- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT07527247
Melhorar a Proteção da Vacina para Adultos Mais Velhos
Utilizando o Adjuvante AS01 para Melhorar a Resposta Imunológica em Adultos Mais Velhos Através da Imunidade Treinada
Isto ficou claramente evidenciado durante a pandemia de COVID-19, em que os adultos mais velhos tinham maior probabilidade de desenvolver doenças graves.
Os investigadores fizeram uma descoberta interessante sobre o AS01, um ingrediente já utilizado em vacinas bem-sucedidas, como a vacina contra o herpes zóster.
Eles encontraram indícios de que o AS01 poderá funcionar como um treinador de fitness geral para o sistema imunitário, potencialmente tornando-o mais forte e mais eficaz no combate a vários tipos de infeções, e não apenas a infeções específicas.
Para confirmar esta possibilidade, estamos a realizar este estudo de investigação com adultos entre os 21 e os 59 anos para testar se o AS01, por si só, pode reforçar e treinar o sistema imunitário, quanto tempo dura este reforço e se realmente ajuda a combater outras infeções de forma mais eficaz.
Visão geral do estudo
Status
Condições
Descrição detalhada
À medida que as pessoas envelhecem, o sistema imunitário torna-se menos responsivo, aumentando a suscetibilidade a infeções e reduzindo a resposta às vacinas. O AS01 é um adjuvante baseado em lipossomas utilizado em vacinas licenciadas (por exemplo, a vacina contra o herpes zóster) que ativa a imunidade inata e adaptativa. Evidências emergentes sugerem que o AS01 também pode induzir imunidade treinada, uma forma de reprogramação imunitária inata que pode melhorar a proteção contra infeções não relacionadas. Este estudo testa se o AS01 administrado isoladamente pode estimular e treinar o sistema imunitário em adultos saudáveis, quanto tempo duram estes efeitos e se isto se traduz num melhor controlo de um desafio viral heterólogo.
Este será um estudo de medicina experimental monocêntrico, aleatorizado, simples-cego e controlado por placebo no Singapore General Hospital (N=40; idades 21-59). Os participantes recebem uma dose única intramuscular de AS01 (0,5 mL) ou placebo salino no Dia 0. Para modelar uma exposição viral controlada, todos os participantes recebem depois a vacina licenciada atenuada contra a febre amarela (YF17D, Stamaril) ou ao 1 mês (Dia 30) ou aos 3 meses (Dia 90) após o AS01/placebo, conforme randomização. A colheita seriada de sangue mede a reprogramação imunitária, durabilidade e resposta ao desafio viral ao longo de ~2 ou 4 meses dependendo da atribuição.
Os resultados podem esclarecer se o AS01 pode ser utilizado como um estimulante imunitário autónomo para melhorar rapidamente a proteção ampla. Informação que pode ser útil para a preparação para surtos, especialmente antes de vacinas específicas para patogénios estarem disponíveis.
Portanto, (1) Alterações imunitárias inatas precoces e duradouras após o AS01 (por exemplo, expressão genética e marcadores epigenéticos em células mieloides/innatas); (2) Viremia por YF17D (RNAemia) após vacinação como indicador de controlo viral heterólogo; e (3) Respostas de células T e B ao YF17D e como se relacionam com a viremia, serão medidas e analisadas.
O AS01 e o YF17D são componentes licenciados quando utilizados com as suas vacinas indicadas. As reações comuns incluem sintomas locais no local da injeção e sintomas sistémicos de curta duração; eventos adversos graves raros foram relatados com o YF17D. Os participantes são monitorizados e recebem orientações de segurança e vias de contacto ao longo do estudo.
Tipo de estudo
Inscrição (Estimado)
Estágio
- Fase 2
Contactos e Locais
Contato de estudo
- Nome: Candice Y.Y. Chan, MBChB, MRCP
- Número de telefone: +6563213479
- E-mail: candice.chan.y.y@singhealth.com.sg
Estude backup de contato
- Nome: Christina Titin
- Número de telefone: +6565762802
- E-mail: christina.titin@singhealth.com.sg
Locais de estudo
-
-
-
Singapore, Cingapura, 169608
- Recrutamento
- Singapore General Hospital
-
Contato:
- Candice Y.Y. Chan, MBChB, MRCP
- Número de telefone: +6563213479
- E-mail: candice.chan.y.y@singhealth.com.sg
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Contato:
- Christina Titin
- Número de telefone: +6565762802
- E-mail: christina.titin@singhealth.com.sg
-
Investigador principal:
- Candice Y.Y. Chan, MBChB, MRCP
-
-
Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
- Adulto
Aceita Voluntários Saudáveis
Descrição
Critérios de Inclusão:
- Adultos com idades compreendidas entre os 21 e os 59 anos no momento do rastreio.
- IMC 18,5 - 27,5 kg/m² (valores de IMC para a população asiática de acordo com as diretrizes do MOH da Conferência de Consenso do NIH).
- Avaliação médica basal satisfatória avaliada por exame físico e estado de saúde estável. Para sujeitos com comorbilidades subjacentes, as condições devem ser consideradas estáveis pelos investigadores, e não devem ter tido qualquer hospitalização relacionada com estas condições nos últimos 6 meses.
- Participar voluntariamente, compreender e assinar um formulário de consentimento informado aprovado pelo Conselho de Revisão Ética.
- Sujeitos dispostos a cumprir os requisitos do protocolo do estudo e das visitas agendadas. Estes requisitos incluem o preenchimento do diário do sujeito e o regresso para visitas de acompanhamento. Os sujeitos também devem estar dispostos a estar disponíveis durante a duração do estudo, com acesso a um meio de contacto consistente.
- Veia acessível no antebraço para colheita de sangue.
- Sujeitos do sexo feminino sem potencial de procriação devido a esterilização cirúrgica (histerectomia ou ooforectomia bilateral ou ligadura das trompas) ou menopausa. Sujeitos pós-menopáusicas devem ter tido pelo menos 12 meses de amenorreia natural (espontânea).
Critérios de Exclusão:
- Vacinação prévia contra febre amarela ou dengue, seja com um produto registado ou por participação num estudo de vacina anterior.
