A ferumoxitol nanorészecskék új klinikai alkalmazása: Antibiofilm kezelés

A Pennsylvaniai Egyetem Fogorvostudományi Karának Endodontiai Osztályán jelentkező, krónikus apikális periodontitisben szenvedő fertőzött, nekrotikus fogak értékelése és rutin endodontiai kezelése céljából felkérjük a vizsgálatban való részvételre, ha megfelelnek a felvételi kritériumoknak, és önként jelentkeznek a részvételre. . A beteg jogosultságának megerősítése után a pácienst egy zárt szekrényben tárolt dobozból sorsolás útján kezelésekre osztják be. A kezelés előtt a betegeket alaposan tájékoztatják a vizsgálat természetéről, lehetséges kockázatairól és alternatíváiról, valamint a gyökérkezelésről. A betegek írásos beleegyezési űrlapot kapnak a fent említett vizsgálati jellemzőkre vonatkozóan, valamint a gyökérkezeléshez szokásos hozzájárulási űrlapokat, beleértve az endodonciai kezeléshez szükséges beleegyezési űrlapot, az adatvédelmi gyakorlatok elismerését, valamint a páciens megértését és a tájékozott beleegyező nyilatkozatot. Röviden: a pácienst elaltatják, és a fogat gumidámlással izolálják. 30% H2O2-t, majd 3% NaOCl-t használnak a fog és a gumiduzzasztó fertőtlenítésére. A fogszuvasodás eltávolítása és az endodonciai hozzáférés steril, nagy sebességű keményfém fúrókkal történik. Steril fúrókkal és steril fiziológiás sóoldattal végzett hozzáférés előkészítése után hőre lágyuló guttaperchát helyeztünk el, hogy ideiglenesen elzárjuk a szájnyílást. A mezőt, beleértve a cellulózkamrát is, a korábban leírtak szerint megtisztítják és fertőtlenítik. A NaOCl-t 10%-os nátrium-tioszulfáttal semlegesítjük. A szennyeződés-ellenőrző mintát (S0) abból a belső üregfelületi szögből veszik, ahol a papírpontok véletlenül összeérnek a mintavétel során. A gyökércsatorna-nyílásokhoz való kezdeti hozzáférés után megmérik a munkahosszt, és bakteriológiai mintát vesznek a megcélzott csatornákból ( S1). A steril papírhegyeket a csatornába helyezik, hagyják telítődni, majd áthelyezik egy folyékony fogászati ​​szállítóközeget (LDT) tartalmazó fiolába. A NaOCl csoport (pozitív kontroll) esetében a csatornákat 25/0,04 méretig kell műszerezni. A reszelők között 2 ml 3%-os NaOCl-t használva csökkentse. A Ferumoxytol/H2O2 csoport esetében a csatornákat 25/0,04 méretig kell műszerezni 2 ml 6 mg/ml ferumoxitol és 3% H2O2 keverékével csökkentsük. A csak sóoldattal rendelkező csoportok esetében a csatornák 25/0,04 méretig műszerezettek 2 ml sóoldattal csökkentse. Amikor elérjük a végső 25/0,04 kúpos csúcsméretet, egy második bakteriális mintát veszünk (S2). Minden mintavétel előtt nátrium-hipoklorit, Feramehe/H2O2 és sóoldat. A csatorna tartalmát nátrium-tioszulfáttal deaktiválják NaOCl-hoz, és sóoldatot használnak a Fer/H2O2 és sós kezelésekhez. A dezaktiváló oldatot 1 ml sóoldattal mossuk, a csatornákat pedig papírhegyekkel szárítjuk. Második baktériummintát vettünk (S2) úgy, hogy LDT-t helyeztünk a csatornába, és 25/0,02-vel kevertük. Hedstrom kézi reszelő, majd a tartalom felszívása a csatornába helyezett 2 papírponttal 30 másodpercig. A papírpontokat egy LDT-t tartalmazó csőbe helyezik. A rutin gyökérkezelés fennmaradó kezelési szekvenciáit ezen eljárások után hajtják végre, beleértve a gyökérvég további megnagyobbítását és az utolsó rutin öntözési protokollt. A gyökércsatornákat papírhegyekkel szárítjuk, gyógyszert (kalcium-hidroxidot) helyezünk, és ideiglenes pótlással lezárjuk a fogakat. A betegek egy-négy hét múlva térnek vissza a gyökértömés befejezésére. A vizsgálat során elvégzett kezelési eljárások egyik csoport esetében sem térnek el a standard gyökérkezelési protokolltól, kivéve a kísérleti oldattal végzett kiegészítő irrigációs lépést és a bakteriológiai mintavételi eljárásokat. A bakteriológiai mintavételhez használt papírpontokat egy 1 ml LDT-t tartalmazó fiola segítségével a mikrobiológiai laboratóriumba szállítják. A laboratóriumi eljárásokat a Pennsylvaniai Egyetem Leon Levy Oral Health Sciences épületében, a Dental Medicine School mikrobiológiai laboratóriumában végzik majd. A mintákat hígítjuk és tenyésztőlemezekre szélesztjük. A tenyésztőlemezeket 5% hidrogént, 5% CO2-t és egyensúlyi N2-t tartalmazó anaerob kesztyűtartóban 37°C-on inkubáljuk 5 napig. Az inkubáció után a telepképző egységek számát sztereoszkóppal határozzuk meg. A statisztikai elemzéshez ANOVA-t és Students t-tesztet használunk.