- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT05616273
Stymulowany glukagon jako biomarker ryzyka hipoglikemii w cukrzycy typu 1 (MUGGLE)
Cukrzyca typu 1 (T1D) jest wynikiem zniszczenia komórek beta produkujących insulinę przez własny układ odpornościowy organizmu (autoimmunizacja), co powoduje utratę zdolności wytwarzania wystarczającej ilości insuliny do kontrolowania poziomu cukru we krwi i konieczność przyjmowania zastrzyków z insuliny w celu obniżenia poziomu glukozy we krwi poziomy. Podczas gdy wysoki poziom cukru we krwi jest problemem dla osób z cukrzycą typu 1, przyjmowanie leków insulinowych w celu obniżenia poziomu cukru, opóźnione posiłki i ćwiczenia fizyczne mogą spowodować niebezpiecznie niski poziom cukru we krwi (hipoglikemię). Biologiczne przyczyny hipoglikemii i sposoby zapobiegania jej są słabo poznane. U osób bez cukrzycy hormon zwany glukagonem jest naturalnie wydzielany w celu podniesienia poziomu glukozy we krwi, ale nie jest jasne, dlaczego wydzielanie glukagonu jest upośledzone podczas hipoglikemii u osób z T1D.
Celem tego prospektywnego badania obserwacyjnego jest zbadanie związku między testem stymulacji glukagonem a ryzykiem hipoglikemii w T1D. Mamy nadzieję, że badania te pozwolą ustalić, czy zależność ta może być wykorzystana jako badanie krwi i być klinicznie użytecznym biomarkerem ryzyka hipoglikemii, a tym samym stanowić bezpośrednią informację dla opieki klinicznej nad osobami z cukrzycą typu 1, zwłaszcza tymi z najwyższym ryzykiem hipoglikemii.
Uczestnicy zostaną poproszeni o wypełnienie:
- test tolerancji posiłków mieszanych (MMTT) podczas wizyty 1 lub 2
- test stymulacji argininą (AST) podczas wizyty 1 lub 2
- lekki MMTT lub powtórz AST podczas wizyty 3 (około 6-7 miesięcy od wizyty 1)
- ciągłe monitorowanie glikemii (CGM) i zgłaszany przez siebie czas spędzony w hipoglikemii będą wykonywane przez 2 tygodnie po wizytach 1 i 3.
Przegląd badań
Status
Warunki
Szczegółowy opis
Poziom glukozy we krwi jest zwykle kontrolowany przez insulinę, hormon obniżający wysoki poziom glukozy we krwi, oraz glukagon, który jest uwalniany do krwi w celu podniesienia poziomu glukozy, gdy poziom jest niski. W przypadku osób z cukrzycą typu 1 (T1D) przyjmowanie insuliny w celu obniżenia poziomu glukozy może czasami skutkować niebezpiecznie niskim poziomem cukru we krwi (hipoglikemią). Zdolność do uwalniania glukagonu i prawidłowego poziomu glukozy we krwi może być różna, szczególnie u osób, które chorują na T1D od lat. Badanie ma na celu ustalenie, jak poziomy glukagonu we krwi po bodźcu mają się do własnych doświadczeń związanych z hipoglikemią i hipoglikemią. Badania te pozwolą ustalić, czy glukagon mierzony po posiłku może być wykorzystany jako marker we krwi ryzyka hipoglikemii i pomoże zidentyfikować osoby z grupy wysokiego ryzyka.
Hipoteza: Niskie wydzielanie glukagonu stymulowane po posiłku (MM) przewiduje hipoglikemię.
Przed wyrażeniem zgody wszyscy potencjalni uczestnicy otrzymają szczegółowe pisemne informacje na temat badania (zgodne z brytyjskim ogólnym rozporządzeniem o ochronie danych (RODO) i ustawą o ochronie danych z 2018 r.) oraz możliwość przedyskutowania go z jednym z członków zespołu badawczego. Wszyscy uczestnicy zostaną poinformowani o prawie do wycofania się z badania w dowolnym momencie bez uszczerbku lub zagrożenia dla przyszłej opieki klinicznej.
Uczestnikowi zostanie przydzielony unikalny identyfikator badania w celu powiązania wszystkich informacji o badaniu uczestnika i próbek. Charakterystyka kliniczna uczestnika i wyniki próbek zostaną zapisane w formularzu opisu przypadku uczestnika i wprowadzone do bazy danych badania.
Wszyscy uczestnicy zostaną poddani gromadzeniu podstawowych danych, pomiarom i pobiorą próbki krwi na czczo i po stymulacji przez kaniulę podczas wyjściowych wizyt MMTT i AST 1 i 2 oraz ponownie podczas 6-miesięcznej wizyty „Light MMTT” / powtórnej wizyty AST. Kolejność testów MMTT i AST podczas wizyt 1 i 2 zostanie wybrana losowo w celu sprawdzenia efektu kolejności. Wybór testu dla Wizyty 3 zależy od szczytowych wyników glukagonu z Wizyty 1 i 2. Podczas Wizyty 1 i 3 uczestnicy zostaną poproszeni o wypełnienie danych z kwestionariusza hipoglikemii (wyniki Clarke'a i Golda) w celu oceny świadomości hipoglikemii i pomiarów jakości życia, które może odnosić się do MM-glukagonu. Uczestnicy otrzymają ciągły monitor poziomu glukozy we krwi (CGM) Abbot FreeStyle Libre Pro i zostaną poproszeni o wykonanie ciągłego pomiaru poziomu glukozy we krwi (CGM) przez 2 tygodnie. Kliniczna opieka diabetologiczna nie zostanie zmieniona, a uczestnicy z T1D będą stosować własne schematy insulinowe i samokontrolę (nawet jeśli CGM lub Abbot FreeStyle Libre Pro) podczas badania.