- Receção prévia de vacinas com adjuvante AS01 (ex. vacina recombinante do herpes zóster, RTS,S/AS01, RSVPre-F3-AS01), seja com um produto registado ou por participação num estudo de vacina anterior.
- Administração planeada de uma vacina com adjuvante AS01 ou vacina contra febre amarela diferente da vacina do estudo durante o estudo.
- Sujeitos que estiveram doentes nos últimos 7 dias antes do rastreio.
- Histórico de infeção documentada por febre amarela e/ou dengue.
- Seropositividade para dengue no rastreio.
- Histórico de tabagismo no último ano.
- Viagem planeada para países endémicos de febre amarela durante o estudo.
- Alergia conhecida à vacina AS01 e YF17D ou aos seus componentes (ex. produtos de ovo).
- Diagnóstico de diabetes HBA1c > 6,5 de acordo com os critérios da Associação Americana de Diabetes62.
- Qualquer condição médica que, na opinião do investigador, torne a injeção intramuscular insegura (ex. trombocitopenia com contagem de plaquetas < 50x10^9/L, coagulopatia, terapia anticoagulante).
Fator de risco para vacinas vivas atenuadas, incluindo qualquer imunodeficiência primária ou adquirida confirmada ou suspeita com base no histórico e exame físico:
- Histórico de doença da glândula timo
- Neoplasias hematológicas incluindo leucemia, linfoma, síndromes mielodisplásicas
- Diagnosticado com cancro ou tratamento para cancro (exceto carcinoma basocelular localizado) nos 3 anos anteriores ao rastreio
- Pós-transplante: transplante de órgão sólido e transplante de células estaminais hematopoiéticas
- Imunocomprometido devido a imunodeficiência primária ou adquirida (incluindo VIH/SIDA)
- Outras condições significativamente imunocomprometedoras
- Administração de fármacos anti-inflamatórios nos últimos 7 dias (ex. AINEs, Paracetamol, aspirina).
- Uso de metformina no último mês.
- Uso de corticosteroides nos últimos 6 meses antes da primeira dose da vacina (definido como prednisolona > 10 mg/dia ou equivalente por > 2 semanas, ou prednisolona > 40 mg/dia ou > 1 semana). Corticosteroides inalados e tópicos são permitidos.
- Receção de biológicos (como inibidores anti-TNF, inibidores de IL-1, bloqueadores de coestimulação, terapia de depleção de células B) nos últimos 12 meses.
- Qualquer condição (ex. psoríase extensa, síndrome de dor crónica, perda auditiva grave, comprometimento cognitivo, diálise, doenças autoimunes) que, na opinião do investigador, possa complicar ou comprometer o estudo ou o bem-estar do sujeito, ou impedir a conclusão do estudo.
- Evidência de abuso de substâncias, ou abuso de substâncias anterior.
- Anemia clinicamente significativa (Hb < 10 g/dL).
- Doação de sangue superior a > 450 ml nos últimos 3 meses.
- Participação num estudo envolvendo administração de um composto experimental ou não experimental nos últimos quatro meses ou participação planeada durante a duração deste estudo.
- Administração de qualquer vacina licenciada nos 30 dias antes da primeira dose da vacina do estudo ou planeamento de receção de tais produtos nos 30 dias após a vacinação do estudo.
- Receção de imunoglobulina ou quaisquer produtos sanguíneos nos 90 dias anteriores à primeira dose da vacina do estudo ou planeamento de receção de tais produtos durante o período do estudo.
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Prevenção
- Alocação: Randomizado
- Modelo Intervencional: Atribuição Paralela
- Mascaramento: Solteiro
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
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Experimental: AS01 + YF17D após 1 mês
Os participantes recebem AS01 (0,5 mL IM no Dia 0) e a vacina da febre amarela YF17D no Dia 30.
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Stamaril, a vacina viva atenuada contra a febre amarela, utiliza a estirpe YF17D.
Stamaril é fornecido na forma de pó e solvente para suspensão para injecção em seringa pré-cheia, Vacina contra a febre amarela (viva).
Outros nomes:
The AS01 suspension contains 50 mcg/micrograms of 3-O-desacyl-4'monophosphoryl lipid A (MPL) and 50 mcg/micrograms of Quillaja Saponaria Molina, fraction 21 (QS21), licensed by GSK, available as a separate vial from the licensed Shingrix vaccine.
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Experimental: AS01 + YF17D aos 3 Meses
Os participantes recebem AS01 (0,5 mL IM no Dia 0) e a vacina contra a febre amarela YF17D no Dia 90.
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Stamaril, a vacina viva atenuada contra a febre amarela, utiliza a estirpe YF17D.
Stamaril é fornecido na forma de pó e solvente para suspensão para injecção em seringa pré-cheia, Vacina contra a febre amarela (viva).
Outros nomes:
The AS01 suspension contains 50 mcg/micrograms of 3-O-desacyl-4'monophosphoryl lipid A (MPL) and 50 mcg/micrograms of Quillaja Saponaria Molina, fraction 21 (QS21), licensed by GSK, available as a separate vial from the licensed Shingrix vaccine.
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Comparador de Placebo: Placebo + YF17D a 1 Mês
Os participantes recebem placebo (solução salina a 0,9%, 0,5 mL IM no Dia 0) e a vacina contra a febre amarela YF17D no Dia 30.
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Stamaril, a vacina viva atenuada contra a febre amarela, utiliza a estirpe YF17D.
Stamaril é fornecido na forma de pó e solvente para suspensão para injecção em seringa pré-cheia, Vacina contra a febre amarela (viva).
Outros nomes:
O placebo consistirá numa solução salina a 0,9% em volume equivalente.
Outros nomes:
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Comparador de Placebo: Placebo + YF17D aos 3 Meses
Os participantes recebem placebo (solução salina a 0,9%, 0,5 mL IM no Dia 0) e a vacina da febre amarela YF17D no Dia 90.
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Stamaril, a vacina viva atenuada contra a febre amarela, utiliza a estirpe YF17D.
Stamaril é fornecido na forma de pó e solvente para suspensão para injecção em seringa pré-cheia, Vacina contra a febre amarela (viva).
