- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT03791476
RUCONEST® jako strategia terapeutyczna zmniejszająca częstość występowania opóźnionej funkcji przeszczepu
Badanie fazy I/II, jednoośrodkowe, randomizowane, podwójnie ślepe, kontrolowane placebo, mające na celu ocenę możliwości zastosowania ludzkiego rekombinowanego inhibitora C1 (RUCONEST®) jako strategii terapeutycznej mającej na celu zmniejszenie częstości opóźnionej czynności przeszczepu u biorców nerek z Donacja po śmierci sercowo-krążeniowej
Przegląd badań
Szczegółowy opis
Jest to randomizowane, jednoośrodkowe badanie z podwójnie ślepą próbą.
Głównym celem tego badania jest określenie zdolności rhC1INH do zmniejszenia częstości występowania i ciężkości opóźnionej czynności przeszczepu w porównaniu z placebo u biorców nerek po wykonaniu sercowo-krążeniowej determinacji zgonu (DCD).
To badanie zostało specjalnie zaprojektowane w celu oceny efektu ochronnego leczenia rhC1INH u pacjentów z wysokim ryzykiem rozwoju DGF. Wybór potencjalnych dawców do udziału w tym badaniu będzie ograniczony do populacji dawców DCD, u których w przeszłości wykazano ryzyko rozwoju DGF w zakresie 40-55%. Udział w każdej grupie zostanie przydzielony losowo. Leczenie będzie podawane przez śródoperacyjny wlew placebo lub rhC1INH (100 jednostek/kg) IV, a następnie dwa razy dziennie wlew 50 jednostek/kg IV przez następne 48 godzin.
W sumie 20 przedmiotów zostanie podzielonych na 2 grupy:
Grupa 1: Grupa kontrolna: standardowe postępowanie z biorcą + placebo (0,9% chlorek sodu dożylny do równej objętości ramienia badanego: śródoperacyjnie, a następnie co 12 godzin x 2 = łącznie 3 dawki). leczenie (n=10) Grupa 2: Standardowe postępowanie z biorcą + 100 j./kg śródoperacyjnie, a następnie 50 j./kg co 12 godzin x 2 = łącznie 3 dawki (200 j./kg).
Maksymalna dawka 8400 jednostek dla dawki początkowej i maksymalnie 4200 jednostek dla drugiej i trzeciej dawki.
Typ studiów
Zapisy (Oczekiwany)
Faza
- Faza 1
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
Wisconsin
-
Madison, Wisconsin, Stany Zjednoczone, 53792
- Rekrutacyjny
- University of Wisconsin
-
Kontakt:
- Luis Fernandez, MD
- Numer telefonu: 608-263-9903
- E-mail: luis@surgery.wisc.edu
-
Główny śledczy:
- Luis Fernandez, MD
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Płeć kwalifikująca się do nauki
Opis
Kryteria włączenia dla biorcy przeszczepu:
Dorośli pacjenci otrzymujący przeszczepioną nerkę powinni spełniać następujące warunki, aby zostali uznani za część badania:
- Ma zdolność zrozumienia wymagań badania, jest w stanie udzielić pisemnej świadomej zgody (w tym zgody na wykorzystanie i ujawnienie informacji zdrowotnych związanych z badaniem).
- Mężczyzna lub kobieta w wieku co najmniej 18 lat.
- Ma być biorcą przeszczepu od dawcy zmarłego (dawstwo po ustaleniu kryteriów zgonu z powodu krążenia).
- Jest w stanie spełnić standardowe wymagania terapii indukcyjnej, takie jak terapia indukcyjna przeciwciałami króliczej poliklonalnej globuliny antytymocytowej, anty-CD25 (anty-IL2R) lub anty-CD52.
Uczestnik płci żeńskiej kwalifikuje się do udziału w badaniu, jeśli:
- Nie w ciąży ani nie karmi
- Nie mogące zajść w ciążę (tj. po menopauzie zdefiniowane jako brak miesiączki przez co najmniej 1 rok przed badaniem przesiewowym lub po obustronnym podwiązaniu jajowodów co najmniej 6 miesięcy przed podaniem badanego leku lub obustronnym wycięciu jajników lub całkowitej histerektomii).
- Osoby w wieku rozrodczym muszą mieć ujemny wynik testu ciążowego z surowicy w ciągu 48 godzin przed zabiegiem przeszczepu i stosować skuteczną metodę antykoncepcji (zgodnie z wytycznymi dla danego ośrodka lub stosować jednocześnie 2 metody antykoncepcji, w zależności od tego, która z nich jest bardziej rygorystyczna), która być kontynuowane aż do wizyty w dniu 180.
- Mężczyźni, których partnerki mogą zajść w ciążę, muszą wyrazić zgodę na stosowanie skutecznych środków antykoncepcji (zgodnie z wytycznymi obowiązującymi w danej placówce lub stosować jednocześnie 2 metody antykoncepcji, w zależności od tego, która z nich jest bardziej rygorystyczna), co będzie kontynuowane do wizyty w dniu 180. Zgodzą się również nie oddawać nasienia do 6 miesięcy po podaniu.
