- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT06150456
Badanie zachowania kości wyrostka zębodołowego przy użyciu fotobiomodulacji w połączeniu z przeszczepem z biomateriałem rusztowania
Ocena zachowania kości wyrostka zębodołowego po ekstrakcji zębów trzonowych przy użyciu fotobiomodulacji w połączeniu z przeszczepem z biomateriałem rusztowania: badanie kliniczne, randomizowane, z potrójną ślepą próbą.
Przegląd badań
Status
Szczegółowy opis
Kliniczne, randomizowane badanie z potrójną ślepą próbą, potrójną ślepą próbą (pacjent nie będzie wiedział, czy został poddany zabiegowi laserowemu lub czy wszczepiono mu biomateriał, a operator, który zastosuje laser, również będzie niewidomy na urządzenie z lub bez promieniowania laserowego.
60 osób zostanie przyjętych do gabinetu stomatologicznego Universidade Nove de Julho, na kursy z zakresu chirurgii, endodoncji i stomatologii dziecięcej, a także do gabinetu prywatnego, ze wskazaniem do usunięcia pierwszych i drugich zębów trzonowych górnych i dolnych . Rekrutacja odbędzie się wyłącznie po zatwierdzeniu przez komisję etyki.
4.3 Wielkość próbki: Wielkość próbki określono w oparciu o główny wynik badania: zachowanie pęcherzyków płucnych za pomocą biomateriału rusztowania. Na podstawie danych Rosero i in. (Fotobiomodulacja jako terapia uzupełniająca w celu zachowania pęcherzyków płucnych: wstępne badanie na ludziach) oraz Araújo i in. (Zmiany grzbietu po wszczepieniu świeżych zębodołów poekstrakcyjnych u człowieka. Randomizowane badanie kliniczne). Nasze początkowe oszacowanie wielkości próby wynosiło 9 pacjentów na grupę, co oznaczało istotny poziom 0,05 i szacowaną moc testu 80% dla pozycji referencyjnych 104 i 105. Aby uwzględnić możliwy nieparametryczny rozkład danych, do każdej grupy należy dodać o 15% więcej pacjentów. Kolejne 25% zostanie dodane, aby uwzględnić możliwe przypadki rezygnacji, co daje 13 uczestników w grupie, a dla większego bezpieczeństwa i niezawodności w każdej grupie utworzono 15 pacjentów. Do obliczeń wykorzystano program G*Power 3.1.9.6.
Materiały użyte w badaniu:
Biomateriałem wybranym do tych badań jest alloprzeszczep Plenum® OSShp i Plenum® Guide (Brazylia). Są to całkowicie syntetyczne przeszczepy kostne i wchłanialne membrany regeneracyjne (nie pochodzenia zwierzęcego i ludzkiego).
Plenum® OSShp to porowaty syntetyczny dwufazowy bioceramik (hydroksyapatyt: β - fosforan trójwapniowy, HA: β-TCP - 70:30%), o wielkości granulek 500 - 1000 µm.
Plenum® Guide to syntetyczny materiał membranowy na bazie polidioksanonu (PDO), którego morfologia powierzchni ściśle naśladuje macierz zewnątrzkomórkową.