Pobrane zostaną próbki na czczo do pomiarów podstawowych: rutynowe oznaczanie glukozy i HbA1c, osocze i surowica do przechowywania i przyszłe analizy okresowe, w tym pomiary glukozy, glukagonu, insuliny (peptydu C) i innych interesujących markerów, a także próbki heparyny sodowej i PAXgenesRNA dla T1D analiza funkcji immunologicznych.
Stymulowane próbki (patrz opisy testów poniżej): insulina (peptyd C), glukoza i glukagon będą mierzone we wszystkich punktach czasowych.
Pod koniec każdego okresu testowego mierzony będzie poziom glukozy we krwi uczestnika i udzielona zostanie odpowiednia porada dotycząca dostosowania dawki insuliny oraz zapewniony zostanie lekki posiłek.
A) Test tolerancji posiłków mieszanych (MMTT) podczas wizyty 1 lub 2 (około 2,5 godziny) Uzasadnienie: MMTT zapewni analizę potwierdzającą glukagonu po zmieszaniu posiłku, przechowywanego w próbkach osocza BD P800 i EDTA w zakresie standardowych punktów czasowych MMTT ( 0, 30, 60, 90 i 120 min) w 75 osobach. Glukoza będzie mierzona w próbkach szczawianu fluoru w tych samych punktach czasowych.
Uczestnicy będą:
- będą ściśle monitorowani podczas całej wizyty pod kątem dyskomfortu lub problemów, aw razie potrzeby udzielą odpowiedniej porady/wsparcia.
- być podane Zapewnienie HP lub Fortisip (6 ml/kg do maks. 360 ml)
- pobierać próbki krwi do pomiaru insuliny, peptydu C, glukozy i glukagonu w określonych odstępach czasu: -10, 0, 30, 60, 90, 120 minut po posiłku.
B) Test stymulacji argininą (AST) Wizyta 1 lub 2 (około 1 godziny) Uzasadnienie. MMTT (mimo że jest wygodny, ponieważ pozwala uniknąć bodźca dożylnego) ma ograniczenia, w tym różnice w opróżnianiu żołądka, wychwytywaniu i wpływie na wydzielanie enteroendokrynne. Dlatego odpowiedzi zostaną porównane podczas MMTT z odpowiedziami uzyskanymi podczas dożylnej prowokacji argininą, testu stymulacji argininą (AST), (5 g argininy przez 1 min) podczas wizyty oddzielnej od wizyty MMTT. Poziom glukozy, glukagonu w osoczu i peptydu C będą mierzone na początku badania iw określonych odstępach czasu po wstrzyknięciu bolusa argininy. Ten test jest przeznaczony przede wszystkim do sprawdzenia maksymalnej zdolności wydzielania insuliny przez komórki beta uczestnika.
Test AST obejmuje:
- Ustawiać. Cewniki dożylne zostaną wprowadzone do żył przedłokciowych w obu ramionach. Jedno ramię będzie używane do infuzji argininy (aminokwasu), a drugie ramię do okresowego pobierania próbek.
- Próbki linii podstawowej zostaną pobrane w -10 i 0 minutach. Maksymalnie stymulująca dawka chlorowodorku argininy (5 g) zostanie wstrzyknięta dożylnie przez 45 sekund. Próbki będą pobierane co 2, 5, 10, 15 i 30 minut po bolusie argininy.
C) „Lekki MMTT” – Wizyta 3, około 6 miesięcy po Wizycie 1 (2 godziny) Ten test jest taki, jak opisano powyżej dla MMTT, ale tylko jedna próbka zostanie pobrana w najbardziej informacyjnym czasie, ocenianym na podstawie pierwszego MMTT i AST . Zostaną zebrane dane kliniczne, a także kwestionariusze hipoglikemii i 2-tygodniowe gromadzenie danych CGM z zaślepionym uczestnikiem Abbott FreeStyle Libre Pro.
Podczas Wizyty 3 do wyboru będzie test „Light MMTT” lub powtórne AST, określone na podstawie szczytowych wyników glukagonu z testów przeprowadzonych podczas Wizyt 1 i 2.
Zbieranie i rejestrowanie danych: Dane będą początkowo rejestrowane przy użyciu formularza opisu przypadku (CRF) specyficznego dla badania, z wydrukami przechowywanymi w głównym pliku badania (TMF). Zanonimizowane dane badawcze zostaną zapisane w specjalnej bazie danych badania i przejrzane pod kątem rozbieżności i brakujących danych przed analizą.
Koniec badania Definicja: Zakończenie badania to 3 miesiące po 7-miesięcznym okresie obserwacji ostatniego uczestnika, aby umożliwić ostateczne zebranie danych.