- Musi mieć aktualne badania przesiewowe w kierunku raka zgodnie z wytycznymi dla danego ośrodka, a wcześniejsza historia medyczna musi być negatywna pod względem złośliwości potwierdzonej biopsją w ciągu 5 lat od randomizacji, z wyjątkiem odpowiednio leczonego raka podstawnokomórkowego lub płaskonabłonkowego in situ lub raka szyjki macicy in situ.
- Musi być gotowy do przestrzegania procedur protokołu w czasie trwania badania, w tym zaplanowanych wizyt kontrolnych i badań.
Kryteria wykluczenia dla biorców przeszczepu:
- Stosowanie badanego leku w okresie 30 dni przed operacją.
- Uczestnictwo w jakimkolwiek innym badaniu badawczym (lekowym lub nielekowym) bez uprzedniej zgody badacza-sponsora.
- Biorca nerki od żywego dawcy lub nerki od dawcy ze śmiercią mózgu (DBD).
- Nerka dawcy zabezpieczona normotermiczną perfuzją maszynową.
- Zaplanowany do przeszczepu wielonarządowego.
- Ma planowany przeszczep nerek, które są wszczepiane en-bloc (podwójny przeszczep nerki).
- Planował przeszczep nerek podwójnych (od tego samego dawcy) przeszczepiony nie w całości.
- Stracił pierwszy przeszczep nerki z powodu zakrzepicy przeszczepu.
- Ma zaplanowane przeszczepienie nerki od dawcy, o którym wiadomo, że otrzymał eksperymentalną terapię w ramach innego IND/CTA z powodu uszkodzenia niedokrwiennego/reperfuzyjnego bezpośrednio przed odzyskaniem narządu.
- Znana nadwrażliwość na ludzkie przeciwciała monoklonalne lub którąkolwiek substancję pomocniczą badanego leku.
- Wcześniejsza nadwrażliwość na bazyliksymab, Campath-1H lub globulinę antytymocytarną (ATG).
- Historia choroby nowotworowej w ciągu ostatnich pięciu lat, z wyjątkiem wyciętego raka płaskonabłonkowego lub podstawnokomórkowego skóry lub śródnabłonkowej neoplazji szyjki macicy.
- Osoby zakażone wirusem HIV.
- Biorcy nerki z dodatnim wynikiem antygenu powierzchniowego wirusa zapalenia wątroby typu B.
- Biorcy nerki z dodatnim wynikiem badania na obecność przeciwciał przeciwko wirusowi zapalenia wątroby typu B.
- Pacjenci z wirusowym zapaleniem wątroby typu C (HCV+), którzy nie są leczeni lub u których nie udało się wykazać trwałej remisji wirusowej przez ponad 12 miesięcy po leczeniu przeciwwirusowym.
- Obecność klinicznie istotnych infekcji wymagających kontynuacji leczenia.
- Pozytywne badanie przesiewowe w kierunku aktywnej gruźlicy.
- Występowanie jakiegokolwiek schorzenia chirurgicznego lub medycznego, innego niż obecny przeszczep, który w opinii badacza może znacząco zmienić dystrybucję, metabolizm lub wydalanie badanego leku.
- Ma pozytywny test krzyżowy komórek T lub B metodą antyglobulinowej limfocytotoksyczności NIH lub metodą krzyżową CDC, jeśli została przeprowadzona.
- Ma pozytywny wynik testu krzyżowego przepływu limfocytów T lub B (ponad 250 przesunięć kanałów) ORAZ swoiste dla dawcy przeciwciała anty-HLA (DSA) wykryte za pomocą cytometrii przepływowej (Luminex®) na podstawie testów na przeciwciała anty-HLA swoiste dla antygenu (ponad 4000 MFI ) lub za pomocą podobnej metodologii, jeśli jest wykonywana.
- Historia lub obecność schorzenia lub choroby, które w ocenie badacza naraziłyby pacjenta na niedopuszczalne ryzyko udziału w badaniu.
- Kobieta karmiąca lub ciężarna.
- Pacjent umieszczony w zakładzie na mocy nakazu administracyjnego lub sądowego.
- Nerka niezgodna pod względem HLA lub ABO zdefiniowana jako dodatnia próba krzyżowa cytotoksyczna lub dodatnia zgodność krzyżowa przepływu.
- Pacjenci ze stwierdzoną chorobą prozakrzepową (np. homozygotyczny czynnik V leiden)
- Historia zakrzepicy lub stanu nadkrzepliwości z wyłączeniem krzepnięcia dostępu
- Historia podawania produktów zawierających C1INH lub rekombinowanego C1INH w ciągu 15 dni przed włączeniem do badania.
