- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT06779968
Analgezja multimodalna a blokada nerwów obwodowych w leczeniu bólu pooperacyjnego po operacji urazu kończyny dolnej
Analgezja multimodalna a blokada nerwów obwodowych w leczeniu bólu pooperacyjnego po operacji urazu kończyny dolnej: randomizowane badanie kontrolowane
Przegląd badań
Status
Warunki
Szczegółowy opis
Projekt badania: Badanie to było prospektywnym, randomizowanym, kontrolowanym, porównawczym badaniem klinicznym, w którym zaślepiono zarówno uczestnika, jak i klinicystę. Badanie to zaprojektowano w celu oceny wyższości i równoważności różnych metod leczenia przeciwbólowego w leczeniu bólu pooperacyjnego po operacji kończyny dolnej. W badaniu oceniano skuteczność blokady nerwu udowego, łączonej blokady nerwu kulszowego i udowego, blokady splotu lędźwiowego, znieczulenia zewnątrzoponowego i dożylnego znieczulenia kontrolowanego przez pacjenta u pacjentów poddawanych zabiegom takim jak całkowita alloplastyka stawu kolanowego, artroskopia kolana, naprawa złamania rzepki i operacja kości udowej u dzieci. naprawa pęknięć wału. Uczestnicy byli rekrutowani ze szpitala Baogang w Mongolii Wewnętrznej. Badanie to uzyskało zgodę Komisji Etyki Lekarskiej Szpitala Baogang w Mongolii Wewnętrznej i zostało przeprowadzone zgodnie z zasadami Deklaracji Helsińskiej oraz wytycznymi Consolidated Standards of Reporting Trials (CONSORT). Wszyscy uczestnicy wyrazili świadomą pisemną zgodę.
Pacjenci: W okresie od lutego 2025 r. do maja 2025 r. do badania włączono łącznie 150 pacjentów, sklasyfikowanych według stanu fizycznego I, II lub III Amerykańskiego Towarzystwa Anestezjologów (ASA) w wieku 2 lat lub starszych, poddawanych analgezji pooperacyjnej z powodu urazów kończyn dolnych. Uczestnicy zostali losowo przydzieleni do jednej z pięciu grup badawczych, po 30 uczestników w każdej grupie.
Randomizacja i zaślepianie: w tym badaniu zastosowano randomizację blokową w celu wygenerowania sekwencji losowej alokacji. Ustawiono rozmiar bloku 6, a następnie wygenerowano losową sekwencję za pomocą dedykowanego oprogramowania (pakiet blockrand w wersji R 4.3.2). Przydziału losowej sekwencji dokonała niezależna strona trzecia, a ukrycie przydziału przeprowadzono przy użyciu kolejno numerowanych, zapieczętowanych i nieprzezroczystych kopert. Zespół badawczy pozostawał zaślepiony przez cały proces randomizacji i nie był zaangażowany w generowanie ani przydzielanie sekwencji losowej.
