 50 %. Som ett resultat av oro för sjukdomen skedde vaccination mot JE 1999 i 3 distrikt, detta har nu utökats till att täcka majoriteten av de drabbade distrikten. Dessutom vaccinerade regeringen omkring 200 000 grisar i Terai-zonen 2001. Trots dessa framgångar finns det fortfarande pågående fall av JE. Under 2006 fanns det 292 bekräftade fall och 1481 AES-fall av okänd etiologi. Dessa siffror kan underrepresentera det faktiska antalet fall på grund av logistiska problem, dödsfall före sjukhusinläggning och svårigheter att bekräfta diagnosen JE med parade sera- och CSF-prover. Nyligen genomförd seroövervakning hos djurvärdarna för JE i Nepal visar tydligt att viruset fortfarande finns i naturen och sannolikt kommer att finnas kvar. Seroprevalensen var 48% (102/212), hos grisar, 27% (15/56) hos ankor och 50% (6/12) hos hästar från totalt 280 sera insamlade från 10 distrikt, varav 44% totalt sett var positiva. Därför är JE fortfarande ett stort folkhälsoproblem i Nepal, och det finns ett akut behov av att utveckla bättre behandlingar. För närvarande används IVIG i Nepal för att behandla en rad pediatriska tillstånd, inklusive Guillain-Barrés syndrom, idiopatisk trombocytopen purpura.
Skäl för användning av IVIG i JE: Det finns för närvarande ingen antiviral eller immunmodulerande behandling för JE eller faktiskt någon flavivirusencefalit. Som beskrivits ovan visade de enda försöken som utfördes med användning av interferon alfa och med användning av dexametason ingen fördel. Baserat på data från prekliniska studier och observationsstudier på människor (se nedan), erbjuder IVIG för närvarande det bästa hoppet om behandling, genom dess antivirala och antiinflammatoriska egenskaper.
Etablerad pediatrisk användning av IVIG: IVIG har etablerats som standardbehandling för ett antal immunmedierade barnsjukdomar inklusive Guillain-Barrés syndrom, Kawasakis sjukdom, immuntrombocytopeni och dermatomyosit. Vid Kawasakis sjukdom nedregleras T-cells- och B-cellsaktivering av IVIG. I trombocytopen purpura tros blockad av FCγ-receptorer vara viktig, vilket kan resultera i nedreglering av sekretoriska cytokiner. Vid Guillain-Barrés syndrom och dermatomyosit är hämning av komplementbindning och förhindrande av membranolytisk attackkomplexbildning möjliga mekanismer för IVIG-verkan. Dessutom har IVIG använts vid behandling och profylax av ett antal virusinfektioner hos barn där de neutraliserande antikropparna i IVIG ansågs vara viktiga. IVIG har använts för att behandla, och senare för att ge profylax, för barn med hypo- eller agammaglobulinam med kronisk enteroviral meningoencefalit. Viktigt är att barn med X-kopplad agammaglobulinemi och med enteroviral meningoencefalit som behandlats med intensiv och långvarig IVIG-behandling har uppnått långvarig klinisk och viral remission (negativ CSF-viruskultur och PCR). Patienterna fick dock återfall när IVIG avsmalnades, vilket tyder på att IVIG spelar en viktig roll i detta tillstånd. IVIG-infusion hos spädbarn och barn med AIDS som behandlats med zidovudinbehandling har visat sig minska risken för allvarliga bakteriella infektioner (16,9 % IVIG-grupp mot 24,3 % placebogrupp (relativ risk, 0,60; 95 % konfidensintervall, 0,35 till 1,04; p = 0,07). Vid infektioner med respiratoriskt syncytialvirus (RSV) har immunglobulinbehandling visat sig vara säker och allmänt väl tolererad i en randomiserad kontrollerad studie (RCT) som involverade 102 tidigare friska barn, även om den fördelaktiga effekten av att minska sjukhusvistelsen och antalet intensivvårdsdagar var marginell hos barn med svår sjukdom. Andra etablerade indikationer för passiv immunisering med IVIG inkluderar parvovirus B19-infektion.
Användning av IVIG vid flavivirusencefalit: Det finns starka bevis som tyder på att JEV, liksom andra neurotropa flavivirus, kan vara mer mottagliga för antikroppsmedierade, snarare än cellmedierade immunsvar. För JEV och andra neurotropa flavivirus är eliminering av virus inte beroende av cytolytisk T-cellsaktivitet, i motsats till icke-neurotropa virus. Neuroner, som terminalt differentierade celler, uttrycker inte MHC-1, vilket skulle utsätta dem för lys av CD8 T-celler och icke-ersättning. Djurdata stöder vikten av antikroppsmedierad immunitet. I en studie, Konishi et. al. immuniserade möss med plasmid-DNA som kodar för JEV-proteiner som inducerar neutraliserande antikroppssvar eller cytotoxiska T-lymfocytsvar, och utmanas sedan med dödliga intraperitoneala doser av virus. De visade att neutraliserande antikropp förhindrar virusspridning från det perifera stället till hjärnan, och att antikroppsmedierade skyddsmekanismer var mer effektiva än de cytotoxiska T-cellssvaren. Dessa fynd stödde tidigare arbete som visar att anti-höljeproteinantikroppar är den mest kritiska skyddande komponenten i en JEV-utmaningsmodell och nyare experiment med passiv antikroppsöverföring. In vitro-arbete på möss visar en skyddande roll för IVIG som ges profylaktiskt för att förhindra att flaviviruset orsakar fästingburen hjärninflammation och en skyddande effekt när det används som behandling. I arbete av flera olika grupper visade användningen av IVIG innehållande specifik antikropp mot West Nile Virus under den viremiska fasen, innan viruset hade kommit in i CNS, en dramatisk 100% överlevnad. Liknande arbete med fästingburen encefalit hade 100 % effekt på överlevnaden. Det finns nu bra data om att i djurmodeller av flavivirusencefalit neutraliserar perifer administrering av antikropp virus även efter att det har kommit in i det centrala nervsystemet.
Kliniska data: På grund av prekliniska data som stöder en roll för antikroppsbehandling vid flavivirusencefalit, har antikroppsbehandling (i form av IVIG) även använts på en medkännande basis vid JE och West Nile-encefalit. Dessutom undersöks IVIG för närvarande för West Nile-encefalit i en National Institutes of Health (NIH) sponsrad randomiserad placebokontrollerad studie i USA (för vilken Prof Solomon sitter i den vetenskapliga styrkommittén).
IVIG användes på en 49-årig resenär som återvände från Vietnam som presenterade JE på ett italienskt sjukhus. IVIG har också använts för att behandla West Nile-virusinfektioner hos fem patienter i Israel och tre i USA. IVIG utvärderades också i en placebokontrollerad studie för West Nile-virusinfektion i USA utan några allvarliga biverkningar av läkemedlet.
Skäl för dos: Den vanligaste dosen av IVIG är 2 g/kg, antingen ges som en enda infusion eller uppdelad som 400 mg/kg under fem dagar. Vid Kawasakis sjukdom tolereras 2 g/kg som en enda tio timmars infusion väl och visade sig vara den mest effektiva behandlingen. Vid Guillain-Barrés syndrom hos barn och vuxna ges läkemedlet oftast under 5 dagar, och detta är den regim som har använts hos patienter med flavivirusencefalit och kommer att användas i denna studie.