Kryteria przedwczesnego wycofania się z badania: W przypadku wycofania się uczestnika dane będą gromadzone do momentu wycofania się z badania zgodnie z protokołem i procedurami operacyjnymi badania. W przypadku przedwczesnego wycofania przez uczestnika zgody, ale jej nie wycofania, dane i próbki pozostaną w badaniu i zostaną uwzględnione we wszelkich analizach. W przypadku wycofania zgody próbki badawcze i dane zostaną zachowane/zniszczone zgodnie z lokalnymi wytycznymi.
Próbki: Szczegółowa SOP/instrukcja pracy szczegółowo opisuje procedurę kliniczną pobierania próbek, etykietowania, rejestrowania i zarządzania. Centralna analiza laboratoryjna próbek do badań zostanie przeprowadzona w Exeter Blood Sciences Laboratory.
Przechowywane próbki: Nadwyżki próbek do przechowywania należy przetworzyć, zarejestrować i zamrozić w temperaturze -80°C w ciągu 24 godzin od otrzymania. Wszystkie zapisane próbki będą przechowywane pod identyfikatorem badania, a plik łączący kod badania z danymi osobowymi bezpiecznie przechowywanymi przez głównego badacza, dostępnymi tylko dla personelu przeszkolonego w zakresie ochrony danych, który potrzebuje tych informacji do wykonywania swoich obowiązków.
Bezpieczeństwo, definicje i raportowanie:
Zagrożenia: Próbki krwi będą pobierane przez członków zespołu badawczego przeszkolonego w zakresie wkłucia dożylnego. Podczas testu MMTT/AST istnieje potencjalne ryzyko hiperglikemii iw razie potrzeby udzielona zostanie odpowiednia porada/wsparcie.
Korzyści: Badanie może poprawić zrozumienie ryzyka hipoglikemii u uczestników. W dłuższej perspektywie praca ta może dostarczyć dowodów na to, że zdolność komórek alfa do uwalniania glukagonu po zmieszanym posiłku jest zmienna u osób z T1D, związana z ryzykiem hipoglikemii i może być biomarkerem ryzyka hipoglikemii.
Definicje i zgłaszanie działań niepożądanych (co należy zgłaszać?) Ramy czasowe rejestrowania SAE będą od momentu wyrażenia zgody do jednego tygodnia po ostatniej wizycie osoby badanej. Wszelkie odnotowane działania niepożądane podlegające zgłoszeniu zostaną zgłoszone w ciągu 24 godzin CI i Sponsorowi zgodnie ze standardowymi protokołami badawczo-rozwojowymi NHS.
Ubezpieczenie: Odpowiedzialność publiczna sponsora zostanie zapewniona przez University of Exeter za zaprojektowanie i zarządzanie badaniem. Za przeprowadzenie badania w ośrodku będzie obowiązywać odszkodowanie NHS.
Przetwarzanie i przechowywanie danych: IK jest odpowiedzialny za zapewnienie ochrony i utrzymania anonimowości uczestników, zapewniając ochronę ich tożsamości przed nieupoważnionymi stronami. CI jest „opiekunem” danych. Wszystkie informacje dotyczące uczestników badania będą traktowane jako poufne i będą zarządzane zgodnie z brytyjskim RODO i ustawą o ochronie danych z 2018 r., NHS Caldicott Guardian, brytyjską polityką ramową dotyczącą zdrowia i opieki społecznej oraz zatwierdzeniem komisji ds. etyki badań.
Każdemu uczestnikowi zostanie przydzielony unikalny identyfikator badania. Wszystkie dane badawcze i próbki zostaną poddane pseudoanonimizacji i będą przechowywane pod identyfikatorem badania w bezpiecznej, chronionej hasłem bazie danych badań. Informacje umożliwiające identyfikację będą przechowywane w oddzielnej, bezpiecznej bazie danych chronionej hasłem, przechowywanej na serwerze NHS, aby umożliwić zespołowi badawczemu przeprowadzenie badania.
Wszystkie papierowe kopie danych z badań będą przechowywane pod numerem identyfikacyjnym i przechowywane w zamkniętych biurach z kontrolą dostępu w obiektach badawczych; dane badawcze będą przechowywane oddzielnie od informacji umożliwiających identyfikację. Badacze zajmujący się analizą danych nie będą mieli dostępu do danych osobowych, a jedynie do zanonimizowanych danych badawczych. Publikacje naukowe ani sprawozdania z postępów nie będą zawierały żadnych danych umożliwiających identyfikację.
Wszelkie informacje o uczestnikach, które muszą zostać przesłane stronie trzeciej, będą zgodne z tymi pseudoanonimowymi parametrami. Żadne dane umożliwiające identyfikację uczestnika nie będą przesyłane poza UE.
Przechowywanie i archiwizacja dokumentacji: Po zakończeniu badania, brytyjskie ramy polityczne dotyczące opieki zdrowotnej i społecznej oraz polityka zaufania sponsora wymagają przechowywania dokumentacji przez kolejne 15 lat. Pod koniec badania zanonimizowane dane zostaną włączone do ostatecznego zestawu danych badania i będą przechowywane przez czas nieokreślony na vivli.org lub podobne repozytorium danych zatwierdzone przez sponsora/fundatora. Dane osobowe będą przechowywane, jeśli uczestnik wyrazi zgodę na kontakt w celu monitorowania jego przyszłego stanu zdrowia i/lub udziału w przyszłych badaniach. Jeśli uczestnik wyrazi na to zgodę, jego próbki i dane z projektu zostaną przekazane Peninsula Research Bank (zatwierdzonemu bankowi tkanek, REC nr ref. 19/SW/1059) do wykorzystania w przyszłych badaniach.