Interwencja: Po przybyciu na salę operacyjną pacjenci będą monitorowani za pomocą elektrokardiografii, ciśnienia krwi i pulsoksymetrii. Pacjenci zostaną ułożeni w pozycji na brzuchu z ramionami odwiedzionymi i rotowanymi do wewnątrz. Pod kontrolą USG będą stosowane wszystkie procedury znieczulenia przewodowego (SonoSite Edge II; Fujifilm SonoSite, Bothell, WA, USA) z liniową sondą ultradźwiękową 13-6 MHz (HFL50x; Fujifilm SonoSite, Bothell, WA, USA). Dla każdego bloku początkowo zostanie wstrzyknięta dawka testowa 5 ml, a następnie nastąpi obserwacja pod kątem objawów klinicznych udanej blokady. Po potwierdzeniu prawidłowego ułożenia zostanie wstrzyknięta pozostała dawka środka znieczulającego. Po podaniu znieczulenia przewodowego zostanie wykonane znieczulenie ogólne z intubacją dotchawiczą. Indukcję znieczulenia można uzyskać za pomocą propofolu (1,5–2 mg/kg dożylnie), rokuronium (1–2 mg/kg dożylnie) i fentanylu (1–2 μg/kg dożylnie). Znieczulenie będzie podtrzymywane przy użyciu sewofluranu lub desfluranu, a stężenie wziewnego korygowane będzie na podstawie monitorowania wskaźnika Bispectral Index (BIS). Zostanie podany ciągły wlew remifentanylu (0,05–0,2 μg/kg/min), z korektą w celu utrzymania ciśnienia krwi i częstości akcji serca w zakresie ±20% wartości wyjściowych. Po indukcji pacjenci będą wentylowani mechanicznie w trybie kontroli objętości regulowanej ciśnieniem (PRVC). Ustawienia respiratora (Aestiva; GE Healthcare, Waukesha, Wisconsin, USA) będą następujące: objętość oddechowa 6-8 ml/kg, dodatnie ciśnienie końcowo-wydechowe 0 cm H2O, stosunek wdechu do wydechu 1:2, częstość oddechów 16 oddechów na minutę (BPM) i frakcja wdychanego tlenu 41%.
Grupa z blokadą nerwu udowego (FNB): W grupie z blokadą nerwu udowego (FNB) nerw udowy został zablokowany dystalnie od więzadła pachwinowego i bocznie od tętnicy udowej. W sterylnych warunkach i pod kontrolą USG, stosując podejście pozapłaszczyznowe w krótkiej osi, izolowaną igłę nr 22 wprowadzono w pobliże nerwu udowego. Po potwierdzeniu prawidłowego umieszczenia końcówki igły wstrzyknięto 20 ml 266 mg bupiwakainy liposomalnej (rozcieńczonej zgodnie ze wskazaniami) lub 0,2% ropiwakainy. Następnie wykonywano ciągły wlew z szybkością 5-10 ml/godz. Dzieciom i młodzieży podawano ciągły wlew 0,2% ropiwakainy w początkowym bolusie 0,2–0,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3 mg/kg/godz.
Grupa połączonej blokady nerwu kulszowego i udowego (CS-FNB): W grupie połączonej blokady nerwu kulszowego i udowego (CS-FNB), blokadę nerwu udowego przeprowadzono w sposób opisany powyżej. Blokadę nerwu kulszowego przeprowadzono w okolicy pośladkowej lub w dole podkolanowym. W sterylnych warunkach i pod kontrolą USG, z dostępu w płaszczyźnie lub poza płaszczyzną, wprowadzono izolowaną igłę nr 22 w sąsiedztwie nerwu kulszowego. Po potwierdzeniu prawidłowego umieszczenia końcówki igły wstrzyknięto 20 ml 266 mg bupiwakainy liposomalnej (rozcieńczonej zgodnie ze wskazaniami) lub 0,2% ropiwakainy. Następnie wykonywano ciągły wlew z szybkością 5-10 ml/godz. Dzieciom i młodzieży podawano ciągły wlew 0,2% ropiwakainy w początkowym bolusie 0,2–0,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3 mg/kg/godz.
Grupa z blokadą splotu lędźwiowego (LPB): W grupie z blokadą splotu lędźwiowego (LPB) splot lędźwiowy został zablokowany w kierunku przykręgosłupowym w obrębie mięśnia lędźwiowego. W sterylnych warunkach, pod kontrolą USG lub przy pomocy stymulatora nerwów, z dostępu w płaszczyźnie lub poza płaszczyzną, wprowadzono izolowaną igłę nr 22 w obrębie mięśnia lędźwiowego przylegającego do splotu lędźwiowego. Po potwierdzeniu prawidłowego umieszczenia końcówki igły wstrzyknięto 20 ml 266 mg bupiwakainy liposomalnej (rozcieńczonej zgodnie ze wskazaniami) lub 0,2% ropiwakainy. Następnie wykonywano ciągły wlew z szybkością 5-10 ml/godz. Dzieciom i młodzieży podawano ciągły wlew 0,2% ropiwakainy w początkowym bolusie 0,2–0,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3 mg/kg/godz.