Randomizacja:
Wszyscy uczestnicy zostaną zaproszeni do udziału w badaniu i po podpisaniu świadomej zgody zostaną losowo przydzieleni do bloków po 4; 60 uczestników zostanie losowo podzielonych na 4 grupy n=15 Exo (ekstrakcja), Exo+Laser (ekstrakcja i leczenie laserem 808 nm), Exo+Biomat (ekstrakcja z przeszczepem biomateriału), Exo+Biomat+Laser (ekstrakcja i przeszczepienie biomateriał i obróbka laserem 808 nm). Uczestnicy zostaną losowo przydzieleni na podstawie listy wygenerowanej komputerowo (Excel). 4.7 PROCEDURA KLINICZNA: W momencie przedoperacyjnym pacjent zostanie poddany tomografii komputerowej (ryc. 12) i skanowaniu wewnątrzustnemu (ryc. 13) w celu wstępnego pomiaru pionowe i poziome wymiary kości wyrostka zębodołowego oraz pomiędzy sąsiednimi zębami zęba, który ma zostać usunięty w pozycji w wyrostku zębodołowym i łuku zębowym, a także planowanie zabiegu chirurgicznego zgodnie z zaleceniami najlepszych aktualnych praktyk stomatologicznych oraz podpisze Okres autoryzacji wykorzystania obrazu ( ZAŁĄCZNIK 4). Zapewnione będzie również poradnictwo przedoperacyjne i realizacja recept zgodnie z ustalonym protokołem lekowym. Wszyscy pacjenci biorący udział w badaniu otrzymają taką samą opiekę pooperacyjną (ZAŁĄCZNIK 3) i protokół lekowy obowiązujący w przypadku wszystkich zabiegów usuwania zębów z przeszczepem lub bez przeszczepu biomateriałów. Ząb zostanie usunięty techniką odontosekcji, aby usunąć korzenie z możliwie najmniejszym urazem. Nie będzie konieczne podnoszenie płata tkanki miękkiej ze względu na właściwości membrany, która zostanie zastosowana, ograniczając uraz tkanek i pomagając w naprawie pola operacyjnego. Po ekstrakcji biomateriał zostanie dodany i umieszczony w zębodole za pomocą narzędzi umożliwiających to wprowadzenie i pokryty membraną, która będzie służyć jako bariera mechaniczna, zapobiegająca wgłobieniu tkanki dziąsła i tworzeniu się tkanki zrogowaciałej w celu zamknięcia pola operacyjnego rany, aby nie zakłócać osteointegracji biomateriału kostnego. przeszczepiony.
Grupy Exo+Laser i Exo+Biomat+Laser otrzymają, oprócz protokołu lekowego i wytycznych, leczenie laserem. Grupy Exo i Exo+Biomat będą korzystać z podobnego urządzenia laserowego, jednak nie będzie ono emitowało promieniowania.
W okresie pooperacyjnym po 3 i 6 miesiącach zostaną wykonane nowe badania wewnątrzustnego cyfrowego skaningu i cyfrowej tomografii komputerowej w celu wykonania zdjęć i analizy wolumetrycznej za pomocą specjalnego oprogramowania.
Typ studiów
Zapisy (Rzeczywisty)
Faza
- Faza 1
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
-
São Paulo, Brazylia, 01525-000
- Universidade Nove de Julho
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
- Dziecko
Akceptuje zdrowych ochotników
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Wszystkie płcie, w wieku powyżej 18 lat, bez chorób współistniejących, wykazują zadowalającą higienę jamy ustnej i wykazują stan utraty pierwszych lub drugich stałych zębów trzonowych
Kryteria wyłączenia:
- Nawykowe stosowanie leków przeciwbólowych i przeciwzapalnych w przypadku innych chorób współistniejących, występowanie alergii na proponowany protokół lekowy, w leczeniu neurologicznym/psychiatrycznym, obecność zębów ze zmianami chorobowymi w tej samej połowie łuku usuwanego zęba, aktualne nałóg palenia tytoniu, kobiety w ciąży lub karmiące piersią, u których występują zaburzenia nadwrażliwości na światło, z obecnością nowotworu w okolicy jamy ustnej; oraz u pacjentów z powikłaniami operacyjnymi, których czas operacji przekracza 90 minut
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Brak (otwarta etykieta)
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Eksperymentalne: Grupa 1
15 pacjentów, którzy będą mieli ekstrakcję tylko pierwszych zębów lub drugich zębów trzonowych.
|
ekstrakcja: we wszystkich grupach zostanie przeprowadzona ekstrakcja
|
|
Eksperymentalny: Eksperymentalne: Grupa 2
15 pacjentów, którzy będą poddani ekstrakcji tylko pierwszego lub drugiego zęba trzonowego i zostaną poddani leczeniu laserem na podczerwień
|
ekstrakcja: we wszystkich grupach zostanie przeprowadzona ekstrakcja
ekstrakcja: we wszystkich grupach zostanie przeprowadzona ekstrakcja. Leczenie laserem podczerwonym o niskiej intensywności 808 nm będzie stosowane dwuetapowo: jeden w okresie bezpośrednio pooperacyjnym i 10 dni po zabiegu.
