Wpływ różnych schematów czyszczenia na tworzenie się biofilmu wyjmowanych aparatów ortodontycznych na bazie akrylu

Jest to podwójnie ślepe, równoległe, randomizowane badanie kliniczne przeprowadzane w poradni ortodontycznej po uzyskaniu aprobaty etycznej komisji etycznej oddziału. Trzydziestu dziewięciu pacjentów ortodontycznych, którzy spełniają kryteria kwalifikacyjne, zostanie włączonych do badania i otrzyma kartę informacyjną pacjenta oraz formularz zgody wyjaśniający charakter badania. Po wstępnej akceptacji pacjenta zostanie pobrany wycisk alginianowy łuku szczękowego i wykonana replika negatywowa kamieniem typu IV. Druciana rama aparatu wyjmowanego zostanie wykonana zgodnie z projektem dla danego przypadku. Po nałożeniu środka rozdzielającego zostanie wykonana baza akrylowa z proszku i płynu ortodontycznego akrylu (Orthocryle, Dentaurum, Ispringen, German) w proporcji (2,5 części proszku na 1 część płynu) zgodnie z instrukcją producenta z czterema dołkami na z każdej strony powierzchni montażowej urządzenia. Zostaną wykonane próbki akrylu, czyli płytek o różnej fakturze powierzchni. Arkusz akrylowy o grubości 1 mm zostanie wykonany z materiału formy. Jeden arkusz zostanie wypolerowany przy użyciu konwencjonalnej techniki polerowania, aż do uzyskania błyszczącej powierzchni, podczas gdy drugi arkusz zostanie zachowany bez modyfikacji. Płytki o średnicy 5 mm zostaną wywiercone za pomocą wiertła trepanacyjnego po obu stronach arkuszy akrylowych, a każdy zestaw płytek, tj. polerowane i niepolerowane próbki, zostanie pokryty kolorem z osadzonej powierzchni. Płytki akrylowe (o średnicy 5 mm i grubości 1 mm) zostaną umieszczone i zamocowane w otworach utworzonych za pomocą lepkiego wosku. Próbki akrylu zostaną umieszczone losowo. Urządzenie zostanie wysterylizowane zgodnie z odpowiednim protokołem sterylizacji. Aparat zdejmowany zostanie przydzielony losowo i na ślepo i osadzony w jamie ustnej pacjenta na okres jednego tygodnia. Każda osoba otrzyma od niezależnej osoby paczkę zawierającą zestaw czyszczący oraz instrukcję opisującą schemat czyszczenia jej urządzenia. Opakowania mają podobny kształt i kolor i będą przygotowywane przez osobę trzecią, która nie zna celu badania. Uczestnik zostanie podzielony na trzy grupy:

1. Szczotkowanie szczoteczką do protez i pastą do zębów z chlorheksydyną (CHX) (lacalut Active, Niemcy) przez jedną minutę.
2. Czyszczenie chemiczne tj. Tabletka czyszcząca Lacalut (lacalut DENT cleaning tab, Germany), napełnij kubek do zaznaczonej linii (150 ml) wodą z kranu, rozpuść jedną tabletkę czyszczącą i odczekaj 20 minut, a następnie umyj go wodą z kranu.
3. Połączenie szczotkowania pastą CHX i tabletką czyszczącą. Pod koniec okresu badawczego próbki akrylowe zostaną ostrożnie usunięte i umieszczone za pomocą sterylnej pęsety na płytce Petriego zawierającej PBS. Próbki zostaną następnie dwukrotnie zanurzone w 25 ml sterylnych probówkach zawierających PBS w celu usunięcia bakterii planktonowych i wstawione do 5 ml probówki bijou zawierającej 1 mm PBS. Próbkę miesza się na worteksie przez 1 minutę, aby rozprowadzić biofilm i stworzyć jednorodny roztwór. Dziesięciokrotne seryjne rozcieńczenia zostaną wykonane w PBS przed umieszczeniem próbek na agarze z krwią (BA), w celu uzyskania całkowitej liczby beztlenowców, agaru Mitis salivarius (MS), agaru selektywnego dla paciorkowców spp. i agar solny z mannitolem (MA) dla Staphylococci spp. Płytki BA i MS będą inkubowane w warunkach beztlenowych przez 2-4 dni w temperaturze 37ºC w komorze beztlenowej, podczas gdy MA będą inkubowane przez 2 dni w warunkach tlenowych. Wszystkie organizmy z agarów selektywnych i nieselektywnych zostaną rozróżnione na podstawie morfologii kolonii i zostaną scharakteryzowane za pomocą reakcji Grama i innych testów potwierdzających: 1. Test katalazy 2. Test koagulazy