Znieczulenie zewnątrzoponowe: W celu znieczulenia zewnątrzoponowego podano początkowy bolus 5–15 ml 0,5% ropiwakainy, a następnie ciągły wlew 0,2% ropiwakainy z szybkością 3–10 ml/godz. Dzieciom i młodzieży podano początkowy bolus 0,2% ropiwakainy w dawce 0,5–1 mg/kg, nie przekraczający maksymalnej dawki całkowitej wynoszącej 2–2,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3 mg/kg mc. mg/kg/godz.
Dożylna analgezja kontrolowana przez pacjenta (PCA): W przypadku dożylnej analgezji kontrolowanej przez pacjenta (PCA) podawano fentanyl w dawce 2 mcg/kg, rozcieńczony w 100 ml soli fizjologicznej. Podstawową szybkość infuzji ustawiono na 2 ml/godz., z dawką PCA na 2 ml i przerwą blokującą wynoszącą 15 minut.
Wyniki i środki: Opieką nad uczestnikami na oddziale zajmowały się dwie specjalnie przeszkolone pielęgniarki badawcze, które nie wiedziały, jakie zadania przydzielono uczestnikom do grup terapeutycznych. Ocenę wyników przeprowadzono w następujących punktach czasowych: przed leczeniem (wartość wyjściowa), 2 godziny po operacji, 6 godzin po operacji, 12 godzin po operacji i 24 godziny po operacji. Oceny tej dokonano osobiście lub telefonicznie.
Typ studiów
Zapisy (Szacowany)
Faza
- Nie dotyczy
Kontakty i lokalizacje
Kontakt w sprawie studiów
- Nazwa: Xiaguang Duan, Master's degree
- Numer telefonu: +86 13314720012
- E-mail: alonlord2023@gmail.com
Lokalizacje studiów
-
-
Inner Mongolia
-
Baotou, Inner Mongolia, Chiny, 014010
- Inner Mongolia Baogang Hospital
-
Kontakt:
- Xiangyu Wang, Master's degree
- Numer telefonu: +86 0472 5992830
- E-mail: KevinDuan0901@gmail.com
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
- Dziecko
- Dorosły
- Starszy dorosły
Akceptuje zdrowych ochotników
Opis
Kryteria włączenia:
- Klasyfikacja stanu fizycznego I-III Amerykańskiego Towarzystwa Anestezjologów (ASA).
- Pacjenci (lub ich opiekunowie) dobrowolnie uczestniczą w tym badaniu i podpisują pisemny formularz świadomej zgody
- Pacjenci (lub ich opiekunowie) są w stanie zrozumieć treść badania i współpracować z protokołem badania
Kryteria wykluczenia:
- Znana alergia na miejscowe środki znieczulające lub opioidowe leki przeciwbólowe.
- Obecność przeciwwskazań do znieczulenia miejscowego lub zewnątrzoponowego.
- Obecność niezdiagnozowanego lub słabo scharakteryzowanego bólu neuropatycznego.
- Obecność ciężkiej choroby psychicznej, która utrudniałaby zdolność uczestnika do współpracy przy ocenie badania i procedurach leczenia.
- Klinicznie istotna koagulopatia lub aktualne stosowanie leków przeciwzakrzepowych.
- Obecność infekcji w miejscu planowanego nakłucia lub infekcji ogólnoustrojowej.
- Ciąża lub laktacja.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Poczwórny
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Grupa FNB
W grupie, w której zastosowano blokadę nerwu udowego (FNB), nerw udowy został zablokowany dystalnie od więzadła pachwinowego i bocznie od tętnicy udowej.