|
|
Eksperymentalny: Eksperymentalne: Grupa 3
15 pacjentów, którzy zostaną poddani ekstrakcji pierwszego lub drugiego zęba trzonowego i otrzymają przeszczep z biomateriałem rusztowania
|
ekstrakcja: we wszystkich grupach zostanie przeprowadzona ekstrakcja
ekstrakcja: we wszystkich grupach ekstrakcja zostanie przeprowadzona. Natychmiast po ekstrakcji zęba do zębodołu zostaną dodane biomateriały Plenum® OSShp i Plenum® Guide (Brazylia), które pełnią funkcję substytutu kości i zachowują wymiary wyrostka zębodołowego.
|
|
Eksperymentalny: Eksperymentalne: Grupa 4
15 pacjentów, którzy zostaną poddani ekstrakcji pierwszego lub drugiego zęba trzonowego i otrzymają przeszczep z biomateriałem rusztowania oraz leczenie laserem na podczerwień
|
ekstrakcja: we wszystkich grupach zostanie przeprowadzona ekstrakcja
ekstrakcja: we wszystkich grupach zostanie przeprowadzona ekstrakcja. Leczenie laserem podczerwonym o niskiej intensywności 808 nm będzie stosowane dwuetapowo: jeden w okresie bezpośrednio pooperacyjnym i 10 dni po zabiegu.
ekstrakcja: we wszystkich grupach ekstrakcja zostanie przeprowadzona. Natychmiast po ekstrakcji zęba do zębodołu zostaną dodane biomateriały Plenum® OSShp i Plenum® Guide (Brazylia), które pełnią funkcję substytutu kości i zachowują wymiary wyrostka zębodołowego.
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Faza interwencji chirurgicznej
Ramy czasowe: Wartość wyjściowa, przedoperacyjna, 3 i 6 miesięcy
|
Badanie tomografii komputerowej zostanie wykonane przed zabiegiem, zęba przed ekstrakcją oraz po 3 i 6 miesiącach od zabiegu, a pomiary wybrane do pomiaru wymiarów wyrostka zębodołowego będą odnosić się do policzkowo-językowej grubości wyrostka zębodołowego.
W cięciu ortoradialnym granice zębodołu zostaną wyznaczone od wierzchołka zęba do maksymalnej wysokości wyrostków kostnych.
W pozycji najbardziej centralnej dokonany zostanie pomiar pionowy i wykonane zostaną 3 nacięcia policzkowo-językowe, proporcjonalne względem siebie zgodnie z zmierzonym wymiarem pionowym; a w każdej trzeciej części wierzchołkowej, środkowej i szyjnej zostaną wykonane pomiary dotyczące wymiarów poziomych zębodołu.
Podczas wewnątrzustnego badania skaningowego pomiary mezjalno-dystalne będą mierzone od mezjalnego grzebienia kości do dystalnego grzebienia kostnego, a pomiary policzkowo-językowe w najbardziej centralnej części zębodołu.
|
Wartość wyjściowa, przedoperacyjna, 3 i 6 miesięcy
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Odległość międzyzębowa
Ramy czasowe: Wartość wyjściowa, przedoperacyjna, 3 i 6 miesięcy
|
W tomografii komputerowej i skanowaniu wewnątrzustnym odległość pozioma będzie mierzona z granicą przyśrodkowej i dystalnej grzebienia kości wyrostka zębodołowego przed operacją, gdy ząb jest nadal na miejscu, 3 i 6 miesięcy po ekstrakcji, w celu sprawdzenia utrzymania przestrzeni międzyzębowej.
|
Wartość wyjściowa, przedoperacyjna, 3 i 6 miesięcy
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Śledczy
- Główny śledczy: Vanessa Dalapria, University of Nove de Julho
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Schropp L, Wenzel A, Kostopoulos L, Karring T. Bone healing and soft tissue contour changes following single-tooth extraction: a clinical and radiographic 12-month prospective study. Int J Periodontics Restorative Dent. 2003 Aug;23(4):313-23.
- Van der Weijden F, Dell'Acqua F, Slot DE. Alveolar bone dimensional changes of post-extraction sockets in humans: a systematic review. J Clin Periodontol. 2009 Dec;36(12):1048-58. doi: 10.1111/j.1600-051X.2009.01482.x.
- Osburn RC. Preservation of the alveolar ridge: a simplified technique for retaining teeth beneath removable appliances. J Indiana State Dent Assoc. 1974 Jan-Feb;53(1):8-11. No abstract available.
- Artzi Z, Nemcovsky CE. The application of deproteinized bovine bone mineral for ridge preservation prior to implantation. Clinical and histological observations in a case report. J Periodontol. 1998 Sep;69(9):1062-7. doi: 10.1902/jop.1998.69.9.1062.
- Artzi Z, Weinreb M, Givol N, Rohrer MD, Nemcovsky CE, Prasad HS, Tal H. Biomaterial resorption rate and healing site morphology of inorganic bovine bone and beta-tricalcium phosphate in the canine: a 24-month longitudinal histologic study and morphometric analysis. Int J Oral Maxillofac Implants. 2004 May-Jun;19(3):357-68.
- Chappuis V, Araujo MG, Buser D. Clinical relevance of dimensional bone and soft tissue alterations post-extraction in esthetic sites. Periodontol 2000. 2017 Feb;73(1):73-83. doi: 10.1111/prd.12167.
- Araujo MG, da Silva JCC, de Mendonca AF, Lindhe J. Ridge alterations following grafting of fresh extraction sockets in man. A randomized clinical trial. Clin Oral Implants Res. 2015 Apr;26(4):407-412. doi: 10.1111/clr.12366. Epub 2014 Mar 12.
- Avila-Ortiz G, Elangovan S, Kramer KW, Blanchette D, Dawson DV. Effect of alveolar ridge preservation after tooth extraction: a systematic review and meta-analysis. J Dent Res. 2014 Oct;93(10):950-8. doi: 10.1177/0022034514541127. Epub 2014 Jun 25.
- Ngeow WC, Lim D. Do Corticosteroids Still Have a Role in the Management of Third Molar Surgery? Adv Ther. 2016 Jul;33(7):1105-39. doi: 10.1007/s12325-016-0357-y. Epub 2016 Jun 10.
- Rola P, Doroszko A, Derkacz A. The Use of Low-Level Energy Laser Radiation in Basic and Clinical Research. Adv Clin Exp Med. 2014 September-October;23(5):835-842. doi: 10.17219/acem/37263.
- Petersen PE. The World Oral Health Report 2003: continuous improvement of oral health in the 21st century--the approach of the WHO Global Oral Health Programme. Community Dent Oral Epidemiol. 2003 Dec;31 Suppl 1:3-23. doi: 10.1046/j..2003.com122.x.
- De Marchi RJ, Hugo FN, Hilgert JB, Padilha DM. Association between oral health status and nutritional status in south Brazilian independent-living older people. Nutrition. 2008 Jun;24(6):546-53. doi: 10.1016/j.nut.2008.01.054.
- Rezaie M, Ghapanchi J, Haghnegahdar A, Khojastehpour L, Khorshidi H, Heidari H. A Radiographic Evaluation of Missing of Permanent First Molars in a Group of Iranian Children and Adults: A Retrospective Study. Int J Dent. 2018 Apr 1;2018:5253965. doi: 10.1155/2018/5253965. eCollection 2018.
- Saber AM, Altoukhi DH, Horaib MF, El-Housseiny AA, Alamoudi NM, Sabbagh HJ. Consequences of early extraction of compromised first permanent molar: a systematic review. BMC Oral Health. 2018 Apr 5;18(1):59. doi: 10.1186/s12903-018-0516-4.
- Alkhadra T. A Systematic Review of the Consequences of Early Extraction of First Permanent First Molar in Different Mixed Dentition Stages. J Int Soc Prev Community Dent. 2017 Sep-Oct;7(5):223-226. doi: 10.4103/jispcd.JISPCD_222_17. Epub 2017 Sep 18.