- Pacjent z nieprawidłowym tromboelastogramem – wyniki należy zgłosić przed podaniem dawki (zdefiniowane przez wskaźnik krzepnięcia > 3,0)
- Pacjenci przyjmujący warfarynę lub inne leki przeciwzakrzepowe lub przeciwpłytkowe, takie jak Plavix, heparyna drobnocząsteczkowa (dozwolona profilaktyka aspiryny w małych dawkach) ze względu na historię zdarzeń zakrzepowych lub zatorowych lub ze znacznie zwiększonym ryzykiem zakrzepicy z powodu stanów takie jak zwężenie tętnicy szyjnej lub sztuczne zastawki.
- Pacjenci ze znanym przeciwwskazaniem do leczenia C1INH
- Pacjenci z podwyższoną nieprawidłową czynnością płytek krwi (PLT>500 000).
- Znana lub podejrzewana alergia na króliki i produkty pochodzące od królików. Historia natychmiastowych reakcji nadwrażliwości, w tym anafilaksji, na preparaty z inhibitorem esterazy C1.
- Pacjenci należący do wrażliwych populacji: odnosi się między innymi do dzieci, nieletnich, kobiet w ciąży, więźniów, pacjentów nieuleczalnie chorych, w stanie śpiączki, osób upośledzonych fizycznie i intelektualnie, przebywających w instytucjach, z upośledzeniem wzroku lub słuchu, uchodźców, międzynarodowych badań i zdrowych ochotników z niepełnosprawnością intelektualną .
- Diagnoza odwracalnego ostrego uszkodzenia nerek
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Potroić
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Komparator placebo: Grupa kontrolna
Interwencją jest roztwór soli fizjologicznej placebo (0,9% chlorek sodu dożylny do równej objętości ramienia badanego: śródoperacyjnie, a następnie co 12 godzin x 2 = łącznie 3 dawki)
|
roztwór soli
|
|
Eksperymentalny: rhC1INH
Interwencja to rhC1INH 100 j./kg śródoperacyjnie, a następnie 50 j./kg co 12 godzin x 2 = łącznie 3 dawki (200 j./kg)
|
Inhibitor esterazy C1
Inne nazwy:
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Liczba pacjentów, którzy nie spełniają kryteriów DGF na podstawie poziomu kreatyniny po przeszczepie nerki od dawcy DCD, leczonych badanym lekiem w porównaniu z placebo
Ramy czasowe: w okresie 12 miesięcy
|
Częstość występowania opóźnionej czynności przeszczepu w ciągu pierwszych 7 dni po przeszczepieniu nerki, zdefiniowanej jako rozpoczęcie dializy w ciągu pierwszych 7 dni po przeszczepieniu i czynnościowego DGF, zdefiniowanego jako brak zmniejszenia stężenia kreatyniny w surowicy o co najmniej 10% na dobę w 3. kolejne dni w pierwszym tygodniu po transplantacji.
|
w okresie 12 miesięcy
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Częstość występowania niepożądanych i poważnych zdarzeń niepożądanych zostanie oceniona za pomocą metody statystyki opisowej
Ramy czasowe: w okresie 12 miesięcy
|
Wykonalność różnych metod statystycznych do analizy częstości występowania niepożądanych i poważnych zdarzeń niepożądanych
|
w okresie 12 miesięcy
|
|
Należy sprawdzić, czy w tej populacji pacjentów wystąpią jakiekolwiek nieoczekiwane toksyczności zgodnie z populacją pacjentów Common Toxicity Criteria for Adverse Events (CTCAE)
Ramy czasowe: w okresie 12 miesięcy
|
Liczba uczestników ze zdarzeniami niepożądanymi związanymi z leczeniem według oceny CTCAE v4.0
|
w okresie 12 miesięcy
|
|
Chęć udziału zostanie oceniona na podstawie liczby potencjalnych kandydatów do udziału w badaniu (podejścia) w porównaniu z liczbą kandydatów zapisanych do badania. Prawdopodobne wskaźniki odpowiedzi
Ramy czasowe: w okresie 12 miesięcy
|
Wskaźnik zapisów kwalifikujących się uczestników
|
w okresie 12 miesięcy
|
|
Tolerancja po podaniu leku mierzona ciśnieniem krwi
Ramy czasowe: w okresie 12 miesięcy
|
Zdolność i tolerancja 3-krotnego podania badanego leku z odpowiednim podaniem po podaniu poprzez rejestrację ciśnienia krwi w mmHg
|
w okresie 12 miesięcy
|
|
Tolerancja po podaniu leku mierzona za pomocą HR (tętna)
Ramy czasowe: w okresie 12 miesięcy
|
