Esta página se tradujo automáticamente y no se garantiza la precisión de la traducción. por favor refiérase a versión inglesa para un texto fuente.

Nueva aplicación del sistema de mutación in vitro secuencial para pacientes infértiles con síndrome de ovario poliquístico

10 de diciembre de 2018 actualizado por: Yanhong Deng, Sun Yat-sen University

Nueva aplicación del sistema de cultivo secuencial de ovocitos y mutación in vitro para pacientes con infertilidad con síndrome de ovario poliquístico: un ensayo clínico aleatorizado prospectivo multicéntrico

La maduración in vitro de ovocitos (IVM, por sus siglas en inglés) es una tecnología de reproducción artificial (ART, por sus siglas en inglés) en la que se recolectan complejos de cúmulos y ovocitos (COC, por sus siglas en inglés) en la etapa de vesícula germinal inmadura (GV, por sus siglas en inglés) de ovarios no estimulados o cebados con FSH y se maduran in vitro antes de la fertilización. La IVM se ha propuesto como una alternativa de TRA más cómoda para el paciente que la FIV convencional. A diferencia de la FIV, la IVM es el único método de TRA sin casos informados de SHO. Por lo tanto, los pacientes con SOP representan la población objetivo principal para el tratamiento con IVM.

En la práctica clínica de IVM estándar, los AOC se aspiran de ovarios no estimulados o levemente estimulados y se eliminan rápidamente de la influencia inhibidora meiótica del folículo y el líquido folicular. Independientemente del tratamiento con gonadotrofinas in vitro, los ovocitos maduran espontáneamente in vitro, por lo que experimentan una reanudación meiótica en ausencia de la cascada elaborada habitual de señales moleculares endocrinas y paracrinas que inducen la maduración in vivo. Como tal, la maduración de los ovocitos mediante técnicas estándar de IVM es un artefacto que compromete la capacidad de desarrollo posterior de los ovocitos. Se han propuesto varios estudios para mejorar la eficiencia del sistema IVM. La sincronización de la maduración meiótica y citoplasmática en ovocitos antrales detenidos en la etapa GV inmadura sigue siendo un desafío importante y es de fundamental importancia para una fertilización exitosa. Los altos niveles intraovocitos de monofosfato de adenosina cíclico (cAMP) son cruciales para mantener los ovocitos casi completamente desarrollados bajo detención meiótica e inducir la maduración de los ovocitos. La investigación en modelos animales ha indicado que una caída no fisiológica de los niveles de AMPc en el ovocito da como resultado una maduración nuclear y citoplasmática asíncrona.

Los investigadores han informado sobre el desarrollo de un nuevo sistema de maduración de ovocitos secuencial simulado in vitro. Es fundamental para el éxito del enfoque una fase previa a la MIV que genere un rápido aumento en los niveles de cAMP de COC. En segundo lugar, el sistema utiliza una fase IVM extendida que contiene suficiente FSH para impulsar la inducción meiótica en presencia de un inhibidor de la PDE de tipo 3. Los altos niveles de cAMP en el ovocito y la naturaleza inducida de la maduración del ovocito imitan algunas de las señales moleculares clave recientemente caracterizadas que ocurren durante la maduración del ovocito in vivo. Los elementos técnicos y conceptuales se desarrollaron primero utilizando AOC de ratón, bovino y humano. Los investigadores proponen un ensayo clínico aleatorizado para comparar un nuevo sistema de cultivo secuencial con el sistema estándar tradicional de IVM de ovocitos para pacientes con SOP.

Descripción general del estudio

Descripción detallada

Se llevará a cabo un ensayo clínico multicéntrico, prospectivo y aleatorizado para comparar el sistema IVM de ovocitos secuenciales con el sistema IVM de ovocitos tradicional para pacientes con SOP de alto riesgo de OHSS (AMH>5,6 ng/ml). Los criterios de inclusión serán pacientes infértiles diagnosticadas según los criterios chinos de SOP, menores de 35 años y sin otros factores conocidos que interfieran en las funciones reproductivas o metabólicas. Se incluirán 300 pacientes con SOP y se aleatorizarán en cualquiera de dos grupos: el grupo A administrará el sistema IVM de ovocitos secuencial y el grupo B administrará el sistema IVM de ovocitos estándar tradicional. La comparación se realizará entre grupos, y ambos grupos se realizan con la administración de HMG y congelación por vitrificación de embriones. El resultado primario del estudio es la tasa de nacidos vivos. El desarrollo del embrión y los resultados del embarazo serán objeto de seguimiento y comparación entre grupos.

Tipo de estudio

Intervencionista

Inscripción (Anticipado)

300

Fase

  • Fase 3

Contactos y Ubicaciones

Esta sección proporciona los datos de contacto de quienes realizan el estudio e información sobre dónde se lleva a cabo este estudio.

Ubicaciones de estudio

      • Shanghai, Porcelana, 200072
        • Tenth People's Hospital of Tongji University
    • Guangdong
      • Guangzhou, Guangdong, Porcelana, 510610
        • The Sixth Affiliated Hospital, Sun Yat-sen University
    • Jiangsu
      • Nanjing, Jiangsu, Porcelana, 210029
        • Jiangsu Province Hospital
    • Shandong
      • Jinan, Shandong, Porcelana, 250001
        • Reproductive medical hospital affiliated to Shandong University
    • Zhejiang
      • Wenzhou, Zhejiang, Porcelana, 325000
        • The First Affiliated Hospital of Wenzhou Medical University

Criterios de participación

Los investigadores buscan personas que se ajusten a una determinada descripción, denominada criterio de elegibilidad. Algunos ejemplos de estos criterios son el estado de salud general de una persona o tratamientos previos.

Criterio de elegibilidad

Edades elegibles para estudiar

No mayor que 35 años (Niño, Adulto)

Acepta Voluntarios Saludables

No

Géneros elegibles para el estudio

Femenino

Descripción

Criterios de inclusión:

  1. Mujeres de edad ≤35 años;
  2. nivel de AMH ≥5,6 ng/ml;
  3. Mujeres diagnosticadas de SOP según los criterios de diagnóstico chinos de SOP;
  4. Consentimiento informado por escrito.

Criterio de exclusión:

  • Mujeres con diagnóstico de anomalía del útero, adenomiosis, mioma submucoso, adherencia intrauterina;
  • Mujeres con diagnóstico de hidrosálpinx no tratado;
  • Mujeres que se habían sometido a ovariectomía unilateral;
  • Mujeres con condición médica que represente contraindicación para tecnología de reproducción asistida o embarazo;
  • Mujeres o su pareja con cariotipo cromosómico anormal;
  • Pareja masculina con oligoastenozoospermia o azoospermia obstructiva;
  • Pareja masculina cuyo esperma se recolecta mediante cirugía;
  • Los sujetos se encuentran incumpliendo los criterios de inclusión, o de acuerdo con los criterios de exclusión durante la prueba, excluidos;
  • Los pacientes solicitan el retiro y salen del ensayo porque ocurren eventos adversos durante el ensayo.

Plan de estudios

Esta sección proporciona detalles del plan de estudio, incluido cómo está diseñado el estudio y qué mide el estudio.

¿Cómo está diseñado el estudio?

Detalles de diseño

  • Propósito principal: Tratamiento
  • Asignación: Aleatorizado
  • Modelo Intervencionista: Asignación paralela
  • Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)

Armas e Intervenciones

Grupo de participantes/brazo
Intervención / Tratamiento
Experimental: grupo de IVM de ovocitos secuenciales
A partir del día 7~9 del ciclo menstrual, se administrarán 225 UI de HMG (Menotrophins for Injection) por día durante 3 días. Los AOC se extrajeron del líquido folicular aspirado y se transfirieron a un medio de recolección tamponado con HEPES. Los ovocitos inmaduros se cultivarán en medio 1 de IVM secuencial durante 6 horas (37 ℃, 5 % de CO2) y se retirarán al medio 2 de IVM secuencial para continuar con el cultivo. Tras 24 y 40 horas de cultivo, los ovocitos maduros serán fecundados mediante inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI). Dos de los embriones D3 (si están disponibles) que se clasificaron como embriones de máxima calidad se vitrificarán y el resto de los embriones se cultivarán de forma extensiva. La transferencia de embriones descongelados (TET) dará preferencia a los embriones D3 y se realizará con un ciclo de reemplazo hormonal.
Los ovocitos inmaduros se cultivarán en medio 1 IVM de ovocitos secuenciales durante 6 horas (37 ℃, 5 % de CO2). Después de enjuagar 3 veces, los AOC se retiraron en medio 2 de IVM de ovocitos secuenciales para su posterior cultivo.
inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI)
Los pacientes administran estrógeno (Progynova) 3 mg dos veces al día durante 10 a 12 días. A partir del día en que el endometrio alcance un grosor de 8 mm o más, se administrará apoyo para la fase lútea con 10 mg de progesterona (Dydrogesterone Tablets) tres veces al día y utrogestán (Laboratories Besins International, París, Francia) 0,2 g tres veces al día, hasta 14 días después de la transferencia de embriones.
Comparador activo: grupo tradicional de ovocitos IVM
A partir del día 7~9 del ciclo menstrual, se administrarán 225 UI de HMG (Menotrophins for Injection) por día durante 3 días. El día de la ovulación, se aspiraron los AOC y los ovocitos inmaduros se cultivarán en el sistema IVM de ovocitos estándar tradicional (Sage). A las 30 y 44 horas del cultivo se evaluará la madurez de los ovocitos y se procederá a la fecundación de los ovocitos maduros mediante inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI). Dos de los embriones D3 (si están disponibles) que se clasificaron como embriones de máxima calidad se vitrificarán y el resto de los embriones se cultivarán de forma extensiva. La transferencia de embriones descongelados (TET) dará preferencia a los embriones D3 y se realizará con un ciclo de reemplazo hormonal. Si no se logra el embarazo bioquímico, se realizará la transferencia de blastocistos descongelados.
inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI)
Los pacientes administran estrógeno (Progynova) 3 mg dos veces al día durante 10 a 12 días. A partir del día en que el endometrio alcance un grosor de 8 mm o más, se administrará apoyo para la fase lútea con 10 mg de progesterona (Dydrogesterone Tablets) tres veces al día y utrogestán (Laboratories Besins International, París, Francia) 0,2 g tres veces al día, hasta 14 días después de la transferencia de embriones.
Se aspiraron los COC y los ovocitos inmaduros se cultivarán en el sistema IVM de ovocitos estándar tradicional (Sage). 30 y 44 horas después del cultivo, se evaluará la madurez de los ovocitos.
Otros nombres:
  • sabio

¿Qué mide el estudio?

Medidas de resultado primarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Tasa de embarazo clínico
Periodo de tiempo: 7 semanas de gestación
El latido del corazón fetal en un saco gestacional intrauterino bajo ultrasonido se definirá como embarazo clínico.
7 semanas de gestación

Medidas de resultado secundarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Tasa de maduración de ovocitos
Periodo de tiempo: 30 y 46 horas después de la extracción de ovocitos
Tasa de maduración de ovocitos (%): número de ovocitos MII/número de ovocitos recuperados.
30 y 46 horas después de la extracción de ovocitos
Tasa de fertilización
Periodo de tiempo: 30 y 46 horas después de la extracción de ovocitos
Tasa de fecundación (%): número de ovocitos fecundados/número de ovocitos recuperados.
30 y 46 horas después de la extracción de ovocitos
Tasa de escisión
Periodo de tiempo: 24 horas después de la ICSI
Tasa de clivaje (%): número de clivajes/número de embriones 2PN.
24 horas después de la ICSI
Tasa de embriones del día 3
Periodo de tiempo: 72 horas después de ICSI
Tasa de embriones del día 3 (%): número de embriones del día 3 / número de embriones 2PN.
72 horas después de ICSI
Tasa de embriones de buena calidad en la etapa de escisión
Periodo de tiempo: 72 horas después de ICSI
Tasa de embriones de buena calidad en etapa de división (%): número de embriones de buena calidad en etapa de división / número de embriones 2PN.
72 horas después de ICSI
Número de ciclos con embrión disponible
Periodo de tiempo: 72 horas después de ICSI
Los embriones disponibles se definirán como tres días después de la extracción de ovocitos que contienen más de 4 células y grado 1 a 2 o que contienen 4 células con grado 1.
72 horas después de ICSI
Tasa de blastulación
Periodo de tiempo: 144 horas después de ICSI
Tasa de blastulación (%): número de blastocistos / número de embriones 2PN.
144 horas después de ICSI
Tasa bioquímica de embarazo
Periodo de tiempo: 4 semanas de gestación
Un nivel sérico de β-hCG superior a 5 UI/L, que se realiza 12 días después de la transferencia de embriones, se definirá como embarazo bioquímico.
4 semanas de gestación
Tasa de implantación
Periodo de tiempo: 7 semanas de gestación
La tasa de implantación se definirá como el número de sacos gestacionales vistos en la ecografía dividido por el número total de embriones transferidos.
7 semanas de gestación
Tasa de aborto espontáneo (en el primer trimestre)
Periodo de tiempo: 28 semanas de gestación como máximo
El aborto espontáneo en el primer trimestre se definirá por cualquier prueba de embarazo positiva que resulte en una pérdida del embarazo antes de las 12 semanas de gestación.
28 semanas de gestación como máximo
Tasa de embarazo acumulada
Periodo de tiempo: 1-2 años
La tasa de embarazo acumulada se definirá como embarazos clínicos con latidos cardíacos fetales intrauterinos detectados dividido por el número de ciclos de recuperación cuyos embriones se transfieren todos.
1-2 años
Tasa de nacimientos prematuros
Periodo de tiempo: 1-2 años
Parto prematuro significa que el bebé nace antes de la semana 37 de embarazo en China.
1-2 años
Peso al nacer del recién nacido
Periodo de tiempo: 1-2 años
Peso al nacer del recién nacido
1-2 años
Tasa de complicaciones neonatales
Periodo de tiempo: dentro de un mes después del trabajo de parto
Recogeremos las complicaciones que se presenten en el neonato incluyendo el ingreso a la unidad de cuidados intensivos neonatales (UCIN), hospitalización, etc.
dentro de un mes después del trabajo de parto
Tasa de nacidos vivos
Periodo de tiempo: 1-2 años
Tasa de nacidos vivos (%): número de nacidos vivos/ciclo transferido.
1-2 años

Colaboradores e Investigadores

Aquí es donde encontrará personas y organizaciones involucradas en este estudio.

Fechas de registro del estudio

Estas fechas rastrean el progreso del registro del estudio y los envíos de resultados resumidos a ClinicalTrials.gov. Los registros del estudio y los resultados informados son revisados ​​por la Biblioteca Nacional de Medicina (NLM) para asegurarse de que cumplan con los estándares de control de calidad específicos antes de publicarlos en el sitio web público.

Fechas importantes del estudio

Inicio del estudio (Anticipado)

1 de diciembre de 2018

Finalización primaria (Anticipado)

1 de julio de 2019

Finalización del estudio (Anticipado)

1 de marzo de 2020

Fechas de registro del estudio

Enviado por primera vez

8 de diciembre de 2018

Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad

10 de diciembre de 2018

Publicado por primera vez (Actual)

12 de diciembre de 2018

Actualizaciones de registros de estudio

Última actualización publicada (Actual)

12 de diciembre de 2018

Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad

10 de diciembre de 2018

Última verificación

1 de diciembre de 2018

Más información

Términos relacionados con este estudio

Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio

Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.

No

Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.

No

Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .

Suscribir