Outros nomes:
O placebo consistirá numa solução salina a 0,9% em volume equivalente.
Outros nomes:
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Resposta Imune do Hospedeiro
Prazo: Dias 0, 7, 14, 28, 56, 84 (3 meses)
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Avaliação exploratória do perfil de resposta imune do hospedeiro (citocinas, populações de células imunes, expressão genética, modificações epigenéticas) induzido por AS01 versus placebo, utilizando um painel de testes de ensaio multi-ómicos validados, durante um período de 3 meses.
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Dias 0, 7, 14, 28, 56, 84 (3 meses)
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Níveis de Viremia
Prazo: 7 dias após a administração da vacina contra a febre amarela
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Medir os níveis de viremia da Febre Amarela através de RT-PCR quantitativo e calcular a área sob a curva (AUC) até 7 dias após a administração da vacina da Febre Amarela em recipientes de AS01 versus placebo.
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7 dias após a administração da vacina contra a febre amarela
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Resposta das Células B
Prazo: 30 dias
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Avaliar as respostas dos linfócitos B à febre amarela através da medição dos títulos de anticorpos neutralizantes utilizando o teste de redução de placas de neutralização (PRNT) com soro no dia 30, comparado com o dia 0 antes da vacinação, após a administração da vacina contra a febre amarela em AS01 versus recetores de placebo.
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30 dias
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Resposta das Células T
Prazo: 30 dias
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Avaliar as respostas das células T à vacina da febre amarela utilizando o ensaio ELISPOT de IFNγ específico do vírus, com os resultados expressos em unidades formadoras de manchas (UFM) por 10^6 PBMCs no dia 14 e dia 30 versus pré-vacinação no dia 9 em recipientes de AS01 versus placebo.
|
30 dias
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Investigadores
- Investigador principal: Candice Y.Y. Chan, MBChB, MRCP, Singapore General Hospital
- Investigador principal: Amit Singhal, B.Sc., M.Sc., Ph.D., A*Star
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Arts RJW, Moorlag SJCFM, Novakovic B, Li Y, Wang SY, Oosting M, Kumar V, Xavier RJ, Wijmenga C, Joosten LAB, Reusken CBEM, Benn CS, Aaby P, Koopmans MP, Stunnenberg HG, van Crevel R, Netea MG. BCG Vaccination Protects against Experimental Viral Infection in Humans through the Induction of Cytokines Associated with Trained Immunity. Cell Host Microbe. 2018 Jan 10;23(1):89-100.e5. doi: 10.1016/j.chom.2017.12.010.
- Biering-Sorensen S, Aaby P, Lund N, Monteiro I, Jensen KJ, Eriksen HB, Schaltz-Buchholzer F, Jorgensen ASP, Rodrigues A, Fisker AB, Benn CS. Early BCG-Denmark and Neonatal Mortality Among Infants Weighing <2500 g: A Randomized Controlled Trial. Clin Infect Dis. 2017 Oct 1;65(7):1183-1190. doi: 10.1093/cid/cix525.
- Wardhana, Datau EA, Sultana A, Mandang VV, Jim E. The efficacy of Bacillus Calmette-Guerin vaccinations for the prevention of acute upper respiratory tract infection in the elderly. Acta Med Indones. 2011 Jul;43(3):185-90.
- Kleinnijenhuis J, Quintin J, Preijers F, Joosten LA, Ifrim DC, Saeed S, Jacobs C, van Loenhout J, de Jong D, Stunnenberg HG, Xavier RJ, van der Meer JW, van Crevel R, Netea MG. Bacille Calmette-Guerin induces NOD2-dependent nonspecific protection from reinfection via epigenetic reprogramming of monocytes. Proc Natl Acad Sci U S A. 2012 Oct 23;109(43):17537-42. doi: 10.1073/pnas.1202870109. Epub 2012 Sep 17.
- Netea MG, Joosten LA, Latz E, Mills KH, Natoli G, Stunnenberg HG, O'Neill LA, Xavier RJ. Trained immunity: A program of innate immune memory in health and disease. Science. 2016 Apr 22;352(6284):aaf1098. doi: 10.1126/science.aaf1098. Epub 2016 Apr 21.
- Chan KR, Wang X, Saron WAA, Gan ES, Tan HC, Mok DZL, Zhang SL, Lee YH, Liang C, Wijaya L, Ghosh S, Cheung YB, Tannenbaum SR, Abraham SN, St John AL, Low JGH, Ooi EE. Cross-reactive antibodies enhance live attenuated virus infection for increased immunogenicity. Nat Microbiol. 2016 Sep 19;1(12):16164. doi: 10.1038/nmicrobiol.2016.164.
- Netea MG, Dominguez-Andres J, Barreiro LB, Chavakis T, Divangahi M, Fuchs E, Joosten LAB, van der Meer JWM, Mhlanga MM, Mulder WJM, Riksen NP, Schlitzer A, Schultze JL, Stabell Benn C, Sun JC, Xavier RJ, Latz E. Defining trained immunity and its role in health and disease. Nat Rev Immunol. 2020 Jun;20(6):375-388. doi: 10.1038/s41577-020-0285-6. Epub 2020 Mar 4.
- Lal H, Cunningham AL, Godeaux O, Chlibek R, Diez-Domingo J, Hwang SJ, Levin MJ, McElhaney JE, Poder A, Puig-Barbera J, Vesikari T, Watanabe D, Weckx L, Zahaf T, Heineman TC; ZOE-50 Study Group. Efficacy of an adjuvanted herpes zoster subunit vaccine in older adults. N Engl J Med. 2015 May 28;372(22):2087-96. doi: 10.1056/NEJMoa1501184. Epub 2015 Apr 28.
- Walk J, de Bree LCJ, Graumans W, Stoter R, van Gemert GJ, van de Vegte-Bolmer M, Teelen K, Hermsen CC, Arts RJW, Behet MC, Keramati F, Moorlag SJCFM, Yang ASP, van Crevel R, Aaby P, de Mast Q, van der Ven AJAM, Stabell Benn C, Netea MG, Sauerwein RW. Outcomes of controlled human malaria infection after BCG vaccination. Nat Commun. 2019 Feb 20;10(1):874. doi: 10.1038/s41467-019-08659-3.