Zdolność i tolerancja 3-krotnego podania badanego leku z odpowiednim podaniem przed i po podaniu poprzez rejestrację tętna jako uderzeń na minutę
|
w okresie 12 miesięcy
|
|
Tolerancja po podaniu leku mierzona temperaturą
Ramy czasowe: w okresie 12 miesięcy
|
Zdolność i tolerancja trzykrotnego podania badanego leku z odpowiednim podaniem przed i po podaniu poprzez rejestrację temperatury w stopniach Fahrenheita
|
w okresie 12 miesięcy
|
|
Tolerancja po podaniu leku mierzona częstością oddechów
Ramy czasowe: w okresie 12 miesięcy
|
Zdolność i tolerancja podania badanego leku 3 razy z odpowiednim podaniem przed i po podaniu poprzez rejestrację częstości oddechów jako oddechów na minutę
|
w okresie 12 miesięcy
|
|
Tolerancja podawania leku mierzona wydalaniem moczu
Ramy czasowe: w okresie 12 miesięcy
|
Aby ocenić tolerancję, po podaniu leku ilość wydalanego moczu będzie rejestrowana w ml
|
w okresie 12 miesięcy
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Współpracownicy
Śledczy
- Główny śledczy: Luis Fernandez, University of Wisconsin, Madison
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Stegall MD, Diwan T, Raghavaiah S, Cornell LD, Burns J, Dean PG, Cosio FG, Gandhi MJ, Kremers W, Gloor JM. Terminal complement inhibition decreases antibody-mediated rejection in sensitized renal transplant recipients. Am J Transplant. 2011 Nov;11(11):2405-13. doi: 10.1111/j.1600-6143.2011.03757.x. Epub 2011 Sep 22. Erratum In: Am J Transplant. 2013 Jan;13(1):241.
- de Vries DK, van der Pol P, van Anken GE, van Gijlswijk DJ, Damman J, Lindeman JH, Reinders ME, Schaapherder AF, Kooten Cv. Acute but transient release of terminal complement complex after reperfusion in clinical kidney transplantation. Transplantation. 2013 Mar 27;95(6):816-20. doi: 10.1097/TP.0b013e31827e31c9.
- Solez K, Colvin RB, Racusen LC, Haas M, Sis B, Mengel M, Halloran PF, Baldwin W, Banfi G, Collins AB, Cosio F, David DS, Drachenberg C, Einecke G, Fogo AB, Gibson IW, Glotz D, Iskandar SS, Kraus E, Lerut E, Mannon RB, Mihatsch M, Nankivell BJ, Nickeleit V, Papadimitriou JC, Randhawa P, Regele H, Renaudin K, Roberts I, Seron D, Smith RN, Valente M. Banff 07 classification of renal allograft pathology: updates and future directions. Am J Transplant. 2008 Apr;8(4):753-60. doi: 10.1111/j.1600-6143.2008.02159.x. Epub 2008 Feb 19.
- Ricklin D, Lambris JD. Complement in immune and inflammatory disorders: pathophysiological mechanisms. J Immunol. 2013 Apr 15;190(8):3831-8. doi: 10.4049/jimmunol.1203487.
- Eltzschig HK, Eckle T. Ischemia and reperfusion--from mechanism to translation. Nat Med. 2011 Nov 7;17(11):1391-401. doi: 10.1038/nm.2507.
- Guo RF, Ward PA. Role of C5a in inflammatory responses. Annu Rev Immunol. 2005;23:821-52. doi: 10.1146/annurev.immunol.23.021704.115835.
- Ricklin D, Hajishengallis G, Yang K, Lambris JD. Complement: a key system for immune surveillance and homeostasis. Nat Immunol. 2010 Sep;11(9):785-97. doi: 10.1038/ni.1923. Epub 2010 Aug 19.
- Zipfel PF, Skerka C. Complement regulators and inhibitory proteins. Nat Rev Immunol. 2009 Oct;9(10):729-40. doi: 10.1038/nri2620. Epub 2009 Sep 4.
- Blom AM, Villoutreix BO, Dahlback B. Complement inhibitor C4b-binding protein-friend or foe in the innate immune system? Mol Immunol. 2004 Apr;40(18):1333-46. doi: 10.1016/j.molimm.2003.12.002.
- Jozsi M, Zipfel PF. Factor H family proteins and human diseases. Trends Immunol. 2008 Aug;29(8):380-7. doi: 10.1016/j.it.2008.04.008. Epub 2008 Jul 2.
- Davis AE 3rd. Biological effects of C1 inhibitor. Drug News Perspect. 2004 Sep;17(7):439-46. doi: 10.1358/dnp.2004.17.7.863703.
- Kono H, Rock KL. How dying cells alert the immune system to danger. Nat Rev Immunol. 2008 Apr;8(4):279-89. doi: 10.1038/nri2215. Epub 2008 Mar 14.
- Friedewald JJ, Rabb H. Inflammatory cells in ischemic acute renal failure. Kidney Int. 2004 Aug;66(2):486-91. doi: 10.1111/j.1523-1755.2004.761_3.x.
