Ferumoksitolinanohiukkasten uusi kliininen käyttö: Antibiofilmihoito

Potilaita, jotka saapuvat Pennsylvanian yliopiston hammaslääketieteen koulun endodontian osastolle kroonista apikaalista parodontiittia sairastavien infektoituneiden, nekroottisten hampaiden arvioimiseksi ja rutiininomaiseen endodontiaan, pyydetään osallistumaan tutkimukseen, jos he täyttävät osallistumiskriteerit ja osallistuvat vapaaehtoisesti. . Kun potilaan kelpoisuus on varmistettu, potilas määrätään hoitoihin arvottamalla laatikosta, jota pidettiin lukitussa kaapissa. Ennen hoitoa potilaalle tiedotetaan perusteellisesti tutkimuksen luonteesta, mahdollisista riskeistä ja vaihtoehdoista sekä juurihoitohoidosta. Potilaille esitetään kirjallinen suostumuslomake yllämainituista tutkimuksen ominaisuuksista sekä säännölliset suostumuslomakkeet juurihoitoa varten, mukaan lukien suostumuslomake endodontiaan, tietosuojakäytäntöjen tunnustaminen sekä potilaan ymmärrys- ja tietoinen suostumuslomake. Lyhyesti sanottuna potilas nukutetaan ja hammas eristetään kumilla. 30 % H2O2 ja sen jälkeen 3 % NaOCl käytetään desinfioimaan hampaat ja kumipohja. Karieksen poisto ja endodonttinen pääsy suoritetaan steriileillä nopealla kovametalliporilla. Steriileillä poranterillä ja steriilillä suolaliuoksella tehdyn käsittelyn jälkeen termoplastinen guttaperkka asetettiin tilapäisesti tukkimaan aukko. Kenttä massakammioineen puhdistetaan ja desinfioidaan edellä kuvatulla tavalla. NaOCl neutraloidaan 10 % natriumtiosulfaatilla. Kontaminaatiokontrollinäyte (S0) otetaan sisäisestä kavospinnan kulmasta, jossa paperipisteet vahingossa koskettavat näytteenoton aikana. Ensimmäisen pääsyn jälkeen juurikanavan aukkoihin mitataan työpituus ja kohdekanavista otetaan bakteriologinen näyte ( S1). Steriilit paperipisteet asetetaan kanavaan, annetaan kyllästyä ja siirretään sitten pulloon, joka sisältää nestemäistä hammaskuljetusainetta (LDT). NaOCl-ryhmälle (positiivinen kontrolli) kanavat instrumentoidaan kokoon 25/0,04 asti kavenna käyttämällä 2 ml 3 % NaOCl:a tiedostojen välissä. Ferumoksitoli/H2O2-ryhmässä kanavat instrumentoidaan kokoon 25/0,04 asti kapenee käyttämällä 2 ml seosta, jossa on 6 mg/ml ferumoksitolia ja 3 % H202:ta. Vain suolaliuosryhmässä kanavat instrumentoidaan kokoon 25/0.04 asti kavenna 2 ml:lla suolaliuosta. Kun lopullinen 25/0,04 kartiomaisen apikaalisen koko on saavutettu, otetaan toinen bakteerinäyte (S2). Ennen kaikkia näytteitä natriumhypokloriitti, Feramehe/H2O2 ja suolaliuos. Kanavan sisältö deaktivoidaan natriumtiosulfaatilla NaOCl:a varten, ja suolaliuosta käytetään Fer/H2O2- ja suolaliuoskäsittelyissä. Pesuvaihe 1 ml:lla suolaliuosta suoritettiin deaktivoivan liuoksen pesemiseksi, ja paperikärkiä käytettiin kanavien kuivaamiseen. Toinen bakteerinäyte otettiin (S2) asettamalla LDT:tä kanavan sisään sekoittaen 25/0,02 Hedstrom-käsiviila, jonka jälkeen sisältö imetään kanavaan 2 paperipisteellä 30 sekunnin ajan. Paperipisteet sijoitetaan LDT:tä sisältävään putkeen. Rutiininomaisen juurihoitohoidon loput hoitojaksot suoritetaan näiden toimenpiteiden jälkeen, mukaan lukien juurenpään lisälaajennus ja lopullinen rutiinihuuhteluprotokolla. Juurikanavat kuivataan paperipisteillä, laitetaan lääkitys (kalsiumhydroksidi) ja hampaat tiivistetään väliaikaisella täytteellä. Potilaat palaavat 1–4 viikon kuluttua juurien täytön suorittamista varten. Minkään ryhmän osalta tämän tutkimuksen aikana suoritetut hoitotoimenpiteet eivät poikkea tavanomaisesta juurikanavahoitoprotokollasta lukuun ottamatta lisähuuhteluvaihetta koeliuoksella ja bakteriologisia näytteenottomenetelmiä. Bakteriologiseen näytteenottoon käytetyt paperipisteet siirretään mikrobiologian laboratorioon 1 ml LDT:tä sisältävällä injektiopullolla. Laboratoriotoimenpiteet suoritetaan Pennsylvanian yliopiston Leon Levy Oral Health Sciences School of Dental Medicine -rakennuksessa mikrobiologian laboratoriossa Injektiopullojen etiketit sisältävät tiedot hampaiden numerosta, näytenumerosta (S0-S1-S2) ja koeryhmästä. Näytteet laimennetaan ja maljataan viljelylevyille. Viljelylevyjä inkuboidaan 37 °C:ssa anaerobisessa hansikaslokerossa, joka sisältää 5 % vetyä, 5 % CO2:ta ja loppu-N2:ta 5 päivän ajan. Inkuboinnin jälkeen pesäkkeitä muodostavien yksiköiden lukumäärä määritetään stereoskooppia käyttämällä. Tilastolliseen analyysiin käytetään ANOVAa ja Studentin t-testiä.