W sterylnych warunkach i pod kontrolą USG, stosując podejście pozapłaszczyznowe w krótkiej osi, izolowaną igłę nr 22 wprowadzono w pobliże nerwu udowego.
Po potwierdzeniu prawidłowego umieszczenia końcówki igły wstrzyknięto 20 ml 266 mg bupiwakainy liposomalnej (rozcieńczonej zgodnie ze wskazaniami) lub 0,2% ropiwakainy.
Następnie wykonywano ciągły wlew z szybkością 5-10 ml/godz.
Dzieciom i młodzieży podawano ciągły wlew 0,2% ropiwakainy w początkowym bolusie 0,2–0,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3
mg/kg/godz.
|
W grupie, w której zastosowano blokadę nerwu udowego (FNB), nerw udowy został zablokowany dystalnie od więzadła pachwinowego i bocznie od tętnicy udowej.
W sterylnych warunkach i pod kontrolą USG, stosując podejście pozapłaszczyznowe w krótkiej osi, izolowaną igłę nr 22 wprowadzono w pobliże nerwu udowego.
Po potwierdzeniu prawidłowego umieszczenia końcówki igły wstrzyknięto 20 ml 266 mg bupiwakainy liposomalnej (rozcieńczonej zgodnie ze wskazaniami) lub 0,2% ropiwakainy.
Następnie wykonywano ciągły wlew z szybkością 5-10 ml/godz.
Dzieciom i młodzieży podawano ciągły wlew 0,2% ropiwakainy w początkowym bolusie 0,2–0,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3
mg/kg/godz.
Po podaniu znieczulenia przewodowego zostanie wykonane znieczulenie ogólne z intubacją dotchawiczą.
Indukcję znieczulenia można uzyskać za pomocą propofolu (1,5–2 mg/kg dożylnie), rokuronium (1–2 mg/kg dożylnie) i fentanylu (1–2 μg/kg dożylnie).
Znieczulenie będzie podtrzymywane przy użyciu sewofluranu lub desfluranu, a stężenie wziewnego korygowane będzie na podstawie monitorowania wskaźnika Bispectral Index (BIS).
Zostanie podany ciągły wlew remifentanylu (0,05–0,2 μg/kg/min), z korektą w celu utrzymania ciśnienia krwi i częstości akcji serca w zakresie ±20% wartości wyjściowych.
Po indukcji pacjenci będą wentylowani mechanicznie w trybie kontroli objętości regulowanej ciśnieniem (PRVC).
Ustawienia respiratora (Aestiva; GE Healthcare, Waukesha, Wisconsin, USA) będą następujące: objętość oddechowa 6-8 ml/kg, dodatnie ciśnienie końcowo-wydechowe 0 cm H2O, stosunek wdechu do wydechu 1:2, częstość oddechów 16 oddechów na minutę (BPM) i frakcja wdychanego tlenu 41%.
|
|
Eksperymentalny: Grupa CS-FNB
W grupie, której poddano łączną blokadę nerwu kulszowego i udowego (CS-FNB), blokadę nerwu udowego przeprowadzono w sposób opisany powyżej.
Blokadę nerwu kulszowego przeprowadzono w okolicy pośladkowej lub w dole podkolanowym.
W sterylnych warunkach i pod kontrolą USG, z dostępu w płaszczyźnie lub poza płaszczyzną, wprowadzono izolowaną igłę nr 22 w sąsiedztwie nerwu kulszowego.
Po potwierdzeniu prawidłowego umieszczenia końcówki igły wstrzyknięto 20 ml 266 mg bupiwakainy liposomalnej (rozcieńczonej zgodnie ze wskazaniami) lub 0,2% ropiwakainy.
Następnie wykonywano ciągły wlew z szybkością 5-10 ml/godz.
Dzieciom i młodzieży podawano ciągły wlew 0,2% ropiwakainy w początkowym bolusie 0,2–0,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3
mg/kg/godz.
|
Po podaniu znieczulenia przewodowego zostanie wykonane znieczulenie ogólne z intubacją dotchawiczą.