- Diepenhorst GM, van Gulik TM, Hack CE. Complement-mediated ischemia-reperfusion injury: lessons learned from animal and clinical studies. Ann Surg. 2009 Jun;249(6):889-99. doi: 10.1097/SLA.0b013e3181a38f45.
- McCaughan JA, O'Rourke DM, Courtney AE. The complement cascade in kidney disease: from sideline to center stage. Am J Kidney Dis. 2013 Sep;62(3):604-14. doi: 10.1053/j.ajkd.2012.12.033. Epub 2013 Mar 13.
- Gasque P. Complement: a unique innate immune sensor for danger signals. Mol Immunol. 2004 Nov;41(11):1089-98. doi: 10.1016/j.molimm.2004.06.011.
- Zhou W, Farrar CA, Abe K, Pratt JR, Marsh JE, Wang Y, Stahl GL, Sacks SH. Predominant role for C5b-9 in renal ischemia/reperfusion injury. J Clin Invest. 2000 May;105(10):1363-71. doi: 10.1172/JCI8621.
- Weiser MR, Williams JP, Moore FD Jr, Kobzik L, Ma M, Hechtman HB, Carroll MC. Reperfusion injury of ischemic skeletal muscle is mediated by natural antibody and complement. J Exp Med. 1996 May 1;183(5):2343-8. doi: 10.1084/jem.183.5.2343.
- de Vries B, Walter SJ, Peutz-Kootstra CJ, Wolfs TG, van Heurn LW, Buurman WA. The mannose-binding lectin-pathway is involved in complement activation in the course of renal ischemia-reperfusion injury. Am J Pathol. 2004 Nov;165(5):1677-88. doi: 10.1016/S0002-9440(10)63424-4.
- Moller-Kristensen M, Wang W, Ruseva M, Thiel S, Nielsen S, Takahashi K, Shi L, Ezekowitz A, Jensenius JC, Gadjeva M. Mannan-binding lectin recognizes structures on ischaemic reperfused mouse kidneys and is implicated in tissue injury. Scand J Immunol. 2005 May;61(5):426-34. doi: 10.1111/j.1365-3083.2005.01591.x.
- Schwaeble WJ, Lynch NJ, Clark JE, Marber M, Samani NJ, Ali YM, Dudler T, Parent B, Lhotta K, Wallis R, Farrar CA, Sacks S, Lee H, Zhang M, Iwaki D, Takahashi M, Fujita T, Tedford CE, Stover CM. Targeting of mannan-binding lectin-associated serine protease-2 confers protection from myocardial and gastrointestinal ischemia/reperfusion injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011 May 3;108(18):7523-8. doi: 10.1073/pnas.1101748108. Epub 2011 Apr 18.
- Castellano G, Melchiorre R, Loverre A, Ditonno P, Montinaro V, Rossini M, Divella C, Battaglia M, Lucarelli G, Annunziata G, Palazzo S, Selvaggi FP, Staffieri F, Crovace A, Daha MR, Mannesse M, van Wetering S, Paolo Schena F, Grandaliano G. Therapeutic targeting of classical and lectin pathways of complement protects from ischemia-reperfusion-induced renal damage. Am J Pathol. 2010 Apr;176(4):1648-59. doi: 10.2353/ajpath.2010.090276. Epub 2010 Feb 11.
- Berger SP, Roos A, Mallat MJ, Fujita T, de Fijter JW, Daha MR. Association between mannose-binding lectin levels and graft survival in kidney transplantation. Am J Transplant. 2005 Jun;5(6):1361-6. doi: 10.1111/j.1600-6143.2005.00841.x.
- Straatsburg IH, Boermeester MA, Wolbink GJ, van Gulik TM, Gouma DJ, Frederiks WM, Hack CE. Complement activation induced by ischemia-reperfusion in humans: a study in patients undergoing partial hepatectomy. J Hepatol. 2000 May;32(5):783-91. doi: 10.1016/s0168-8278(00)80247-0.
- Williams JP, Pechet TT, Weiser MR, Reid R, Kobzik L, Moore FD Jr, Carroll MC, Hechtman HB. Intestinal reperfusion injury is mediated by IgM and complement. J Appl Physiol (1985). 1999 Mar;86(3):938-42. doi: 10.1152/jappl.1999.86.3.938.
- Jordan JE, Montalto MC, Stahl GL. Inhibition of mannose-binding lectin reduces postischemic myocardial reperfusion injury. Circulation. 2001 Sep 18;104(12):1413-8. doi: 10.1161/hc3601.095578.
- Sacks SH. Complement fragments C3a and C5a: the salt and pepper of the immune response. Eur J Immunol. 2010 Mar;40(3):668-70. doi: 10.1002/eji.201040355.
- Peng Q, Li K, Smyth LA, Xing G, Wang N, Meader L, Lu B, Sacks SH, Zhou W. C3a and C5a promote renal ischemia-reperfusion injury. J Am Soc Nephrol. 2012 Sep;23(9):1474-85. doi: 10.1681/ASN.2011111072. Epub 2012 Jul 12.