- Giamarellos-Bourboulis EJ, Tsilika M, Moorlag S, Antonakos N, Kotsaki A, Dominguez-Andres J, Kyriazopoulou E, Gkavogianni T, Adami ME, Damoraki G, Koufargyris P, Karageorgos A, Bolanou A, Koenen H, van Crevel R, Droggiti DI, Renieris G, Papadopoulos A, Netea MG. Activate: Randomized Clinical Trial of BCG Vaccination against Infection in the Elderly. Cell. 2020 Oct 15;183(2):315-323.e9. doi: 10.1016/j.cell.2020.08.051. Epub 2020 Sep 1.
- Kaufmann E, Sanz J, Dunn JL, Khan N, Mendonca LE, Pacis A, Tzelepis F, Pernet E, Dumaine A, Grenier JC, Mailhot-Leonard F, Ahmed E, Belle J, Besla R, Mazer B, King IL, Nijnik A, Robbins CS, Barreiro LB, Divangahi M. BCG Educates Hematopoietic Stem Cells to Generate Protective Innate Immunity against Tuberculosis. Cell. 2018 Jan 11;172(1-2):176-190.e19. doi: 10.1016/j.cell.2017.12.031.
- Love MI, Huber W, Anders S. Moderated estimation of fold change and dispersion for RNA-seq data with DESeq2. Genome Biol. 2014;15(12):550. doi: 10.1186/s13059-014-0550-8.
- Cunningham AL, Heineman TC, Lal H, Godeaux O, Chlibek R, Hwang SJ, McElhaney JE, Vesikari T, Andrews C, Choi WS, Esen M, Ikematsu H, Choma MK, Pauksens K, Ravault S, Salaun B, Schwarz TF, Smetana J, Abeele CV, Van den Steen P, Vastiau I, Weckx LY, Levin MJ; ZOE-50/70 Study Group. Immune Responses to a Recombinant Glycoprotein E Herpes Zoster Vaccine in Adults Aged 50 Years or Older. J Infect Dis. 2018 May 5;217(11):1750-1760. doi: 10.1093/infdis/jiy095.
- Baker RE, Mahmud AS, Miller IF, Rajeev M, Rasambainarivo F, Rice BL, Takahashi S, Tatem AJ, Wagner CE, Wang LF, Wesolowski A, Metcalf CJE. Infectious disease in an era of global change. Nat Rev Microbiol. 2022 Apr;20(4):193-205. doi: 10.1038/s41579-021-00639-z. Epub 2021 Oct 13.
- Byberg S, Thysen SM, Rodrigues A, Martins C, Cabral C, Careme M, Aaby P, Benn CS, Fisker AB. A general measles vaccination campaign in urban Guinea-Bissau: Comparing child mortality among participants and non-participants. Vaccine. 2017 Jan 3;35(1):33-39. doi: 10.1016/j.vaccine.2016.11.049. Epub 2016 Nov 24.
- Hou Y, Chen M, Bian Y, Hu Y, Chuan J, Zhong L, Zhu Y, Tong R. Insights into vaccines for elderly individuals: from the impacts of immunosenescence to delivery strategies. NPJ Vaccines. 2024 Apr 10;9(1):77. doi: 10.1038/s41541-024-00874-4.
- Mok DZL, Chan KR. The Effects of Pre-Existing Antibodies on Live-Attenuated Viral Vaccines. Viruses. 2020 May 8;12(5):520. doi: 10.3390/v12050520.
- Yau C, Gan ES, Kwek SS, Tan HC, Ong EZ, Hamis NZ, Rivino L, Chan KR, Watanabe S, Vasudevan SG, Ooi EE. Live vaccine infection burden elicits adaptive humoral and cellular immunity required to prevent Zika virus infection. EBioMedicine. 2020 Nov;61:103028. doi: 10.1016/j.ebiom.2020.103028. Epub 2020 Oct 9.
- Tan AT, Linster M, Tan CW, Le Bert N, Chia WN, Kunasegaran K, Zhuang Y, Tham CYL, Chia A, Smith GJD, Young B, Kalimuddin S, Low JGH, Lye D, Wang LF, Bertoletti A. Early induction of functional SARS-CoV-2-specific T cells associates with rapid viral clearance and mild disease in COVID-19 patients. Cell Rep. 2021 Feb 9;34(6):108728. doi: 10.1016/j.celrep.2021.108728. Epub 2021 Jan 21.
- Kalimuddin S, Tham CYL, Qui M, de Alwis R, Sim JXY, Lim JME, Tan HC, Syenina A, Zhang SL, Le Bert N, Tan AT, Leong YS, Yee JX, Ong EZ, Ooi EE, Bertoletti A, Low JG. Early T cell and binding antibody responses are associated with COVID-19 RNA vaccine efficacy onset. Med. 2021 Jun 11;2(6):682-688.e4. doi: 10.1016/j.medj.2021.04.003. Epub 2021 Apr 8.
- Bollampalli VP, Harumi Yamashiro L, Feng X, Bierschenk D, Gao Y, Blom H, Henriques-Normark B, Nylen S, Rothfuchs AG. BCG Skin Infection Triggers IL-1R-MyD88-Dependent Migration of EpCAMlow CD11bhigh Skin Dendritic cells to Draining Lymph Node During CD4+ T-Cell Priming. PLoS Pathog. 2015 Oct 6;11(10):e1005206. doi: 10.1371/journal.ppat.1005206. eCollection 2015 Oct.
- Chan KR, Gan ES, Chan CYY, Liang C, Low JZH, Zhang SL, Ong EZ, Bhatta A, Wijaya L, Lee YH, Low JG, Ooi EE. Metabolic perturbations and cellular stress underpin susceptibility to symptomatic live-attenuated yellow fever infection. Nat Med. 2019 Aug;25(8):1218-1224. doi: 10.1038/s41591-019-0510-7. Epub 2019 Jul 15.
- Mok DZ, Tng DJ, Yee JX, Chew VS, Tham CY, Ooi JS, Tan HC, Zhang SL, Lin LZ, Ng WC, Jeeva LL, Murugayee R, Goh KK, Lim TP, Cui L, Cheung YB, Ong EZ, Chan KR, Ooi EE, Low JG. Electron transport chain capacity expands yellow fever vaccine immunogenicity. EMBO Mol Med. 2024 Jun;16(6):1310-1323. doi: 10.1038/s44321-024-00065-7. Epub 2024 May 14.
- Chan CY, Chan KR, Chua CJ, Nur Hazirah S, Ghosh S, Ooi EE, Low JG. Early molecular correlates of adverse events following yellow fever vaccination. JCI Insight. 2017 Oct 5;2(19):e96031. doi: 10.1172/jci.insight.96031.
- Schep AN, Wu B, Buenrostro JD, Greenleaf WJ. chromVAR: inferring transcription-factor-associated accessibility from single-cell epigenomic data. Nat Methods. 2017 Oct;14(10):975-978. doi: 10.1038/nmeth.4401. Epub 2017 Aug 21.
- Shaw AC, Goldstein DR, Montgomery RR. Age-dependent dysregulation of innate immunity. Nat Rev Immunol. 2013 Dec;13(12):875-87. doi: 10.1038/nri3547. Epub 2013 Oct 25.
- Iwasaki A, Medzhitov R. Control of adaptive immunity by the innate immune system. Nat Immunol. 2015 Apr;16(4):343-53. doi: 10.1038/ni.3123.
- Jo N, Hidaka Y, Kikuchi O, Fukahori M, Sawada T, Aoki M, Yamamoto M, Nagao M, Morita S, Nakajima TE, Muto M, Hamazaki Y. Impaired CD4+ T cell response in older adults is associated with reduced immunogenicity and reactogenicity of mRNA COVID-19 vaccination. Nat Aging. 2023 Jan;3(1):82-92. doi: 10.1038/s43587-022-00343-4. Epub 2023 Jan 12.
- Esmaeili ED, Azizi H, Sarbazi E, Khodamoradi F. The global case fatality rate due to COVID-19 in hospitalized elderly patients by sex, year, gross domestic product, and continent: A systematic review, meta-analysis, and meta-regression. New Microbes New Infect. 2023 Jan;51:101079. doi: 10.1016/j.nmni.2022.101079. Epub 2023 Jan 4.
- Stuart T, Srivastava A, Madad S, Lareau CA, Satija R. Author Correction: Single-cell chromatin state analysis with Signac. Nat Methods. 2022 Feb;19(2):257. doi: 10.1038/s41592-022-01393-7. No abstract available.
- Satpathy AT, Granja JM, Yost KE, Qi Y, Meschi F, McDermott GP, Olsen BN, Mumbach MR, Pierce SE, Corces MR, Shah P, Bell JC, Jhutty D, Nemec CM, Wang J, Wang L, Yin Y, Giresi PG, Chang ALS, Zheng GXY, Greenleaf WJ, Chang HY. Massively parallel single-cell chromatin landscapes of human immune cell development and intratumoral T cell exhaustion. Nat Biotechnol. 2019 Aug;37(8):925-936. doi: 10.1038/s41587-019-0206-z. Epub 2019 Aug 2.
- Jin S, Guerrero-Juarez CF, Zhang L, Chang I, Ramos R, Kuan CH, Myung P, Plikus MV, Nie Q. Inference and analysis of cell-cell communication using CellChat. Nat Commun. 2021 Feb 17;12(1):1088. doi: 10.1038/s41467-021-21246-9.
- Wu T, Hu E, Xu S, Chen M, Guo P, Dai Z, Feng T, Zhou L, Tang W, Zhan L, Fu X, Liu S, Bo X, Yu G. clusterProfiler 4.0: A universal enrichment tool for interpreting omics data. Innovation (Camb). 2021 Jul 1;2(3):100141. doi: 10.1016/j.xinn.2021.100141. eCollection 2021 Aug 28.
- Hao Y, Hao S, Andersen-Nissen E, Mauck WM 3rd, Zheng S, Butler A, Lee MJ, Wilk AJ, Darby C, Zager M, Hoffman P, Stoeckius M, Papalexi E, Mimitou EP, Jain J, Srivastava A, Stuart T, Fleming LM, Yeung B, Rogers AJ, McElrath JM, Blish CA, Gottardo R, Smibert P, Satija R. Integrated analysis of multimodal single-cell data. Cell. 2021 Jun 24;184(13):3573-3587.e29. doi: 10.1016/j.cell.2021.04.048. Epub 2021 May 31.
- Zheng GX, Terry JM, Belgrader P, Ryvkin P, Bent ZW, Wilson R, Ziraldo SB, Wheeler TD, McDermott GP, Zhu J, Gregory MT, Shuga J, Montesclaros L, Underwood JG, Masquelier DA, Nishimura SY, Schnall-Levin M, Wyatt PW, Hindson CM, Bharadwaj R, Wong A, Ness KD, Beppu LW, Deeg HJ, McFarland C, Loeb KR, Valente WJ, Ericson NG, Stevens EA, Radich JP, Mikkelsen TS, Hindson BJ, Bielas JH. Massively parallel digital transcriptional profiling of single cells. Nat Commun. 2017 Jan 16;8:14049. doi: 10.1038/ncomms14049.
- Ong EZ, Koh CWT, Tng DJH, Ooi JSG, Yee JX, Chew VSY, Leong YS, Gunasegaran K, Yeo CP, Oon LLE, Sim JXY, Chan KR, Low JG, Ooi EE. RNase2 is a possible trigger of acute-on-chronic inflammation leading to mRNA vaccine-associated cardiac complication. Med. 2023 Jun 9;4(6):353-360.e2. doi: 10.1016/j.medj.2023.04.001. Epub 2023 Apr 26.
- Lin QXX, Rajagopalan D, Gamage AM, Tan LM, Venkatesh PN, Chan WOY, Kumar D, Agrawal R, Chen Y, Fong SW, Singh A, Sun LJ, Tan SY, Chai LYA, Somani J, Lee B, Renia L, Ng LFP, Ramanathan K, Wang LF, Young B, Lye D, Singhal A, Prabhakar S. Longitudinal single cell atlas identifies complex temporal relationship between type I interferon response and COVID-19 severity. Nat Commun. 2024 Jan 18;15(1):567. doi: 10.1038/s41467-023-44524-0.
- Bohme J, Martinez N, Li S, Lee A, Marzuki M, Tizazu AM, Ackart D, Frenkel JH, Todd A, Lachmandas E, Lum J, Shihui F, Ng TP, Lee B, Larbi A, Netea MG, Basaraba R, van Crevel R, Newell E, Kornfeld H, Singhal A. Metformin enhances anti-mycobacterial responses by educating CD8+ T-cell immunometabolic circuits. Nat Commun. 2020 Oct 16;11(1):5225. doi: 10.1038/s41467-020-19095-z.
- Maleki F, Ovens K, McQuillan I, Kusalik AJ. Size matters: how sample size affects the reproducibility and specificity of gene set analysis. Hum Genomics. 2019 Oct 22;13(Suppl 1):42. doi: 10.1186/s40246-019-0226-2.
- de Bree LCJ, Mourits VP, Koeken VA, Moorlag SJ, Janssen R, Folkman L, Barreca D, Krausgruber T, Fife-Gernedl V, Novakovic B, Arts RJ, Dijkstra H, Lemmers H, Bock C, Joosten LA, van Crevel R, Benn CS, Netea MG. Circadian rhythm influences induction of trained immunity by BCG vaccination. J Clin Invest. 2020 Oct 1;130(10):5603-5617. doi: 10.1172/JCI133934.
- Kalimuddin S, Chan YFZ, Sessions OM, Chan KR, Ong EZ, Low JG, Bertoletti A, Ooi EE. An experimental medicine decipher of a minimum correlate of cellular immunity: Study protocol for a double-blind randomized controlled trial. Front Immunol. 2023 Mar 10;14:1135979. doi: 10.3389/fimmu.2023.1135979. eCollection 2023.
- Saucha CVV, Maia MLS, Sousa ESS, de Oliveira PMN, Xavier JR, de Castro TDM, Cruz RLS, Schwarcz WD, Pereira RC, Azevedo AS, de Filippis AMB, Ferroco CLV, Pizzini GLC, Brum RCS, Secundino L, Andrade MFS, de Oliveira RVC, Simoes M, Cerbino-Neto J, Martins-Filho OA, Campi-Azevedo AC, de Lima SMB, Camacho LAB; Collaborative Group for Yellow Fever Vaccine Studies. Immunogenicity of a single dose of the 17DD yellow fever vaccine in a cohort of adults and children in a non-endemic area, and its association with dengue and Zika seropositivity. PLoS Negl Trop Dis. 2025 Apr 9;19(4):e0012993. doi: 10.1371/journal.pntd.0012993. eCollection 2025 Apr.
- Sheridan PA, Paich HA, Handy J, Karlsson EA, Hudgens MG, Sammon AB, Holland LA, Weir S, Noah TL, Beck MA. Obesity is associated with impaired immune response to influenza vaccination in humans. Int J Obes (Lond). 2012 Aug;36(8):1072-7. doi: 10.1038/ijo.2011.208. Epub 2011 Oct 25.
- Sharma NK, Das SK, Mondal AK, Hackney OG, Chu WS, Kern PA, Rasouli N, Spencer HJ, Yao-Borengasser A, Elbein SC. Endoplasmic reticulum stress markers are associated with obesity in nondiabetic subjects. J Clin Endocrinol Metab. 2008 Nov;93(11):4532-41. doi: 10.1210/jc.2008-1001. Epub 2008 Aug 26.
- UniProt Consortium. UniProt: the Universal Protein Knowledgebase in 2023. Nucleic Acids Res. 2023 Jan 6;51(D1):D523-D531. doi: 10.1093/nar/gkac1052.
- Syenina A, Gan ES, Toh JZN, de Alwis R, Lin LZ, Tham CYL, Yee JX, Leong YS, Sam H, Cheong C, Teh YE, Wee ILE, Ng DHL, Chan KR, Sim JXY, Kalimuddin S, Ong EZ, Low JG, Ooi EE. Adverse effects following anti-COVID-19 vaccination with mRNA-based BNT162b2 are alleviated by altering the route of administration and correlate with baseline enrichment of T and NK cell genes. PLoS Biol. 2022 May 31;20(5):e3001643. doi: 10.1371/journal.pbio.3001643. eCollection 2022 May.
- Izurieta HS, Wu X, Forshee R, Lu Y, Sung HM, Agger PE, Chillarige Y, Link-Gelles R, Lufkin B, Wernecke M, MaCurdy TE, Kelman J, Dooling K. Recombinant Zoster Vaccine (Shingrix): Real-World Effectiveness in the First 2 Years Post-Licensure. Clin Infect Dis. 2021 Sep 15;73(6):941-948. doi: 10.1093/cid/ciab125.
- Laing KJ, Ford ES, Johnson MJ, Levin MJ, Koelle DM, Weinberg A. Recruitment of naive CD4+ T cells by the recombinant zoster vaccine correlates with persistent immunity. J Clin Invest. 2023 Dec 1;133(23):e172634. doi: 10.1172/JCI172634.
- Laing KJ, Ouwendijk WJD, Koelle DM, Verjans GMGM. Immunobiology of Varicella-Zoster Virus Infection. J Infect Dis. 2018 Sep 22;218(suppl_2):S68-S74. doi: 10.1093/infdis/jiy403.
- Gershon AA, Breuer J, Cohen JI, Cohrs RJ, Gershon MD, Gilden D, Grose C, Hambleton S, Kennedy PG, Oxman MN, Seward JF, Yamanishi K. Varicella zoster virus infection. Nat Rev Dis Primers. 2015 Jul 2;1:15016. doi: 10.1038/nrdp.2015.16.
- Jeyanathan M, Vaseghi-Shanjani M, Afkhami S, Grondin JA, Kang A, D'Agostino MR, Yao Y, Jain S, Zganiacz A, Kroezen Z, Shanmuganathan M, Singh R, Dvorkin-Gheva A, Britz-McKibbin P, Khan WI, Xing Z. Parenteral BCG vaccine induces lung-resident memory macrophages and trained immunity via the gut-lung axis. Nat Immunol. 2022 Dec;23(12):1687-1702. doi: 10.1038/s41590-022-01354-4. Epub 2022 Dec 1.
- Lukhele S, Boukhaled GM, Brooks DG. Type I interferon signaling, regulation and gene stimulation in chronic virus infection. Semin Immunol. 2019 Jun;43:101277. doi: 10.1016/j.smim.2019.05.001. Epub 2019 May 30.
- Triana S, Vonficht D, Jopp-Saile L, Raffel S, Lutz R, Leonce D, Antes M, Hernandez-Malmierca P, Ordonez-Rueda D, Ramasz B, Boch T, Jann JC, Nowak D, Hofmann WK, Muller-Tidow C, Hubschmann D, Alexandrov T, Benes V, Trumpp A, Paulsen M, Velten L, Haas S. Single-cell proteo-genomic reference maps of the hematopoietic system enable the purification and massive profiling of precisely defined cell states. Nat Immunol. 2021 Dec;22(12):1577-1589. doi: 10.1038/s41590-021-01059-0. Epub 2021 Nov 22.
- Zhang X, Song B, Carlino MJ, Li G, Ferchen K, Chen M, Thompson EN, Kain BN, Schnell D, Thakkar K, Kouril M, Jin K, Hay SB, Sen S, Bernardicius D, Ma S, Bennett SN, Croteau J, Salvatori O, Lye MH, Gillen AE, Jordan CT, Singh H, Krause DS, Salomonis N, Grimes HL. An immunophenotype-coupled transcriptomic atlas of human hematopoietic progenitors. Nat Immunol. 2024 Apr;25(4):703-715. doi: 10.1038/s41590-024-01782-4. Epub 2024 Mar 21.
- Cirovic B, de Bree LCJ, Groh L, Blok BA, Chan J, van der Velden WJFM, Bremmers MEJ, van Crevel R, Handler K, Picelli S, Schulte-Schrepping J, Klee K, Oosting M, Koeken VACM, van Ingen J, Li Y, Benn CS, Schultze JL, Joosten LAB, Curtis N, Netea MG, Schlitzer A. BCG Vaccination in Humans Elicits Trained Immunity via the Hematopoietic Progenitor Compartment. Cell Host Microbe. 2020 Aug 12;28(2):322-334.e5. doi: 10.1016/j.chom.2020.05.014. Epub 2020 Jun 15.
- Sun SJ, Aguirre-Gamboa R, de Bree LCJ, Sanz J, Dumaine A, Joosten LAB, Divangahi M, Netea MG, Barreiro LB. BCG vaccination impacts the epigenetic landscape of progenitor cells in human bone marrow. bioRxiv [Preprint]. 2023 Nov 28:2023.11.28.569076. doi: 10.1101/2023.11.28.569076.
- Boutry C, Hastie A, Diez-Domingo J, Tinoco JC, Yu CJ, Andrews C, Beytout J, Caso C, Cheng HS, Cheong HJ, Choo EJ, Curiac D, Di Paolo E, Dionne M, Eckermann T, Esen M, Ferguson M, Ghesquiere W, Hwang SJ, Avelino-Silva TJ, Kosina P, Liu CS, Markkula J, Moeckesch B, Murta de Oliveira C, Park DW, Pauksens K, Pirrotta P, Plassmann G, Pretswell C, Rombo L, Salaun B, Sanmartin Berglund J, Schenkenberger I, Schwarz T, Shi M, Ukkonen B, Zahaf T, Zerbini C, Schuind A, Cunningham AL; Zoster-049 Study Group. The Adjuvanted Recombinant Zoster Vaccine Confers Long-Term Protection Against Herpes Zoster: Interim Results of an Extension Study of the Pivotal Phase 3 Clinical Trials ZOE-50 and ZOE-70. Clin Infect Dis. 2022 Apr 28;74(8):1459-1467. doi: 10.1093/cid/ciab629.
- Avery RK. Immunizations in adult immunocompromised patients: which to use and which to avoid. Cleve Clin J Med. 2001 Apr;68(4):337-48. doi: 10.3949/ccjm.68.4.337.
- Cauchi S, Locht C. Non-specific Effects of Live Attenuated Pertussis Vaccine Against Heterologous Infectious and Inflammatory Diseases. Front Immunol. 2018 Dec 7;9:2872. doi: 10.3389/fimmu.2018.02872. eCollection 2018.
- Roring RJ, Debisarun PA, Botey-Bataller J, Suen TK, Bulut O, Kilic G, Koeken VA, Sarlea A, Bahrar H, Dijkstra H, Lemmers H, Gossling KL, Ruchel N, Ostermann PN, Muller L, Schaal H, Adams O, Borkhardt A, Ariyurek Y, de Meijer EJ, Kloet SL, Ten Oever J, Placek K, Li Y, Netea MG. MMR vaccination induces trained immunity via functional and metabolic reprogramming of gammadelta T cells. J Clin Invest. 2024 Jan 30;134(7):e170848. doi: 10.1172/JCI170848.
- Sorup S, Jensen AKG, Aaby P, Benn CS. Revaccination With Measles-Mumps-Rubella Vaccine and Infectious Disease Morbidity: A Danish Register-based Cohort Study. Clin Infect Dis. 2019 Jan 7;68(2):282-290. doi: 10.1093/cid/ciy433.
- Nieminen H, Lahdenkari M, Syrjanen RK, Nohynek H, Ruokokoski E, Palmu AA. Lower incidence of hospital-treated infections in infants under 3 months of age vaccinated with BCG. Vaccine. 2022 Oct 6;40(42):6048-6054. doi: 10.1016/j.vaccine.2022.09.004. Epub 2022 Sep 9.
- Baydemir I, Dulfer EA, Netea MG, Dominguez-Andres J. Trained immunity-inducing vaccines: Harnessing innate memory for vaccine design and delivery. Clin Immunol. 2024 Apr;261:109930. doi: 10.1016/j.clim.2024.109930. Epub 2024 Feb 9.
- Netea MG, Latz E, Mills KH, O'Neill LA. Innate immune memory: a paradigm shift in understanding host defense. Nat Immunol. 2015 Jul;16(7):675-9. doi: 10.1038/ni.3178. No abstract available.
- Chumakov K, Avidan MS, Benn CS, Bertozzi SM, Blatt L, Chang AY, Jamison DT, Khader SA, Kottilil S, Netea MG, Sparrow A, Gallo RC. Old vaccines for new infections: Exploiting innate immunity to control COVID-19 and prevent future pandemics. Proc Natl Acad Sci U S A. 2021 May 25;118(21):e2101718118. doi: 10.1073/pnas.2101718118.
- Palacios-Pedrero MA, Jansen JM, Blume C, Stanislawski N, Jonczyk R, Molle A, Hernandez MG, Kaiser FK, Jung K, Osterhaus ADME, Rimmelzwaan GF, Saletti G. Signs of immunosenescence correlate with poor outcome of mRNA COVID-19 vaccination in older adults. Nat Aging. 2022 Oct;2(10):896-905. doi: 10.1038/s43587-022-00292-y. Epub 2022 Oct 14.
- Kanasi E, Ayilavarapu S, Jones J. The aging population: demographics and the biology of aging. Periodontol 2000. 2016 Oct;72(1):13-8. doi: 10.1111/prd.12126.
- Bruxvoort KJ, Ackerson B, Sy LS, Bhavsar A, Tseng HF, Florea A, Luo Y, Tian Y, Solano Z, Widenmaier R, Shi M, Van Der Most R, Schmidt JE, Danier J, Breuer T, Qian L. Recombinant Adjuvanted Zoster Vaccine and Reduced Risk of Coronavirus Disease 2019 Diagnosis and Hospitalization in Older Adults. J Infect Dis. 2022 Jun 1;225(11):1915-1922. doi: 10.1093/infdis/jiab633.
- Bechtold V, Smolen KK, Burny W, de Angelis SP, Delandre S, Essaghir A, Marchant A, Ndour C, Taton M, van der Most R, Willems F, Didierlaurent AM. Functional and epigenetic changes in monocytes from adults immunized with an AS01-adjuvanted vaccine. Sci Transl Med. 2024 Jul 31;16(758):eadl3381. doi: 10.1126/scitranslmed.adl3381. Epub 2024 Jul 31.
- Didierlaurent AM, Collignon C, Bourguignon P, Wouters S, Fierens K, Fochesato M, Dendouga N, Langlet C, Malissen B, Lambrecht BN, Garcon N, Van Mechelen M, Morel S. Enhancement of adaptive immunity by the human vaccine adjuvant AS01 depends on activated dendritic cells. J Immunol. 2014 Aug 15;193(4):1920-30. doi: 10.4049/jimmunol.1400948. Epub 2014 Jul 14.
- Smith CL, Richardson B, Rubsamen M, Cameron MJ, Cameron CM, Canaday DH. Adjuvant AS01 activates human monocytes for costimulation and systemic inflammation. Vaccine. 2024 Jan 12;42(2):229-238. doi: 10.1016/j.vaccine.2023.12.010. Epub 2023 Dec 7.
- Coccia M, Collignon C, Herve C, Chalon A, Welsby I, Detienne S, van Helden MJ, Dutta S, Genito CJ, Waters NC, Deun KV, Smilde AK, Berg RAVD, Franco D, Bourguignon P, Morel S, Garcon N, Lambrecht BN, Goriely S, Most RV, Didierlaurent AM. Cellular and molecular synergy in AS01-adjuvanted vaccines results in an early IFNgamma response promoting vaccine immunogenicity. NPJ Vaccines. 2017 Sep 8;2:25. doi: 10.1038/s41541-017-0027-3. eCollection 2017.
- Walsh EE, Perez Marc G, Zareba AM, Falsey AR, Jiang Q, Patton M, Polack FP, Llapur C, Doreski PA, Ilangovan K, Ramet M, Fukushima Y, Hussen N, Bont LJ, Cardona J, DeHaan E, Castillo Villa G, Ingilizova M, Eiras D, Mikati T, Shah RN, Schneider K, Cooper D, Koury K, Lino MM, Anderson AS, Jansen KU, Swanson KA, Gurtman A, Gruber WC, Schmoele-Thoma B; RENOIR Clinical Trial Group. Efficacy and Safety of a Bivalent RSV Prefusion F Vaccine in Older Adults. N Engl J Med. 2023 Apr 20;388(16):1465-1477. doi: 10.1056/NEJMoa2213836. Epub 2023 Apr 5.
- Cunningham AL, Lal H, Kovac M, Chlibek R, Hwang SJ, Diez-Domingo J, Godeaux O, Levin MJ, McElhaney JE, Puig-Barbera J, Vanden Abeele C, Vesikari T, Watanabe D, Zahaf T, Ahonen A, Athan E, Barba-Gomez JF, Campora L, de Looze F, Downey HJ, Ghesquiere W, Gorfinkel I, Korhonen T, Leung E, McNeil SA, Oostvogels L, Rombo L, Smetana J, Weckx L, Yeo W, Heineman TC; ZOE-70 Study Group. Efficacy of the Herpes Zoster Subunit Vaccine in Adults 70 Years of Age or Older. N Engl J Med. 2016 Sep 15;375(11):1019-32. doi: 10.1056/NEJMoa1603800.
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Termos relacionados a este estudo
Palavras-chave
Termos MeSH relevantes adicionais
- Terapêutica
- Rotas de administração de medicamentos
- Terapia medicamentosa
- Produtos químicos inorgânicos
- Compostos de cloro
- Produtos biológicos
- Misturas complexas
- Vacinas
- Compostos de sódio
- Injeções
- Vacinas virais
- Cloretos
- Ácido clorídrico
- Cloreto de sódio
- Injeções, intramusculares
- Vacina da febre amarela
- sistema adjuvante 01
Outros números de identificação do estudo
- AS01-YF-01
- CIRG25jan-0068 (Número de outro subsídio/financiamento: NMRC)
Plano para dados de participantes individuais (IPD)
Planeja compartilhar dados de participantes individuais (IPD)?
Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo
Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA
Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA
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