Pod koniec badania zostaną one zarchiwizowane przez CI na Uniwersytecie w Exeter.
Analiza statystyczna: Dla próby o wielkości 75 powinno być możliwe wykrycie korelacji między stymulowanym glukagonem a hipoglikemią r=0,3, z 95% przedziałem ufności od 0,08 do 0,49, plus korelacja wywołanego przez MM wzrostu stężenia glukagonu w osoczu z -peptyna.
Zgodność: IK zapewni, że badanie zostanie przeprowadzone zgodnie z zasadami Deklaracji Helsińskiej (2013), zasadami GCP oraz zgodnie ze wszystkimi obowiązującymi wymogami regulacyjnymi, w tym między innymi brytyjskimi zasadami ramowymi dotyczącymi zdrowia i spraw społecznych Rozporządzenia dotyczące opieki i leków stosowanych u ludzi (badania kliniczne) z 2004 r., zmienione w latach 2006, 2008 i 2009 oraz wszelkie przyszłe stosowne lub zastępcze rozporządzenia UE, zasady i procedury Biura ds. Zaufania i Badań i Rozwoju oraz wszelkie późniejsze zmiany.
Zasady publikacji: Wyniki zostaną spisane i przesłane do publikacji w recenzowanym czasopiśmie (czasopismach). Abstrakty zostaną wygłoszone na konferencjach krajowych i międzynarodowych. Wyniki będą przedstawiane współpracownikom klinicznym na regularnych spotkaniach wewnętrznych. List/biuletyn przedstawiający kluczowe wyniki badania zostanie wysłany do wszystkich uczestników i umieszczony na stronie internetowej badania. Można również zorganizować wydarzenie osobiste/internetowe.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
Devon
-
Exeter, Devon, Zjednoczone Królestwo, EX2 5DW
- Royal Devon University Healthcare NHS Foundation Trust
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Metoda próbkowania
Badana populacja
75 osób z długotrwałą T1D, zidentyfikowanych na podstawie udziału w badaniu TIGI (identyfikator IRAS w Wielkiej Brytanii: 141756, numer REC: 13/SW/0312), ze zgodą na kontakt w celu przyszłych badań.
Uczestnicy TIGI mają kliniczną diagnozę T1D, od momentu rozpoznania byli na insulinie, a jeśli BMI wynosił >30, mieli autoprzeciwciała. Naszym celem będzie rekrutacja 50 osób z niewykrywalnym peptydem C i 25 z wykrywalnym peptydem C. Selekcja osób bez peptydu C pozwala na wtórną analizę skupioną na stymulowanym glukagonie bez potencjalnej interakcji z endogennym wydzielaniem insuliny. Skupia się również na grupie osób, o których wiadomo, że są narażone na wysokie ryzyko hipoglikemii z powodu braku endogennej insuliny.
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Rozpoznanie kliniczne cukrzycy typu 1
- Leczony insuliną
- Znany status peptydu C w moczu (na podstawie stosunku peptydu C do kreatyniny w moczu [UCPCR], dodatni/ujemny określony przez punkt odcięcia UCPCR 0,2 nmol/mmol)
- Wiek 16-65 lat włącznie
- Zdolność i chęć wyrażenia świadomej zgody/zgody.
Kryteria wyłączenia:
- Wiek poniżej 16 lat lub powyżej 65 lat
- Ciąża lub karmienie piersią (ponieważ może to ograniczyć pobieranie krwi i wpływać na czynność limfocytów T)
- Każdy stan chorobowy, który w opinii badacza mógłby wpłynąć na bezpieczeństwo udziału uczestnika lub ważność wyników.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Modele obserwacyjne: Kohorta
- Perspektywy czasowe: Spodziewany
Kohorty i interwencje
Grupa / Kohorta |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
MMTT Wizyta 1, AST Wizyta 2
Test tolerancji posiłków mieszanych (MMTT) Wizyta 1 i Test Stymulowany Argininą (AST) Wizyta 2
|
Podczas Wizyty 1 lub Wizyty 2 uczestnikom zostanie podany preparat Sure HP lub Fortisip (napój zawierający taką samą ilość węglowodanów, białek i tłuszczów, jak w posiłku; 6 ml/kg do maksymalnie 360 ml) oraz zostanie pobrana krew pobrane próbki do pomiaru insuliny (peptydu C), glukozy i glukagonu w określonych odstępach czasu: -10, 0, 30, 60, 90, 120 minut po posiłku.
Ten test służy do pomiaru, w jaki sposób komórki beta uczestnika wytwarzają insulinę po posiłku oraz do sprawdzenia hipoglikemii reaktywnej.
Podczas Wizyty 1, Wizyty 2 i Wizyty 3 uczestnicy otrzymają dawkę chlorowodorku argininy (5 g argininy w ciągu 1 minuty) w postaci wstrzyknięcia dożylnego i zostaną pobrane próbki krwi w celu pomiaru insuliny (peptydu C), glukozy i glukagon w określonych odstępach czasu: -10, 0, 2, 5, 10, 15 i 30 minut po wstrzyknięciu bolusa argininy.