Indukcję znieczulenia można uzyskać za pomocą propofolu (1,5–2 mg/kg dożylnie), rokuronium (1–2 mg/kg dożylnie) i fentanylu (1–2 μg/kg dożylnie).
Znieczulenie będzie podtrzymywane przy użyciu sewofluranu lub desfluranu, a stężenie wziewnego korygowane będzie na podstawie monitorowania wskaźnika Bispectral Index (BIS).
Zostanie podany ciągły wlew remifentanylu (0,05–0,2 μg/kg/min), z korektą w celu utrzymania ciśnienia krwi i częstości akcji serca w zakresie ±20% wartości wyjściowych.
Po indukcji pacjenci będą wentylowani mechanicznie w trybie kontroli objętości regulowanej ciśnieniem (PRVC).
Ustawienia respiratora (Aestiva; GE Healthcare, Waukesha, Wisconsin, USA) będą następujące: objętość oddechowa 6-8 ml/kg, dodatnie ciśnienie końcowo-wydechowe 0 cm H2O, stosunek wdechu do wydechu 1:2, częstość oddechów 16 oddechów na minutę (BPM) i frakcja wdychanego tlenu 41%.
W grupie, której poddano łączną blokadę nerwu kulszowego i udowego (CS-FNB), blokadę nerwu udowego przeprowadzono w sposób opisany powyżej.
Blokadę nerwu kulszowego przeprowadzono w okolicy pośladkowej lub w dole podkolanowym.
W sterylnych warunkach i pod kontrolą USG, z dostępu w płaszczyźnie lub poza płaszczyzną, wprowadzono izolowaną igłę nr 22 w sąsiedztwie nerwu kulszowego.
Po potwierdzeniu prawidłowego umieszczenia końcówki igły wstrzyknięto 20 ml 266 mg bupiwakainy liposomalnej (rozcieńczonej zgodnie ze wskazaniami) lub 0,2% ropiwakainy.
Następnie wykonywano ciągły wlew z szybkością 5-10 ml/godz.
Dzieciom i młodzieży podawano ciągły wlew 0,2% ropiwakainy w początkowym bolusie 0,2–0,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3
mg/kg/godz.
|
|
Eksperymentalny: Grupa LPB
W grupie z blokadą splotu lędźwiowego (LPB) splot lędźwiowy został zablokowany przykręgowo w obrębie mięśnia lędźwiowego.
W sterylnych warunkach, pod kontrolą USG lub przy pomocy stymulatora nerwów, z dostępu w płaszczyźnie lub poza płaszczyzną, wprowadzono izolowaną igłę nr 22 w obrębie mięśnia lędźwiowego przylegającego do splotu lędźwiowego.
Po potwierdzeniu prawidłowego umieszczenia końcówki igły wstrzyknięto 20 ml 266 mg bupiwakainy liposomalnej (rozcieńczonej zgodnie ze wskazaniami) lub 0,2% ropiwakainy.
Następnie wykonywano ciągły wlew z szybkością 5-10 ml/godz.
Dzieciom i młodzieży podawano ciągły wlew 0,2% ropiwakainy w początkowym bolusie 0,2–0,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3
mg/kg/godz.
|
Po podaniu znieczulenia przewodowego zostanie wykonane znieczulenie ogólne z intubacją dotchawiczą.
Indukcję znieczulenia można uzyskać za pomocą propofolu (1,5–2 mg/kg dożylnie), rokuronium (1–2 mg/kg dożylnie) i fentanylu (1–2 μg/kg dożylnie).
Znieczulenie będzie podtrzymywane przy użyciu sewofluranu lub desfluranu, a stężenie wziewnego korygowane będzie na podstawie monitorowania wskaźnika Bispectral Index (BIS).
Zostanie podany ciągły wlew remifentanylu (0,05–0,2 μg/kg/min), z korektą w celu utrzymania ciśnienia krwi i częstości akcji serca w zakresie ±20% wartości wyjściowych.
Po indukcji pacjenci będą wentylowani mechanicznie w trybie kontroli objętości regulowanej ciśnieniem (PRVC).
Ustawienia respiratora (Aestiva; GE Healthcare, Waukesha, Wisconsin, USA) będą następujące: objętość oddechowa 6-8 ml/kg, dodatnie ciśnienie końcowo-wydechowe 0 cm H2O, stosunek wdechu do wydechu 1:2, częstość oddechów 16 oddechów na minutę (BPM) i frakcja wdychanego tlenu 41%.
W grupie z blokadą splotu lędźwiowego (LPB) splot lędźwiowy został zablokowany przykręgowo w obrębie mięśnia lędźwiowego.
W sterylnych warunkach, pod kontrolą USG lub przy pomocy stymulatora nerwów, z dostępu w płaszczyźnie lub poza płaszczyzną, wprowadzono izolowaną igłę nr 22 w obrębie mięśnia lędźwiowego przylegającego do splotu lędźwiowego.
Po potwierdzeniu prawidłowego umieszczenia końcówki igły wstrzyknięto 20 ml 266 mg bupiwakainy liposomalnej (rozcieńczonej zgodnie ze wskazaniami) lub 0,2% ropiwakainy.
Następnie wykonywano ciągły wlew z szybkością 5-10 ml/godz.
Dzieciom i młodzieży podawano ciągły wlew 0,2% ropiwakainy w początkowym bolusie 0,2–0,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3
mg/kg/godz.
|
|
Aktywny komparator: Grupa EA
W celu znieczulenia zewnątrzoponowego podano początkowy bolus 5–15 ml 0,5% ropiwakainy, a następnie ciągły wlew 0,2% ropiwakainy z szybkością 3–10 ml/godz.
Dzieciom i młodzieży podano początkowy bolus 0,2% ropiwakainy w dawce 0,5–1 mg/kg, nie przekraczający maksymalnej dawki całkowitej wynoszącej 2–2,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3 mg/kg mc.
mg/kg/godz.
|
W celu znieczulenia zewnątrzoponowego podano początkowy bolus 5–15 ml 0,5% ropiwakainy, a następnie ciągły wlew 0,2% ropiwakainy z szybkością 3–10 ml/godz.
Dzieciom i młodzieży podano początkowy bolus 0,2% ropiwakainy w dawce 0,5–1 mg/kg, nie przekraczający maksymalnej dawki całkowitej wynoszącej 2–2,5 mg/kg, a następnie ciągły wlew 0,1–0,3 mg/kg mc.
mg/kg/godz.
|
|
Eksperymentalny: Grupa PCA
W przypadku dożylnej analgezji kontrolowanej przez pacjenta (PCA) podawano fentanyl w dawce 2 mcg/kg, rozcieńczony w 100 ml soli fizjologicznej.
Podstawową szybkość infuzji ustawiono na 2 ml/godz., z dawką PCA na 2 ml i przerwą blokującą wynoszącą 15 minut.
|
Po podaniu znieczulenia przewodowego zostanie wykonane znieczulenie ogólne z intubacją dotchawiczą.
Indukcję znieczulenia można uzyskać za pomocą propofolu (1,5–2 mg/kg dożylnie), rokuronium (1–2 mg/kg dożylnie) i fentanylu (1–2 μg/kg dożylnie).
Znieczulenie będzie podtrzymywane przy użyciu sewofluranu lub desfluranu, a stężenie wziewnego korygowane będzie na podstawie monitorowania wskaźnika Bispectral Index (BIS).
Zostanie podany ciągły wlew remifentanylu (0,05–0,2 μg/kg/min), z korektą w celu utrzymania ciśnienia krwi i częstości akcji serca w zakresie ±20% wartości wyjściowych.