- Barone A, Aldini NN, Fini M, Giardino R, Calvo Guirado JL, Covani U. Xenograft versus extraction alone for ridge preservation after tooth removal: a clinical and histomorphometric study. J Periodontol. 2008 Aug;79(8):1370-7. doi: 10.1902/jop.2008.070628.
- Araujo MG, Lindhe J. Ridge preservation with the use of Bio-Oss collagen: A 6-month study in the dog. Clin Oral Implants Res. 2009 May;20(5):433-40. doi: 10.1111/j.1600-0501.2009.01705.x.
- Araujo MG, Sukekava F, Wennstrom JL, Lindhe J. Ridge alterations following implant placement in fresh extraction sockets: an experimental study in the dog. J Clin Periodontol. 2005 Jun;32(6):645-52. doi: 10.1111/j.1600-051X.2005.00726.x.
- PELTIER LF. The use of plaster of Paris to fill defects in bone. Clin Orthop. 1961;21:1-31. No abstract available.
- Faour O, Dimitriou R, Cousins CA, Giannoudis PV. The use of bone graft substitutes in large cancellous voids: any specific needs? Injury. 2011 Sep;42 Suppl 2:S87-90. doi: 10.1016/j.injury.2011.06.020. Epub 2011 Jul 2.
- Misch CE, Perez HM. Atraumatic extractions: a biomechanical rationale. Dent Today. 2008 Aug;27(8):98, 100-1.
- Saito S, Shimizu N. Stimulatory effects of low-power laser irradiation on bone regeneration in midpalatal suture during expansion in the rat. Am J Orthod Dentofacial Orthop. 1997 May;111(5):525-32. doi: 10.1016/s0889-5406(97)70152-5.
- LeGeros RZ. Calcium phosphate materials in restorative dentistry: a review. Adv Dent Res. 1988 Aug;2(1):164-80. doi: 10.1177/08959374880020011101. No abstract available.
- Salama R, Burwell RD, Dickson IR. Recombined grafts of bone and marrow. The beneficial effect upon osteogenesis of impregnating xenograft (heterograft) bone with autologous red marrow. J Bone Joint Surg Br. 1973 May;55(2):402-17. No abstract available.
- Hoexter DL. Bone regeneration graft materials. J Oral Implantol. 2002;28(6):290-4. doi: 10.1563/1548-1336(2002)0282.3.CO;2.
- Landsberg CJ. Implementing socket seal surgery as a socket preservation technique for pontic site development: surgical steps revisited--a report of two cases. J Periodontol. 2008 May;79(5):945-54. doi: 10.1902/jop.2008.070298.
- Nemcovsky CE, Artzi Z, Moses O. Rotated palatal flap in immediate implant procedures. Clinical evaluation of 26 consecutive cases. Clin Oral Implants Res. 2000 Feb;11(1):83-90. doi: 10.1034/j.1600-0501.2000.011001083.x.
- Sclar AG. Strategies for management of single-tooth extraction sites in aesthetic implant therapy. J Oral Maxillofac Surg. 2004 Sep;62(9 Suppl 2):90-105. doi: 10.1016/j.joms.2004.06.041. Erratum In: J Oral Maxillofac Surg. 2005 Jan;63(1):158.
- Iasella JM, Greenwell H, Miller RL, Hill M, Drisko C, Bohra AA, Scheetz JP. Ridge preservation with freeze-dried bone allograft and a collagen membrane compared to extraction alone for implant site development: a clinical and histologic study in humans. J Periodontol. 2003 Jul;74(7):990-9. doi: 10.1902/jop.2003.74.7.990.
- Jung RE, Siegenthaler DW, Hammerle CH. Postextraction tissue management: a soft tissue punch technique. Int J Periodontics Restorative Dent. 2004 Dec;24(6):545-53.
- Davies N, Dobner S, Bezuidenhout D, Schmidt C, Beck M, Zisch AH, Zilla P. The dosage dependence of VEGF stimulation on scaffold neovascularisation. Biomaterials. 2008 Sep;29(26):3531-8. doi: 10.1016/j.biomaterials.2008.05.007. Epub 2008 Jun 9.
- Araujo MG, Lindhe J. Socket grafting with the use of autologous bone: an experimental study in the dog. Clin Oral Implants Res. 2011 Jan;22(1):9-13. doi: 10.1111/j.1600-0501.2010.01937.x. Epub 2010 Nov 22.
- Holtrop ME, Cox KA, Glowacki J. Cells of the mononuclear phagocytic system resorb implanted bone matrix: a histologic and ultrastructural study. Calcif Tissue Int. 1982 Sep;34(5):488-94. doi: 10.1007/BF02411290.
- Chappard D, Guillaume B, Mallet R, Pascaretti-Grizon F, Basle MF, Libouban H. Sinus lift augmentation and beta-TCP: a microCT and histologic analysis on human bone biopsies. Micron. 2010 Jun;41(4):321-6. doi: 10.1016/j.micron.2009.12.005. Epub 2009 Dec 22.
- Fickl S, Fischer K, Petersen N, Happe A, Schlee M, Schlagenhauf U, Kebschull M. Dimensional Evaluation of Different Ridge Preservation Techniques: A Randomized Clinical Study. Int J Periodontics Restorative Dent. 2017 May/Jun;37(3):403-410. doi: 10.11607/prd.2629.
- Pasqualini D, Cocero N, Castella A, Mela L, Bracco P. Primary and secondary closure of the surgical wound after removal of impacted mandibular third molars: a comparative study. Int J Oral Maxillofac Surg. 2005 Jan;34(1):52-7. doi: 10.1016/j.ijom.2004.01.023.
- Wood DL, Hoag PM, Donnenfeld OW, Rosenfeld LD. Alveolar crest reduction following full and partial thickness flaps. J Periodontol. 1972 Mar;43(3):141-4. doi: 10.1902/jop.1972.43.3.141. No abstract available.
- Baxendale BR, Vater M, Lavery KM. Dexamethasone reduces pain and swelling following extraction of third molar teeth. Anaesthesia. 1993 Nov;48(11):961-4. doi: 10.1111/j.1365-2044.1993.tb07474.x.
- Tavares MG, Machado AP, Motta BG, Borsatto MC, Rosa AL, Xavier SP. Electro-acupuncture efficacy on pain control after mandibular third molar surgery. Braz Dent J. 2007;18(2):158-62. doi: 10.1590/s0103-64402007000200014.
- Seymour RA, Hawkesford JE, Weldon M, Brewster D. An evaluation of different ibuprofen preparations in the control of postoperative pain after third molar surgery. Br J Clin Pharmacol. 1991 Jan;31(1):83-7. doi: 10.1111/j.1365-2125.1991.tb03861.x.
- Merigo E, Vescovi P, Margalit M, Ricotti E, Stea S, Meleti M, Manfredi M, Fornaini C. Efficacy of LLLT in swelling and pain control after the extraction of lower impacted third molars. Laser Ther. 2015 Mar 31;24(1):39-46. doi: 10.5978/islsm.15-OR-05.
- Kathuria V, Dhillon JK, Kalra G. Low Level Laser Therapy: A Panacea for oral maladies. Laser Ther. 2015 Oct 2;24(3):215-23. doi: 10.5978/islsm.15-RA-01.
- Pandeshwar P, Roa MD, Das R, Shastry SP, Kaul R, Srinivasreddy MB. Photobiomodulation in oral medicine: a review. J Investig Clin Dent. 2016 May;7(2):114-26. doi: 10.1111/jicd.12148. Epub 2015 Feb 26.
- Chung H, Dai T, Sharma SK, Huang YY, Carroll JD, Hamblin MR. The nuts and bolts of low-level laser (light) therapy. Ann Biomed Eng. 2012 Feb;40(2):516-33. doi: 10.1007/s10439-011-0454-7. Epub 2011 Nov 2.
- Karu TI. [Molecular mechanism of the therapeutic effect of low-intensity laser irradiation]. Dokl Akad Nauk SSSR. 1986;291(5):1245-9. No abstract available. Russian.
- Basford JR. Low-energy laser therapy: controversies and new research findings. Lasers Surg Med. 1989;9(1):1-5. doi: 10.1002/lsm.1900090103. No abstract available.
- Basford JR. Low intensity laser therapy: still not an established clinical tool. Lasers Surg Med. 1995;16(4):331-42. doi: 10.1002/lsm.1900160404.
- Nicola JH, Nicola EM. Wavelength, frequency, and color: absolute or relative concepts? J Clin Laser Med Surg. 2002 Dec;20(6):307-11. doi: 10.1089/104454702320901080.
- AboElsaad NS, Soory M, Gadalla LM, Ragab LI, Dunne S, Zalata KR, Louca C. Effect of soft laser and bioactive glass on bone regeneration in the treatment of infra-bony defects (a clinical study). Lasers Med Sci. 2009 May;24(3):387-95. doi: 10.1007/s10103-008-0576-9. Epub 2008 Jun 26.
- Cavalcanti TM, Almeida-Barros RQ, Catao MH, Feitosa AP, Lins RD. Knowledge of the physical properties and interaction of laser with biological tissue in dentistry. An Bras Dermatol. 2011 Sep-Oct;86(5):955-60. doi: 10.1590/s0365-05962011000500014. English, Portuguese.
- Romao MM, Marques MM, Cortes AR, Horliana AC, Moreira MS, Lascala CA. Micro-computed tomography and histomorphometric analysis of human alveolar bone repair induced by laser phototherapy: a pilot study. Int J Oral Maxillofac Surg. 2015 Dec;44(12):1521-8. doi: 10.1016/j.ijom.2015.08.989. Epub 2015 Sep 14.
- Huang YY, Chen AC, Carroll JD, Hamblin MR. Biphasic dose response in low level light therapy. Dose Response. 2009 Sep 1;7(4):358-83. doi: 10.2203/dose-response.09-027.Hamblin.
- Karu TI, Kolyakov SF. Exact action spectra for cellular responses relevant to phototherapy. Photomed Laser Surg. 2005 Aug;23(4):355-61. doi: 10.1089/pho.2005.23.355.
- Casado PL, Duarte ME, Carvalho W, Esmeraldo da Silva L, Barboza EP. Ridge bone maintenance in human after extraction. Implant Dent. 2010 Aug;19(4):314-22. doi: 10.1097/ID.0b013e3181dec322.
- Liu X, Lyon R, Meier HT, Thometz J, Haworth ST. Effect of lower-level laser therapy on rabbit tibial fracture. Photomed Laser Surg. 2007 Dec;25(6):487-94. doi: 10.1089/pho.2006.2075.
- Renno AC, McDonnell PA, Parizotto NA, Laakso EL. The effects of laser irradiation on osteoblast and osteosarcoma cell proliferation and differentiation in vitro. Photomed Laser Surg. 2007 Aug;25(4):275-80. doi: 10.1089/pho.2007.2055.
- Silveira PC, Silva LA, Freitas TP, Latini A, Pinho RA. Effects of low-power laser irradiation (LPLI) at different wavelengths and doses on oxidative stress and fibrogenesis parameters in an animal model of wound healing. Lasers Med Sci. 2011 Jan;26(1):125-31. doi: 10.1007/s10103-010-0839-0. Epub 2010 Sep 24.
- Brignardello-Petersen R, Carrasco-Labra A, Araya I, Yanine N, Beyene J, Shah PS. Is adjuvant laser therapy effective for preventing pain, swelling, and trismus after surgical removal of impacted mandibular third molars? A systematic review and meta-analysis. J Oral Maxillofac Surg. 2012 Aug;70(8):1789-801. doi: 10.1016/j.joms.2012.01.008. Epub 2012 Mar 6.
- Kornman KS, Robertson PB. Fundamental principles affecting the outcomes of therapy for osseous lesions. Periodontol 2000. 2000 Feb;22:22-43. doi: 10.1034/j.1600-0757.2000.2220103.x. No abstract available.
- Pogrel MA, Chen JW, Zhang K. Effects of low-energy gallium-aluminum-arsenide laser irradiation on cultured fibroblasts and keratinocytes. Lasers Surg Med. 1997;20(4):426-32. doi: 10.1002/(sici)1096-9101(1997)20:43.0.co;2-s.
- Lirani-Galvao AP, Jorgetti V, da Silva OL. Comparative study of how low-level laser therapy and low-intensity pulsed ultrasound affect bone repair in rats. Photomed Laser Surg. 2006 Dec;24(6):735-40. doi: 10.1089/pho.2006.24.735.
- Barbos Pinheiro AL, Limeira Junior Fde A, Marquez Gerbi ME, Pedreira Ramalho LM, Marzola C, Carneiro Ponzi EA, Oliveira Soares A, Bandeira De Carvalho LC, Vieira Lima HC, Oliveira Goncalves T. Effect of 830-nm laser light on the repair of bone defects grafted with inorganic bovine bone and decalcified cortical osseous membrane. J Clin Laser Med Surg. 2003 Dec;21(6):383-8. doi: 10.1089/104454703322650202.
- Gerbi ME, Marques AM, Ramalho LM, Ponzi EA, Carvalho CM, Santos Rde C, Oliveira PC, Noia M, Pinheiro AL. Infrared laser light further improves bone healing when associated with bone morphogenic proteins: an in vivo study in a rodent model. Photomed Laser Surg. 2008 Feb;26(1):55-60. doi: 10.1089/pho.2007.2026.
- Lopes CB, Pacheco MT, Silveira L Jr, Duarte J, Cangussu MC, Pinheiro AL. The effect of the association of NIR laser therapy BMPs, and guided bone regeneration on tibial fractures treated with wire osteosynthesis: Raman spectroscopy study. J Photochem Photobiol B. 2007 Dec 14;89(2-3):125-30. doi: 10.1016/j.jphotobiol.2007.09.011. Epub 2007 Oct 1.
- Rochkind S, Kogan G, Luger EG, Salame K, Karp E, Graif M, Weiss J. Molecular structure of the bony tissue after experimental trauma to the mandibular region followed by laser therapy. Photomed Laser Surg. 2004 Jun;22(3):249-53. doi: 10.1089/1549541041438579.
- Coombe AR, Ho CT, Darendeliler MA, Hunter N, Philips JR, Chapple CC, Yum LW. The effects of low level laser irradiation on osteoblastic cells. Clin Orthod Res. 2001 Feb;4(1):3-14. doi: 10.1034/j.1600-0544.2001.040102.x.
- Ninomiya T, Miyamoto Y, Ito T, Yamashita A, Wakita M, Nishisaka T. High-intensity pulsed laser irradiation accelerates bone formation in metaphyseal trabecular bone in rat femur. J Bone Miner Metab. 2003;21(2):67-73. doi: 10.1007/s007740300011.
- Dalapria V, Marcos RL, Bussadori SK, Anselmo G, Benetti C, da Silva Santana ACA, Marinho NSR, Pinto RS, de Sales RS, de Franca LS, Deana AM. LED photobiomodulation therapy combined with biomaterial as a scaffold promotes better bone quality in the dental alveolus in an experimental extraction model. Lasers Med Sci. 2022 Apr;37(3):1583-1592. doi: 10.1007/s10103-021-03407-w. Epub 2021 Nov 12.
- Obradovic RR, Kesic LG, Pesevska S. Influence of low-level laser therapy on biomaterial osseointegration: a mini-review. Lasers Med Sci. 2009 May;24(3):447-51. doi: 10.1007/s10103-008-0573-z. Epub 2008 Jun 20.
- Rosero KAV, Sampaio RMF, Deboni MCZ, Correa L, Marques MM, Ferraz EP, da Graca Naclerio-Homem M. Photobiomodulation as an adjunctive therapy for alveolar socket preservation: a preliminary study in humans. Lasers Med Sci. 2020 Oct;35(8):1711-1720. doi: 10.1007/s10103-020-02962-y. Epub 2020 Jan 22.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Rzeczywisty)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Szacowany)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Inne numery identyfikacyjne badania
- Vanessa 1
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
produkt wyprodukowany i wyeksportowany z USA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .