Ta strona została przetłumaczona automatycznie i dokładność tłumaczenia nie jest gwarantowana. Proszę odnieść się do angielska wersja za tekst źródłowy.

Selekcja nieapoptotycznych ludzkich plemników do zapłodnienia in vitro za pomocą sortowania komórek aktywowanych magnetycznie (MACS) (MACS-HS)

19 czerwca 2019 zaktualizowane przez: Ileana Mateizel, Universitair Ziekenhuis Brussel

Ocena jakości zarodków po wzbogaceniu nieapoptotycznych plemników za pomocą sortowania komórek aktywowanych magnetycznie (MACS): badanie oocytów rodzeństwa.

To badanie kliniczne zostało zorganizowane w celu poprawy jakości zarodków u par z wysokim odsetkiem plemników wykazujących oznaki apoptozy. W tym celu badacze zamierzają zastosować procedurę (MACS: sortowanie komórek aktywowanych magnetycznie), która umożliwia identyfikację i usuwanie apoptotycznych plemników. Procedura ta zwiększy szansę na wykorzystanie plemników nieapoptotycznych podczas zapłodnienia in vitro metodą ICSI (Intracytoplasmic Sperm Injection). Stosując tę ​​procedurę badacze dążą do zwiększenia odsetka zarodków o dobrej jakości dla tych konkretnych par.

Przegląd badań

Szczegółowy opis

Badania niepłodnych par wykazały, że czynnik męski odgrywa rolę w niepłodności. Plemniki mogą powodować uszkodzenia na poziomie molekularnym, które mają wpływ na zapłodnienie i rozwój zarodka. Jednym z takich uszkodzeń molekularnych jest fragmentacja kwasu dezoksyrybonukleinowego (DNA), której negatywny wpływ na wynik embriologiczny pojawia się podczas aktywacji genomu po zapłodnieniu i jest również skorelowany ze zwiększoną częstością poronień.

Fragmentacja DNA jest jedną z późnych manifestacji apoptozy. Identyfikacja plemników wykazujących fragmentację DNA (plemniki apoptotyczne) wymaga utrwalenia i barwienia. Dlatego ta metoda nie może być stosowana w praktyce klinicznej do selekcji nieapoptotycznych plemników do ICSI. Jednak ta selekcja jest możliwa dzięki zastosowaniu sortowania komórek aktywowanych magnetycznie (MACS). Procedura polega na identyfikacji i wyczerpaniu plemników wykazujących wczesny marker apoptozy, jakim jest eksternalizacja fosfatydyloseryny (PS), poprzez wykorzystanie zdolności aneksyny V do rozpoznawania tego antygenu w błonie komórkowej apoptotycznych plemników. Po MACS frakcja, która jest wzbogacona w komórki nieapoptotyczne (komórki bez aneksyny V) może być dalej wykorzystywana do zastosowań klinicznych.

System MACS wykorzystuje kolumnę rozdzielającą umieszczoną w polu magnetycznym oraz odczynnik Annexin-V znakowany paramagnetycznymi kulkami.

Początkowo próbka nasienia zostanie poddana wirowaniu w gradiencie gęstości (DGC). Otrzymana próbka zostanie podzielona na 2 frakcje: jedna frakcja zostanie poddana sortowaniu magnetycznemu (frakcja 1), a druga frakcja będzie stanowić kontrolę (bez sortowania; frakcja 2).

Komórki z frakcji 1 będą inkubowane z aneksyną-V, a następnie przepuszczone przez kolumnę rozdzielającą umieszczoną w polu magnetycznym. Komórki apoptotyczne (komórki dodatnie względem aneksyny V) będą selektywnie zatrzymywane w kolumnie. Komórki nieapoptotyczne, nieznakowane aneksyną V, przejdą przez kolumnę i zostaną zebrane do dalszego wykorzystania.

W momencie ICSI dojrzałe komórki jajowe rodzeństwa zostaną zapłodnione plemnikami z frakcji 1 (wzbogacone w komórki nieapoptotyczne) lub z frakcji 2 (kontrolne, plemniki preparowane konwencjonalnie). Po ICSI wszystkie zapłodnione oocyty będą hodowane indywidualnie w tych samych warunkach w tej samej szalce hodowlanej. Wybór zarodka (zarodków) do transferu będzie oparty na jakości zarodka. Nadliczbowe zarodki dobrej jakości z obu ramion zostaną zamrożone do dalszego wykorzystania.

Niniejsze badanie ma na celu ustalenie, czy zastosowanie MACS poprawia jakość/wskaźnik wykorzystania zarodków u par z wysokim współczynnikiem fragmentacji DNA plemników. Aby uniknąć różnic między pacjentami, badanie zaprojektowano jako badanie oocytów rodzeństwa. Statystyki opisowe zostaną wykonane poprzez analizę mediany, średniej, proporcji, odchylenia standardowego, zakresów i 95% przedziałów ufności, odpowiednio. Standardowe testy parametryczne i nieparametryczne zostaną użyte, odpowiednio, do porównania głównych i drugorzędowych wyników między grupami. Obliczenie wielkości próby: liczba 142 dojrzałych oocytów w każdym ramieniu będzie konieczna do osiągnięcia 80% mocy wykrywania, istotnej na poziomie 5%, wzrostu pierwotnej miary wyniku z 13% w grupie kontrolnej do 26% w grupie kontrolnej grupa eksperymentalna.