Po indukcji pacjenci będą wentylowani mechanicznie w trybie kontroli objętości regulowanej ciśnieniem (PRVC).
Ustawienia respiratora (Aestiva; GE Healthcare, Waukesha, Wisconsin, USA) będą następujące: objętość oddechowa 6-8 ml/kg, dodatnie ciśnienie końcowo-wydechowe 0 cm H2O, stosunek wdechu do wydechu 1:2, częstość oddechów 16 oddechów na minutę (BPM) i frakcja wdychanego tlenu 41%.
W przypadku dożylnej analgezji kontrolowanej przez pacjenta (PCA) podawano fentanyl w dawce 2 mcg/kg, rozcieńczony w 100 ml soli fizjologicznej.
Podstawową szybkość infuzji ustawiono na 2 ml/godz., z dawką PCA na 2 ml i przerwą blokującą wynoszącą 15 minut.
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Numeryczna skala ocen (NRS)
Ramy czasowe: Na początku leczenia (przed terapią), 2 godziny po leczeniu, 6 godzin po leczeniu, 12 godzin po leczeniu i 24 godziny po leczeniu
|
NRS, Numeryczna Skala Oceny, to system oceny od 0 do 10, gdzie 0 oznacza „brak bólu”, a 10 oznacza najgorszy możliwy ból.
|
Na początku leczenia (przed terapią), 2 godziny po leczeniu, 6 godzin po leczeniu, 12 godzin po leczeniu i 24 godziny po leczeniu
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Pooperacyjne spożycie opioidów
Ramy czasowe: Całkowite zużycie mierzone 24 godziny po zabiegu i 48 godzin po zabiegu.
|
Miernik ten rejestruje całkowitą ilość leków opioidowych (np. fentanylu) spożytych przez pacjenta po operacji.
Łącznie rejestrowane będzie zarówno dożylne (przez PCA), jak i doustne spożycie opioidów.
|
Całkowite zużycie mierzone 24 godziny po zabiegu i 48 godzin po zabiegu.
|
|
Nudności i wymioty pooperacyjne (PONV)
Ramy czasowe: 2 godziny po zabiegu, 6 godzin po zabiegu, 12 godzin po zabiegu i 24 godziny po zabiegu.
|
PONV ocenia się poprzez rejestrację obecności lub braku nudności i wymiotów.
Jeśli występują, nasilenie nudności zostanie ocenione przy użyciu skali jakościowej (np. brak, łagodne, umiarkowane, ciężkie) lub systemu punktacji, takiego jak wynik PONV.
Wystąpienie wymiotów będzie rejestrowane jako zmienna binarna (tak/nie).
|
2 godziny po zabiegu, 6 godzin po zabiegu, 12 godzin po zabiegu i 24 godziny po zabiegu.
|
|
Zadowolenie pacjenta
Ramy czasowe: W ciągu 48 godzin po zabiegu.
|
Zadowolenie pacjentów ze sposobu leczenia bólu ocenia się za pomocą wystandaryzowanego kwestionariusza, który zawiera pytania dotyczące postrzeganego przez nich poziomu kontroli bólu, komfortu stosowania techniki przeciwbólowej oraz chęci ponownego wyboru tej samej metody w przyszłości, mierzonej skalą Likerta. (np.
1=Zdecydowanie się nie zgadzam, 5=Zdecydowanie się zgadzam.
|
W ciągu 48 godzin po zabiegu.
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Szacowany)
Zakończenie podstawowe (Szacowany)
Ukończenie studiów (Szacowany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- 2024-MER-317
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Opis planu IPD
Ramy czasowe udostępniania IPD
Kryteria dostępu do udostępniania IPD
Typ informacji pomocniczych dotyczących udostępniania IPD
- PROTOKÓŁ BADANIA
- SOK ROŚLINNY
- ICF
- CSR
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
produkt wyprodukowany i wyeksportowany z USA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .