- ICH GCP
- Реестр клинических исследований США
- Клиническое испытание NCT01856205
Исследование безопасности и эффективности внутривенного иммуноглобулина для лечения японского энцефалита
Рандомизированное двойное слепое плацебо-контролируемое исследование для оценки безопасности и эффективности внутривенного иммуноглобулина (ВВИГ) у детей с японским энцефалитом в Непале
Обзор исследования
Статус
Условия
Вмешательство/лечение
Подробное описание
Японский энцефалит (ЯЭ) является наиболее серьезным эпидемическим энцефалитом во всем мире, ежегодно вызывая примерно 35–50 000 случаев заболевания и 10–15 000 смертей. Половина выживших имеют тяжелые нейропсихиатрические последствия, что ложится тяжелым социально-экономическим бременем на сообщества, которые не могут себе этого позволить. Вирус ЯЭ (JEV, род флавивирусов, семейство Flaviviridae) имеет липопротеиновую оболочку размером 50 нм, окружающую нуклеокапсид, состоящий из корового белка и 11 килобайт одноцепочечной РНК с положительным смыслом. Геном имеет 5'- и 3'-нетранслируемые области (UTR) и одну открытую рамку считывания, кодирующую гены трех структурных белков (ядерный - C, премембранный - prM и оболочечный - E) и 7 неструктурных (NS) белков. . Белок E имеет решающее значение для прикрепления и проникновения вируса в клетки и наряду с NS1 и NS3 является основной мишенью иммунного ответа.
JEV представляет собой переносимый членистоногими вирус (арбовирус), передаваемый в энзоотическом цикле между птицами, свиньями и другими позвоночными комарами, особенно видами Culex. Почти все население пораженных частей Азии инфицировано в раннем взрослом возрасте, но только у небольшой части (около 1 из 300) развиваются клинические признаки. Они могут варьироваться от неспецифического лихорадочного заболевания до тяжелого менингоэнцефалита, при котором обычны судороги и клинические признаки повышенного внутричерепного давления, а прогноз неблагоприятный. Кроме того, JEV вызывает полиомиелитоподобный вялый паралич. Считалось, что распространение четырех генотипов JEV в Азии объясняет клиническую эпидемиологию, но теперь считается, что это отражение происхождения вируса в Юго-Восточной Азии и его распространения отсюда. Однако тонкие различия в геноме могут иметь важное значение для определения неврологических проявлений флавивирусов.
Хотя вакцины против JEV существуют, они недоступны для многих людей, которые в них нуждаются, из-за проблем, связанных со стоимостью и производством. Достигнут прогресс в преодолении этих трудностей, и все шире используются новые вакцины. Фактически Непал был в авангарде использования разовой дозы живой аттенуированной вакцины SA14-14-2 против ЯЭ. Однако продолжает распространяться по Азии, и лечения нет. Интерферон-α (IFN-α), который вырабатывается как часть врожденного ответа на инфекцию JEV и обладает противовирусной активностью против вируса, считался наиболее многообещающим средством лечения. Однако рандомизированное плацебо-контролируемое исследование показало, что рекомбинантный IFN-α2a в дозе 10 миллионов единиц/м2/день не улучшил результат. Патогенез ЯЭ до конца не изучен, но по сравнению с другими вирусными энцефалитами с положительной смысловой РНК он, вероятно, включает смесь вирусной цитопатологии и иммунопатологии. Роль стероидов в ЯЭ изучалась в одном рандомизированном плацебо-контролируемом исследовании в Таиланде. который не показал никакой пользы.
ВВИГ в настоящее время предлагает одну из лучших возможностей для улучшения результатов при ЯЭ. Предположительно он использовался у пациентов с флавивирусным энцефалитом, включая ЯЭ, и постулируется, что он действует двумя способами: ВВИГ, производимый в странах, эндемичных по флавивирусам, содержит высокие титры специфических нейтрализующих антител, поскольку большая часть населения подвергалась воздействию вируса. , и поэтому имеют антитела. Кроме того, ВВИГ обладает неспецифическими противовоспалительными свойствами, особенно за счет подавления провоспалительных цитокинов (например, при болезни Кавасаки). Мы стремимся изучить роль ВВИГ при ЯЭ, а также изучить его влияние на провоспалительные цитокины.
Роль антител в защите от тяжелого течения японского энцефалита. Гуморальный иммунный ответ при ЯЭ хорошо охарактеризован. Когда заболевание вызвано первичной инфекцией (т. е. когда JEV является первым флавивирусом, которым был инфицирован человек), в сыворотке и спинномозговой жидкости в течение нескольких дней после заражения возникает быстрый и сильный ответ IgM. К 7-му дню у большинства пациентов титры повышены. Попытки выделения вируса у таких больных обычно отрицательны. Однако отсутствие ответа IgM связано с положительным выделением вируса и летальным исходом. Антитело к JEV, вероятно, защищает хозяина, ограничивая репликацию вируса во время виремической фазы, прежде чем вирус пересечет гематоэнцефалический барьер. Данные по другим флавивирусам позволяют предположить, что он также может ограничивать повреждение во время развившегося энцефалита за счет нейтрализации внеклеточного вируса и облегчения лизиса инфицированных клеток за счет антителозависимой клеточной цитотоксичности.
У выживших пациентов происходит переключение класса иммуноглобулинов, и в течение 30 дней у большинства из них в сыворотке и спинномозговой жидкости обнаруживаются IgG. Бессимптомная инфекция JEV также связана с повышением IgM в сыворотке, но не в ЦСЖ. У пациентов с вторичной инфекцией (т. у тех, кто ранее был инфицирован другим флавивирусом, например, лихорадкой денге или прививкой от желтой лихорадки) наблюдается анамнастический ответ на общие антигены группы флавивирусов. Этот вторичный паттерн активации антител характеризуется ранним повышением IgG с последующим медленным повышением IgM.
Воспаление при японском энцефалите: На вскрытии при ЯЭ мозг обычно отечен, паренхима гиперемирована. Распространены мозжечковая и ункаловая грыжи. Гистопатологически ЯЭ характеризуется периваскулярным воспалением с набором макрофагов, нейтрофилов и лимфоцитов. Особенно поражаются клетки базальных ганглиев и передних рогов спинного мозга, что является патологическим коррелятом паркинсонизма и полиомиелитоподобного вялого паралича, который можно наблюдать. Вирусный антиген находится преимущественно в нейронах, хотя также инфицированы клетки микроглии, астроциты и эндотелиальные клетки сосудов. Когда выживаемость превышает 7 дней, видны зоны бесклеточного некроза, обычно в области мелких или средних артерий, которые окружены отеком.
Иммунопатология при японском энцефалите. Патогенез ЯЭ до конца не ясен, но имеющиеся данные указывают на то, что, как и в случае ряда других вирусных энцефалитов с положительной смысловой РНК, включая вирус лимфохоцитарного хориоменингита (LCMV) у мышей, вирус Синдбиса, вирус денге, вирус желтой лихорадки и Вирус Западного Нила имеет иммуноопосредованное повреждение, а также вирусную цитопатологию.
Реакция провоспалительных цитокинов при японском энцефалите. Как подробно описано ниже в разделе «Предварительные исследования», накапливаются данные о том, что реакция провоспалительных цитокинов может вносить важный вклад в иммунопатологию при ЯЭ. Среди изученных цитокинов интерлейкин (IL)-6, хемокиновый лиганд IL-8 (мотив CXC) (CXCL-8) и фактор некроза опухоли (TNF)-α, по-видимому, связаны с летальным исходом. Имеются также новые данные о важности других цитокинов и хемокинов при энцефалите, вызванном другими флавивирусами, особенно вирусом Западного Нила. Существует несколько механизмов, посредством которых провоспалительная реакция может быть вредной. Недавние исследования показали, что ИЛ-6, продуцируемый нейронами, микроглией, астроцитами и привлеченными макрофагами в ответ на вирусную инфекцию ЦНС, вызывает повышенную проницаемость гематоэнцефалического барьера (ГЭБ), что приводит к интерстициальному отеку головного мозга и повышению внутричерепного давление. TNF-α продуцируется микроглией, астроцитами и макрофагами. Его многочисленные провоспалительные свойства включают активацию экспрессии MHC класса I и II, активацию молекул клеточной адгезии, повышенную проницаемость ГЭБ и активацию индуцибельной синтазы оксида азота (iNOS), что приводит к продукции оксида азота (NO). В высоких концентрациях NO непосредственно токсичен для клеток ЦНС, вызывая окислительное повреждение и апоптоз. Недавние данные свидетельствуют о том, что ранние ответы цитокинов и хемокинов также могут быть важны для определения того, сможет ли вирус даже проникнуть через гематоэнцефалический барьер для проникновения в ЦНС. В одном исследовании вирусной инфекции Западного Нила мыши с дефицитом Toll-подобного рецептора 3 (Tlr3), который распознает двухцепочечную вирусную РНК, были относительно устойчивы к смертельной инфекции. Это было связано со сниженной продукцией цитокинов (особенно TNF-α и IL-6) и повышенной вирусной нагрузкой на периферии по сравнению с мышами дикого типа. Было обнаружено, что передача сигналов рецептора 1 TNF-α жизненно важна для нарушения гематоэнцефалического барьера при стимуляции Tlr3 вирусом. Помимо воздействия на инфицированные вирусом клетки, воспалительная реакция в ЦНС может также повреждать неинфицированные клетки, вызывая гибель клеток-свидетелей. Важность хемокинового рецептора CCR5 и его лиганда CCL5 (также известного как RANTES, регулируемого при активации, обычно экспрессируемого и секретируемого Т-клетками) в воспалении ЦНС, вызванном флавивирусами, недавно была продемонстрирована их заметной повышающей регуляцией в мышиной модели West. Заражение вирусом Нила. Это было связано с инфильтрацией ЦНС CD4+ и CD8+ Т-клетками, естественными киллерами (NK)1.1+. клетки и макрофаги, экспрессирующие рецептор. Значение CCR5 в патогенезе было установлено исследованиями смертности, в которых заражение мышей CCR5-/- быстро и неизменно приводило к летальному исходу. Важно отметить, что наше недавнее исследование (см. ниже) показало, что CCL5 также был повышен в плазме людей с ЯЭ, где более высокие уровни были связаны с летальным исходом.
Хотя клинические исследования на людях с ЯЭ и параллельные исследования на животных моделях флавивирусного энцефалита показывают, что повышенные провоспалительные цитокины важны и связаны с неблагоприятным исходом при ЯЭ, неясно, будет ли контроль над этой сильной провоспалительной реакцией улучшить результат. Мы проведем пилотное двойное слепое плацебо-контролируемое исследование безопасности, переносимости и иммунологических маркеров эффективности ВВИГ у детей с ЯЭ в Непале, за которым последует более широкое исследование эффективности.
Предварительные исследования: профессор Соломон занимается изучением ЯЭ и родственных флавивирусов с 1994 года. При поддержке своей группы и сотрудников он показал, что JEV является наиболее важной причиной вирусного энцефалита во Вьетнаме, как и в большинстве стран Южной и Юго-Восточной Азии. Он показал, что судороги и повышенное внутричерепное давление являются частыми клиническими проявлениями инфекции. В сотрудничестве с коллегами из Малайзии он разработал и испытал в полевых условиях простой экспресс-тест для диагностики ЯЭ в сельской местности, где он встречается. Этот тест также позволил отличить ЯЭ от денге — родственного флавивируса, циркулирующего в Азии. Хотя лихорадка денге более известна как причина геморрагических заболеваний, профессор Соломон и его команда показали, что она также является важной причиной неврологических заболеваний. Профессор Соломон также показал, что JEV может проявляться не только энцефалитом, но и острым вялым параличом, подобным полиомиелиту, который недавно был обнаружен у взрослых, инфицированных вирусом Западного Нила. Основываясь на данных in vitro и in vivo, а также на исследованиях фазы I/II на людях, профессор Соломон провел рандомизированное плацебо-контролируемое исследование интерферона α-2b у детей с ЯЭ (единственное противовирусное исследование, когда-либо проводившееся для ЯЭ). Однако исследование показало, что это не улучшило результат. Чтобы начать изучение возможного вклада вирусного генетического разнообразия в клиническую эпидемиологию ЯЭ, профессор Соломон изучил молекулярную эволюцию вируса в Азии и показал, что вирус, вероятно, возник в регионе Индонезии и Малайзии и эволюционировал здесь в различные генотипы. , самый последний из которых впоследствии распространился по всей Азии.
Ливерпульская группа совсем недавно начала изучать воспаление при ЯЭ. Недавнее патологическое исследование на людях и мышиной модели подтверждает важность воспалительной реакции и предполагает возможное повреждение эндотелия сосудов. Изучение провоспалительных и противовоспалительных цитокинов у людей с ЯЭ показало, что уровни интерлейкина (IL)-6, фактора некроза опухоли (TNF)-α, интерферона (IFN)-α и хемокина CXCL8 (IL- 8) были выше у умерших больных, чем у выживших. IFN-γ и оксид азота (NO) также были обнаружены в спинномозговой жидкости смертельных случаев и выживших. Эти результаты расширяют наблюдения других исследователей TNF-α и CXCL8, указывая на то, что сильный провоспалительный ответ при ЯЭ связан с плохим исходом. Также было показано, что CCL5 (RANTES) экспрессируется в плазме людей с ЯЭ и что высокие уровни в плазме связаны с летальным исходом. Клинические данные по другим флавивирусным энцефалитам подтверждают концепцию, согласно которой воспаление может способствовать патогенезу. Например, у пациентов с трансплантацией с подавленным иммунитетом, инфицированных вирусом Западного Нила, заболевание ЦНС развивается позже, чем у иммунокомпетентных пациентов. Цитокины не действуют изолированно, и действительно, плюрипотентность и избыточность биологической реакции является одной из их характерных черт. Недавние эксперименты с микрочипами показывают, что широкий спектр молекул активируется при воспалительных состояниях ЦНС. Кроме того, ливерпульская группа изучила взаимосвязь между реакцией антител и исходом. Вместе с другими исследователями мы показали, что наличие антител в сыворотке и ЦСЖ связано с выживаемостью.
ЯЭ в Непале: японский энцефалит был впервые зарегистрирован в Непале в 1978 г. и в настоящее время является эндемичным в 24 районах. С момента его первого появления было зарегистрировано более 26 667 случаев заболевания и 5381 летальный исход. Показатели ранней смертности составляли до 60%, но в последнее время они улучшились примерно до 20% среди лиц моложе 15 лет. Считается, что заболеваемость составляет около 50%. В результате беспокойства по поводу болезни в 1999 г. в 3 районах была проведена иммунизация против ЯЭ, которая теперь распространена на большинство пораженных районов. Кроме того, в 2001 году правительство вакцинировало около 200 000 свиней в зоне Тераи. Несмотря на эти успехи, случаи ЯЭ все еще продолжаются. В 2006 г. было зарегистрировано 292 подтвержденных случая и 1481 случай ОЭС неизвестной этиологии. Эти цифры могут занижать фактическое количество случаев из-за проблем с логистикой, смертей до госпитализации и трудностей с подтверждением диагноза ЯЭ с помощью парных образцов сыворотки и ЦСЖ. Недавний серологический надзор за животными-хозяевами ЯЭ в Непале ясно показывает, что вирус все еще присутствует в дикой природе и, вероятно, останется. Серопревалентность составила 48% (102/212) у свиней, 27% (15/56) у уток и 50% (6/12) у лошадей из 280 сывороток, собранных в 10 районах, из которых 44% в целом были положительными. Следовательно, ЯЭ по-прежнему является серьезной проблемой общественного здравоохранения в Непале, и существует острая необходимость в разработке более эффективных методов лечения. В настоящее время ВВИГ используется в Непале для лечения ряда заболеваний у детей, включая синдром Гийена-Барре, идиопатическую тромбоцитопеническую пурпуру.
Обоснование использования ВВИГ при ЯЭ. В настоящее время не существует противовирусного или иммуномодулирующего лечения ЯЭ или любого флавивирусного энцефалита. Как указывалось выше, единственные проведенные испытания с использованием интерферона альфа и дексаметазона не показали каких-либо преимуществ. Основываясь на данных доклинических исследований и обсервационных исследований на людях (см. ниже), ВВИГ в настоящее время дает наибольшую надежду на лечение благодаря своим противовирусным и противовоспалительным свойствам.
Установленное применение ВВИГ в педиатрии: ВВИГ был признан стандартным средством лечения ряда детских иммуноопосредованных заболеваний, включая синдром Гийена-Барре, болезнь Кавасаки, иммунную тромбоцитопению и дерматомиозит. При болезни Кавасаки активация Т- и В-клеток подавляется IVIG. Считается, что при тромбоцитопенической пурпуре важна блокада FCγ-рецепторов, что может привести к снижению уровня секреторных цитокинов. При синдроме Гийена-Барре и дерматомиозите торможение связывания комплемента и предотвращение образования комплекса мембранолитической атаки являются возможными механизмами действия ВВИГ. Кроме того, ВВИГ применяли для лечения и профилактики ряда детских вирусных инфекций, когда считалось, что нейтрализующие антитела в ВВИГ играют важную роль. ВВИГ применяли для лечения, а затем и для профилактики у детей с гипо- или агаммаглобулинемией при хроническом энтеровирусном менингоэнцефалите. Важно отметить, что у детей с Х-сцепленной агаммаглобулинемией и энтеровирусным менингоэнцефалитом, получавших интенсивную и пролонгированную терапию ВВИГ, была достигнута длительная клиническая и вирусная ремиссия (отрицательный вирусный посев ЦСЖ и ПЦР). Однако у пациентов возник рецидив, когда ВВИГ снижали дозу, что указывает на большую положительную роль ВВИГ в этом состоянии. Было показано, что инфузия ВВИГ у младенцев и детей со СПИДом, получающих терапию зидовудином, снижает риск серьезных бактериальных инфекций (16,9% в группе ВВИГ против 24,3% в группе плацебо (относительный риск 0,60; 95-процентный доверительный интервал от 0,35 до 1,04; p = 0,07). В рандомизированном контролируемом исследовании (РКИ) с участием 102 ранее здоровых детей было показано, что при инфекциях респираторно-синцитиального вируса (РСВ) терапия иммуноглобулином безопасна и в целом хорошо переносится, хотя положительный эффект от сокращения количества госпитализаций и количества дней в отделениях интенсивной терапии у детей был незначительным. с тяжелой болезнью. Другие установленные показания для пассивной иммунизации ВВИГ включают инфицирование парвовирусом В19.
