- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT05047757
Biodisponibilidad de aminoácidos de habas (Leg4Life)
Biodisponibilidad de proteínas y aminoácidos de habas en voluntarios sanos
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
El objetivo es determinar la calidad nutricional de la proteína de haba en humanos sanos, especialmente en términos de digestibilidad de aminoácidos. La digestibilidad ileal se determina en digesta ileal recolectada posprandialmente con un tubo naso-ileal. Las habas están intrínsecamente etiquetadas en 15N para rastrear el nitrógeno dietético y los aminoácidos en las muestras.
Aspectos éticos y normativos:
El protocolo fue presentado al Comité de Ética para su aprobación ya la Agencia Francesa de Medicamentos y Salud para la autorización administrativa. El tratamiento de los datos personales se realizará de conformidad con el reglamento de protección de datos personales ("reglamento n° 2018-493 del 20 de junio de 2018").
Comida:
La comida consistirá en 250 g de habas cocidas y peladas, para aportar 20 g de proteína. Se realizarán pruebas sensoriales para optimizar las propiedades organolépticas de la harina. El frijol etiquetado 15N se hervirá en agua con sal. En la mañana del experimento, se calentará la porción de habas.
Voluntarios:
Se incluirán ocho sujetos en el estudio. Los investigadores planean reclutar alrededor de 16 voluntarios para adaptarse a los abandonos habituales del 50 %.
Una semana antes del experimento, los voluntarios seguirán una dieta estándar adaptada a su peso corporal para controlar su aporte proteico (1,3 g de proteína/kg de peso corporal). Se les pedirá que consuman de una a 3 porciones de habas en la semana.
Los voluntarios llegarán al Centro de Investigación de Nutrición Humana del Hospital Avicenne la mañana anterior al día del experimento. Estarán equipados con un tubo intestinal de doble luz que se dejará avanzar por el tracto intestinal durante 24h. Uno de los lúmenes es radiopaco y sirve para perfundir un fabricante no absorbible en el intestino (método de marcador lento). El otro lumen está dedicado a la aspiración continua de los efluentes, 15 cm por debajo del sitio de perfusión. La medición del marcador no absorbible en los efluentes permite determinar el caudal del efluente.
El día del experimento se comprobará radiográficamente la posición del tubo para verificar su ubicación en el íleon terminal. Se insertará un catéter en la vena del antebrazo para tomar muestras de sangre. La perfusión del marcador no absorbible, PEG-4000 (20 g/l), comenzará a un caudal de 1 ml/min. Se recogerá el flujo intestinal y la muestra de íleon basal durante 30 min. Se tomará una muestra de plasma basal.
Luego, en t=0, los voluntarios beberán la comida de prueba. Hasta t=8h, el contenido intestinal se recogerá continuamente mediante aspiración y se agrupará cada 30 minutos. Se tomarán muestras de sangre cada 30 minutos durante 4 hy cada hora a partir de entonces. La orina se recogerá cada 2 h durante 8 h.
Los sujetos recogerán muestras de heces en casa durante las 48 h posteriores a la comida. Las heces se enviarán a Finlandia.
Mediciones:
En la digesta:
PEG-4000 por método turbidimétrico, enriquecimiento de N total y 15N por EA-IRMS, concentraciones de aminoácidos por UPLC (después de la hidrólisis ácida HCl 6N a 110°C durante 24h), enriquecimiento de 15N aminoácidos por GC-c-IRMS (después de la purificación en resina de intercambio catiónico y derivatización).
En el plasma:
Glucosa, urea (métodos colorimétricos), insulina (ELISA), concentraciones de aminoácidos (UPLC), enriquecimiento 15N en proteínas plasmáticas, urea y aminoácidos libres (EA-IRMS, previa purificación en resina de intercambio catiónico y derivatización).
En la orina:
Urea (método colorimétrico) y urea 15N (EA-IRMS, tras purificación en resina de intercambio catiónico y derivatización).
En las heces:
ADN microbiano.
Resultados:
Digestibilidad ileal real de proteínas y aminoácidos (pérdidas digestivas), Desaminación posprandial (pérdidas metabólicas), Utilización neta de proteínas posprandiales, Composición de la microbiota.
Tipo de estudio
Inscripción (Actual)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Ubicaciones de estudio
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Ile-de-France
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Bobigny, Ile-de-France, Francia, 93000
- Centre de Recherche sur Volontaires (CRV), Hospital Avicenne
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Descripción
Criterios de inclusión:
- 18<IMC<30
- Buena salud (OMS=0)
- Para la mujer: uso de anticonceptivos
Criterio de exclusión:
- alergia a las legumbres
- alergia al látex
- mujeres embarazadas
- Serología positiva para AgHBS, AcHbc, HCV, HIV
- Test PCR positivo para SARS-Cov2
- Anemia
- Consumo excesivo de alcohol
- Hipertensión, diabetes, enfermedades digestivas, hepáticas o renales, enfermedad cardiaca
- Ejercicio>7h/semana
- Donación de sangre en los 3 meses anteriores al estudio
- Participación en otro estudio clínico dentro de los 3 meses anteriores al estudio
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Ciencia básica
- Asignación: N / A
- Modelo Intervencionista: Asignación de un solo grupo
- Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
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Experimental: Haba
La intervención consiste en una comida de prueba que contiene 250 g de habas cocidas y peladas, para aportar 20 g de proteína.
Las habas están intrínsecamente etiquetadas con 15N.
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Ingestión de una comida de prueba etiquetada con 15N.
Los sujetos están equipados con un tubo nasoileal.
Se sigue el 15N en fluidos biológicos (plasma, efluentes, orinas).
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Digestibilidad ileal de proteínas y aminoácidos
Periodo de tiempo: -30 minutos a 8 horas después de la comida de prueba
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La medición de nitrógeno (mmol) y enriquecimiento de 15N (% de átomos) en muestras de íleon permite determinar la cantidad de nitrógeno dietético en el lumen. La medición de la concentración de aminoácidos (mmol) y su enriquecimiento individual de 15N (% de átomos) permite determinar los aminoácidos de la dieta que quedan en el lumen. Los aminoácidos de la dieta y el nitrógeno de la dieta que se recuperan en las muestras ileales se consideran no absorbidos. |
-30 minutos a 8 horas después de la comida de prueba
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Utilización neta posprandial de proteínas (NPPU)
Periodo de tiempo: 0 a 8 horas después de la comida de prueba
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La medición de urea (mmol) y el enriquecimiento de urea en 15N (% de átomos) permiten determinar la cantidad de N dietético que se transfirió a urea, contabilizando así las pérdidas metabólicas.
Las pérdidas metabólicas de N dietético, junto con las pérdidas digestivas de N dietético, no se retienen en el cuerpo.
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0 a 8 horas después de la comida de prueba
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microbiota intestinal en respuesta a la ingestión de habas 15N
Periodo de tiempo: 0 a 2 días después de la comida de prueba
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Secuenciación de ADN microbiano
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0 a 2 días después de la comida de prueba
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Metabolitos de nitrógeno en sangre en respuesta a la ingestión de habas 15N
Periodo de tiempo: 0 a 8 horas después de la comida de prueba
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urea y aminoácidos (mmol/l)
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0 a 8 horas después de la comida de prueba
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Glucosa plasmática en sangre en respuesta a la ingestión de habas 15N
Periodo de tiempo: 0 a 8 horas después de la comida de prueba
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glucosa plasmática (mmol/l)
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0 a 8 horas después de la comida de prueba
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Insulina plasmática en sangre en respuesta a la ingestión de habas 15N
Periodo de tiempo: 0 a 8 horas después de la comida de prueba
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insulina plasmática (pmol/l)
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0 a 8 horas después de la comida de prueba
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Digestibilidad del almidón en respuesta a la ingestión de habas.
Periodo de tiempo: -30 minutos a 8 horas después de la comida de prueba
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La medición de glucosa a partir de almidón en muestras ileales permite determinar la cantidad de almidón no digerido en la luz.
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-30 minutos a 8 horas después de la comida de prueba
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Colaboradores e Investigadores
Investigadores
- Director de estudio: Claire Gaudichon, PhD, Prof, AgroParisTech
- Investigador principal: Robert Benamouzig, MD, Prof, APHP
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (Actual)
Finalización primaria (Actual)
Finalización del estudio (Actual)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (Actual)
Actualizaciones de registros de estudio
Última actualización publicada (Actual)
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
Última verificación
Más información
Términos relacionados con este estudio
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Otros números de identificación del estudio
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Plan de datos de participantes individuales (IPD)
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Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
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