Läkemedel och intervention: Barn som uppfyller inträdeskriterierna kommer att slumpmässigt tilldelas IVIG, (Reliance Biophamaceuticals Pvt. Ltd.) i en dos av 400 mg/kg/dag i 5 dagar, eller en ekvivalent volym av 0,9 % normal koksaltlösning, med användning av en etablerad teknik för att ge vätskebehandling på ett dubbelblindt sätt.
Läkemedelspresentation: Vi kommer att använda Immunorel™ intravenöst immunglobulin, som produceras av Reliance Biophamaceuticals Pvt. Ltd., och tillverkas i Kina och är tillgängligt via Yetichem Pharmacy, Sundhara, Kathmandu och Shriran Pharmacy, Maharajgunj, Kathmandu. Detta är den IVIG-produkt som för närvarande används oftast i Nepal.
Som för de flesta andra delar av Asien är seroprevalensen av JE i Kina hög. Vid 10 års ålder har ungefär en tredjedel av barnen neutraliserande antikroppar mot JEV, och i vuxen ålder har majoriteten av befolkningen exponerats. Det finns omfattande data som visar att IVIG från områden där flavivirus är endemiska innehåller betydande mängder neutraliserande antikropp. Till exempel för IVIG från Israel innehåller måttliga till höga nivåer av neutraliserande antikroppar mot West Nile Virus. Även om West Nile-viruset bara har cirkulerat i USA under några år, har höga nivåer av neutraliserande antikroppar hittats i vissa IVIG-partier.
Anti-JEV-neutraliserande antikropp i IVIG från Asien: Vi har nyligen undersökt de neutraliserande antikroppstitrarna i en rad IVIG-produkter från Indien och Kina, med hjälp av plackreduktionsneutraliseringsanalysen (PRNT)50. I denna studie fann vi att IVIG från Storbritannien inte innehöll någon antikropp och serum från en laboratoriearbetare som hade vaccinerats mot JEV innehöll en liten mängd neutraliserande antikroppar. Däremot hade IVIG tillverkad av företagen Bharrat, Hualan, Sichun och Reliance alla neutraliserande antikroppstitrar på mer än 1 av 400, där Reliance hade den största titern, nästan 1 av 750.
Immunorel™ är förpackat i klara och färglösa injektionsflaskor och kommer i 2 förpackningsstorlekar, som var och en innehåller IVIG i en dos på 0,05 g/ml (dvs. 50 mg/ml). De tillgängliga injektionsflaskorna är 50 ml (innehåller 2,5 g) och 100 ml (5,0 g).
Barn kommer alltså att få 400 mg/kg/dag av IVIG, vilket motsvarar 8 ml/kg/dag av Immunorel™-lösning, eller 8 ml/kg/dag av 0,9 % normal koksaltlösning.
Farmakokinetik: Distributionsstudier har gjorts med en rad IVIG-preparat. I en studie av patienter som utvecklade aseptisk meningit (som en komplikation av infusionen), efter att ha fått 2 g/kg intravenöst i 2 uppdelade doser, ökar serumnivån fem gånger och sjunker sedan med 50 % under de kommande 72 timmarna när extravaskulär omfördelning tog plats. Efter 21-28 dagar nåddes nivåerna för förbehandling. Halveringstiden var 18-32 dagar och liknade naturligt immunglobulin. Under de första 48 timmarna efter infusionen ökade CSF-koncentrationen 1,5 till 7 gånger men återgick till det normala inom en vecka. CNS-penetration kan förväntas hos patienter med viral meningoencefalit eller till och med encefalomyelit eftersom blod-hjärnbarriären bryter ned. Metabolism av IVIG sker i cellerna i retikuloendotelsystemet där immunglobuliner och immunglobulinkomplex bryts ner.
Studier med Immunorel® på normala försökspersoner visade att maximala serumkoncentrationer inträffar omedelbart efter intravenös injektion och är dosrelaterade. Inom 24 timmar kan upp till 30 % av en dos avlägsnas genom katabolism och distribution. Data om distribution tyder på att IVIg distribueras genom intravaskulära (60 %) och extravaskulära (40 %) utrymmen. Serumhalveringstiden för immunglobulin varierar mellan 21 och 29 dagar.
Reaktion associerad med intravenöst immunglobulin: Reaktioner på intravenöst immunglobulin tenderar att vara relaterade till infusionshastigheten och är mest sannolikt att inträffa under den första timmen av infusionen. Vi kommer att övervaka patientens vitala tecken och allmänna status regelbundet under hela infusionen. De typer av reaktioner som har rapporterats inkluderar buksmärtor, huvudvärk, tryck över bröstet, rodnad i ansiktet eller blekhet, heta förnimmelser, dyspné, icke-urtikariellt hudutslag, klåda, hypotoni, illamående eller kräkningar. Skulle någon av dessa reaktioner utvecklas under infusion av IVIG, kommer infusionen att avbrytas tillfälligt tills patienten förbättras kliniskt (5 till 10 minuter) och sedan försiktigt återupptas i en långsammare takt. Vissa patienter kan utveckla fördröjda biverkningar av IVIG såsom illamående, kräkningar, bröstsmärtor, stelhet, yrsel eller värkande ben. Dessa biverkningar inträffar efter att infusionen har upphört men vanligtvis inom 24 timmar. Sanna överkänslighetsreaktioner mot IVIG såsom urtikaria, angioödem, bronkospasm eller hypotoni förekommer mycket sällan. Skulle en anafylaktisk reaktion utvecklas efter IVIG kommer infusionen att avbrytas och behandling inledas med adrenalin, syre, antihistamin och steroider. Hemolytisk anemi och neutropeni har rapporterats i sällsynta fall i samband med IVIG-behandling. Milda och måttliga förhöjningar av serumtransaminaser (AST, ALAT, gamma GT) har observerats hos ett litet antal patienter som fått IVIG. Sådana förändringar var övergående och inte förknippade med överföring av hepatit. Sällsynta komplikationer ett aseptiskt meningitsyndrom (AMS), tromboflebit, njurdysfunktion och akut njursvikt har inträffat hos patienter som fått IVIG. Lever- och njurfunktion kommer att övervakas under studien.
Reaktioner associerade med Immunorel™:
i. Primär immunbrist: Hos patienter med immunbristsyndrom som får IVIG i en månadsdos på 400 mg/kg kroppsvikt har de rapporterade reaktionerna varit sjukdomskänsla, svimningskänsla, feber, frossa, huvudvärk, illamående, kräkningar, tryck över bröstet, andnöd och bröstkorg. , rygg- eller höftvärk. Milt erytem vid infusionsstället har också rapporterats i vissa fall.
ii. Idiopatisk trombocytopen purpura (ITP): Vid behandling av vuxna och pediatriska patienter med ITP i en dos på 400 mg/kg kroppsvikt observerades de systemiska reaktionerna endast hos mindre än 3 % av patienterna. De andra symtomen som alla var milda och övergående inkluderar tryck över bröstet, en känsla av takykardi och en brännande känsla i huvudet. Vid en dos av 1000 mg/kg kroppsvikt antingen som engångsdos eller som två doser under på varandra följande dagar vid behandling av vuxna och pediatriska patienter med ITP. Biverkningar har endast noterats hos mindre än 10 % av patienterna.
iii. Benmärgstransplantation: Vid en dos på 500 mg/kg kroppsvikt 7 dagar och två dagar före transplantationen och varje vecka till och med dag 90 efter transplantationen rapporterades biverkningar hos mindre än 7 % av patienterna. Alla reaktioner klassificerades som milda som inkluderar huvudvärk, rodnad, feber och lätt ryggbesvär.
iv. Njurar: Ökning av kreatinin och blodureakväve (BUN) kan ses så snart som en till två dagar efter en infusion. Progression till oliguri eller anuri kan kräva dialys. Svåra enstaka biverkningar har rapporterats efter IVIG-behandling inkluderar: akut njursvikt, akut tubulär nekros, proximal tubulär nefropati och osmotisk nefros. Korrigering av volymutarmning genom att använda lämpliga vätskor innan IVIG-behandling påbörjas är därför väsentlig. Mätning av blodureakväve (BUN) och/eller serumkreatinin bör utföras före initial infusion av IVIG och igen med lämpliga intervall efteråt, med övervakning av urinproduktionen.
iv. Allmänt: Reaktioner på IVIG är relaterade till infusionshastigheten. I mycket sällsynta fall kan anafylaktoida reaktioner förekomma hos patienter som inte tidigare haft allvarliga allergiska reaktioner mot antingen intramuskulärt eller intravenöst immunglobulin.
Mutagenicitet, karcinogenicitet och försämrad fertilitet: Reproduktionsstudier på djur har inte utförts med Gamma IV™. Det är därför inte känt om IVIG kan orsaka fosterskador när det administreras till gravida kvinnor eller kan påverka reproduktionsförmågan.
Interaktioner med andra läkemedel: Interaktionen mellan IVIG och andra läkemedel har inte fastställts i lämpliga studier. Passivt förvärvad antikropp kan störa svaret på levande, försvagade vacciner. Därför kan administrering av sådana vacciner, t.ex. poliomyelit eller mässling, kommer att skjutas upp till cirka sex månader efter IVIG-infusion. På samma sätt bör immunglobuliner inte administreras under minst två veckor efter att ett vaccin har getts.
Kontraindikationer: IVIG är kontraindicerat hos individer som är kända för att ha ett anafylaktiskt eller allvarligt systemiskt svar på immunglobulin (humant). Individer med selektiv lgA-brist bör inte få Gamma IV™, eftersom dessa individer kan uppleva serverreaktioner på lgA som kan vara närvarande.
Säkerhetsvarningar: Produkten ska inte användas om den är grumlig. Lösningar som har frysts ska inte användas. När de öppnats, även om de bara används delvis, ska flaskorna kasseras. IVIG ska endast administreras intravenöst eftersom de intramuskulära och subkutana vägarna inte har utvärderats.
Dosering och administrering: Generellt rekommenderas att IVIG administreras för sig själv med en initial hastighet av 0,01 till 0,02 ml/kg kroppsvikt/minut i 30 minuter, om det tolereras väl kan hastigheten ökas gradvis till maximalt 0,08 ml/ kg kroppsvikt/minut. IVIG rekommenderas att ges i en separat linje utan att blandas med andra intravenösa vätskor eller mediciner som patienterna kan få. IVIG är inte kompatibel med saltlösning. Spädningen vid behov, IVIG kan spädas med 5 % dextros i vatten.
Studietyp
Inskrivning (Faktisk)
Fas
- Fas 2
Kontakter och platser
Studieorter
-
-
Bagmati
-
Kathmandu, Bagmati, Nepal, 44616
- Kanti Children's Hospital
-
-
Koshi
-
Dharan, Koshi, Nepal
- BP Koirala Institute of Health Sciences
-
-
Deltagandekriterier
Urvalskriterier
Åldrar som är berättigade till studier
Tar emot friska volontärer
Kön som är behöriga för studier
Beskrivning
Inklusionskriterier:
- Barn mellan 1 och 14 år som hade kliniskt diagnostiserad encefalit på grundval av feber i anamnesen som varade mindre än 14 dagar, förändrat medvetande med eller utan en historia av nya anfall med CSF-fynd av vita blodkroppar mindre än 1000 celler/mm3 utan organismer på Gram-färgning och en CSF: plasmaglukoskvot > 40 % inlagd på Kanti Children's Hospital och BP Koirala Institute of Health Sciences, Nepal.
Exklusions kriterier:
Asexuell Plasmodium falciparum parasiter i blod
- Koma verkar sekundärt till andra systemiska tillstånd, t.ex. leversvikt, hjärtsvikt, toxiner.
- Patienter som har dokumenterad antibiotikabehandling före inläggning och hos vilka delvis behandlad bakteriell meningit förefaller mer sannolikt än encefalit
- Barn med enkla feberkramper, definierade som ett enstaka anfall som varar mindre än 15 minuter följt av fullständigt medvetande inom 60 minuter.
- Gravida eller ammande kvinnor
- Barn med en GCS på 3/15, som fick konstgjord ventilation utan tecken på spontan andning och med frånvarande oculocephalic reflex.
Studieplan
Hur är studien utformad?
Designdetaljer
- Primärt syfte: Behandling
- Tilldelning: Randomiserad
- Interventionsmodell: Parallellt uppdrag
- Maskning: Trippel
Vapen och interventioner
Deltagargrupp / Arm |
Intervention / Behandling |
---|---|
Placebo-jämförare: IVIG i JE (JE-positiv)
Vi fördelade slumpmässigt patienter till behandling med IVIG eller placebo.
Barn fick antingen koksaltlösning eller intravenöst immunglobulin (IVIG) [ImmunoRel™ (batch 20081217)] i en dos på 400 mg/kg/dag i 5 dagar eller en ekvivalent volym av 0,9 % normal koksaltlösning som gavs intravenöst med en hastighet av 0,01 till 0,02 ml/ kg kroppsvikt/minut.
Alla utredare, vårdgivare och deltagare förblindades av studieläkemedlet.
Ett andra förseglat kuvert förvarades med patientens anteckningar ifall en läkare akut behövde veta vilket läkemedel en patient hade fått.
|
IVIG-gruppen fick 400 mg/kg/dag intravenöst i en hastighet av 0,01 till 0,02 ml/kg kroppsvikt/minut under 5 dagar eller uppkomsten av biverkningar eller biverkningar. Placebogruppen fick 0,9 % koksaltlösning intravenöst i liknande hastighet. |
Placebo-jämförare: IVIG i icke-JE(JE-negativ)
Vi fördelade slumpmässigt patienter till behandling med IVIG eller placebo.
Barn fick antingen koksaltlösning eller intravenöst immunglobulin (IVIG) [ImmunoRel™ (batch 20081217)] i en dos på 400 mg/kg/dag i 5 dagar eller en ekvivalent volym av 0,9 % normal koksaltlösning som gavs intravenöst med en hastighet av 0,01 till 0,02 ml/ kg kroppsvikt/minut.
Alla utredare, vårdgivare och deltagare förblindades av studieläkemedlet.
Ett andra förseglat kuvert förvarades med patientens anteckningar ifall en läkare akut behövde veta vilket läkemedel en patient hade fått.
|
IVIG-gruppen fick 400 mg/kg/dag intravenöst i en hastighet av 0,01 till 0,02 ml/kg kroppsvikt/minut under 5 dagar eller uppkomsten av biverkningar eller biverkningar. Placebogruppen fick 0,9 % koksaltlösning intravenöst i liknande hastighet. |
Vad mäter studien?
Primära resultatmått
Resultatmått |
Åtgärdsbeskrivning |
Tidsram |
---|---|---|
Bevis på biverkningar av studieläkemedlet såsom reaktion på infusionsstället, diarré, blodtrycksstegring och förändring i urinproduktion
Tidsram: Var 12:e timme efter administrering av studieläkemedlet fram till utskrivning, vilket är i genomsnitt åttonde dagen (192 timmar) av sjukhusinläggning
|
Patienterna kommer att övervakas med avseende på biverkningar såsom reaktioner på infusionsstället, diarré, blodtrycksstegring (i mm Hg) och förändring i urinproduktion (i ml/kg/timme) var 12:e timme från första dagen av behandlingens början tills döden eller ansvarsfrihet.
Patienterna administreras i genomsnitt studieläkemedlet den första dagen av antagningen.
Studieläkemedlet administreras dagligen i 5 dagar.
Patienter skrivs ut i genomsnitt den åttonde dagen (192 timmar) av sjukhusinläggningen.
|
Var 12:e timme efter administrering av studieläkemedlet fram till utskrivning, vilket är i genomsnitt åttonde dagen (192 timmar) av sjukhusinläggning
|
Sekundära resultatmått
Resultatmått |
Åtgärdsbeskrivning |
Tidsram |
---|---|---|
Död eller neurologiska följdsjukdomar
Tidsram: Vid tidpunkten för utskrivning, ett förväntat genomsnitt på åttonde dagen för inläggning och igen 6 månader efter utskrivning
|
Vid tidpunkten för utskrivning (förväntat medelvärde för åttonde dagen efter inläggning) eller död: Tid till dödsfall, att återhämta sig från koma, att sitta självständigt, att stå självständigt, att gå minst 5 m självständigt och att lämna sjukhuset. Vid 6 månader efter utskrivning: historia av ytterligare anfall, beteendeförändringar, tecken på återhämtning av neurologiska följdsjukdomar såsom bedömning av förmågan att sitta självständigt, att stå självständigt, att gå minst 5 meter självständigt. |
Vid tidpunkten för utskrivning, ett förväntat genomsnitt på åttonde dagen för inläggning och igen 6 månader efter utskrivning
|
Andra resultatmått
Resultatmått |
Åtgärdsbeskrivning |
Tidsram |
---|---|---|
Serum JEV PRNT50 nivå (immunologisk markör)
Tidsram: Mätt vid 3 tidpunkter: förbehandling (strax före första dosen av studieläkemedlet första dagen), mitt i behandlingen (strax före fjärde dosen på fjärde dagen) och efterbehandling (en timme efter femte dosen på femte dagen).
|
Förbehandling var omedelbart före den första dosen av studieläkemedlet den första dagen, mitten av behandlingen var omedelbart före den 4:e dosen och efterbehandlingen var 1 timme efter administrering av den femte dosen av studieläkemedlet.
|
Mätt vid 3 tidpunkter: förbehandling (strax före första dosen av studieläkemedlet första dagen), mitt i behandlingen (strax före fjärde dosen på fjärde dagen) och efterbehandling (en timme efter femte dosen på femte dagen).
|
Samarbetspartners och utredare
Sponsor
Utredare
- Studiestol: Tom Solomon, MRCP, PhD, Director,Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK , Head- Liverpool Brain Infection Group
- Huvudutredare: Ajit Rayamajhi, MBBS, MD, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Liverpool, UK & Kanti Children's Hospital, Maharajgunj, Kathmandu, Nepal
- Studierektor: Sam Nightingale, MRCP, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK
Publikationer och användbara länkar
Allmänna publikationer
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Gainsborough M, Vaughn DW, Khanh VT. Japanese encephalitis. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2000 Apr;68(4):405-15. doi: 10.1136/jnnp.68.4.405. No abstract available.
- Tsai TF. New initiatives for the control of Japanese encephalitis by vaccination: minutes of a WHO/CVI meeting, Bangkok, Thailand, 13-15 October 1998. Vaccine. 2000 May 26;18 Suppl 2:1-25. doi: 10.1016/s0264-410x(00)00037-2.
- Innis BL. Japanese encephalitis. In: Porterfield JS, editor. Exotic Viral Infections. London: Chapman & Hall; 1995. p. 147-74.
- Sumiyoshi H, Mori C, Fuke I, Morita K, Kuhara S, Kondou J, Kikuchi Y, Nagamatu H, Igarashi A. Complete nucleotide sequence of the Japanese encephalitis virus genome RNA. Virology. 1987 Dec;161(2):497-510. doi: 10.1016/0042-6822(87)90144-9.
- Chambers TJ, Hahn CS, Galler R, Rice CM. Flavivirus genome organization, expression, and replication. Annu Rev Microbiol. 1990;44:649-88. doi: 10.1146/annurev.mi.44.100190.003245. No abstract available.
- Gajanana A, Thenmozhi V, Samuel PP, Reuben R. A community-based study of subclinical flavivirus infections in children in an area of Tamil Nadu, India, where Japanese encephalitis is endemic. Bull World Health Organ. 1995;73(2):237-44.
- HALSTEAD SB, GROSZ CR. Subclinical Japanese encephalitis. I. Infection of Americans with limited residence in Korea. Am J Hyg. 1962 Mar;75:190-201. No abstract available.
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Thao le TT, Gainsborough M, Nisalak A, Day NP, Kirkham FJ, Vaughn DW, Smith S, White NJ. Seizures and raised intracranial pressure in Vietnamese patients with Japanese encephalitis. Brain. 2002 May;125(Pt 5):1084-93. doi: 10.1093/brain/awf116.
- Solomon T, Kneen R, Dung NM, Khanh VC, Thuy TT, Ha DQ, Day NP, Nisalak A, Vaughn DW, White NJ. Poliomyelitis-like illness due to Japanese encephalitis virus. Lancet. 1998 Apr 11;351(9109):1094-7. doi: 10.1016/S0140-6736(97)07509-0.
- Chen WR, Tesh RB, Rico-Hesse R. Genetic variation of Japanese encephalitis virus in nature. J Gen Virol. 1990 Dec;71 ( Pt 12):2915-22. doi: 10.1099/0022-1317-71-12-2915.
- Chen WR, Rico-Hesse R, Tesh RB. A new genotype of Japanese encephalitis virus from Indonesia. Am J Trop Med Hyg. 1992 Jul;47(1):61-9. doi: 10.4269/ajtmh.1992.47.61.
- Gould EA. Evolution of the Japanese encephalitis serocomplex viruses. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:391-404. Review.
- Solomon T, Ni H, Beasley DW, Ekkelenkamp M, Cardosa MJ, Barrett AD. Origin and evolution of Japanese encephalitis virus in southeast Asia. J Virol. 2003 Mar;77(5):3091-8. doi: 10.1128/jvi.77.5.3091-3098.2003.
- Shope RE. Concepts of control of Japanese encephalitis and dengue. Southeast Asian J Trop Med Public Health. 1997;28 Suppl 2:131-4.
- Solomon T. Vaccines against Japanese encephalitis. In: Jong EC, Zuckerman JN, editors. Travelers' vaccines. Ontario, Canada: B.C. Decker; 2004. p. 219-56.
- Monath TP. Japanese encephalitis vaccines: current vaccines and future prospects. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:105-38. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_6.
- Bista MB, Banerjee MK, Shin SH, Tandan JB, Kim MH, Sohn YM, Ohrr HC, Tang JL, Halstead SB. Efficacy of single-dose SA 14-14-2 vaccine against Japanese encephalitis: a case control study. Lancet. 2001 Sep 8;358(9284):791-5. doi: 10.1016/s0140-6736(01)05967-0.
- Solomon T, Dung NM, Wills B, Kneen R, Gainsborough M, Diet TV, Thuy TT, Loan HT, Khanh VC, Vaughn DW, White NJ, Farrar JJ. Interferon alfa-2a in Japanese encephalitis: a randomised double-blind placebo-controlled trial. Lancet. 2003 Mar 8;361(9360):821-6. doi: 10.1016/s0140-6736(03)12709-2.
- Griffin DE. Immune responses to RNA-virus infections of the CNS. Nat Rev Immunol. 2003 Jun;3(6):493-502. doi: 10.1038/nri1105.
- Irani DN. Central nervous system inflammation: can't live with it, can't live without it. Curr Opin Neurol. 2001 Jun;14(3):347-8. doi: 10.1097/00019052-200106000-00013. No abstract available.
- Kimura T, Griffin DE. Extensive immune-mediated hippocampal damage in mice surviving infection with neuroadapted Sindbis virus. Virology. 2003 Jun 20;311(1):28-39. doi: 10.1016/s0042-6822(03)00110-7.
- Hoke CH Jr, Vaughn DW, Nisalak A, Intralawan P, Poolsuppasit S, Jongsawas V, Titsyakorn U, Johnson RT. Effect of high-dose dexamethasone on the outcome of acute encephalitis due to Japanese encephalitis virus. J Infect Dis. 1992 Apr;165(4):631-7. doi: 10.1093/infdis/165.4.631.
- Caramello P, Canta F, Balbiano R, Lipani F, Ariaudo S, De Agostini M, Calleri G, Boglione L, Di Caro A. Role of intravenous immunoglobulin administration in Japanese encephalitis. Clin Infect Dis. 2006 Dec 15;43(12):1620-1. doi: 10.1086/509644. No abstract available.
- Agrawal AG, Petersen LR. Human immunoglobulin as a treatment for West Nile virus infection. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):1-4. doi: 10.1086/376871. Epub 2003 Jun 23. No abstract available.
- Burke DS, Lorsomrudee W, Leake CJ, Hoke CH, Nisalak A, Chongswasdi V, Laorakpongse T. Fatal outcome in Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1985 Nov;34(6):1203-10. doi: 10.4269/ajtmh.1985.34.1203.
- Solomon T, Thao LT, Dung NM, Kneen R, Hung NT, Nisalak A, Vaughn DW, Farrar J, Hien TT, White NJ, Cardosa MJ. Rapid diagnosis of Japanese encephalitis by using an immunoglobulin M dot enzyme immunoassay. J Clin Microbiol. 1998 Jul;36(7):2030-4. doi: 10.1128/JCM.36.7.2030-2034.1998.
- Solomon T, Vaughn DW. Pathogenesis and clinical features of Japanese encephalitis and West Nile virus infections. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:171-94. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_9. No abstract available.
- Burke DS, Nisalak A, Lorsomrudee W, Ussery MA, Laorpongse T. Virus-specific antibody-producing cells in blood and cerebrospinal fluid in acute Japanese encephalitis. J Med Virol. 1985 Nov;17(3):283-92. doi: 10.1002/jmv.1890170310.
- Desai A, Shankar SK, Ravi V, Chandramuki A, Gourie-Devi M. Japanese encephalitis virus antigen in the human brain and its topographic distribution. Acta Neuropathol. 1995;89(4):368-73. doi: 10.1007/BF00309631.
- Shankar SK, Rao TV, Mruthyunjayanna BP, Gourie Devi M, Deshpande DH. Autopsy study of brains during an epidemic of Japanese encephalitis in Karnataka. Indian J Med Res. 1983 Sep;78:431-40. No abstract available.
- Li ZS, Hong SF, Gong NL. Immunohistochemical study on Japanese B encephalitis. Chin Med J (Engl). 1988 Oct;101(10):768-71. No abstract available.
- Johnson RT, Burke DS, Elwell M, Leake CJ, Nisalak A, Hoke CH, Lorsomrudee W. Japanese encephalitis: immunocytochemical studies of viral antigen and inflammatory cells in fatal cases. Ann Neurol. 1985 Nov;18(5):567-73. doi: 10.1002/ana.410180510.
- MIYAKE M. THE PATHOLOGY OF JAPANESE ENCEPHALITIS. A REVIEW. Bull World Health Organ. 1964;30(2):153-60.
- Solomon T. Flavivirus encephalitis. N Engl J Med. 2004 Jul 22;351(4):370-8. doi: 10.1056/NEJMra030476. No abstract available.
- McMinn PC. The molecular basis of virulence of the encephalitogenic flaviviruses. J Gen Virol. 1997 Nov;78 ( Pt 11):2711-22. doi: 10.1099/0022-1317-78-11-2711. No abstract available.
- Doherty PC, Zinkernagel RM. T-cell-mediated immunopathology in viral infections. Transplant Rev. 1974;19(0):89-120. doi: 10.1111/j.1600-065x.1974.tb00129.x. No abstract available.
- Rowell JF, Griffin DE. Contribution of T cells to mortality in neurovirulent Sindbis virus encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 2002 Jun;127(1-2):106-14. doi: 10.1016/s0165-5728(02)00108-x.
- Atrasheuskaya A, Petzelbauer P, Fredeking TM, Ignatyev G. Anti-TNF antibody treatment reduces mortality in experimental dengue virus infection. FEMS Immunol Med Microbiol. 2003 Jan 21;35(1):33-42. doi: 10.1111/j.1574-695X.2003.tb00646.x.
- Liu T, Chambers TJ. Yellow fever virus encephalitis: properties of the brain-associated T-cell response during virus clearance in normal and gamma interferon-deficient mice and requirement for CD4+ lymphocytes. J Virol. 2001 Mar;75(5):2107-18. doi: 10.1128/JVI.75.5.2107-2118.2001.
- Wang Y, Lobigs M, Lee E, Mullbacher A. CD8+ T cells mediate recovery and immunopathology in West Nile virus encephalitis. J Virol. 2003 Dec;77(24):13323-34. doi: 10.1128/jvi.77.24.13323-13334.2003.
- Wang T, Town T, Alexopoulou L, Anderson JF, Fikrig E, Flavell RA. Toll-like receptor 3 mediates West Nile virus entry into the brain causing lethal encephalitis. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1366-73. doi: 10.1038/nm1140. Epub 2004 Nov 21.
- Diamond MS, Klein RS. West Nile virus: crossing the blood-brain barrier. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1294-5. doi: 10.1038/nm1204-1294. No abstract available.
- Chambers TJ, Diamond MS. Pathogenesis of flavivirus encephalitis. Adv Virus Res. 2003;60:273-342. doi: 10.1016/s0065-3527(03)60008-4.
- Myint KS, Gibbons RV, Perng GC, Solomon T. Unravelling the neuropathogenesis of Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2007 Oct;101(10):955-6. doi: 10.1016/j.trstmh.2007.04.004. Epub 2007 Jun 4.
- Glass WG, McDermott DH, Lim JK, Lekhong S, Yu SF, Frank WA, Pape J, Cheshier RC, Murphy PM. CCR5 deficiency increases risk of symptomatic West Nile virus infection. J Exp Med. 2006 Jan 23;203(1):35-40. doi: 10.1084/jem.20051970. Epub 2006 Jan 17.
- Glass WG, Lim JK, Cholera R, Pletnev AG, Gao JL, Murphy PM. Chemokine receptor CCR5 promotes leukocyte trafficking to the brain and survival in West Nile virus infection. J Exp Med. 2005 Oct 17;202(8):1087-98. doi: 10.1084/jem.20042530.
- Bhowmick S, Duseja R, Das S, Appaiahgiri MB, Vrati S, Basu A. Induction of IP-10 (CXCL10) in astrocytes following Japanese encephalitis. Neurosci Lett. 2007 Feb 27;414(1):45-50. doi: 10.1016/j.neulet.2006.11.070. Epub 2007 Jan 8.
- Ghoshal A, Das S, Ghosh S, Mishra MK, Sharma V, Koli P, Sen E, Basu A. Proinflammatory mediators released by activated microglia induces neuronal death in Japanese encephalitis. Glia. 2007 Apr 1;55(5):483-96. doi: 10.1002/glia.20474.
- Li Y, Fu L, Gonzales DM, Lavi E. Coronavirus neurovirulence correlates with the ability of the virus to induce proinflammatory cytokine signals from astrocytes and microglia. J Virol. 2004 Apr;78(7):3398-406. doi: 10.1128/jvi.78.7.3398-3406.2004.
- Allan SM, Rothwell NJ. Inflammation in central nervous system injury. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2003 Oct 29;358(1438):1669-77. doi: 10.1098/rstb.2003.1358.
- Van Wagoner NJ, Benveniste EN. Interleukin-6 expression and regulation in astrocytes. J Neuroimmunol. 1999 Dec;100(1-2):124-39. doi: 10.1016/s0165-5728(99)00187-3.
- Frei K, Malipiero UV, Leist TP, Zinkernagel RM, Schwab ME, Fontana A. On the cellular source and function of interleukin 6 produced in the central nervous system in viral diseases. Eur J Immunol. 1989 Apr;19(4):689-94. doi: 10.1002/eji.1830190418.
- Morris MM, Dyson H, Baker D, Harbige LS, Fazakerley JK, Amor S. Characterization of the cellular and cytokine response in the central nervous system following Semliki Forest virus infection. J Neuroimmunol. 1997 Apr;74(1-2):185-97. doi: 10.1016/s0165-5728(96)00786-2.
- Brett FM, Mizisin AP, Powell HC, Campbell IL. Evolution of neuropathologic abnormalities associated with blood-brain barrier breakdown in transgenic mice expressing interleukin-6 in astrocytes. J Neuropathol Exp Neurol. 1995 Nov;54(6):766-75. doi: 10.1097/00005072-199511000-00003.
- Paul R, Koedel U, Winkler F, Kieseier BC, Fontana A, Kopf M, Hartung HP, Pfister HW. Lack of IL-6 augments inflammatory response but decreases vascular permeability in bacterial meningitis. Brain. 2003 Aug;126(Pt 8):1873-82. doi: 10.1093/brain/awg171. Epub 2003 Jun 23.
- Abraham CS, Deli MA, Joo F, Megyeri P, Torpier G. Intracarotid tumor necrosis factor-alpha administration increases the blood-brain barrier permeability in cerebral cortex of the newborn pig: quantitative aspects of double-labelling studies and confocal laser scanning analysis. Neurosci Lett. 1996 Apr 19;208(2):85-8. doi: 10.1016/0304-3940(96)12546-5.
- Munoz-Fernandez MA, Fresno M. The role of tumour necrosis factor, interleukin 6, interferon-gamma and inducible nitric oxide synthase in the development and pathology of the nervous system. Prog Neurobiol. 1998 Oct;56(3):307-40. doi: 10.1016/s0301-0082(98)00045-8.
- Griffin DE, Hardwick JM. Perspective: virus infections and the death of neurons. Trends Microbiol. 1999 Apr;7(4):155-60. doi: 10.1016/s0966-842x(99)01470-5.
- Winter PM, Dung NM, Loan HT, Kneen R, Wills B, Thu le T, House D, White NJ, Farrar JJ, Hart CA, Solomon T. Proinflammatory cytokines and chemokines in humans with Japanese encephalitis. J Infect Dis. 2004 Nov 1;190(9):1618-26. doi: 10.1086/423328. Epub 2004 Sep 29.
- Solomon T, Dung NM, Vaughn DW, Kneen R, Thao LT, Raengsakulrach B, Loan HT, Day NP, Farrar J, Myint KS, Warrell MJ, James WS, Nisalak A, White NJ. Neurological manifestations of dengue infection. Lancet. 2000 Mar 25;355(9209):1053-9. doi: 10.1016/S0140-6736(00)02036-5.
- Leis AA, Stokic DS, Polk JL, Dostrow V, Winkelmann M. A poliomyelitis-like syndrome from West Nile virus infection. N Engl J Med. 2002 Oct 17;347(16):1279-80. doi: 10.1056/NEJM2002c021587. Epub 2002 Sep 23. No abstract available.
- Solomon T, Winter PM. Neurovirulence and host factors in flavivirus encephalitis--evidence from clinical epidemiology. Arch Virol Suppl. 2004;(18):161-70. doi: 10.1007/978-3-7091-0572-6_14.
- German AC, Myint KS, Mai NT, Pomeroy I, Phu NH, Tzartos J, Winter P, Collett J, Farrar J, Barrett A, Kipar A, Esiri MM, Solomon T. A preliminary neuropathological study of Japanese encephalitis in humans and a mouse model. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2006 Dec;100(12):1135-45. doi: 10.1016/j.trstmh.2006.02.008. Epub 2006 Jun 30.
- Ravi V, Parida S, Desai A, Chandramuki A, Gourie-Devi M, Grau GE. Correlation of tumor necrosis factor levels in the serum and cerebrospinal fluid with clinical outcome in Japanese encephalitis patients. J Med Virol. 1997 Feb;51(2):132-6.
- Singh A, Kulshreshtha R, Mathur A. Secretion of the chemokine interleukin-8 during Japanese encephalitis virus infection. J Med Microbiol. 2000 Jul;49(7):607-612. doi: 10.1099/0022-1317-49-7-607.
- Iwamoto M, Jernigan DB, Guasch A, Trepka MJ, Blackmore CG, Hellinger WC, Pham SM, Zaki S, Lanciotti RS, Lance-Parker SE, DiazGranados CA, Winquist AG, Perlino CA, Wiersma S, Hillyer KL, Goodman JL, Marfin AA, Chamberland ME, Petersen LR; West Nile Virus in Transplant Recipients Investigation Team. Transmission of West Nile virus from an organ donor to four transplant recipients. N Engl J Med. 2003 May 29;348(22):2196-203. doi: 10.1056/NEJMoa022987.
- Chabas D, Baranzini SE, Mitchell D, Bernard CC, Rittling SR, Denhardt DT, Sobel RA, Lock C, Karpuj M, Pedotti R, Heller R, Oksenberg JR, Steinman L. The influence of the proinflammatory cytokine, osteopontin, on autoimmune demyelinating disease. Science. 2001 Nov 23;294(5547):1731-5. doi: 10.1126/science.1062960.
- Lock C, Hermans G, Pedotti R, Brendolan A, Schadt E, Garren H, Langer-Gould A, Strober S, Cannella B, Allard J, Klonowski P, Austin A, Lad N, Kaminski N, Galli SJ, Oksenberg JR, Raine CS, Heller R, Steinman L. Gene-microarray analysis of multiple sclerosis lesions yields new targets validated in autoimmune encephalomyelitis. Nat Med. 2002 May;8(5):500-8. doi: 10.1038/nm0502-500.
- Solomon T. Japanese encephalitis: Clinical features & pathogenesis. 55th Annual Meeting of the American Society of Tropical Medicine and Hygiene; 2006; Atlanta, Georgia; 2006.
- Edelman R, Schneider RJ, Vejjajiva A, Pornpibul R, Voodhikul P. Persistence of virus-specific IgM and clinical recovery after Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1976 Sep;25(5):733-8. doi: 10.4269/ajtmh.1976.25.733.
- Burke DS, Nisalak A, Ussery MA, Laorakpongse T, Chantavibul S. Kinetics of IgM and IgG responses to Japanese encephalitis virus in human serum and cerebrospinal fluid. J Infect Dis. 1985 Jun;151(6):1093-9. doi: 10.1093/infdis/151.6.1093.
- Kumar R, Mathur A, Kumar A, Sharma S, Chakraborty S, Chaturvedi UC. Clinical features & prognostic indicators of Japanese encephalitis in children in Lucknow (India). Indian J Med Res. 1990 Sep;91:321-7.
- Libraty DH, Nisalak A, Endy TP, Suntayakorn S, Vaughn DW, Innis BL. Clinical and immunological risk factors for severe disease in Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2002 Mar-Apr;96(2):173-8. doi: 10.1016/s0035-9203(02)90294-4.
- Bista MB, Shrestha JM. Epidemiological situation of Japanese encephalitis in Nepal. JNMA J Nepal Med Assoc. 2005 Apr-Jun;44(158):51-6.
- Rayamajhi A, Singh R, Prasad R, Khanal B, Singhi S. Clinico-laboratory profile and outcome of Japanese encephalitis in Nepali children. Ann Trop Paediatr. 2006 Dec;26(4):293-301. doi: 10.1179/146532806X152818.
- Tandan JB, Ohrr H, Sohn YM, Yoksan S, Ji M, Nam CM, Halstead SB. Single dose of SA 14-14-2 vaccine provides long-term protection against Japanese encephalitis: a case-control study in Nepalese children 5 years after immunization. drjbtandan@yahoo.com. Vaccine. 2007 Jun 28;25(27):5041-5. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.04.052. Epub 2007 May 8.
- Pant GR. A serological survey of pigs, horses, and ducks in Nepal for evidence of infection with Japanese encephalitis virus. Ann N Y Acad Sci. 2006 Oct;1081:124-9. doi: 10.1196/annals.1373.013.
- Leung DY, Burns JC, Newburger JW, Geha RS. Reversal of lymphocyte activation in vivo in the Kawasaki syndrome by intravenous gammaglobulin. J Clin Invest. 1987 Feb;79(2):468-72. doi: 10.1172/JCI112835.
- Clarkson SB, Bussel JB, Kimberly RP, Valinsky JE, Nachman RL, Unkeless JC. Treatment of refractory immune thrombocytopenic purpura with an anti-Fc gamma-receptor antibody. N Engl J Med. 1986 May 8;314(19):1236-9. doi: 10.1056/NEJM198605083141907. No abstract available.
- Buchwald B, Ahangari R, Weishaupt A, Toyka KV. Intravenous immunoglobulins neutralize blocking antibodies in Guillain-Barre syndrome. Ann Neurol. 2002 Jun;51(6):673-80. doi: 10.1002/ana.10205.
- Quartier P, Foray S, Casanova JL, Hau-Rainsard I, Blanche S, Fischer A. Enteroviral meningoencephalitis in X-linked agammaglobulinemia: intensive immunoglobulin therapy and sequential viral detection in cerebrospinal fluid by polymerase chain reaction. Pediatr Infect Dis J. 2000 Nov;19(11):1106-8. doi: 10.1097/00006454-200011000-00020. No abstract available.
- Spector SA, Gelber RD, McGrath N, Wara D, Barzilai A, Abrams E, Bryson YJ, Dankner WM, Livingston RA, Connor EM. A controlled trial of intravenous immune globulin for the prevention of serious bacterial infections in children receiving zidovudine for advanced human immunodeficiency virus infection. Pediatric AIDS Clinical Trials Group. N Engl J Med. 1994 Nov 3;331(18):1181-7. doi: 10.1056/NEJM199411033311802.
- Rodriguez WJ, Gruber WC, Welliver RC, Groothuis JR, Simoes EA, Meissner HC, Hemming VG, Hall CB, Lepow ML, Rosas AJ, Robertsen C, Kramer AA. Respiratory syncytial virus (RSV) immune globulin intravenous therapy for RSV lower respiratory tract infection in infants and young children at high risk for severe RSV infections: Respiratory Syncytial Virus Immune Globulin Study Group. Pediatrics. 1997 Mar;99(3):454-61. doi: 10.1542/peds.99.3.454.
- Keller MA, Stiehm ER. Passive immunity in prevention and treatment of infectious diseases. Clin Microbiol Rev. 2000 Oct;13(4):602-14. doi: 10.1128/CMR.13.4.602.
- Levine B, Hardwick JM, Trapp BD, Crawford TO, Bollinger RC, Griffin DE. Antibody-mediated clearance of alphavirus infection from neurons. Science. 1991 Nov 8;254(5033):856-60. doi: 10.1126/science.1658936.
- Griffin DE, Ubol S, Despres P, Kimura T, Byrnes A. Role of antibodies in controlling alphavirus infection of neurons. Curr Top Microbiol Immunol. 2001;260:191-200. doi: 10.1007/978-3-662-05783-4_10. No abstract available.
- Murali-Krishna K, Ravi V, Manjunath R. Protection of adult but not newborn mice against lethal intracerebral challenge with Japanese encephalitis virus by adoptively transferred virus-specific cytotoxic T lymphocytes: requirement for L3T4+ T cells. J Gen Virol. 1996 Apr;77 ( Pt 4):705-14. doi: 10.1099/0022-1317-77-4-705.
- Pan CH, Chen HW, Huang HW, Tao MH. Protective mechanisms induced by a Japanese encephalitis virus DNA vaccine: requirement for antibody but not CD8(+) cytotoxic T-cell responses. J Virol. 2001 Dec;75(23):11457-63. doi: 10.1128/JVI.75.23.11457-11463.2001.
- Beasley DW, Li L, Suderman MT, Guirakhoo F, Trent DW, Monath TP, Shope RE, Barrett AD. Protection against Japanese encephalitis virus strains representing four genotypes by passive transfer of sera raised against ChimeriVax-JE experimental vaccine. Vaccine. 2004 Sep 9;22(27-28):3722-6. doi: 10.1016/j.vaccine.2004.03.027.
- Konishi E, Ajiro N, Nukuzuma C, Mason PW, Kurane I. Comparison of protective efficacies of plasmid DNAs encoding Japanese encephalitis virus proteins that induce neutralizing antibody or cytotoxic T lymphocytes in mice. Vaccine. 2003 Sep 8;21(25-26):3675-83. doi: 10.1016/s0264-410x(03)00382-7.
- Kimura-Kuroda J, Yasui K. Protection of mice against Japanese encephalitis virus by passive administration with monoclonal antibodies. J Immunol. 1988 Nov 15;141(10):3606-10.
- Zhang MJ, Wang MJ, Jiang SZ, Ma WY. Passive protection of mice, goats, and monkeys against Japanese encephalitis with monoclonal antibodies. J Med Virol. 1989 Oct;29(2):133-8. doi: 10.1002/jmv.1890290211.
- Gupta AK, Lad VJ, Koshy AA. Protection of mice against experimental Japanese encephalitis virus infections by neutralizing anti-glycoprotein E monoclonal antibodies. Acta Virol. 2003;47(3):141-5.
- Ben-Nathan D, Lustig S, Tam G, Robinzon S, Segal S, Rager-Zisman B. Prophylactic and therapeutic efficacy of human intravenous immunoglobulin in treating West Nile virus infection in mice. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):5-12. doi: 10.1086/376870. Epub 2003 Jun 23.
- Diamond MS, Shrestha B, Marri A, Mahan D, Engle M. B cells and antibody play critical roles in the immediate defense of disseminated infection by West Nile encephalitis virus. J Virol. 2003 Feb;77(4):2578-86. doi: 10.1128/jvi.77.4.2578-2586.2003.
- Kreil TR, Eibl MM. Pre- and postexposure protection by passive immunoglobulin but no enhancement of infection with a flavivirus in a mouse model. J Virol. 1997 Apr;71(4):2921-7. doi: 10.1128/JVI.71.4.2921-2927.1997.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Roper GY, Wang H, Baldwin TJ, Koenig S, Johnson S, Nordstrom JL, Diamond MS. Humanized monoclonal antibody against West Nile virus envelope protein administered after neuronal infection protects against lethal encephalitis in hamsters. J Infect Dis. 2006 Nov 1;194(9):1300-8. doi: 10.1086/508293. Epub 2006 Sep 22.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Wang H, Julander JG, Hall JO, Li H, Nordstrom JL, Koenig S, Johnson S, Diamond MS. Defining limits of treatment with humanized neutralizing monoclonal antibody for West Nile virus neurological infection in a hamster model. Antimicrob Agents Chemother. 2007 Jul;51(7):2396-402. doi: 10.1128/AAC.00147-07. Epub 2007 Apr 23.
- Webb DB, Kendra JR, Gross E, Stamatakis JD. Infusion of intravenous immunoglobulin via implantable subcutaneous catheter. Lancet. 1991 Jun 29;337(8757):1617-8. doi: 10.1016/0140-6736(91)93323-2. No abstract available.
- Imbach P. Immune thrombocytopenic purpura and intravenous immunoglobulin. Cancer. 1991 Sep 15;68(6 Suppl):1422-5. doi: 10.1002/1097-0142(19910915)68:6+3.0.co;2-5.
- Dwyer JM. Manipulating the immune system with immune globulin. N Engl J Med. 1992 Jan 9;326(2):107-16. doi: 10.1056/NEJM199201093260206. No abstract available.
- Sullivan KM, Kopecky KJ, Jocom J, Fisher L, Buckner CD, Meyers JD, Counts GW, Bowden RA, Peterson FB, Witherspoon RP, et al. Immunomodulatory and antimicrobial efficacy of intravenous immunoglobulin in bone marrow transplantation. N Engl J Med. 1990 Sep 13;323(11):705-12. doi: 10.1056/NEJM199009133231103.
- Newburger JW, Takahashi M, Beiser AS, Burns JC, Bastian J, Chung KJ, Colan SD, Duffy CE, Fulton DR, Glode MP, et al. A single intravenous infusion of gamma globulin as compared with four infusions in the treatment of acute Kawasaki syndrome. N Engl J Med. 1991 Jun 6;324(23):1633-9. doi: 10.1056/NEJM199106063242305.
- Ooi MH, Wong SC, Clear D, Perera D, Krishnan S, Preston T, Tio PH, Willison HJ, Tedman B, Kneen R, Cardosa MJ, Solomon T. Adenovirus type 21-associated acute flaccid paralysis during an outbreak of hand-foot-and-mouth disease in Sarawak, Malaysia. Clin Infect Dis. 2003 Mar 1;36(5):550-9. doi: 10.1086/367648. Epub 2003 Feb 14.
- Chatterjee S, Chattopadhyay D, Bhattacharya MK, Mukherjee B. Serosurveillance for Japanese encephalitis in children in several districts of West Bengal, India. Acta Paediatr. 2004 Mar;93(3):390-3.
- Planitzer CB, Modrof J, Kreil TR. West Nile virus neutralization by US plasma-derived immunoglobulin products. J Infect Dis. 2007 Aug 1;196(3):435-40. doi: 10.1086/519392. Epub 2007 Jun 18.
- Rayamajhi A, Nightingale S, Bhatta NK, Singh R, Kneen R, Ledger E, Bista KP, Lewthwaite P, Mahaseth C, Turtle L, Robinson JS, Galbraith SE, Wnek M, Johnson BW, Faragher B, Griffiths MJ, Solomon T. A preliminary randomized double blind placebo-controlled trial of intravenous immunoglobulin for Japanese encephalitis in Nepal. PLoS One. 2015 Apr 17;10(4):e0122608. doi: 10.1371/journal.pone.0122608. eCollection 2015. Erratum In: PLoS One. 2015;10(8):e0136008. Kneen, Rachel [added].
Studieavstämningsdatum
Studera stora datum
Studiestart
Primärt slutförande (Faktisk)
Avslutad studie (Faktisk)
Studieregistreringsdatum
Först inskickad
Först inskickad som uppfyllde QC-kriterierna
Första postat (Uppskatta)
Uppdateringar av studier
Senaste uppdatering publicerad (Uppskatta)
Senaste inskickade uppdateringen som uppfyllde QC-kriterierna
Senast verifierad
Mer information
Termer relaterade till denna studie
Ytterligare relevanta MeSH-villkor
- Hjärnsjukdomar
- Sjukdomar i centrala nervsystemet
- Sjukdomar i nervsystemet
- RNA-virusinfektioner
- Virussjukdomar
- Infektioner
- Encefalit, Arbovirus
- Encefalit, Viral
- Virala sjukdomar i centrala nervsystemet
- Infektioner i centrala nervsystemet
- Infektiös encefalit
- Arbovirusinfektioner
- Vektorburna sjukdomar
- Flavivirusinfektioner
- Flaviviridae-infektioner
- Encefalit, japanska
- Encefalit
- Läkemedels fysiologiska effekter
- Immunologiska faktorer
- Antikroppar
- Immunoglobuliner
- Immunglobuliner, intravenöst
- gamma-globuliner
- Rho(D) immunglobulin
Andra studie-ID-nummer
- IVIG607
Denna information hämtades direkt från webbplatsen clinicaltrials.gov utan några ändringar. Om du har några önskemål om att ändra, ta bort eller uppdatera dina studieuppgifter, vänligen kontakta register@clinicaltrials.gov. Så snart en ändring har implementerats på clinicaltrials.gov, kommer denna att uppdateras automatiskt även på vår webbplats .