Новое клиническое применение наночастиц ферумокситола: лечение антибиопленок

Пациентам, поступающим на отделение эндодонтии Школы стоматологической медицины Пенсильванского университета для обследования и планового эндодонтического лечения инфицированных, некротических зубов с хроническим апикальным периодонтитом, будет предложено принять участие в исследовании, если они соответствуют критериям включения и добровольно примут участие. . После подтверждения права пациента на лечение ему будет назначено лечение путем вытягивания жребия из коробки, которая хранилась в запертом шкафу. Перед лечением пациенты будут подробно проинформированы о характере, потенциальных рисках и альтернативах исследования, а также лечения корневых каналов. Пациентам будет предоставлена ​​письменная форма согласия относительно вышеупомянутых характеристик исследования, а также обычные формы согласия на терапию корневых каналов, включая форму согласия на эндодонтическое лечение, подтверждение соблюдения конфиденциальности, а также форму понимания и информированного согласия пациента. Вкратце, пациенту введут анестезию, а зуб изолируют коффердамом. Для дезинфекции зуба и коффердама будет использоваться 30% H2O2, а затем 3% NaOCl. Удаление кариеса и эндодонтический доступ будут осуществляться стерильными высокоскоростными твердосплавными борами. После подготовки доступа стерильными борами и стерильного солевого раствора для временной блокировки отверстия была помещена термопластичная гуттаперча. Поле, включая пульповую камеру, очищается и дезинфицируется, как описано ранее. NaOCl нейтрализуют 10%-ным тиосульфатом натрия. Контрольный образец загрязнения (S0) будет взят из угла внутренней полой поверхности, где бумажные штифты случайно соприкоснутся во время отбора проб. После первоначального доступа к устьям корневых каналов будет измерена рабочая длина и взят бактериологический образец из целевых каналов ( С1). Стерильные бумажные штифты будут помещены в канал, оставлены на насыщение, а затем перенесены во флакон, содержащий жидкую стоматологическую транспортную среду (LDT). Для группы NaOCl (положительный контроль) каналы будут инструментироваться размером до 25/0,04. сужайтесь, используя 2 мл 3% NaOCl между файлами. Для группы Ферумокситол/H2O2 каналы будут обработаны инструментами размером до 25/0,04. уменьшайте дозу, используя 2 мл смеси 6 мг/мл ферумокситола с 3% H2O2. В группе, использующей только физиологический раствор, каналы будут оборудованы инструментами размером до 25/0,04. уменьшайте дозу, используя 2 мл физиологического раствора. Когда будет достигнут окончательный апикальный размер конуса 25/0,04, будет взят второй образец бактерий (S2). Перед отбором проб используйте гипохлорит натрия, Фераме/H2O2 и физиологический раствор. Содержимое канала будет дезактивировано тиосульфатом натрия вместо NaOCl, а для лечения Fer/H2O2 и солевым раствором будет использоваться промывка солевым раствором. Для промывки дезактивирующего раствора была проведена стадия промывки 1 мл физиологического раствора, а для сушки каналов использовались бумажные штифты. Второй образец бактерий был взят (S2) путем помещения LDT внутрь канала и перемешивания его с концентрацией 25/0,02. Ручной файл Хедстрема с последующей абсорбцией содержимого двумя бумажными штифтами, помещенными в канал на 30 секунд каждый. Бумажные штифты будут помещены в пробирку с ЛДТ. Остальные процедуры обычного лечения корневых каналов будут выполняться после этих процедур, включая дальнейшее расширение кончика корня и окончательный стандартный протокол ирригации. Корневые каналы будут высушены бумажными штифтами, введено лекарство (гидроксид кальция) и зубы запломбированы временной реставрацией. Пациенты возвращаются через одну-четыре недели для завершения пломбирования корня. Для любой из групп лечебные процедуры, проведенные в ходе данного исследования, не отличаются от стандартного протокола лечения корневых каналов, за исключением этапа дополнительной ирригации экспериментальным раствором и процедуры бактериологического отбора проб. Бумажные штифты, использованные для взятия бактериологического пробы, передаются в микробиологическую лабораторию во флаконе, содержащем 1 мл ЛДТ. Лабораторные процедуры будут проводиться в здании школы стоматологической медицины имени Леона Леви в лаборатории микробиологии Пенсильванского университета. Этикетки на флаконах будут содержать информацию о номере зуба, номере образца (S0-S1-S2) и экспериментальной группе. Образцы будут разбавлены и помещены в культуральные чашки. Культуральные чашки будут инкубироваться при 37°C в анаэробном перчаточном боксе, содержащем 5% водорода, 5% CO2 и баланс N2, в течение 5 дней. После инкубации количество колониеобразующих единиц определяют с помощью стереоскопа. Для статистического анализа будут использоваться ANOVA и t-критерий Стьюдента.