Typ studiów

Obserwacyjny

Zapisy (Oczekiwany)

30

Kontakty i lokalizacje

Ta sekcja zawiera dane kontaktowe osób prowadzących badanie oraz informacje o tym, gdzie badanie jest przeprowadzane.

Kryteria uczestnictwa

Badacze szukają osób, które pasują do określonego opisu, zwanego kryteriami kwalifikacyjnymi. Niektóre przykłady tych kryteriów to ogólny stan zdrowia danej osoby lub wcześniejsze leczenie.

Kryteria kwalifikacji

Wiek uprawniający do nauki

16 lat do 41 lat (Dorosły)

Akceptuje zdrowych ochotników

Nie

Płeć kwalifikująca się do nauki

Wszystko

Metoda próbkowania

Próbka prawdopodobieństwa

Badana populacja

Pary ze słabą jakością zarodków w poprzednim cyklu w Centrum Medycyny Rozrodu – Universitair Ziekenhuis Brussel i min. 30% fragmentacją DNA we wcześniejszym badaniu diagnostycznym nasienia.

Opis

10.2 Kryteria włączenia

  • Pacjentki ze słabą jakością zarodków w poprzednich cyklach:

    • Cykle bez transferu zarodków z powodu niewystarczającej jakości zarodków
    • Cykle „Zamroź wszystkie” bez kriokonserwacji
    • Cykle z transferem zarodków dobrej i/lub złej jakości
  • Wcześniejsza diagnostyka nasienia z przynajmniej 30% fragmentacją DNA
  • Cykle ICSI ze świeżym wytryskiem nasienia z ≥1 mil plemników po DGC.
  • Minimum 6 dojrzałych oocytów po pobraniu oocytów.

10.3 Kryteria wykluczenia

  • Cykle z zamrożoną próbką nasienia
  • Cykle z próbką jądra
  • Cykle zapłodnienia in vitro (IVF).
  • Cykle z preimplantacyjną diagnostyką genetyczną
  • Cykle dojrzewania in vitro

Plan studiów

Ta sekcja zawiera szczegółowe informacje na temat planu badania, w tym sposób zaprojektowania badania i jego pomiary.

Jak projektuje się badanie?

Szczegóły projektu

  • Modele obserwacyjne: Kohorta
  • Perspektywy czasowe: Spodziewany

Kohorty i interwencje

Grupa / Kohorta
Interwencja / Leczenie
Grupa kontrolna
Połowa dojrzałych oocytów tej samej pacjentki zostanie wstrzyknięta nasieniem uzyskanym tylko po DGC (konwencjonalne przygotowanie nasienia).
Kółko naukowe

Połowa dojrzałych oocytów tej samej pacjentki zostanie wstrzyknięta nasieniem uzyskanym po DGC i MACS.

Plemniki użyte w tej grupie uważa się za wzbogacone w komórki nieapoptotyczne.

W momencie ICSI dojrzałe oocyty rodzeństwa zostaną zapłodnione plemnikami z grupy Badanej lub z Grupy Kontrolnej. Po ICSI wszystkie zapłodnione oocyty będą hodowane indywidualnie w tych samych warunkach w tej samej szalce hodowlanej. Wybór zarodka (zarodków) do transferu będzie oparty na jakości zarodka. Nadliczbowe zarodki dobrej jakości z obu ramion zostaną zamrożone do dalszego wykorzystania.

Co mierzy badanie?

Podstawowe miary wyniku

Miara wyniku
Opis środka
Ramy czasowe
wskaźnik wykorzystania
Ramy czasowe: 2 lata
liczba przeniesionych i zamrożonych zarodków na dojrzałe oocyty
2 lata

Miary wyników drugorzędnych

Miara wyniku
Opis środka
Ramy czasowe
współczynnik zapłodnienia
Ramy czasowe: 2 lata
liczba zapłodnionych oocytów na liczbę wstrzykniętych oocytów
2 lata

Współpracownicy i badacze

Tutaj znajdziesz osoby i organizacje zaangażowane w to badanie.

Daty zapisu na studia

Daty te śledzą postęp w przesyłaniu rekordów badań i podsumowań wyników do ClinicalTrials.gov. Zapisy badań i zgłoszone wyniki są przeglądane przez National Library of Medicine (NLM), aby upewnić się, że spełniają określone standardy kontroli jakości, zanim zostaną opublikowane na publicznej stronie internetowej.

Główne daty studiów

Rozpoczęcie studiów (Oczekiwany)

1 września 2019

Zakończenie podstawowe (Oczekiwany)

1 października 2021

Ukończenie studiów (Oczekiwany)

1 października 2021

Daty rejestracji na studia

Pierwszy przesłany

13 czerwca 2019

Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości

13 czerwca 2019

Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)

17 czerwca 2019

Aktualizacje rekordów badań

Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)

21 czerwca 2019

Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości

19 czerwca 2019

Ostatnia weryfikacja

1 czerwca 2019

Więcej informacji

Terminy związane z tym badaniem

Dodatkowe istotne warunki MeSH

Inne numery identyfikacyjne badania

  • 2018-183

Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)

Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?

Nie

Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze

Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA

Nie

Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA

Nie

Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .

3
Subskrybuj