Использование ВВИГ при флавивирусном энцефалите. Имеются убедительные доказательства того, что JEV, как и другие нейротропные флавивирусы, может быть более восприимчив к опосредованному антителами, а не к клеточно-опосредованному иммунному ответу. Для JEV и других нейротропных флавивирусов клиренс вируса не зависит от активности цитолитических Т-клеток, в отличие от ненейротропных вирусов. Нейроны, как терминально дифференцированные клетки, не экспрессируют MHC-1, что может привести к их лизису Т-клетками CD8 и незамещению. Данные о животных подтверждают важность иммунитета, опосредованного антителами. В одном исследовании Konishi et. др. иммунизированных мышей плазмидными ДНК, кодирующими белки JEV, которые индуцируют ответы нейтрализующих антител или ответы цитотоксических Т-лимфоцитов, а затем заражали летальными внутрибрюшинными дозами вируса. Они показали, что нейтрализующие антитела предотвращают распространение вируса из периферических участков в головной мозг и что механизмы защиты, опосредованные антителами, более эффективны, чем ответы цитотоксических Т-клеток. Эти результаты подтверждают более раннюю работу, показывающую, что антитела к белкам оболочки являются наиболее важным защитным компонентом в модели заражения JEV, а также более поздние эксперименты по пассивному переносу антител. Работа in vitro на мышах показывает защитную роль ВВИГ, назначаемого профилактически для предотвращения флавивируса, вызывающего клещевой энцефалит, и защитный эффект при использовании в качестве лечения. В работе нескольких различных групп использование ВВИГ, содержащего специфические антитела против вируса Западного Нила, во время виремической фазы, до того, как вирус проник в ЦНС, показало впечатляющую 100% выживаемость. Аналогичная работа с клещевым энцефалитом оказала 100%-ное влияние на выживаемость. В настоящее время имеются достоверные данные о том, что на животных моделях флавивирусного энцефалита периферическое введение антител нейтрализует вирус даже после того, как он проник в центральную нервную систему.
Клинические данные: из-за доклинических данных, подтверждающих роль лечения антителами при флавивирусном энцефалите, лечение антителами (в форме ВВИГ) также использовалось из соображений сострадания при ЯЭ и энцефалите Западного Нила. Кроме того, ВВИГ в настоящее время изучается на предмет энцефалита Западного Нила в рандомизированном плацебо-контролируемом исследовании, спонсируемом Национальным институтом здравоохранения (NIH) в США (в котором профессор Соломон входит в состав Научного руководящего комитета).
ВВИГ был использован у 49-летнего путешественника, вернувшегося из Вьетнама, который обратился с ЯЭ в итальянскую больницу. IVIG также использовался для лечения инфекций, вызванных вирусом Западного Нила, у пяти пациентов в Израиле и трех в Соединенных Штатах. ВВИГ также оценивали в плацебо-контролируемом исследовании вирусной инфекции Западного Нила в Соединенных Штатах без серьезных побочных эффектов препарата.
Обоснование дозы: Наиболее часто используемая доза ВВИГ составляет 2 г/кг либо в виде однократной инфузии, либо в виде 400 мг/кг в течение пяти дней. При болезни Кавасаки 2 г/кг в виде однократной десятичасовой инфузии хорошо переносится и оказался наиболее эффективным режимом. При синдроме Гийена-Барре у детей и взрослых препарат чаще всего назначают в течение 5 дней, и именно этот режим применялся у пациентов с флавивирусным энцефалитом и будет использоваться в данном исследовании.
Лекарство и вмешательство: дети, отвечающие критериям включения, будут случайным образом распределены для получения ВВИГ (Reliance Biophamaceuticals Pvt. Ltd.) в дозе 400 мг/кг/день в течение 5 дней или в эквивалентном объеме 0,9% физиологического раствора с использованием установленной методики введения жидкости двойным слепым методом.
Презентация препарата: Мы будем использовать внутривенный иммуноглобулин Immunorel™, который производится компанией Reliance Biophamaceuticals Pvt. Ltd., производится в Китае и продается в аптеках Yetichem, Сундхара, Катманду и Shriran Pharmacy, Махараджгундж, Катманду. Это продукт IVIG, который в настоящее время чаще всего используется в Непале.
Как и в большинстве других частей Азии, распространенность ЯЭ в Китае высока. К 10 годам примерно треть детей имеют нейтрализующие антитела к JEV, а во взрослом возрасте большинство населения подвергается воздействию вируса. Имеются обширные данные, показывающие, что ВВИГ из районов, эндемичных по флавивирусам, содержат значительное количество нейтрализующих антител. Например, IVIG из Израиля содержит нейтрализующие антитела к вирусу Западного Нила от умеренного до высокого. Несмотря на то, что вирус Западного Нила циркулирует в Соединенных Штатах всего несколько лет, в некоторых партиях ВВИГ были обнаружены высокие уровни нейтрализующих антител.
Нейтрализующие антитела к JEV в ВВИГ из Азии: Недавно мы исследовали титры нейтрализующих антител в ряде продуктов ВВИГ из Индии и Китая, используя анализ нейтрализации уменьшения бляшек (PRNT)50. В этом исследовании мы обнаружили, что ВВИГ из Великобритании не содержал антител, а сыворотка лабораторного работника, вакцинированного против ЯЭ, содержала небольшое количество нейтрализующих антител. Напротив, ВВИГ, производимые компаниями Bharrat, Hualan, Sichun и Reliance, имели титры нейтрализующих антител более 1 на 400, при этом у Reliance был самый высокий титр, почти 1 на 750.
Immunorel™ упакован в прозрачные и бесцветные флаконы и выпускается в 2 упаковках, каждая из которых содержит ВВИГ в дозе 0,05 г/мл (т.е. 50 мг/мл). Доступные флаконы: 50 мл (содержащие 2,5 г) и 100 мл (5,0 г).
Таким образом, дети будут получать 400 мг/кг/день ВВИГ, что эквивалентно 8 мл/кг/день раствора Immunorel™ или 8 мл/кг/день 0,9% физиологического раствора.
Фармакокинетика. Были проведены исследования распределения ряда препаратов ВВИГ. В исследовании пациентов, у которых развился асептический менингит (как осложнение инфузии), после введения 2 г/кг внутривенно в 2 приема уровень в сыворотке увеличился в пять раз, а затем снизился на 50% в течение следующих 72 часов по мере внесосудистого перераспределения. место. К 21-28 дню были достигнуты уровни до лечения. Период полувыведения составлял 18-32 дня и был аналогичен нативному иммуноглобулину. В первые 48 ч после инфузии концентрация ЦСЖ увеличивалась в 1,5–7 раз, но возвращалась к норме в течение недели. Проникновение в ЦНС можно ожидать у пациентов с вирусным менингоэнцефалитом или даже энцефаломиелитом, поскольку будет разрушение гематоэнцефалического барьера. Метаболизм ВВИГ происходит в клетках ретикулоэндотелиальной системы, где расщепляются иммуноглобулины и иммуноглобулиновые комплексы.
Исследования Immunorel® у здоровых добровольцев показали, что пиковые концентрации в сыворотке достигаются сразу после внутривенной инъекции и зависят от дозы. В течение 24 часов до 30% дозы может быть удалено путем катаболизма и распределения. Данные о распределении позволяют предположить, что ВВИГ распределяется во внутрисосудистом (60%) и экстраваскулярном (40%) пространствах. Период полувыведения иммуноглобулина из сыворотки составляет от 21 до 29 дней.
Реакции, связанные с внутривенным иммуноглобулином: Реакции на внутривенный иммуноглобулин, как правило, связаны со скоростью инфузии и чаще всего возникают в течение первого часа инфузии. Мы будем регулярно контролировать жизненные показатели и общее состояние пациента на протяжении всей инфузии. Типы реакций, о которых сообщалось, включают боль в животе, головную боль, стеснение в груди, покраснение или бледность лица, ощущение жара, одышку, неуртикарную кожную сыпь, зуд, артериальную гипотензию, тошноту или рвоту. Если какая-либо из этих реакций развивается во время инфузии ВВИГ, инфузию временно прекращают до клинического улучшения состояния пациента (на 5–10 минут), а затем осторожно возобновляют с более медленной скоростью. У некоторых пациентов могут развиться отсроченные побочные реакции на ВВИГ, такие как тошнота, рвота, боль в груди, озноб, головокружение или боль в ногах. Эти побочные реакции возникают после прекращения инфузии, но обычно в течение 24 часов. Истинные реакции гиперчувствительности на ВВИГ, такие как крапивница, ангионевротический отек, бронхоспазм или артериальная гипотензия, возникают очень редко. Если после ВВИГ разовьется анафилактическая реакция, инфузия будет остановлена и назначено лечение адреналином, кислородом, антигистаминными препаратами и стероидами. В редких случаях в связи с лечением ВВИГ сообщалось о гемолитической анемии и нейтропении. Слабое и умеренное повышение сывороточных трансаминаз (АСТ, АЛТ, гамма-ГТ) наблюдалось у небольшого числа пациентов, получавших ВВИГ. Такие изменения носили транзиторный характер и не были связаны с передачей гепатита. Редкие осложнения, такие как синдром асептического менингита (AMS), тромбофлебит, почечная дисфункция и острая почечная недостаточность, возникали у пациентов, получавших ВВИГ. Во время исследования будет контролироваться функция печени и почек.
Реакции, связанные с Immunorel™:
я. Первичный иммунодефицит: у пациентов с синдромом иммунодефицита, получавших ВВИГ в ежемесячной дозе 400 мг/кг массы тела, сообщалось о таких реакциях, как недомогание, чувство слабости, лихорадка, озноб, головная боль, тошнота, рвота, стеснение в груди, одышка и одышка. , боль в спине или бедре. В некоторых случаях также сообщалось о легкой эритеме в месте инфузии.
II. Идиопатическая тромбоцитопеническая пурпура (ИТП). При лечении взрослых и детей с ИТП в дозе 400 мг/кг массы тела системные реакции наблюдались менее чем у 3% пациентов. Другие симптомы, которые были легкими и преходящими, включают стеснение в груди, чувство тахикардии и ощущение жжения в голове. В дозе 1000 мг/кг массы тела либо в виде однократной дозы, либо в виде двух доз в последующие дни при лечении взрослых и детей с ИТП. Побочные реакции были отмечены менее чем у 10% пациентов.
III. Трансплантация костного мозга: в дозе 500 мг/кг массы тела за 7 дней и за два дня до трансплантации и еженедельно в течение 90 дней после трансплантации побочные реакции были зарегистрированы менее чем у 7% пациентов. Все реакции были классифицированы как легкие и включали головную боль, приливы, лихорадку и легкий дискомфорт в спине.
IV. Почки: повышение уровня креатинина и азота мочевины крови (АМК) может наблюдаться уже через один-два дня после инфузии. Прогрессирование до олигурии или анурии может потребовать диализа. Сообщалось о тяжелых случайных нежелательных явлениях после терапии ВВИГ, включая острую почечную недостаточность, острый канальцевый некроз, проксимальную канальцевую нефропатию и осмотический нефоз. Таким образом, коррекция обезвоживания с помощью соответствующих жидкостей до начала терапии ВВИГ имеет важное значение. Измерение азота мочевины крови (АМК) и/или креатинина сыворотки следует проводить до первоначальной инфузии ВВИГ и повторно через соответствующие интервалы после нее, контролируя диурез.
IV. Общие: реакции на ВВИГ связаны со скоростью инфузии. Очень редко анафилактоидные реакции могут возникать у пациентов, у которых в анамнезе не было тяжелых аллергических реакций на внутримышечный или внутривенный иммуноглобулин.
Мутагенность, канцерогенность и ухудшение фертильности. Исследования репродукции животных с Gamma IV™ не проводились. Следовательно, неизвестно, может ли ВВИГ нанести вред плоду при введении беременной женщине или повлиять на репродуктивную способность.
Взаимодействие с другими лекарственными средствами. Взаимодействие ВВИГ с другими лекарственными средствами в соответствующих исследованиях не установлено. Пассивно приобретенные антитела могут влиять на реакцию на живые аттенуированные вакцины. Поэтому введение таких вакцин, напр. полиомиелита или кори, будет отложено приблизительно до шести месяцев после инфузии ВВИГ. Точно так же иммуноглобулины не следует вводить в течение по крайней мере двух недель после введения вакцины.
Противопоказания: ВВИГ противопоказан лицам с анафилактической или тяжелой системной реакцией на иммуноглобулин (человека). Лица с избирательным дефицитом IgA не должны получать Gamma IV™, поскольку у этих людей могут возникнуть реакции сервера на IgA, которые могут присутствовать.
Предупреждения безопасности: Продукт не следует использовать, если он мутный. Не следует использовать растворы, которые были заморожены. После вскрытия, даже частичного использования, флаконы следует выбросить. ВВИГ следует вводить только внутривенно, так как внутримышечный и подкожный пути введения не изучались.
Дозировка и способ применения: Обычно рекомендуется вводить только ВВИГ с начальной скоростью от 0,01 до 0,02 мл/кг массы тела/мин в течение 30 минут, при хорошей переносимости скорость можно постепенно увеличивать до максимальной дозы 0,08 мл/мин. кг массы тела в минуту. ВВИГ рекомендуется вводить отдельно по отдельной линии без смешивания с другими внутривенными жидкостями или лекарствами, которые могут получать пациенты. ВВИГ несовместим с физиологическим раствором. Разбавление, если требуется, ВВИГ можно развести 5% раствором декстрозы в воде.
Тип исследования
Регистрация (Действительный)
Фаза
- Фаза 2
Контакты и местонахождение
Места учебы
-
-
Bagmati
-
Kathmandu, Bagmati, Непал, 44616
- Kanti Children's Hospital
-
-
Koshi
-
Dharan, Koshi, Непал
- BP Koirala Institute of Health Sciences
-
-
Критерии участия
Критерии приемлемости
Возраст, подходящий для обучения
Принимает здоровых добровольцев
Полы, имеющие право на обучение
Описание
Критерии включения:
- Дети в возрасте от 1 года до 14 лет, у которых был клинически диагностирован энцефалит на основании лихорадки в анамнезе, продолжавшейся менее 14 дней, нарушения сознания с наличием или отсутствием новых приступов в анамнезе и отсутствием в СМЖ количества лейкоцитов менее 1000 клеток/мм3 при отсутствии микроорганизмов при окрашивании по Граму и соотношении глюкозы в СМЖ > 40%, поступивших в Детскую больницу Канти и Институт медицинских наук им. Б.П. Коирала, Непал.
Критерий исключения:
Бесполые паразиты Plasmodium falciparum в крови
- Кома появляется вторично по отношению к другим системным состояниям, например, печеночной недостаточности, сердечной недостаточности, токсинам.
- Пациенты, у которых задокументировано лечение антибиотиками до поступления и у которых частично вылеченный бактериальный менингит появляется чаще, чем энцефалит.
- Дети с простыми фебрильными судорогами, определяемыми как единичный приступ продолжительностью менее 15 минут с последующим полным восстановлением сознания в течение 60 минут.
- Беременные или кормящие женщины
- Дети с ШКГ 3/15, находившиеся на ИВЛ без признаков спонтанного дыхания, с отсутствием окулоцефального рефлекса.
Учебный план
Как устроено исследование?
Детали дизайна
- Основная цель: Уход
- Распределение: Рандомизированный
- Интервенционная модель: Параллельное назначение
- Маскировка: Тройной
Оружие и интервенции
Группа участников / Армия |
Вмешательство/лечение |
|---|---|
|
Плацебо Компаратор: ВВИГ при ЯЭ (ЯЭ-положительный)
Мы случайным образом распределили пациентов для лечения ВВИГ или плацебо.
Дети получали либо физиологический раствор, либо внутривенный иммуноглобулин (ВВИГ) [ImmunoRel™ (партия 20081217)] в дозе 400 мг/кг/день в течение 5 дней или эквивалентный объем 0,9% физиологического раствора внутривенно со скоростью от 0,01 до 0,02 мл/сут. кг массы тела в минуту.
Все исследователи, медицинские работники и участники не знали об исследуемом препарате.
Второй запечатанный конверт хранился с заметками пациента на тот случай, если врачу срочно понадобится узнать, какое лекарство пациент получил.
|
Группа ВВИГ получала 400 мг/кг/сут внутривенно со скоростью 0,01-0,02 мл/кг массы тела/мин в течение 5 дней при появлении побочного действия или нежелательных явлений. Группа плацебо получала 0,9% физиологический раствор внутривенно с той же скоростью. |
|
Плацебо Компаратор: ВВИГ при отсутствии ЯЭ (отрицательном ЯЭ)
Мы случайным образом распределили пациентов для лечения ВВИГ или плацебо.
Дети получали либо физиологический раствор, либо внутривенный иммуноглобулин (ВВИГ) [ImmunoRel™ (партия 20081217)] в дозе 400 мг/кг/день в течение 5 дней или эквивалентный объем 0,9% физиологического раствора внутривенно со скоростью от 0,01 до 0,02 мл/сут. кг массы тела в минуту.
Все исследователи, медицинские работники и участники не знали об исследуемом препарате.
Второй запечатанный конверт хранился с заметками пациента на тот случай, если врачу срочно понадобится узнать, какое лекарство пациент получил.
|
Группа ВВИГ получала 400 мг/кг/сут внутривенно со скоростью 0,01-0,02 мл/кг массы тела/мин в течение 5 дней при появлении побочного действия или нежелательных явлений. Группа плацебо получала 0,9% физиологический раствор внутривенно с той же скоростью. |
Что измеряет исследование?
Первичные показатели результатов
Мера результата |
Мера Описание |
Временное ограничение |
|---|---|---|
|
Доказательства побочных эффектов исследуемого препарата, таких как реакция в месте инфузии, диарея, повышение артериального давления и изменение диуреза.
Временное ограничение: Каждые 12 часов после введения исследуемого препарата до выписки, что составляет в среднем восьмой день (192 часа) госпитализации.
|
Пациенты будут контролироваться на наличие побочных эффектов, таких как реакции в месте инфузии, диарея, повышение артериального давления (в мм рт.ст.) и изменение диуреза (в мл/кг/час) каждые 12 часов с первого дня начала лечения до смерти или увольнять.
Пациенту в среднем вводят исследуемый препарат в первый день приема.
Исследуемый препарат вводят ежедневно в течение 5 дней.
Больных выписывают в среднем на восьмой день (192 часа) после поступления в стационар.
|
Каждые 12 часов после введения исследуемого препарата до выписки, что составляет в среднем восьмой день (192 часа) госпитализации.
|
Вторичные показатели результатов
Мера результата |
Мера Описание |
Временное ограничение |
|---|---|---|
|
Смерть или неврологические последствия
Временное ограничение: На момент выписки ожидаемый средний восьмой день госпитализации и снова через 6 месяцев после выписки
|
Во время выписки (ожидаемый средний восьмой день госпитализации) или смерти: время до смерти, выхода из комы, самостоятельного сидения, самостоятельного стояния, самостоятельного прохождения не менее 5 м и выписки из больницы. Через 6 месяцев после выписки: повторные припадки в анамнезе, поведенческие изменения, признаки восстановления неврологических последствий, такие как оценка способности самостоятельно сидеть, стоять самостоятельно, самостоятельно ходить не менее 5 метров. |
На момент выписки ожидаемый средний восьмой день госпитализации и снова через 6 месяцев после выписки
|
Другие показатели результатов
Мера результата |
Мера Описание |
Временное ограничение |
|---|---|---|
|
Уровень JEV PRNT50 в сыворотке (иммунологический маркер)
Временное ограничение: Измеряли в 3 временных точках: до лечения (непосредственно перед первой дозой исследуемого препарата в первый день), в середине лечения (непосредственно перед четвертой дозой на четвертый день) и после лечения (через час после пятой дозы на пятый день).
|
Предварительное лечение проводилось непосредственно перед введением первой дозы исследуемого препарата в первый день, среднее лечение проводилось непосредственно перед введением 4-й дозы, а последующее лечение проводилось через 1 час после введения пятой дозы исследуемого препарата.
|
Измеряли в 3 временных точках: до лечения (непосредственно перед первой дозой исследуемого препарата в первый день), в середине лечения (непосредственно перед четвертой дозой на четвертый день) и после лечения (через час после пятой дозы на пятый день).
|
Соавторы и исследователи
Спонсор
Следователи
- Учебный стул: Tom Solomon, MRCP, PhD, Director,Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK , Head- Liverpool Brain Infection Group
- Главный следователь: Ajit Rayamajhi, MBBS, MD, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Liverpool, UK & Kanti Children's Hospital, Maharajgunj, Kathmandu, Nepal
- Директор по исследованиям: Sam Nightingale, MRCP, Institute of Infection and Global Health, University of Liverpool, Apex Building, 8 West Derby Street, Liverpool, L69 7BE, UK
Публикации и полезные ссылки
Общие публикации
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Gainsborough M, Vaughn DW, Khanh VT. Japanese encephalitis. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2000 Apr;68(4):405-15. doi: 10.1136/jnnp.68.4.405. No abstract available.
- Tsai TF. New initiatives for the control of Japanese encephalitis by vaccination: minutes of a WHO/CVI meeting, Bangkok, Thailand, 13-15 October 1998. Vaccine. 2000 May 26;18 Suppl 2:1-25. doi: 10.1016/s0264-410x(00)00037-2.
- Innis BL. Japanese encephalitis. In: Porterfield JS, editor. Exotic Viral Infections. London: Chapman & Hall; 1995. p. 147-74.
- Sumiyoshi H, Mori C, Fuke I, Morita K, Kuhara S, Kondou J, Kikuchi Y, Nagamatu H, Igarashi A. Complete nucleotide sequence of the Japanese encephalitis virus genome RNA. Virology. 1987 Dec;161(2):497-510. doi: 10.1016/0042-6822(87)90144-9.
- Chambers TJ, Hahn CS, Galler R, Rice CM. Flavivirus genome organization, expression, and replication. Annu Rev Microbiol. 1990;44:649-88. doi: 10.1146/annurev.mi.44.100190.003245. No abstract available.
- Gajanana A, Thenmozhi V, Samuel PP, Reuben R. A community-based study of subclinical flavivirus infections in children in an area of Tamil Nadu, India, where Japanese encephalitis is endemic. Bull World Health Organ. 1995;73(2):237-44.
- HALSTEAD SB, GROSZ CR. Subclinical Japanese encephalitis. I. Infection of Americans with limited residence in Korea. Am J Hyg. 1962 Mar;75:190-201. No abstract available.
- Solomon T, Dung NM, Kneen R, Thao le TT, Gainsborough M, Nisalak A, Day NP, Kirkham FJ, Vaughn DW, Smith S, White NJ. Seizures and raised intracranial pressure in Vietnamese patients with Japanese encephalitis. Brain. 2002 May;125(Pt 5):1084-93. doi: 10.1093/brain/awf116.
- Solomon T, Kneen R, Dung NM, Khanh VC, Thuy TT, Ha DQ, Day NP, Nisalak A, Vaughn DW, White NJ. Poliomyelitis-like illness due to Japanese encephalitis virus. Lancet. 1998 Apr 11;351(9109):1094-7. doi: 10.1016/S0140-6736(97)07509-0.
- Chen WR, Tesh RB, Rico-Hesse R. Genetic variation of Japanese encephalitis virus in nature. J Gen Virol. 1990 Dec;71 ( Pt 12):2915-22. doi: 10.1099/0022-1317-71-12-2915.
- Chen WR, Rico-Hesse R, Tesh RB. A new genotype of Japanese encephalitis virus from Indonesia. Am J Trop Med Hyg. 1992 Jul;47(1):61-9. doi: 10.4269/ajtmh.1992.47.61.
- Gould EA. Evolution of the Japanese encephalitis serocomplex viruses. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:391-404. Review.
- Solomon T, Ni H, Beasley DW, Ekkelenkamp M, Cardosa MJ, Barrett AD. Origin and evolution of Japanese encephalitis virus in southeast Asia. J Virol. 2003 Mar;77(5):3091-8. doi: 10.1128/jvi.77.5.3091-3098.2003.
- Shope RE. Concepts of control of Japanese encephalitis and dengue. Southeast Asian J Trop Med Public Health. 1997;28 Suppl 2:131-4.
- Solomon T. Vaccines against Japanese encephalitis. In: Jong EC, Zuckerman JN, editors. Travelers' vaccines. Ontario, Canada: B.C. Decker; 2004. p. 219-56.
- Monath TP. Japanese encephalitis vaccines: current vaccines and future prospects. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:105-38. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_6.
- Bista MB, Banerjee MK, Shin SH, Tandan JB, Kim MH, Sohn YM, Ohrr HC, Tang JL, Halstead SB. Efficacy of single-dose SA 14-14-2 vaccine against Japanese encephalitis: a case control study. Lancet. 2001 Sep 8;358(9284):791-5. doi: 10.1016/s0140-6736(01)05967-0.
- Solomon T, Dung NM, Wills B, Kneen R, Gainsborough M, Diet TV, Thuy TT, Loan HT, Khanh VC, Vaughn DW, White NJ, Farrar JJ. Interferon alfa-2a in Japanese encephalitis: a randomised double-blind placebo-controlled trial. Lancet. 2003 Mar 8;361(9360):821-6. doi: 10.1016/s0140-6736(03)12709-2.
- Griffin DE. Immune responses to RNA-virus infections of the CNS. Nat Rev Immunol. 2003 Jun;3(6):493-502. doi: 10.1038/nri1105.
- Irani DN. Central nervous system inflammation: can't live with it, can't live without it. Curr Opin Neurol. 2001 Jun;14(3):347-8. doi: 10.1097/00019052-200106000-00013. No abstract available.
- Kimura T, Griffin DE. Extensive immune-mediated hippocampal damage in mice surviving infection with neuroadapted Sindbis virus. Virology. 2003 Jun 20;311(1):28-39. doi: 10.1016/s0042-6822(03)00110-7.
- Hoke CH Jr, Vaughn DW, Nisalak A, Intralawan P, Poolsuppasit S, Jongsawas V, Titsyakorn U, Johnson RT. Effect of high-dose dexamethasone on the outcome of acute encephalitis due to Japanese encephalitis virus. J Infect Dis. 1992 Apr;165(4):631-7. doi: 10.1093/infdis/165.4.631.
- Caramello P, Canta F, Balbiano R, Lipani F, Ariaudo S, De Agostini M, Calleri G, Boglione L, Di Caro A. Role of intravenous immunoglobulin administration in Japanese encephalitis. Clin Infect Dis. 2006 Dec 15;43(12):1620-1. doi: 10.1086/509644. No abstract available.
- Agrawal AG, Petersen LR. Human immunoglobulin as a treatment for West Nile virus infection. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):1-4. doi: 10.1086/376871. Epub 2003 Jun 23. No abstract available.
- Burke DS, Lorsomrudee W, Leake CJ, Hoke CH, Nisalak A, Chongswasdi V, Laorakpongse T. Fatal outcome in Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1985 Nov;34(6):1203-10. doi: 10.4269/ajtmh.1985.34.1203.
- Solomon T, Thao LT, Dung NM, Kneen R, Hung NT, Nisalak A, Vaughn DW, Farrar J, Hien TT, White NJ, Cardosa MJ. Rapid diagnosis of Japanese encephalitis by using an immunoglobulin M dot enzyme immunoassay. J Clin Microbiol. 1998 Jul;36(7):2030-4. doi: 10.1128/JCM.36.7.2030-2034.1998.
- Solomon T, Vaughn DW. Pathogenesis and clinical features of Japanese encephalitis and West Nile virus infections. Curr Top Microbiol Immunol. 2002;267:171-94. doi: 10.1007/978-3-642-59403-8_9. No abstract available.
- Burke DS, Nisalak A, Lorsomrudee W, Ussery MA, Laorpongse T. Virus-specific antibody-producing cells in blood and cerebrospinal fluid in acute Japanese encephalitis. J Med Virol. 1985 Nov;17(3):283-92. doi: 10.1002/jmv.1890170310.
- Desai A, Shankar SK, Ravi V, Chandramuki A, Gourie-Devi M. Japanese encephalitis virus antigen in the human brain and its topographic distribution. Acta Neuropathol. 1995;89(4):368-73. doi: 10.1007/BF00309631.
- Shankar SK, Rao TV, Mruthyunjayanna BP, Gourie Devi M, Deshpande DH. Autopsy study of brains during an epidemic of Japanese encephalitis in Karnataka. Indian J Med Res. 1983 Sep;78:431-40. No abstract available.
- Li ZS, Hong SF, Gong NL. Immunohistochemical study on Japanese B encephalitis. Chin Med J (Engl). 1988 Oct;101(10):768-71. No abstract available.
- Johnson RT, Burke DS, Elwell M, Leake CJ, Nisalak A, Hoke CH, Lorsomrudee W. Japanese encephalitis: immunocytochemical studies of viral antigen and inflammatory cells in fatal cases. Ann Neurol. 1985 Nov;18(5):567-73. doi: 10.1002/ana.410180510.
- MIYAKE M. THE PATHOLOGY OF JAPANESE ENCEPHALITIS. A REVIEW. Bull World Health Organ. 1964;30(2):153-60.
- Solomon T. Flavivirus encephalitis. N Engl J Med. 2004 Jul 22;351(4):370-8. doi: 10.1056/NEJMra030476. No abstract available.
- McMinn PC. The molecular basis of virulence of the encephalitogenic flaviviruses. J Gen Virol. 1997 Nov;78 ( Pt 11):2711-22. doi: 10.1099/0022-1317-78-11-2711. No abstract available.
- Doherty PC, Zinkernagel RM. T-cell-mediated immunopathology in viral infections. Transplant Rev. 1974;19(0):89-120. doi: 10.1111/j.1600-065x.1974.tb00129.x. No abstract available.
- Rowell JF, Griffin DE. Contribution of T cells to mortality in neurovirulent Sindbis virus encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 2002 Jun;127(1-2):106-14. doi: 10.1016/s0165-5728(02)00108-x.
- Atrasheuskaya A, Petzelbauer P, Fredeking TM, Ignatyev G. Anti-TNF antibody treatment reduces mortality in experimental dengue virus infection. FEMS Immunol Med Microbiol. 2003 Jan 21;35(1):33-42. doi: 10.1111/j.1574-695X.2003.tb00646.x.
- Liu T, Chambers TJ. Yellow fever virus encephalitis: properties of the brain-associated T-cell response during virus clearance in normal and gamma interferon-deficient mice and requirement for CD4+ lymphocytes. J Virol. 2001 Mar;75(5):2107-18. doi: 10.1128/JVI.75.5.2107-2118.2001.
- Wang Y, Lobigs M, Lee E, Mullbacher A. CD8+ T cells mediate recovery and immunopathology in West Nile virus encephalitis. J Virol. 2003 Dec;77(24):13323-34. doi: 10.1128/jvi.77.24.13323-13334.2003.
- Wang T, Town T, Alexopoulou L, Anderson JF, Fikrig E, Flavell RA. Toll-like receptor 3 mediates West Nile virus entry into the brain causing lethal encephalitis. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1366-73. doi: 10.1038/nm1140. Epub 2004 Nov 21.
- Diamond MS, Klein RS. West Nile virus: crossing the blood-brain barrier. Nat Med. 2004 Dec;10(12):1294-5. doi: 10.1038/nm1204-1294. No abstract available.
- Chambers TJ, Diamond MS. Pathogenesis of flavivirus encephalitis. Adv Virus Res. 2003;60:273-342. doi: 10.1016/s0065-3527(03)60008-4.
- Myint KS, Gibbons RV, Perng GC, Solomon T. Unravelling the neuropathogenesis of Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2007 Oct;101(10):955-6. doi: 10.1016/j.trstmh.2007.04.004. Epub 2007 Jun 4.
- Glass WG, McDermott DH, Lim JK, Lekhong S, Yu SF, Frank WA, Pape J, Cheshier RC, Murphy PM. CCR5 deficiency increases risk of symptomatic West Nile virus infection. J Exp Med. 2006 Jan 23;203(1):35-40. doi: 10.1084/jem.20051970. Epub 2006 Jan 17.
- Glass WG, Lim JK, Cholera R, Pletnev AG, Gao JL, Murphy PM. Chemokine receptor CCR5 promotes leukocyte trafficking to the brain and survival in West Nile virus infection. J Exp Med. 2005 Oct 17;202(8):1087-98. doi: 10.1084/jem.20042530.
- Bhowmick S, Duseja R, Das S, Appaiahgiri MB, Vrati S, Basu A. Induction of IP-10 (CXCL10) in astrocytes following Japanese encephalitis. Neurosci Lett. 2007 Feb 27;414(1):45-50. doi: 10.1016/j.neulet.2006.11.070. Epub 2007 Jan 8.
- Ghoshal A, Das S, Ghosh S, Mishra MK, Sharma V, Koli P, Sen E, Basu A. Proinflammatory mediators released by activated microglia induces neuronal death in Japanese encephalitis. Glia. 2007 Apr 1;55(5):483-96. doi: 10.1002/glia.20474.
- Li Y, Fu L, Gonzales DM, Lavi E. Coronavirus neurovirulence correlates with the ability of the virus to induce proinflammatory cytokine signals from astrocytes and microglia. J Virol. 2004 Apr;78(7):3398-406. doi: 10.1128/jvi.78.7.3398-3406.2004.
- Allan SM, Rothwell NJ. Inflammation in central nervous system injury. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2003 Oct 29;358(1438):1669-77. doi: 10.1098/rstb.2003.1358.
- Van Wagoner NJ, Benveniste EN. Interleukin-6 expression and regulation in astrocytes. J Neuroimmunol. 1999 Dec;100(1-2):124-39. doi: 10.1016/s0165-5728(99)00187-3.
- Frei K, Malipiero UV, Leist TP, Zinkernagel RM, Schwab ME, Fontana A. On the cellular source and function of interleukin 6 produced in the central nervous system in viral diseases. Eur J Immunol. 1989 Apr;19(4):689-94. doi: 10.1002/eji.1830190418.
- Morris MM, Dyson H, Baker D, Harbige LS, Fazakerley JK, Amor S. Characterization of the cellular and cytokine response in the central nervous system following Semliki Forest virus infection. J Neuroimmunol. 1997 Apr;74(1-2):185-97. doi: 10.1016/s0165-5728(96)00786-2.
- Brett FM, Mizisin AP, Powell HC, Campbell IL. Evolution of neuropathologic abnormalities associated with blood-brain barrier breakdown in transgenic mice expressing interleukin-6 in astrocytes. J Neuropathol Exp Neurol. 1995 Nov;54(6):766-75. doi: 10.1097/00005072-199511000-00003.
- Paul R, Koedel U, Winkler F, Kieseier BC, Fontana A, Kopf M, Hartung HP, Pfister HW. Lack of IL-6 augments inflammatory response but decreases vascular permeability in bacterial meningitis. Brain. 2003 Aug;126(Pt 8):1873-82. doi: 10.1093/brain/awg171. Epub 2003 Jun 23.
- Abraham CS, Deli MA, Joo F, Megyeri P, Torpier G. Intracarotid tumor necrosis factor-alpha administration increases the blood-brain barrier permeability in cerebral cortex of the newborn pig: quantitative aspects of double-labelling studies and confocal laser scanning analysis. Neurosci Lett. 1996 Apr 19;208(2):85-8. doi: 10.1016/0304-3940(96)12546-5.
- Munoz-Fernandez MA, Fresno M. The role of tumour necrosis factor, interleukin 6, interferon-gamma and inducible nitric oxide synthase in the development and pathology of the nervous system. Prog Neurobiol. 1998 Oct;56(3):307-40. doi: 10.1016/s0301-0082(98)00045-8.
- Griffin DE, Hardwick JM. Perspective: virus infections and the death of neurons. Trends Microbiol. 1999 Apr;7(4):155-60. doi: 10.1016/s0966-842x(99)01470-5.
- Winter PM, Dung NM, Loan HT, Kneen R, Wills B, Thu le T, House D, White NJ, Farrar JJ, Hart CA, Solomon T. Proinflammatory cytokines and chemokines in humans with Japanese encephalitis. J Infect Dis. 2004 Nov 1;190(9):1618-26. doi: 10.1086/423328. Epub 2004 Sep 29.
- Solomon T, Dung NM, Vaughn DW, Kneen R, Thao LT, Raengsakulrach B, Loan HT, Day NP, Farrar J, Myint KS, Warrell MJ, James WS, Nisalak A, White NJ. Neurological manifestations of dengue infection. Lancet. 2000 Mar 25;355(9209):1053-9. doi: 10.1016/S0140-6736(00)02036-5.
- Leis AA, Stokic DS, Polk JL, Dostrow V, Winkelmann M. A poliomyelitis-like syndrome from West Nile virus infection. N Engl J Med. 2002 Oct 17;347(16):1279-80. doi: 10.1056/NEJM2002c021587. Epub 2002 Sep 23. No abstract available.
- Solomon T, Winter PM. Neurovirulence and host factors in flavivirus encephalitis--evidence from clinical epidemiology. Arch Virol Suppl. 2004;(18):161-70. doi: 10.1007/978-3-7091-0572-6_14.
- German AC, Myint KS, Mai NT, Pomeroy I, Phu NH, Tzartos J, Winter P, Collett J, Farrar J, Barrett A, Kipar A, Esiri MM, Solomon T. A preliminary neuropathological study of Japanese encephalitis in humans and a mouse model. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2006 Dec;100(12):1135-45. doi: 10.1016/j.trstmh.2006.02.008. Epub 2006 Jun 30.
- Ravi V, Parida S, Desai A, Chandramuki A, Gourie-Devi M, Grau GE. Correlation of tumor necrosis factor levels in the serum and cerebrospinal fluid with clinical outcome in Japanese encephalitis patients. J Med Virol. 1997 Feb;51(2):132-6.
- Singh A, Kulshreshtha R, Mathur A. Secretion of the chemokine interleukin-8 during Japanese encephalitis virus infection. J Med Microbiol. 2000 Jul;49(7):607-612. doi: 10.1099/0022-1317-49-7-607.
- Iwamoto M, Jernigan DB, Guasch A, Trepka MJ, Blackmore CG, Hellinger WC, Pham SM, Zaki S, Lanciotti RS, Lance-Parker SE, DiazGranados CA, Winquist AG, Perlino CA, Wiersma S, Hillyer KL, Goodman JL, Marfin AA, Chamberland ME, Petersen LR; West Nile Virus in Transplant Recipients Investigation Team. Transmission of West Nile virus from an organ donor to four transplant recipients. N Engl J Med. 2003 May 29;348(22):2196-203. doi: 10.1056/NEJMoa022987.
- Chabas D, Baranzini SE, Mitchell D, Bernard CC, Rittling SR, Denhardt DT, Sobel RA, Lock C, Karpuj M, Pedotti R, Heller R, Oksenberg JR, Steinman L. The influence of the proinflammatory cytokine, osteopontin, on autoimmune demyelinating disease. Science. 2001 Nov 23;294(5547):1731-5. doi: 10.1126/science.1062960.
- Lock C, Hermans G, Pedotti R, Brendolan A, Schadt E, Garren H, Langer-Gould A, Strober S, Cannella B, Allard J, Klonowski P, Austin A, Lad N, Kaminski N, Galli SJ, Oksenberg JR, Raine CS, Heller R, Steinman L. Gene-microarray analysis of multiple sclerosis lesions yields new targets validated in autoimmune encephalomyelitis. Nat Med. 2002 May;8(5):500-8. doi: 10.1038/nm0502-500.
- Solomon T. Japanese encephalitis: Clinical features & pathogenesis. 55th Annual Meeting of the American Society of Tropical Medicine and Hygiene; 2006; Atlanta, Georgia; 2006.
- Edelman R, Schneider RJ, Vejjajiva A, Pornpibul R, Voodhikul P. Persistence of virus-specific IgM and clinical recovery after Japanese encephalitis. Am J Trop Med Hyg. 1976 Sep;25(5):733-8. doi: 10.4269/ajtmh.1976.25.733.
- Burke DS, Nisalak A, Ussery MA, Laorakpongse T, Chantavibul S. Kinetics of IgM and IgG responses to Japanese encephalitis virus in human serum and cerebrospinal fluid. J Infect Dis. 1985 Jun;151(6):1093-9. doi: 10.1093/infdis/151.6.1093.
- Kumar R, Mathur A, Kumar A, Sharma S, Chakraborty S, Chaturvedi UC. Clinical features & prognostic indicators of Japanese encephalitis in children in Lucknow (India). Indian J Med Res. 1990 Sep;91:321-7.
- Libraty DH, Nisalak A, Endy TP, Suntayakorn S, Vaughn DW, Innis BL. Clinical and immunological risk factors for severe disease in Japanese encephalitis. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2002 Mar-Apr;96(2):173-8. doi: 10.1016/s0035-9203(02)90294-4.
- Bista MB, Shrestha JM. Epidemiological situation of Japanese encephalitis in Nepal. JNMA J Nepal Med Assoc. 2005 Apr-Jun;44(158):51-6.
- Rayamajhi A, Singh R, Prasad R, Khanal B, Singhi S. Clinico-laboratory profile and outcome of Japanese encephalitis in Nepali children. Ann Trop Paediatr. 2006 Dec;26(4):293-301. doi: 10.1179/146532806X152818.
- Tandan JB, Ohrr H, Sohn YM, Yoksan S, Ji M, Nam CM, Halstead SB. Single dose of SA 14-14-2 vaccine provides long-term protection against Japanese encephalitis: a case-control study in Nepalese children 5 years after immunization. drjbtandan@yahoo.com. Vaccine. 2007 Jun 28;25(27):5041-5. doi: 10.1016/j.vaccine.2007.04.052. Epub 2007 May 8.
- Pant GR. A serological survey of pigs, horses, and ducks in Nepal for evidence of infection with Japanese encephalitis virus. Ann N Y Acad Sci. 2006 Oct;1081:124-9. doi: 10.1196/annals.1373.013.
- Leung DY, Burns JC, Newburger JW, Geha RS. Reversal of lymphocyte activation in vivo in the Kawasaki syndrome by intravenous gammaglobulin. J Clin Invest. 1987 Feb;79(2):468-72. doi: 10.1172/JCI112835.
- Clarkson SB, Bussel JB, Kimberly RP, Valinsky JE, Nachman RL, Unkeless JC. Treatment of refractory immune thrombocytopenic purpura with an anti-Fc gamma-receptor antibody. N Engl J Med. 1986 May 8;314(19):1236-9. doi: 10.1056/NEJM198605083141907. No abstract available.
- Buchwald B, Ahangari R, Weishaupt A, Toyka KV. Intravenous immunoglobulins neutralize blocking antibodies in Guillain-Barre syndrome. Ann Neurol. 2002 Jun;51(6):673-80. doi: 10.1002/ana.10205.
- Quartier P, Foray S, Casanova JL, Hau-Rainsard I, Blanche S, Fischer A. Enteroviral meningoencephalitis in X-linked agammaglobulinemia: intensive immunoglobulin therapy and sequential viral detection in cerebrospinal fluid by polymerase chain reaction. Pediatr Infect Dis J. 2000 Nov;19(11):1106-8. doi: 10.1097/00006454-200011000-00020. No abstract available.
- Spector SA, Gelber RD, McGrath N, Wara D, Barzilai A, Abrams E, Bryson YJ, Dankner WM, Livingston RA, Connor EM. A controlled trial of intravenous immune globulin for the prevention of serious bacterial infections in children receiving zidovudine for advanced human immunodeficiency virus infection. Pediatric AIDS Clinical Trials Group. N Engl J Med. 1994 Nov 3;331(18):1181-7. doi: 10.1056/NEJM199411033311802.
- Rodriguez WJ, Gruber WC, Welliver RC, Groothuis JR, Simoes EA, Meissner HC, Hemming VG, Hall CB, Lepow ML, Rosas AJ, Robertsen C, Kramer AA. Respiratory syncytial virus (RSV) immune globulin intravenous therapy for RSV lower respiratory tract infection in infants and young children at high risk for severe RSV infections: Respiratory Syncytial Virus Immune Globulin Study Group. Pediatrics. 1997 Mar;99(3):454-61. doi: 10.1542/peds.99.3.454.
- Keller MA, Stiehm ER. Passive immunity in prevention and treatment of infectious diseases. Clin Microbiol Rev. 2000 Oct;13(4):602-14. doi: 10.1128/CMR.13.4.602.
- Levine B, Hardwick JM, Trapp BD, Crawford TO, Bollinger RC, Griffin DE. Antibody-mediated clearance of alphavirus infection from neurons. Science. 1991 Nov 8;254(5033):856-60. doi: 10.1126/science.1658936.
- Griffin DE, Ubol S, Despres P, Kimura T, Byrnes A. Role of antibodies in controlling alphavirus infection of neurons. Curr Top Microbiol Immunol. 2001;260:191-200. doi: 10.1007/978-3-662-05783-4_10. No abstract available.
- Murali-Krishna K, Ravi V, Manjunath R. Protection of adult but not newborn mice against lethal intracerebral challenge with Japanese encephalitis virus by adoptively transferred virus-specific cytotoxic T lymphocytes: requirement for L3T4+ T cells. J Gen Virol. 1996 Apr;77 ( Pt 4):705-14. doi: 10.1099/0022-1317-77-4-705.
- Pan CH, Chen HW, Huang HW, Tao MH. Protective mechanisms induced by a Japanese encephalitis virus DNA vaccine: requirement for antibody but not CD8(+) cytotoxic T-cell responses. J Virol. 2001 Dec;75(23):11457-63. doi: 10.1128/JVI.75.23.11457-11463.2001.
- Beasley DW, Li L, Suderman MT, Guirakhoo F, Trent DW, Monath TP, Shope RE, Barrett AD. Protection against Japanese encephalitis virus strains representing four genotypes by passive transfer of sera raised against ChimeriVax-JE experimental vaccine. Vaccine. 2004 Sep 9;22(27-28):3722-6. doi: 10.1016/j.vaccine.2004.03.027.
- Konishi E, Ajiro N, Nukuzuma C, Mason PW, Kurane I. Comparison of protective efficacies of plasmid DNAs encoding Japanese encephalitis virus proteins that induce neutralizing antibody or cytotoxic T lymphocytes in mice. Vaccine. 2003 Sep 8;21(25-26):3675-83. doi: 10.1016/s0264-410x(03)00382-7.
- Kimura-Kuroda J, Yasui K. Protection of mice against Japanese encephalitis virus by passive administration with monoclonal antibodies. J Immunol. 1988 Nov 15;141(10):3606-10.
- Zhang MJ, Wang MJ, Jiang SZ, Ma WY. Passive protection of mice, goats, and monkeys against Japanese encephalitis with monoclonal antibodies. J Med Virol. 1989 Oct;29(2):133-8. doi: 10.1002/jmv.1890290211.
- Gupta AK, Lad VJ, Koshy AA. Protection of mice against experimental Japanese encephalitis virus infections by neutralizing anti-glycoprotein E monoclonal antibodies. Acta Virol. 2003;47(3):141-5.
- Ben-Nathan D, Lustig S, Tam G, Robinzon S, Segal S, Rager-Zisman B. Prophylactic and therapeutic efficacy of human intravenous immunoglobulin in treating West Nile virus infection in mice. J Infect Dis. 2003 Jul 1;188(1):5-12. doi: 10.1086/376870. Epub 2003 Jun 23.
- Diamond MS, Shrestha B, Marri A, Mahan D, Engle M. B cells and antibody play critical roles in the immediate defense of disseminated infection by West Nile encephalitis virus. J Virol. 2003 Feb;77(4):2578-86. doi: 10.1128/jvi.77.4.2578-2586.2003.
- Kreil TR, Eibl MM. Pre- and postexposure protection by passive immunoglobulin but no enhancement of infection with a flavivirus in a mouse model. J Virol. 1997 Apr;71(4):2921-7. doi: 10.1128/JVI.71.4.2921-2927.1997.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Roper GY, Wang H, Baldwin TJ, Koenig S, Johnson S, Nordstrom JL, Diamond MS. Humanized monoclonal antibody against West Nile virus envelope protein administered after neuronal infection protects against lethal encephalitis in hamsters. J Infect Dis. 2006 Nov 1;194(9):1300-8. doi: 10.1086/508293. Epub 2006 Sep 22.
- Morrey JD, Siddharthan V, Olsen AL, Wang H, Julander JG, Hall JO, Li H, Nordstrom JL, Koenig S, Johnson S, Diamond MS. Defining limits of treatment with humanized neutralizing monoclonal antibody for West Nile virus neurological infection in a hamster model. Antimicrob Agents Chemother. 2007 Jul;51(7):2396-402. doi: 10.1128/AAC.00147-07. Epub 2007 Apr 23.
- Webb DB, Kendra JR, Gross E, Stamatakis JD. Infusion of intravenous immunoglobulin via implantable subcutaneous catheter. Lancet. 1991 Jun 29;337(8757):1617-8. doi: 10.1016/0140-6736(91)93323-2. No abstract available.
- Imbach P. Immune thrombocytopenic purpura and intravenous immunoglobulin. Cancer. 1991 Sep 15;68(6 Suppl):1422-5. doi: 10.1002/1097-0142(19910915)68:6+3.0.co;2-5.
- Dwyer JM. Manipulating the immune system with immune globulin. N Engl J Med. 1992 Jan 9;326(2):107-16. doi: 10.1056/NEJM199201093260206. No abstract available.
- Sullivan KM, Kopecky KJ, Jocom J, Fisher L, Buckner CD, Meyers JD, Counts GW, Bowden RA, Peterson FB, Witherspoon RP, et al. Immunomodulatory and antimicrobial efficacy of intravenous immunoglobulin in bone marrow transplantation. N Engl J Med. 1990 Sep 13;323(11):705-12. doi: 10.1056/NEJM199009133231103.
- Newburger JW, Takahashi M, Beiser AS, Burns JC, Bastian J, Chung KJ, Colan SD, Duffy CE, Fulton DR, Glode MP, et al. A single intravenous infusion of gamma globulin as compared with four infusions in the treatment of acute Kawasaki syndrome. N Engl J Med. 1991 Jun 6;324(23):1633-9. doi: 10.1056/NEJM199106063242305.
- Ooi MH, Wong SC, Clear D, Perera D, Krishnan S, Preston T, Tio PH, Willison HJ, Tedman B, Kneen R, Cardosa MJ, Solomon T. Adenovirus type 21-associated acute flaccid paralysis during an outbreak of hand-foot-and-mouth disease in Sarawak, Malaysia. Clin Infect Dis. 2003 Mar 1;36(5):550-9. doi: 10.1086/367648. Epub 2003 Feb 14.
- Chatterjee S, Chattopadhyay D, Bhattacharya MK, Mukherjee B. Serosurveillance for Japanese encephalitis in children in several districts of West Bengal, India. Acta Paediatr. 2004 Mar;93(3):390-3.
- Planitzer CB, Modrof J, Kreil TR. West Nile virus neutralization by US plasma-derived immunoglobulin products. J Infect Dis. 2007 Aug 1;196(3):435-40. doi: 10.1086/519392. Epub 2007 Jun 18.
- Rayamajhi A, Nightingale S, Bhatta NK, Singh R, Kneen R, Ledger E, Bista KP, Lewthwaite P, Mahaseth C, Turtle L, Robinson JS, Galbraith SE, Wnek M, Johnson BW, Faragher B, Griffiths MJ, Solomon T. A preliminary randomized double blind placebo-controlled trial of intravenous immunoglobulin for Japanese encephalitis in Nepal. PLoS One. 2015 Apr 17;10(4):e0122608. doi: 10.1371/journal.pone.0122608. eCollection 2015. Erratum In: PLoS One. 2015;10(8):e0136008. Kneen, Rachel [added].
Даты записи исследования
Изучение основных дат
Начало исследования
Первичное завершение (Действительный)
Завершение исследования (Действительный)
Даты регистрации исследования
Первый отправленный
Впервые представлено, что соответствует критериям контроля качества
Первый опубликованный (Оценивать)
Обновления учебных записей
Последнее опубликованное обновление (Оценивать)
Последнее отправленное обновление, отвечающее критериям контроля качества
Последняя проверка
Дополнительная информация
Термины, связанные с этим исследованием
Ключевые слова
Дополнительные соответствующие термины MeSH
- Заболевания головного мозга
- Заболевания центральной нервной системы
- Заболевания нервной системы
- РНК-вирусные инфекции
- Вирусные заболевания
- Инфекции
- Энцефалит, арбовирус
- Энцефалит, Вирусный
- Вирусные заболевания центральной нервной системы
- Инфекции центральной нервной системы
- Инфекционный энцефалит
- Арбовирусные инфекции
- Трансмиссивные болезни
- Флавивирусные инфекции
- Флавивирусные инфекции
- Энцефалит, японский
- Энцефалит
- Физиологические эффекты лекарств
- Иммунологические факторы
- Антитела
- Иммуноглобулины
- Иммуноглобулины внутривенно
- гамма-глобулины
- Rho(D) Иммунный глобулин
Другие идентификационные номера исследования
- IVIG607
Эта информация была получена непосредственно с веб-сайта clinicaltrials.gov без каких-либо изменений. Если у вас есть запросы на изменение, удаление или обновление сведений об исследовании, обращайтесь по адресу register@clinicaltrials.gov. Как только изменение будет реализовано на clinicaltrials.gov, оно будет автоматически обновлено и на нашем веб-сайте. .