- de Vries B, Kohl J, Leclercq WK, Wolfs TG, van Bijnen AA, Heeringa P, Buurman WA. Complement factor C5a mediates renal ischemia-reperfusion injury independent from neutrophils. J Immunol. 2003 Apr 1;170(7):3883-9. doi: 10.4049/jimmunol.170.7.3883.
- Djamali A, Muth BL, Ellis TM, Mohamed M, Fernandez LA, Miller KM, Bellingham JM, Odorico JS, Mezrich JD, Pirsch JD, D'Alessandro TM, Vidyasagar V, Hofmann RM, Torrealba JR, Kaufman DB, Foley DP. Increased C4d in post-reperfusion biopsies and increased donor specific antibodies at one-week post transplant are risk factors for acute rejection in mild to moderately sensitized kidney transplant recipients. Kidney Int. 2013 Jun;83(6):1185-92. doi: 10.1038/ki.2013.44. Epub 2013 Feb 27.
- Lefaucheur C, Loupy A, Hill GS, Andrade J, Nochy D, Antoine C, Gautreau C, Charron D, Glotz D, Suberbielle-Boissel C. Preexisting donor-specific HLA antibodies predict outcome in kidney transplantation. J Am Soc Nephrol. 2010 Aug;21(8):1398-406. doi: 10.1681/ASN.2009101065. Epub 2010 Jul 15.
- Lerut E, Naesens M, Kuypers DR, Vanrenterghem Y, Van Damme B. Subclinical peritubular capillaritis at 3 months is associated with chronic rejection at 1 year. Transplantation. 2007 Jun 15;83(11):1416-22. doi: 10.1097/01.tp.0000266676.10550.70.
- Dean PG, Park WD, Cornell LD, Gloor JM, Stegall MD. Intragraft gene expression in positive crossmatch kidney allografts: ongoing inflammation mediates chronic antibody-mediated injury. Am J Transplant. 2012 Jun;12(6):1551-63. doi: 10.1111/j.1600-6143.2011.03964.x. Epub 2012 Feb 15.
- Andres A, Marcen R, Valdes F, Plumed JS, Sola R, Errasti P, Lauzurica R, Pallardo L, Bustamante J, Amenabar JJ, Plaza JJ, Gomez E, Grinyo JM, Rengel M, Puig JM, Sanz A, Asensio C, Andres I; NI2A Study Group. A randomized trial of basiliximab with three different patterns of cyclosporin A initiation in renal transplant from expanded criteria donors and at high risk of delayed graft function. Clin Transplant. 2009 Jan-Feb;23(1):23-32. doi: 10.1111/j.1399-0012.2008.00891.x. Epub 2008 Sep 16.
- Reddy KS, Stratta RJ, Alloway RR, Lo A, Hodge EE; PIVOT Study Group. The impact of delayed graft function of the kidney on the pancreas allograft in simultaneous kidney-pancreas transplantation. Transplant Proc. 2004 May;36(4):1078-9. doi: 10.1016/j.transproceed.2004.04.052.
- Shoskes DA, Cecka JM. Effect of delayed graft function on short- and long-term kidney graft survival. Clin Transpl. 1997:297-303.
- Sanfilippo F, Vaughn WK, Spees EK, Lucas BA. The detrimental effects of delayed graft function in cadaver donor renal transplantation. Transplantation. 1984 Dec;38(6):643-8. doi: 10.1097/00007890-198412000-00019.
- Shoskes DA, Cecka JM. Deleterious effects of delayed graft function in cadaveric renal transplant recipients independent of acute rejection. Transplantation. 1998 Dec 27;66(12):1697-701. doi: 10.1097/00007890-199812270-00022.
- Yokoyama I, Uchida K, Kobayashi T, Tominaga Y, Orihara A, Takagi H. Effect of prolonged delayed graft function on long-term graft outcome in cadaveric kidney transplantation. Clin Transplant. 1994 Apr;8(2 Pt 1):101-6.
- Rosenthal JT, Danovitch GM, Wilkinson A, Ettenger RB. The high cost of delayed graft function in cadaveric renal transplantation. Transplantation. 1991 May;51(5):1115-8. No abstract available.
- Matas AJ, Gillingham KJ, Elick BA, Dunn DL, Gruessner RW, Payne WD, Sutherland DE, Najarian JS. Risk factors for prolonged hospitalization after kidney transplants. Clin Transplant. 1997 Aug;11(4):259-64.
- Floerchinger B, Oberhuber R, Tullius SG. Effects of brain death on organ quality and transplant outcome. Transplant Rev (Orlando). 2012 Apr;26(2):54-9. doi: 10.1016/j.trre.2011.10.001.