Test ten ma na celu przede wszystkim sprawdzenie maksymalnej zdolności wydzielania insuliny przez komórki beta uczestnika.
Uczestnicy otrzymają zestaw umożliwiający pobranie opcjonalnej próbki z nakłucia palca w domu następnego dnia po każdej wizycie i zwrócenie próbki za pomocą dostarczonej z góry opłaconej, zaadresowanej koperty bąbelkowej.
|
|
AST Wizyta 1, MMTT Wizyta 2
Test stymulacji argininą (AST) Wizyta 1 i Test tolerancji posiłków mieszanych (MMTT) Wizyta 2
|
Podczas Wizyty 1 lub Wizyty 2 uczestnikom zostanie podany preparat Sure HP lub Fortisip (napój zawierający taką samą ilość węglowodanów, białek i tłuszczów, jak w posiłku; 6 ml/kg do maksymalnie 360 ml) oraz zostanie pobrana krew pobrane próbki do pomiaru insuliny (peptydu C), glukozy i glukagonu w określonych odstępach czasu: -10, 0, 30, 60, 90, 120 minut po posiłku.
Ten test służy do pomiaru, w jaki sposób komórki beta uczestnika wytwarzają insulinę po posiłku oraz do sprawdzenia hipoglikemii reaktywnej.
Podczas Wizyty 1, Wizyty 2 i Wizyty 3 uczestnicy otrzymają dawkę chlorowodorku argininy (5 g argininy w ciągu 1 minuty) w postaci wstrzyknięcia dożylnego i zostaną pobrane próbki krwi w celu pomiaru insuliny (peptydu C), glukozy i glukagon w określonych odstępach czasu: -10, 0, 2, 5, 10, 15 i 30 minut po wstrzyknięciu bolusa argininy.
Test ten ma na celu przede wszystkim sprawdzenie maksymalnej zdolności wydzielania insuliny przez komórki beta uczestnika.
Uczestnicy otrzymają zestaw umożliwiający pobranie opcjonalnej próbki z nakłucia palca w domu następnego dnia po każdej wizycie i zwrócenie próbki za pomocą dostarczonej z góry opłaconej, zaadresowanej koperty bąbelkowej.
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Opis siły i odtwarzalności związku glukagonu stymulowanego po posiłku mieszanym i argininą z hipoglikemią.
Ramy czasowe: 22 miesiące
|
Zostanie opisana stabilność podłużna stymulowanego glukagonu, w tym jej związek ze zmiennością częstości hipoglikemii oraz potencjał przewidywania przyszłej hipoglikemii.
Zostanie to określone na podstawie poziomów glukagonu w osoczu po MM i argininie, czasu ciągłego monitorowania glikemii (CGM) spędzonego w hipoglikemii oraz zgłoszonych epizodów hipoglikemii, strachu/świadomości hipoglikemii i strachu przed hipoglikemią.
|
22 miesiące
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Wzdłużna zmienność poziomów glukagonu i jej związek z epizodami hipoglikemii w długotrwałej T1D.
Ramy czasowe: 22 miesiące
|
Stymulowane i osoczowe poziomy glukagonu oraz ciągłe monitorowanie glikemii (CGM) zostaną wykorzystane do opisania podłużnej zmienności poziomów glukagonu i jej związku z epizodami hipoglikemii w długotrwałej T1D.
|
22 miesiące
|
|
Zależność między poziomami glukagonu w osoczu w warunkach podstawowych, po stymulacji (posiłkiem mieszanym lub argininą)
Ramy czasowe: 22 miesiące
|
Uzyskane zostanie mechanistyczne zrozumienie zależności między poziomami glukagonu w osoczu w warunkach podstawowych, po stymulacji (mieszanym posiłkiem lub argininą).
Związek przyczynowo-skutkowy między hipoglikemią a czynnością komórek alfa zostanie zbadany za pomocą stymulowanych i osoczowych poziomów glukagonu oraz ciągłego monitorowania glukozy (CGM).
|
22 miesiące
|
|
Domowy pomiar peptydu C w krwi z nakłucia palca jest praktyczną alternatywą dla MMTT
Ramy czasowe: 22 miesiące
|
Ustalić, czy pomiar peptydu C w krwi z nakłucia palca w domu jest praktyczną alternatywą dla MMTT poprzez porównanie poziomów peptydu C w próbkach krwi włośniczkowej z poziomami w próbkach pobranych podczas „złotego standardu” MMTT.
|
22 miesiące
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Współpracownicy
Śledczy
- Główny śledczy: Richard A Oram, MRCP (neph), University of Exeter
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Epidemiology of severe hypoglycemia in the diabetes control and complications trial. The DCCT Research Group. Am J Med. 1991 Apr;90(4):450-9.
- Battelino T, Danne T, Bergenstal RM, Amiel SA, Beck R, Biester T, Bosi E, Buckingham BA, Cefalu WT, Close KL, Cobelli C, Dassau E, DeVries JH, Donaghue KC, Dovc K, Doyle FJ 3rd, Garg S, Grunberger G, Heller S, Heinemann L, Hirsch IB, Hovorka R, Jia W, Kordonouri O, Kovatchev B, Kowalski A, Laffel L, Levine B, Mayorov A, Mathieu C, Murphy HR, Nimri R, Norgaard K, Parkin CG, Renard E, Rodbard D, Saboo B, Schatz D, Stoner K, Urakami T, Weinzimer SA, Phillip M. Clinical Targets for Continuous Glucose Monitoring Data Interpretation: Recommendations From the International Consensus on Time in Range. Diabetes Care. 2019 Aug;42(8):1593-1603. doi: 10.2337/dci19-0028. Epub 2019 Jun 8.
- Gerich JE, Langlois M, Noacco C, Karam JH, Forsham PH. Lack of glucagon response to hypoglycemia in diabetes: evidence for an intrinsic pancreatic alpha cell defect. Science. 1973 Oct 12;182(4108):171-3. doi: 10.1126/science.182.4108.171.
- Frier BM. Hypoglycaemia in diabetes mellitus: epidemiology and clinical implications. Nat Rev Endocrinol. 2014 Dec;10(12):711-22. doi: 10.1038/nrendo.2014.170. Epub 2014 Oct 7.
- Hypoglycemia in the Diabetes Control and Complications Trial. The Diabetes Control and Complications Trial Research Group. Diabetes. 1997 Feb;46(2):271-86.
- Cryer PE. Minireview: Glucagon in the pathogenesis of hypoglycemia and hyperglycemia in diabetes. Endocrinology. 2012 Mar;153(3):1039-48. doi: 10.1210/en.2011-1499. Epub 2011 Dec 13.
- Rorsman P, Ramracheya R, Rorsman NJ, Zhang Q. ATP-regulated potassium channels and voltage-gated calcium channels in pancreatic alpha and beta cells: similar functions but reciprocal effects on secretion. Diabetologia. 2014 Sep;57(9):1749-61. doi: 10.1007/s00125-014-3279-8. Epub 2014 Jun 7.
- Bollyky J, Greenbaum CJ. Editorial: The role of glucagon in postprandial hyperglycemia--the jury's still out. J Clin Endocrinol Metab. 2007 Aug;92(8):2879-81. doi: 10.1210/jc.2007-1312. No abstract available.
- Zenz S, Mader JK, Regittnig W, Brunner M, Korsatko S, Boulgaropoulos B, Magnes C, Raml R, Narath SH, Eller P, Augustin T, Pieber TR. Impact of C-Peptide Status on the Response of Glucagon and Endogenous Glucose Production to Induced Hypoglycemia in T1DM. J Clin Endocrinol Metab. 2018 Apr 1;103(4):1408-1417. doi: 10.1210/jc.2017-01836.
- Brissova M, Haliyur R, Saunders D, Shrestha S, Dai C, Blodgett DM, Bottino R, Campbell-Thompson M, Aramandla R, Poffenberger G, Lindner J, Pan FC, von Herrath MG, Greiner DL, Shultz LD, Sanyoura M, Philipson LH, Atkinson M, Harlan DM, Levy SE, Prasad N, Stein R, Powers AC. alpha Cell Function and Gene Expression Are Compromised in Type 1 Diabetes. Cell Rep. 2018 Mar 6;22(10):2667-2676. doi: 10.1016/j.celrep.2018.02.032.
- Brown RJ, Sinaii N, Rother KI. Too much glucagon, too little insulin: time course of pancreatic islet dysfunction in new-onset type 1 diabetes. Diabetes Care. 2008 Jul;31(7):1403-4. doi: 10.2337/dc08-0575.
- Sherr J, Tsalikian E, Fox L, Buckingham B, Weinzimer S, Tamborlane WV, White NH, Arbelaez AM, Kollman C, Ruedy KJ, Cheng P, Beck RW; Diabetes Research in Children Network. Evolution of abnormal plasma glucagon responses to mixed-meal feedings in youth with type 1 diabetes during the first 2 years after diagnosis. Diabetes Care. 2014 Jun;37(6):1741-4. doi: 10.2337/dc13-2612. Epub 2014 Apr 2.
- Orskov C, Wettergren A, Holst JJ. Secretion of the incretin hormones glucagon-like peptide-1 and gastric inhibitory polypeptide correlates with insulin secretion in normal man throughout the day. Scand J Gastroenterol. 1996 Jul;31(7):665-70. doi: 10.3109/00365529609009147.
- Rickels MR, Evans-Molina C, Bahnson HT, Ylescupidez A, Nadeau KJ, Hao W, Clements MA, Sherr JL, Pratley RE, Hannon TS, Shah VN, Miller KM, Greenbaum CJ; T1D Exchange beta-Cell Function Study Group. High residual C-peptide likely contributes to glycemic control in type 1 diabetes. J Clin Invest. 2020 Apr 1;130(4):1850-1862. doi: 10.1172/JCI134057.
- Zhang Q, Ramracheya R, Lahmann C, Tarasov A, Bengtsson M, Braha O, Braun M, Brereton M, Collins S, Galvanovskis J, Gonzalez A, Groschner LN, Rorsman NJ, Salehi A, Travers ME, Walker JN, Gloyn AL, Gribble F, Johnson PR, Reimann F, Ashcroft FM, Rorsman P. Role of KATP channels in glucose-regulated glucagon secretion and impaired counterregulation in type 2 diabetes. Cell Metab. 2013 Dec 3;18(6):871-82. doi: 10.1016/j.cmet.2013.10.014.
- Porksen S, Nielsen LB, Kaas A, Kocova M, Chiarelli F, Orskov C, Holst JJ, Ploug KB, Hougaard P, Hansen L, Mortensen HB; Hvidore Study Group on Childhood Diabetes. Meal-stimulated glucagon release is associated with postprandial blood glucose level and does not interfere with glycemic control in children and adolescents with new-onset type 1 diabetes. J Clin Endocrinol Metab. 2007 Aug;92(8):2910-6. doi: 10.1210/jc.2007-0244. Epub 2007 May 22.
- Hare KJ, Vilsboll T, Holst JJ, Knop FK. Inappropriate glucagon response after oral compared with isoglycemic intravenous glucose administration in patients with type 1 diabetes. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2010 Apr;298(4):E832-7. doi: 10.1152/ajpendo.00700.2009. Epub 2010 Jan 26.
- Marren SM, Hammersley S, McDonald TJ, Shields BM, Knight BA, Hill A, Bolt R, Tree TI, Roep BO, Hattersley AT, Jones AG, Oram RA; TIGI consortium. Persistent C-peptide is associated with reduced hypoglycaemia but not HbA1c in adults with longstanding Type 1 diabetes: evidence for lack of intensive treatment in UK clinical practice? Diabet Med. 2019 Sep;36(9):1092-1099. doi: 10.1111/dme.13960. Epub 2019 Jun 27.
- Geddes J, Wright RJ, Zammitt NN, Deary IJ, Frier BM. An evaluation of methods of assessing impaired awareness of hypoglycemia in type 1 diabetes. Diabetes Care. 2007 Jul;30(7):1868-70. doi: 10.2337/dc06-2556. Epub 2007 Apr 6. No abstract available.
- Wewer Albrechtsen NJ, Bak MJ, Hartmann B, Christensen LW, Kuhre RE, Deacon CF, Holst JJ. Stability of glucagon-like peptide 1 and glucagon in human plasma. Endocr Connect. 2015 Mar;4(1):50-7. doi: 10.1530/EC-14-0126. Epub 2015 Jan 16.
- Atkinson MA, Leiter EH. The NOD mouse model of type 1 diabetes: as good as it gets? Nat Med. 1999 Jun;5(6):601-4. doi: 10.1038/9442. No abstract available.
- Chen YG, Mathews CE, Driver JP. The Role of NOD Mice in Type 1 Diabetes Research: Lessons from the Past and Recommendations for the Future. Front Endocrinol (Lausanne). 2018 Feb 23;9:51. doi: 10.3389/fendo.2018.00051. eCollection 2018.
- Ramracheya R, Ward C, Shigeto M, Walker JN, Amisten S, Zhang Q, Johnson PR, Rorsman P, Braun M. Membrane potential-dependent inactivation of voltage-gated ion channels in alpha-cells inhibits glucagon secretion from human islets. Diabetes. 2010 Sep;59(9):2198-208. doi: 10.2337/db09-1505. Epub 2010 Jun 14.
- Rorsman P, Ashcroft FM. Pancreatic beta-Cell Electrical Activity and Insulin Secretion: Of Mice and Men. Physiol Rev. 2018 Jan 1;98(1):117-214. doi: 10.1152/physrev.00008.2017.
- McDonald TJ, Perry MH, Peake RW, Pullan NJ, O'Connor J, Shields BM, Knight BA, Hattersley AT. EDTA improves stability of whole blood C-peptide and insulin to over 24 hours at room temperature. PLoS One. 2012;7(7):e42084. doi: 10.1371/journal.pone.0042084. Epub 2012 Jul 30.
- McDonald TJ, Besser RE, Perry M, Babiker T, Knight BA, Shepherd MH, Ellard S, Flanagan SE, Hattersley AT. Screening for neonatal diabetes at day 5 of life using dried blood spot glucose measurement. Diabetologia. 2017 Nov;60(11):2168-2173. doi: 10.1007/s00125-017-4383-3. Epub 2017 Aug 5.
- Milan AM, D'Souza RF, Pundir S, Pileggi CA, Thorstensen EB, Barnett MP, Markworth JF, Cameron-Smith D, Mitchell CJ. Older Adults Have Delayed Amino Acid Absorption after a High Protein Mixed Breakfast Meal. J Nutr Health Aging. 2015 Oct;19(8):839-45. doi: 10.1007/s12603-015-0500-5.
- Salehi A, Gunnerud U, Muhammed SJ, Ostman E, Holst JJ, Bjorck I, Rorsman P. The insulinogenic effect of whey protein is partially mediated by a direct effect of amino acids and GIP on beta-cells. Nutr Metab (Lond). 2012 May 30;9(1):48. doi: 10.1186/1743-7075-9-48.
- De Marinis YZ, Salehi A, Ward CE, Zhang Q, Abdulkader F, Bengtsson M, Braha O, Braun M, Ramracheya R, Amisten S, Habib AM, Moritoh Y, Zhang E, Reimann F, Rosengren A, Shibasaki T, Gribble F, Renstrom E, Seino S, Eliasson L, Rorsman P. GLP-1 inhibits and adrenaline stimulates glucagon release by differential modulation of N- and L-type Ca2+ channel-dependent exocytosis. Cell Metab. 2010 Jun 9;11(6):543-553. doi: 10.1016/j.cmet.2010.04.007.
- Winzeler B, Cesana-Nigro N, Refardt J, Vogt DR, Imber C, Morin B, Popovic M, Steinmetz M, Sailer CO, Szinnai G, Chifu I, Fassnacht M, Christ-Crain M. Arginine-stimulated copeptin measurements in the differential diagnosis of diabetes insipidus: a prospective diagnostic study. Lancet. 2019 Aug 17;394(10198):587-595. doi: 10.1016/S0140-6736(19)31255-3. Epub 2019 Jul 11.
- Knudsen JG, Hamilton A, Ramracheya R, Tarasov AI, Brereton M, Haythorne E, Chibalina MV, Spegel P, Mulder H, Zhang Q, Ashcroft FM, Adam J, Rorsman P. Dysregulation of Glucagon Secretion by Hyperglycemia-Induced Sodium-Dependent Reduction of ATP Production. Cell Metab. 2019 Feb 5;29(2):430-442.e4. doi: 10.1016/j.cmet.2018.10.003. Epub 2018 Nov 8.
- Walker JN, Ramracheya R, Zhang Q, Johnson PR, Braun M, Rorsman P. Regulation of glucagon secretion by glucose: paracrine, intrinsic or both? Diabetes Obes Metab. 2011 Oct;13 Suppl 1:95-105. doi: 10.1111/j.1463-1326.2011.01450.x.
- Vergari E, Knudsen JG, Ramracheya R, Salehi A, Zhang Q, Adam J, Asterholm IW, Benrick A, Briant LJB, Chibalina MV, Gribble FM, Hamilton A, Hastoy B, Reimann F, Rorsman NJG, Spiliotis II, Tarasov A, Wu Y, Ashcroft FM, Rorsman P. Insulin inhibits glucagon release by SGLT2-induced stimulation of somatostatin secretion. Nat Commun. 2019 Jan 11;10(1):139. doi: 10.1038/s41467-018-08193-8.
- Ramracheya RD, McCulloch LJ, Clark A, Wiggins D, Johannessen H, Olsen MK, Cai X, Zhao CM, Chen D, Rorsman P. PYY-Dependent Restoration of Impaired Insulin and Glucagon Secretion in Type 2 Diabetes following Roux-En-Y Gastric Bypass Surgery. Cell Rep. 2016 May 3;15(5):944-950. doi: 10.1016/j.celrep.2016.03.091. Epub 2016 Apr 21.
- Hamilton A, Zhang Q, Salehi A, Willems M, Knudsen JG, Ringgaard AK, Chapman CE, Gonzalez-Alvarez A, Surdo NC, Zaccolo M, Basco D, Johnson PRV, Ramracheya R, Rutter GA, Galione A, Rorsman P, Tarasov AI. Adrenaline Stimulates Glucagon Secretion by Tpc2-Dependent Ca2+ Mobilization From Acidic Stores in Pancreatic alpha-Cells. Diabetes. 2018 Jun;67(6):1128-1139. doi: 10.2337/db17-1102. Epub 2018 Mar 21.
- Lund A, Bagger JI, Wewer Albrechtsen NJ, Christensen M, Grondahl M, Hartmann B, Mathiesen ER, Hansen CP, Storkholm JH, van Hall G, Rehfeld JF, Hornburg D, Meissner F, Mann M, Larsen S, Holst JJ, Vilsboll T, Knop FK. Evidence of Extrapancreatic Glucagon Secretion in Man. Diabetes. 2016 Mar;65(3):585-97. doi: 10.2337/db15-1541. Epub 2015 Dec 15.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Szacowany)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- 2021-22-59
- 319581 (Inny identyfikator: Health Research Authority)
- 22/LO/0719 (Inny identyfikator: Research Ethics Committee)
- Grant # 2012-04188 (Inny identyfikator: The Leona M. and Harry B. Helmsley Charitable Trust)
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Opis planu IPD
Pod koniec badania zanonimizowane dane zostaną włączone do ostatecznego zestawu danych badania i przechowywane przez czas nieokreślony w repozytorium danych zatwierdzonym przez sponsora/fundatora. Ponadto, jeśli uczestnik wyrazi na to zgodę, jego próbki i dane z projektu zostaną przekazane Peninsula Research Bank (zatwierdzonemu bankowi tkanek, REC nr ref. 19/SW/1059) w Exeter do wykorzystania w przyszłych badaniach.
Wszelkie informacje o uczestniku, które muszą zostać przesłane stronie trzeciej, będą zgodne z tymi pseudoanonimowymi parametrami, w tym datą urodzenia uczestnika, płcią i unikalnym identyfikatorem badania. Żadne dane umożliwiające identyfikację uczestnika nie będą przesyłane poza UE.
Anonimowe dane z badań klinicznych zostaną udostępnione na stronie vivli.org lub podobne repozytorium danych na poziomie uczestnika zatwierdzone przez fundatora i sponsora, które nie zostało jeszcze sfinalizowane w momencie przesłania niniejszego protokołu do ClinicalTrials.gov.
Ramy czasowe udostępniania IPD
Kryteria dostępu do udostępniania IPD
Typ informacji pomocniczych dotyczących udostępniania IPD
- PROTOKÓŁ BADANIA
- SOK ROŚLINNY
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
produkt wyprodukowany i wyeksportowany z USA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .