- ICH GCP
- Amerikanska kliniska prövningsregistret
- Klinisk prövning NCT05960266
Immunologisk analys av lymfkörtelvävnad efter intralymfatisk immunterapi: en prospektiv fallkontrollstudie (ILIT-FNA)
Allergi är ett folkhälsoproblem eftersom mer än 20 % av det västerländska samhället drabbas av det. Symtomatisk behandling av allergi räcker vid mindre svår allergi. Patienter med svårare allergi bör behandlas med allergen immunterapi (AIT). De nuvarande alternativen för AIT är effektiva men långvariga, förknippade med biverkningar och kräver mycket tid från patienten. Med Intralymfatisk immunterapi (ILIT) injiceras allergen i lymfkörteln under ultraljudsledning. ILIT är komplett efter 3 behandlingsbesök, kan vara effektivare än och kan ha markant färre biverkningar än de nuvarande tillgängliga metoderna för AIT.
Utredarna planerar en randomiserad, parallell grupp, öppen, prospektiv fallkontrollstudie för att bedöma immunologiska förändringar i lymfkörtel och perifert blod efter intralymfatisk (ILIT) eller subkutan (SCIT) immunterapi med POLVAC.
Interventionen består av en ultraljudsstyrd injektion av allergen i inguinal lymfkörtel eller subkutan injektion 1 cm bredvid lymfkörteln. Interventionens kvalitet (injektionens noggrannhet) kommer att bedömas av den administrerande läkaren under behandlingen och via videoinspelning på ultraljudsapparaten. Biverkningar i samband med behandlingen kommer att registreras av patienterna i 3 dagar efter injektionen.
Effekten av intralymfatisk eller subkutan injektion på lymfkörtelvävnad och immunglobuliner E och G4 i serum samt cellulära analyser av lymfkörtelvävnad och perifert blod kommer att bestämmas i prover som tas under försöket.
Den primära effektparametern är effekten av en enda intralymfatisk allergeninjektion på immunologiska parametrar såväl som allergenleverans till lymfkörteln jämfört med en enda subkutan injektion.
Studieöversikt
Status
Intervention / Behandling
Detaljerad beskrivning
Detta är en prospektiv, jämförande, klinisk öppen pilotstudie. Från patienter med gräspollenallergi som genomgår ett SCIT-schema för säsong med Polvac™ Grass+RyeSCIT vid USZ Allergy Unit, kommer 30 patienter att rekryteras till studien.
Fyra till sex veckor efter avslutad SCIT-behandling (vid maximal underhållsdos) kommer patienterna att randomiseras till en av två behandlingsgrupper och få ytterligare en allergeninjektion. Båda behandlingsgrupperna får samma läkemedel, men med olika doser och administreringsvägar. Femton patienter kommer att tilldelas ytterligare en subkutan injektion med 0,5 ml (2000 U) Polvac Grass+Rye. De övriga 15 patienterna kommer att tilldelas en intralymfatisk injektion av 0,1 ml Polvac Grass+Rye med 400 U allergen. Både SCIT- och ILIT-injektioner utförs med hjälp av ultraljudsvägledning för att säkerställa injektion i lymfkörteln (ILIT) eller 1 cm bredvid lymfkörteln (SCIT).
FNA för lymfkörtelvävnad kommer att utföras 2, 6 eller 24 timmar efter allergeninjektion. Samtidigt kommer FNA för kontralaterala lymfkörtlar att utföras som baslinje. Venöst blod kommer att tas vid alla besök: vid baslinjen såväl som efter 2, 6 eller 24 timmar, efter 7 dagar och efter 28 dagar av allergenet ILIT eller SCIT. FNA utförs genom ultraljudsvägledning.
Läkemedelsberedning:
1 ml medicinflaskan (4000 U/ml) skakas i 10 sekunder. Flaskans huvud desinficeras och 0,5 ml (för SCIT) eller 0,1 ml (för ILIT) av läkemedlet dras upp i en 1 ml spruta med 23G injektionsnål som säkerställer att ingen luft finns i sprutan eller nålen. Läkemedlet används senast 4 timmar efter beredningen. Repliker av dosen görs om mer än en injektion ska utföras. Resterande medicin kasseras.
Finnålsaspiration (FNA):
FNA är minimalt invasivt och utförs av en erfaren utredare. Huden ovanför lymfkörteln kommer att desinficeras och en steril nål (23-25g), fäst vid 5 ml sprutan, fixerad i en FNA-pistol, kommer att föras in i lymfkörtelbarken under färgdoppler ultraljudsvägledning samtidigt som viktiga vävnader undviks. och organ, såsom stora blodkärl och nerver. Sprutans kolv dras för att ställa in förseglingen på en 2 ml skala för att bibehålla undertrycket i sprutan. Efter att ha roterat och aspirerat sprutan 5 gånger, roteras nålen för att aspirera i en solfjäderform vid olika banor i lymfkörteln. Nålen dras ut när ca. 0,1 ml vävnad finns i sprutan. Punkteringsstället täcks med steril gasväv och tryck appliceras med lämplig kraft i 10 min. Patienterna observeras under 30 minuters observation och släpps när inga biverkningar. FNA-provet kommer att sköljas med dimetylsulfoxid (DMSO)-innehållande levande cellfrysmedium (10 % DMSO och 90 % fetalt bovint serum (FBS)), läggas i ett kryorör och frysas i -80°C.
Bloduppsamling och konservering av celler och blodserum:
Venös blodinsamling utförs strax före SCIT/ILIT, 2, 6 eller 24 timmar efter SCIT/ILIT, och 7 och 28 efter SCIT/SLIT. Varje gång samlas 25 ml venöst blod upp för beredning av PBMC och 5 ml blod samlas in för beredning av serum. Båda proverna bearbetas med rutinmässiga interna metoder inom 2 timmar för beredning av serum och celler. Det producerade serumet delas upp i 1 ml prover och fryses vid -20 °C för senare analys. Helblod centrifugeras på Ficoll och PBMC:erna isoleras och tvättas i PBS innan de återsuspenderas i DMSO-innehållande frysmedium för levande celler. 1 ml alikvoter av cellerna fryss långsamt i kryorör och förvaras slutligen vid -80 °C innan ytterligare analys.
Studietyp
Inskrivning (Faktisk)
Fas
- Tidig fas 1
Kontakter och platser
Studieorter
-
-
-
Zurich, Schweiz, 8091
- University Hospital Zurich
-
-
Deltagandekriterier
Urvalskriterier
Åldrar som är berättigade till studier
- Vuxen
Tar emot friska volontärer
Beskrivning
Inklusionskriterier:
- Patienter som har säsongsbetonad gräspolleninducerad rinokonjunktivit, vilket bekräftas av patienthistorien och typ-1-sensibilisering mot gräspollen i hud och/eller serum.
- Patienter som genomgår försäsongsbetonat korttidsschema med Polvac™ SCIT på USZ Allergy Unit hösten och vintern 2023 för behandling av allergisk rhinokonjunktivit.
Informerat samtycke enligt underskrift.
- Patienter är mellan 18 och 55 år när de undertecknar det informerade samtycket.
Exklusions kriterier:
- Känd eller misstänkt allergi mot tillsatser till studieprodukten
- Känd intolerans eller allergi mot fenol
- Planerad depåinjektion av steroider för behandling av allergisk rinokonjunktivit
- Okontrollerad astma eller svår astma med post bronkodilator FEV1<70 %, bestämt av utredaren
- Lungsjukdom med post bronkdilaterande FEV1 < 70 % av förutspått
- Lungsjukdom, perenn eller säsongsbetonad, med daglig användning av mer än 800 mikrogram inhalerad budesonid/dag (eller motsvarande)
- Behandling med omalizumab eller andra biologiska läkemedel mot allergi, AD, urtikaria eller astma.
- Allergisk reaktion inom de senaste 4 dagarna eller anafylaxi inom senaste månaden före planerad ILIT- eller SCIT-injektion.
Studieplan
Hur är studien utformad?
Designdetaljer
- Primärt syfte: Grundläggande vetenskap
- Tilldelning: Randomiserad
- Interventionsmodell: Parallellt uppdrag
- Maskning: Ingen (Open Label)
Vapen och interventioner
Deltagargrupp / Arm |
Intervention / Behandling |
|---|---|
|
Aktiv komparator: Subkutan immunterapi
Subkutan injektion av gräs-rågpollenallergenextrakt och mikrokristallint tyrosin. Enkeldos av 2000 U allergen i 0,5 ml. Doseringsform: vattensuspension. |
Vattenhaltig suspension av en samfällning av allergenextrakt och tyrosin
|
|
Experimentell: Intralymfatisk immunterapi
Subkutan injektion av gräs-rågpollenallergenextrakt och mikrokristallint tyrosin. Enkeldos på 400 U allergen i 0,1 ml. Doseringsform: vattensuspension. |
Vattenhaltig suspension av en samfällning av allergenextrakt och tyrosin
|
Vad mäter studien?
Primära resultatmått
Resultatmått |
Åtgärdsbeskrivning |
Tidsram |
|---|---|---|
|
Frekvens av behandlingsrelaterade immunceller i FNA-provet
Tidsram: 2, 6 eller 24 timmar efter allergeninjektion.
|
En FNA av en inguinal lymfkörtel kommer att utföras antingen 2, 6 eller 24 timmar efter allergeninjektion beroende på individuell randomisering.
Lymfkörtelvävnaden kommer att utvärderas med avseende på förändringar i cellulär sammansättning genom masscytometri (CyTOF).
Flera mätningar (ca.
30) kommer att aggregeras och beskrivas i en värmekarta.
|
2, 6 eller 24 timmar efter allergeninjektion.
|
|
Frekvens av behandlingsrelaterade immunceller i blodprovet
Tidsram: Första blödningen dag 0. Andra blödningen 2, 6 eller 24 timmar efter allergeninjektion. Tredje och fjärde blödningen dag 7 och 28.
|
Venöst blod kommer att samlas in först vid baslinjen (dag 0), sedan 2, 6 eller 24 timmar efter allergeninjektion beroende på randomiseringen, dagarna 7 och 28 efter allergeninjektion.
Blodet kommer att analyseras genom att mäta cellulär sammansättning i helblod med masscytometri (CyTOF).
Flera mätningar (ca.
30) kommer att aggregeras och beskrivas i en värmekarta.
|
Första blödningen dag 0. Andra blödningen 2, 6 eller 24 timmar efter allergeninjektion. Tredje och fjärde blödningen dag 7 och 28.
|
Sekundära resultatmått
Resultatmått |
Åtgärdsbeskrivning |
Tidsram |
|---|---|---|
|
Koncentration av allergenspecifika antikroppar som funktion av behandlingen
Tidsram: Dag 0, dag 7 och dag 28.
|
Allergenspecifika antikroppar kommer att mätas som enheter/ml i blod som samlats in vid baslinjen och efter 7 och 28 dagar.
|
Dag 0, dag 7 och dag 28.
|
|
Koncentration av leukocyter som en funktion av behandlingen
Tidsram: Dag 0. Därefter 2, 4 eller 24 timmar efter allergeninjektion. Sedan dag 7 och 28.
|
Ett differentiellt antal vita blodkroppar i blod som samlats in vid baslinjen och efter 2, 4 eller 24 timmar, eller efter 7 och 28 dagar efter behandling, kommer att mätas med hjälp av rutinmässig hematologisk diagnostik.
Cellantalet kommer att kvantifieras som antal celler per ml blod.
|
Dag 0. Därefter 2, 4 eller 24 timmar efter allergeninjektion. Sedan dag 7 och 28.
|
Samarbetspartners och utredare
Sponsor
Utredare
- Huvudutredare: Peter Schmid-Grendelmeier, Prof. MD, University Hospital Zurich, Dept. Dermatology
Publikationer och användbara länkar
Allmänna publikationer
- Senti G, Prinz Vavricka BM, Erdmann I, Diaz MI, Markus R, McCormack SJ, Simard JJ, Wuthrich B, Crameri R, Graf N, Johansen P, Kundig TM. Intralymphatic allergen administration renders specific immunotherapy faster and safer: a randomized controlled trial. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008 Nov 18;105(46):17908-12. doi: 10.1073/pnas.0803725105. Epub 2008 Nov 10.
- Skaarup SH, Schmid JM, Skjold T, Graumann O, Hoffmann HJ. Intralymphatic immunotherapy improves grass pollen allergic rhinoconjunctivitis: A 3-year randomized placebo-controlled trial. J Allergy Clin Immunol. 2021 Mar;147(3):1011-1019. doi: 10.1016/j.jaci.2020.07.002. Epub 2020 Jul 15.
- Skaarup SH, Graumann O, Schmid J, Bjerrum AS, Skjold T, Hoffmann HJ. The number of successful injections associates with improved clinical effect in intralymphatic immunotherapy. Allergy. 2021 Jun;76(6):1859-1861. doi: 10.1111/all.14642. Epub 2020 Nov 16. No abstract available.
- Senti G, Johansen P, Kundig TM. Intralymphatic immunotherapy: from the rationale to human applications. Curr Top Microbiol Immunol. 2011;352:71-84. doi: 10.1007/82_2011_133.
- Aini NR, Mohd Noor N, Md Daud MK, Wise SK, Abdullah B. Efficacy and safety of intralymphatic immunotherapy in allergic rhinitis: A systematic review and meta-analysis. Clin Transl Allergy. 2021 Aug 17;11(6):e12055. doi: 10.1002/clt2.12055. eCollection 2021 Aug.
- Jiang S, Xie S, Tang Q, Zhang H, Xie Z, Zhang J, Jiang W. Evaluation of Intralymphatic Immunotherapy in Allergic Rhinitis Patients: A Systematic Review and Meta-analysis. Mediators Inflamm. 2023 May 8;2023:9377518. doi: 10.1155/2023/9377518. eCollection 2023.
- Werner MT, Bosso JV. Intralymphatic immunotherapy for allergic rhinitis: A systematic review and meta-analysis. Allergy Asthma Proc. 2021 Jul 1;42(4):283-292. doi: 10.2500/aap.2021.42.210028.
- Hoang MP, Seresirikachorn K, Chitsuthipakorn W, Snidvongs K. Intralymphatic immunotherapy for allergic rhinoconjunctivitis: a systematic review and meta-analysis. Rhinology. 2021 Jun 1;59(3):236-244. doi: 10.4193/Rhin20.572.
- Heath MD, Mohsen MO, de Kam PJ, Carreno Velazquez TL, Hewings SJ, Kramer MF, Kundig TM, Bachmann MF, Skinner MA. Shaping Modern Vaccines: Adjuvant Systems Using MicroCrystalline Tyrosine (MCT(R)). Front Immunol. 2020 Nov 24;11:594911. doi: 10.3389/fimmu.2020.594911. eCollection 2020.
Studieavstämningsdatum
Studera stora datum
Studiestart (Faktisk)
Primärt slutförande (Faktisk)
Avslutad studie (Faktisk)
Studieregistreringsdatum
Först inskickad
Först inskickad som uppfyllde QC-kriterierna
Första postat (Faktisk)
Uppdateringar av studier
Senaste uppdatering publicerad (Faktisk)
Senaste inskickade uppdateringen som uppfyllde QC-kriterierna
Senast verifierad
Mer information
Termer relaterade till denna studie
Ytterligare relevanta MeSH-villkor
Andra studie-ID-nummer
- 2023-00821
Plan för individuella deltagardata (IPD)
Planerar du att dela individuella deltagardata (IPD)?
IPD-planbeskrivning
Läkemedels- och apparatinformation, studiedokument
Studerar en amerikansk FDA-reglerad läkemedelsprodukt
Studerar en amerikansk FDA-reglerad produktprodukt
Denna information hämtades direkt från webbplatsen clinicaltrials.gov utan några ändringar. Om du har några önskemål om att ändra, ta bort eller uppdatera dina studieuppgifter, vänligen kontakta register@clinicaltrials.gov. Så snart en ändring har implementerats på clinicaltrials.gov, kommer denna att uppdateras automatiskt även på vår webbplats .