- Danobeitia JS, Sperger JM, Hanson MS, Park EE, Chlebeck PJ, Roenneburg DA, Sears ML, Connor JX, Schwarznau A, Fernandez LA. Early activation of the inflammatory response in the liver of brain-dead non-human primates. J Surg Res. 2012 Aug;176(2):639-48. doi: 10.1016/j.jss.2011.10.042. Epub 2011 Nov 19.
- van der Hoeven JA, Molema G, Ter Horst GJ, Freund RL, Wiersema J, van Schilfgaarde R, Leuvenink HG, Ploeg RJ. Relationship between duration of brain death and hemodynamic (in)stability on progressive dysfunction and increased immunologic activation of donor kidneys. Kidney Int. 2003 Nov;64(5):1874-82. doi: 10.1046/j.1523-1755.2003.00272.x.
- Damman J, Schuurs TA, Ploeg RJ, Seelen MA. Complement and renal transplantation: from donor to recipient. Transplantation. 2008 Apr 15;85(7):923-7. doi: 10.1097/TP.0b013e3181683cf5.
- Pratt JR, Abe K, Miyazaki M, Zhou W, Sacks SH. In situ localization of C3 synthesis in experimental acute renal allograft rejection. Am J Pathol. 2000 Sep;157(3):825-31. doi: 10.1016/S0002-9440(10)64596-8.
- Damman J, Nijboer WN, Schuurs TA, Leuvenink HG, Morariu AM, Tullius SG, van Goor H, Ploeg RJ, Seelen MA. Local renal complement C3 induction by donor brain death is associated with reduced renal allograft function after transplantation. Nephrol Dial Transplant. 2011 Jul;26(7):2345-54. doi: 10.1093/ndt/gfq717. Epub 2010 Dec 2.
- Atkinson C, Varela JC, Tomlinson S. Complement-dependent inflammation and injury in a murine model of brain dead donor hearts. Circ Res. 2009 Nov 20;105(11):1094-101. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.109.194977. Epub 2009 Oct 8.
- Damman J, Hoeger S, Boneschansker L, Theruvath A, Waldherr R, Leuvenink HG, Ploeg RJ, Yard BA, Seelen MA. Targeting complement activation in brain-dead donors improves renal function after transplantation. Transpl Immunol. 2011 May;24(4):233-7. doi: 10.1016/j.trim.2011.03.001. Epub 2011 Apr 1.
- Naesens M, Li L, Ying L, Sansanwal P, Sigdel TK, Hsieh SC, Kambham N, Lerut E, Salvatierra O, Butte AJ, Sarwal MM. Expression of complement components differs between kidney allografts from living and deceased donors. J Am Soc Nephrol. 2009 Aug;20(8):1839-51. doi: 10.1681/ASN.2008111145. Epub 2009 May 14.
- van Werkhoven MB, Damman J, van Dijk MCRF, Daha MR, de Jong IJ, Leliveld A, Krikke C, Leuvenink HG, van Goor H, van Son WJ, Olinga P, Hillebrands JL, Seelen MAJ. Complement mediated renal inflammation induced by donor brain death: role of renal C5a-C5aR interaction. Am J Transplant. 2013 Apr;13(4):875-882. doi: 10.1111/ajt.12130. Epub 2013 Feb 7.
- Blogowski W, Dolegowska B, Salata D, Budkowska M, Domanski L, Starzynska T. Clinical analysis of perioperative complement activity during ischemia/reperfusion injury following renal transplantation. Clin J Am Soc Nephrol. 2012 Nov;7(11):1843-51. doi: 10.2215/CJN.02200312. Epub 2012 Aug 16.
- Davis AE 3rd, Lu F, Mejia P. C1 inhibitor, a multi-functional serine protease inhibitor. Thromb Haemost. 2010 Nov;104(5):886-93. doi: 10.1160/TH10-01-0073. Epub 2010 Aug 30.
- Frank MM. Recombinant and plasma-purified human c1 inhibitor for the treatment of hereditary angioedema. World Allergy Organ J. 2010 Sep;3(9 Suppl):S29-33. doi: 10.1097/WOX.0b013e3181f1428d.
- Curci C, Castellano G, Stasi A, Divella C, Loverre A, Gigante M, Simone S, Cariello M, Montinaro V, Lucarelli G, Ditonno P, Battaglia M, Crovace A, Staffieri F, Oortwijn B, van Amersfoort E, Gesualdo L, Grandaliano G. Endothelial-to-mesenchymal transition and renal fibrosis in ischaemia/reperfusion injury are mediated by complement anaphylatoxins and Akt pathway. Nephrol Dial Transplant. 2014 Apr;29(4):799-808. doi: 10.1093/ndt/gft516. Epub 2014 Jan 23.
- Tillou X, Poirier N, Le Bas-Bernardet S, Hervouet J, Minault D, Renaudin K, Vistoli F, Karam G, Daha M, Soulillou JP, Blancho G. Recombinant human C1-inhibitor prevents acute antibody-mediated rejection in alloimmunized baboons. Kidney Int. 2010 Jul;78(2):152-9. doi: 10.1038/ki.2010.75. Epub 2010 Mar 24.
- Sommer W, Tudorache I, Kuhn C, Avsar M, Salman J, Ius F, Gras C, Weber P, Welte T, Gottlieb J, Haverich A, Warnecke G. C1-esterase-inhibitor for primary graft dysfunction in lung transplantation. Transplantation. 2014 Jun 15;97(11):1185-91. doi: 10.1097/TP.0000000000000034.
- Feldman HI, Gayner R, Berlin JA, Roth DA, Silibovsky R, Kushner S, Brayman KL, Burns JE, Kobrin SM, Friedman AL, Grossman RA. Delayed function reduces renal allograft survival independent of acute rejection. Nephrol Dial Transplant. 1996 Jul;11(7):1306-13.
- Westendorp WH, Leuvenink HG, Ploeg RJ. Brain death induced renal injury. Curr Opin Organ Transplant. 2011 Apr;16(2):151-6. doi: 10.1097/MOT.0b013e328344a5dc.
- Kim IK, Bedi DS, Denecke C, Ge X, Tullius SG. Impact of innate and adaptive immunity on rejection and tolerance. Transplantation. 2008 Oct 15;86(7):889-94. doi: 10.1097/TP.0b013e318186ac4a.
- Damman J, Daha MR, van Son WJ, Leuvenink HG, Ploeg RJ, Seelen MA. Crosstalk between complement and Toll-like receptor activation in relation to donor brain death and renal ischemia-reperfusion injury. Am J Transplant. 2011 Apr;11(4):660-9. doi: 10.1111/j.1600-6143.2011.03475.x.
- Asgari E, Zhou W, Sacks S. Complement in organ transplantation. Curr Opin Organ Transplant. 2010 Aug;15(4):486-91. doi: 10.1097/MOT.0b013e32833b9cb7.
- Rao PS, Schaubel DE, Guidinger MK, Andreoni KA, Wolfe RA, Merion RM, Port FK, Sung RS. A comprehensive risk quantification score for deceased donor kidneys: the kidney donor risk index. Transplantation. 2009 Jul 27;88(2):231-6. doi: 10.1097/TP.0b013e3181ac620b.
- Merion RM, Ashby VB, Wolfe RA, Distant DA, Hulbert-Shearon TE, Metzger RA, Ojo AO, Port FK. Deceased-donor characteristics and the survival benefit of kidney transplantation. JAMA. 2005 Dec 7;294(21):2726-33. doi: 10.1001/jama.294.21.2726.
- Kaminska D, Koscielska-Kasprzak K, Drulis-Fajdasz D, Halon A, Polak W, Chudoba P, Janczak D, Mazanowska O, Patrzalek D, Klinger M. Kidney ischemic injury genes expressed after donor brain death are predictive for the outcome of kidney transplantation. Transplant Proc. 2011 Oct;43(8):2891-4. doi: 10.1016/j.transproceed.2011.08.062.
- Parikh CR, Jani A, Mishra J, Ma Q, Kelly C, Barasch J, Edelstein CL, Devarajan P. Urine NGAL and IL-18 are predictive biomarkers for delayed graft function following kidney transplantation. Am J Transplant. 2006 Jul;6(7):1639-45. doi: 10.1111/j.1600-6143.2006.01352.x.
- Waikar SS, Liu KD, Chertow GM. Diagnosis, epidemiology and outcomes of acute kidney injury. Clin J Am Soc Nephrol. 2008 May;3(3):844-61. doi: 10.2215/CJN.05191107. Epub 2008 Mar 12.
- Damman J, Kok JL, Snieder H, Leuvenink HG, van Goor H, Hillebrands JL, van Dijk MC, Hepkema BG, Reznichenko A, van den Born J, de Borst MH, Bakker SJ, Navis GJ, Ploeg RJ, Seelen MA. Lectin complement pathway gene profile of the donor and recipient does not influence graft outcome after kidney transplantation. Mol Immunol. 2012 Feb;50(1-2):1-8. doi: 10.1016/j.molimm.2011.11.009. Epub 2011 Dec 15.
- Heijnen BH, Straatsburg IH, Padilla ND, Van Mierlo GJ, Hack CE, Van Gulik TM. Inhibition of classical complement activation attenuates liver ischaemia and reperfusion injury in a rat model. Clin Exp Immunol. 2006 Jan;143(1):15-23. doi: 10.1111/j.1365-2249.2005.02958.x.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Oczekiwany)
Ukończenie studiów (Oczekiwany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- 2017-1325
- A539742 (Inny identyfikator: UW Madison)
- SMPH/SURGERY/TRANSPLANT (Inny identyfikator: UW Madison)
- Protocol Version 12/26/2019 (Inny identyfikator: UW Madison)
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .