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- Essai clinique NCT02090374
Développement de modèles de provocation nasale humaine avec des constituants microbiens et du pollen de graminées
Développement de modèles de provocation nasale humaine avec des constituants microbiens et du pollen de graminées : monophosphoryl lipidA, poly-inosine-cytosine, poly-inosine-cytosine stabilisés avec de la poly-L-lysine et de la carboxyméthylcellulose, du résiquimod, de la tuberculine et du pollen de fléole des prés
Les chercheurs proposent le développement d'une gamme de modèles de provocation par pulvérisation nasale pour étudier la façon dont le nez peut répondre à différents types de provocation nasale qui provoquent différentes formes d'inflammation.
Les enquêteurs effectueront une provocation nasale avec des composants bactériens et viraux et des allergènes. De cette manière, la muqueuse nasale des voies respiratoires supérieures est sollicitée par des stimuli du système immunitaire, provoquant divers types d'inflammation. Des échantillons seront prélevés en tamponnant la surface de la narine et en grattant de minuscules échantillons de surface.
Le nez sera pulvérisé avec une substance qui est une partie d'une bactérie ou d'un virus, ou avec un allergène. Le matériel délivré par pulvérisation nasale est d'une grande pureté et est stérile, ne contenant ni bactéries ni virus vivants. La substance du spray nasal contient des motifs moléculaires reconnus comme étrangers par le système immunitaire et, à la bonne dose, devrait stimuler le système immunitaire, provoquant une légère inflammation nasale. L'étude utilise des méthodes non invasives d'échantillonnage à l'aide de bandes absorbantes. Ces bandes ressemblent à du papier de soie et sont appliquées sur chaque narine pendant une période de 1 min. Quelques échantillons de tissu de la taille d'une tête d'épingle sont prélevés à l'intérieur du nez, à l'aide d'une petite sonde en plastique stérile jetable munie d'une petite cuillère à son extrémité. Dans les échantillons de liquide et de tissus de la muqueuse nasale, la mesure sera prise d'une gamme de molécules et de cellules qui protègent contre les infections et aident la réponse immunitaire.
En pulvérisant le nez avec un agent de provocation de cette manière, la réponse immunitaire nasale peut être évaluée, ce qui peut nous aider à mieux comprendre comment les cellules et les molécules du système immunitaire humain réagissent aux bactéries et aux virus. À l'avenir, cela pourrait permettre de tester de nouveaux médicaments et vaccins, en voyant s'ils diminuent ou arrêtent l'inflammation après le test nasal.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
CONCEPTION ET MÉTHODOLOGIE DE L'ÉTUDE
L'étude comprend 3 parties avec différents tests de pulvérisation nasale administrés aux sujets :
Composants bactériens ou viraux, comprenant l'un des éléments suivants chez un patient particulier ;
- Le MPLA (monophosphoryl lipide A) ressemble au lipopolysaccharide bactérien
- PolyIC (acides polyinosiniques et cytidyliques) : composant viral
- PolyICLC (polyIC stabilisé avec polyLlysine) : composant viral
- Resiquimod : mimique virale
- Tuberculine : dérivé protéique partiellement purifié (PPD) de Mycobacterium bovis, la bactérie responsable de la tuberculose.
- Allergène : L'agent de provocation pour pulvérisation nasale est le pollen de fléole des prés.
RECRUTEMENT
L'objectif est de recruter un total de 174 sujets. Les sujets seront identifiés par des annonces dans les journaux, des affiches sur le campus, les services de médecin généraliste, les cliniques externes de l'hôpital St. Mary's, y compris les cliniques antituberculeuses de l'hôpital St. Mary's. Nous obtiendrons un consentement pleinement éclairé. Toutes les données seront gérées conformément à GCP et aux directives locales de gouvernance de l'information.
NOMBRE DE SUJETS ET POSOLOGIE
PARTIE 1 : Provocation nasale à dose croissante avec des constituants microbiens utilisant MPLA, polyIC, polyICLC et resiquimod. Celui-ci est divisé en partie A et partie B.
PARTIE 1A (n=32) : Étude de dose progressive croissante basée sur la tolérance et la MAS. 4 cohortes de 8 volontaires sains (4 sur 8 allergiques aux pollens de graminées, aux acariens ou ayant des antécédents de rhume des foins). Une cohorte pour chaque constituant microbien. Chaque cohorte recevra un défi de contrôle salin nasal et trois doses croissantes du défi du constituant microbien nasal :
- 10 μg de constituant microbien dans 100 μl de solution saline
- 100 μg de constituant microbien dans 100 μl de solution saline
- 500μg de constituant microbien dans 100μl de solution saline
PARTIE 1B (n = 64) Dose unique avec sonde d'échantillonnage spéciale (SSP) supplémentaire et curetage, cohorte unique de 16 volontaires sains au maximum (8 des 16 allergies au pollen de graminées, aux acariens, antécédents de rhume des foins). Chaque sujet a reçu un contrôle salin et une dose unique après avoir établi la tolérance et la réponse SAM.
RÉSIQUIMOD :
Dans la partie B, 10 μg par narine seront administrés à 36 volontaires :
12 asthmatiques allergiques 12 volontaires atopiques 12 volontaires non atopiques
PARTIE 2 : Provocation nasale à dose croissante avec de la tuberculine. Celui-ci est divisé en partie A et partie B.
PARTIE 2A (n=16) : Il s'agit d'un total de 16 sujets TB latents (LTB), Ce groupe est subdivisé en 4 cohortes de 4 sujets selon la dose de tuberculine administrée ;
- 0,1 UT dans 100μl, n = 4
- 1,0 UT dans 100μl, n = 4
- 2,0 UT dans 100μl, n = 4
- 5,0 UT dans 100 μl, n = 4 Chaque cohorte n'a qu'un seul défi. La dose initiale est très faible à 0,1 UT. S'il est bien toléré, le sujet passera à la prochaine dose supérieure de 1,0 UT. Si cela est également bien toléré, le sujet passera à la dose supérieure suivante de 2,0 UT, puis à la dose la plus élevée de 5,0 UT dans ce groupe, garantissant la sécurité des sujets à tout moment.
PARTIE 2B (N=16) : Dose maximale avec échantillonnage supplémentaire. Celui-ci comprend 16 personnes réparties en deux groupes (8 volontaires sains et 8 sujets atteints de tuberculose latente).
Groupe 1 : sujet TB latent, non. de personnes = 8 Ce groupe recevra la dose maximale (5-10,0 TU) du challenge tuberculinique. Sur les 8 sujets de chaque groupe, 2 recevront un placebo (spray fictif salin) et les 6 autres recevront le challenge spray tuberculinique.
Groupe 2 : Volontaires sains, non. de personnes = 8 Ce groupe recevra également la dose maximale (5-10,0 TU) du challenge tuberculinique, sous réserve de tolérance. Sur les 8 sujets, 2 recevront le placebo (spray fictif salin) et les 6 autres recevront le challenge spray tuberculinique
PARTIE 3 (n = 46) : Défi allergène nasal avec le pollen de fléole des prés
Au départ, 30 personnes seront étudiées : un groupe de 12 personnes souffrant de rhume des foins, un groupe de 12 personnes souffrant d'asthme allergique aux pollens de graminées et un groupe de 6 personnes non allergiques et non asthmatiques. Dans un groupe supplémentaire, 16 personnes atteintes de rhume des foins seront étudiées en prélevant des échantillons continus du liquide de la muqueuse nasale de surface à l'aide d'une sonde d'échantillonnage spéciale (SSP) après le test de pulvérisation nasale.
- Groupe 1 : personnes atteintes de rhume des foins, n = 12
- Groupe 2 : personnes souffrant d'asthme allergique, n = 12
- Groupe 3 : personnes saines, non atopiques, n = 6
- Groupe supplémentaire 4 : personnes atteintes de rhume des foins, n=16
PROCÉDURES NASALES DANS L'ÉTUDE
- Lavage nasal (lavage nasal) : En début de journée, des lavages nasaux dans le nez seront effectués en faisant passer un petit volume d'eau salée (liquide salin) dans le nez. Cette procédure est effectuée avant d'autres procédures pour nettoyer le nez. Le liquide obtenu à partir des lavages nasaux est jeté et non analysé.
- Absorption du liquide de la muqueuse nasale (nasosorption ou SAM) : une petite bande de matériau absorbant, qui ressemble et se sent comme du papier de soie doux, sera utilisée pour absorber l'humidité de la surface intérieure de la narine. Le papier absorbant spécial sera placé à l'intérieur de la narine et laissé pendant une période de 2 minutes pour absorber le liquide de la muqueuse nasale avant d'être retiré, en aspirant doucement le liquide comme du papier buvard. Mettre le papier dans le nez peut chatouiller et faire pleurer un peu vos yeux. Cependant, la nasosorption ne fait pas mal et notre méthode s'est avérée bien tolérée chez les bébés, les enfants et les adultes. Le papier absorbe le liquide nasal et de nombreuses substances produites par les cellules nasales peuvent ensuite être extraites du papier et mesurées en laboratoire.
- Grattage nasal (curetage nasal ou Rhinoprobe) : Une petite sonde en plastique jetable stérile sera insérée dans le nez et sera doucement pressée contre la paroi interne de la narine. La sonde de 3 pouces de long a une petite cuillère à l'extrémité, qui peut à peine être vue. 24 minuscules échantillons de chaque narine (une tête d'épingle, 2 mm, de tissu) seront prélevés sur une partie du nez dont l'innervation est réduite pour limiter tout inconfort. La prise de cet échantillon ne provoque pas de saignement, mais peut causer un léger inconfort et peut faire pleurer légèrement les yeux. La sonde recueillera des cellules nasales à la surface de la narine qui seront ensuite envoyées pour analyse. Cette méthode a été pratiquée sur de nombreux adultes, enfants et bébés et a été très bien tolérée.
- Sonde d'échantillonnage spéciale (SSP): Le liquide de la muqueuse nasale peut également être collecté à l'aide d'une sonde d'échantillonnage spéciale ou SSP qui utilise un électrospray pour faire rebondir les gouttelettes sur le liquide de la muqueuse nasale. Cela se fera en prélevant en continu pendant quelques heures à partir d'une seule narine. Lors de l'utilisation de cette sonde d'échantillonnage spéciale (SSP) dans le nez des personnes, il y a une légère sensation de chatouillement pendant le prélèvement de l'échantillon. Cela peut à peine être remarqué.
ANALYSES STATISTIQUES
La distribution des données sera évaluée par le test de ShapiroWilks, qui détermine si les données ont une distribution normale (paramétrique) ou non normale (non paramétrique).
Les données normales seront affichées graphiquement comme :
- moyennes arithmétiques et erreur standard des moyennes (SEM)
- ou signifie avec SD
- ou moyennes avec intervalles de confiance (IC)
Les données non normales seront affichées graphiquement comme :
Box-whisker : médiane, quartiles, plage
Pour les données non normales, les différences par rapport à la ligne de base seront mesurées pour l'agent de provocation actif (à différentes doses) et le placebo à chaque instant, et l'ASC calculée. Les différences d'ASC par rapport au placebo (placebo actif) sont calculées et la signification est testée avec le test de rang signé de Wilcoxon non paramétrique (population unique). L'aire sous la courbe (ASC) doit être poursuivie sur différentes durées définies en fonction de l'agent de provocation nasale.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
-
-
London
-
Paddington, London, Royaume-Uni, W2 1NY
- Imperial Clinical Respiratory Research Unit (ICRRU), St Mary's Hospital
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
La description
CRITÈRE D'INTÉGRATION
GÉNÉRAL POUR TOUS LES SUJETS
- Hommes et femmes de 18 à 60 ans
- Non-fumeurs actuels depuis l'année dernière, maximum de 10 cigarettes par mois, avec un historique de tabagisme de <5 années-paquet
- Indice de masse corporelle dans la gamme18-39
BÉNÉVOLES EN SANTÉ NON ATOPIQUES
- Tests cutanés négatifs à une gamme de 6 aéroallergènes courants : chat, chien, pollen de graminées, pollen d'arbres, acarien de la poussière domestique, spores fongiques
- Numération normale des éosinophiles dans le sang.
SUJETS ATOPIQUES SENSIBILISÉS AU POLLEN DE FLÉAU
- Antécédents cliniques de rhinite allergique saisonnière aux pollens de graminées : éternuements, écoulement nasal et démangeaisons nasales, écoulement nasal pendant la saison estivale au pollen de graminées au Royaume-Uni (mai-juillet).
- Allergie spécifique confirmée par un test cutané intra-épidermique positif à l'extrait de pollen de fléole des prés (Soluprick, Phleum pratense; ALK, Horsholm, Danemark), une réaction positive étant une papule surélevée d'un diamètre> 3 mm plus grand qu'un contrôle salin négatif.
SUJETS ASTHMATIQUES AVEC SENSIBILITÉ AU POLLEN DE FLÉAU
- rhinite allergique saisonnière aux pollens de graminées
- Allergie spécifique confirmée par un test cutané intra-épidermique positif à l'extrait de pollen de fléole des prés (Soluprick, Phleum pratense; ALK, Horsholm, Danemark), une réaction positive étant une papule surélevée d'un diamètre> 3 mm plus grand qu'un contrôle salin négatif.
- La moitié des asthmatiques ont des antécédents cliniques et un diagnostic d'asthme, nécessitant un traitement occasionnel avec des bêta-agonistes inhalés, mais pas de corticostéroïdes inhalés au cours des 28 derniers jours. La moitié des asthmatiques reçoivent régulièrement des corticostéroïdes inhalés combinés et des bêta-agonistes à longue durée d'action (ICS/LABA)
- Pour les asthmatiques du bras résiquimod (agoniste des TLR 7/8) :
Méthacholine PC20 < 8mg/ml
SUJETS ATTEINTS DE TUBERCULOSE LATENTE
- En bonne santé sans symptômes pulmonaires ni systémiques
- Test de libération d'interféron-γ sanguin positif (IGRA) : Quantiferon TB Gold-in-Tube (QFT-it), >0,35 UI/ml d'IFN-γ par rapport au contrôle
- Test cutané à la tuberculine (TST), utilisant un dérivé de protéine purifiée à la tuberculine (PPD) RT23, du Statens Serum Institut (SSI) de Copenhague. 2 unités de tuberculine (UT) dans 0,1 ml injectées par voie intradermique (id) : >6mm à <25mm d'induration à 48-72h.
- Radiographie pulmonaire normale (CXR) ou tomodensitométrie si elle est effectuée régulièrement pour des raisons cliniques
BÉNÉVOLES NÉGATIFS DU TEST DE LIBÉRATION D'INTERFÉRON-γ EN SANTÉ (TLIG)
- Âge et sexe appariés aux sujets TB latents
- En bonne santé sans symptômes pulmonaires ni systémiques
- Test de libération d'interféron-γ sanguin négatif (IGRA) : Quantiferon TB Gold-in-Tube (QFT-it), <0,35 UI/ml IFN-γ versus témoin
- Test cutané à la tuberculine (TST), utilisant un dérivé de protéine purifiée à la tuberculine (PPD) RT23, du Statens Serum Institut (SSI) de Copenhague.
- 2 unités de tuberculine (UT) dans 1 ml injectées par voie intradermique (id) : < 6 mm d'induration à 48-72h.
- La radiographie pulmonaire n'est pas nécessaire
CRITÈRE D'EXCLUSION
GÉNÉRAL
- Infections récentes au cours des 14 derniers jours avant le dépistage : en particulier les maladies des voies respiratoires supérieures (y compris le rhume et la grippe), les maux de gorge, la sinusite, la conjonctivite infectieuse.
- Infection des voies respiratoires inférieures au cours des 28 derniers jours
- Signes ou symptômes d'anomalies anatomiques nasales importantes, hypertrophie des cornets, déviation majeure du septum, lésion de polypose nasale, ulcération ou sinusite récurrente
- Chirurgie antérieure du nez ou des sinus
- Maladies systémiques pouvant affecter les réponses immunitaires nasales
- Traitement médical autre que celui autorisé pour la contraception.
- Traitement par corticostéroïdes locaux ou systémiques au cours du mois précédent
- Thérapie anti-inflammatoire : y compris les anti-inflammatoires non stéroïdiens (AINS)
- la tuberculose à n'importe quelle étape de la vie
- maladie infectieuse active
- maladies cardiovasculaires
- respiratoire (autre que le rhume des foins ou l'asthme, le cas échéant)
- hépatique, gastro-intestinal, rénal, endocrinien, infectieux, hématologique, auto-immun, rhumatologique, neurologique, dermatologique,
- conditions néoplasiques
- maladies métaboliques et obésité extrême
- dépression et troubles psychiatriques
- Non-fumeurs : jusqu'à 10 cigarettes par an sont autorisées
- Participation à un essai thérapeutique de médicament au cours des 30 jours précédents.
- Incapacité ou refus d'utiliser une contraception si la patiente est une femme en âge de procréer.
- Femmes enceintes ou allaitantes
- Incapacité à donner un consentement éclairé
BÉNÉVOLES EN SANTÉ NON ATOPIQUES
- Antécédents cliniques de rhinite allergique, d'asthme allergique ou d'eczéma
SUJETS ATTEINTS DE TUBERCULOSE LATENTE
- Antécédents cliniques d'infection tuberculeuse (TB) active symptomatique
- Chimioprophylaxie de la tuberculose
BÉNÉVOLES NÉGATIFS DU TEST DE LIBÉRATION D'INTERFÉRON-γ EN SANTÉ (TLIG)
- Antécédents cliniques d'infection tuberculeuse
- Allergie nasale active
- Vaccination BCG
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Science basique
- Répartition: Non randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation factorielle
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
|---|---|
|
Expérimental: Escalade de dose Poly ICLC
Augmentation de la dose de provocation nasale Poly ICLC 10 ug, 100 ug, 500 ug
|
Augmentation de dose : 10 ug, 100 ug, 500 ug Dose maximale : 1 000 ug
|
|
Expérimental: Poly ICLC dose la plus élevée
Poly ICLC challenge nasal dose unique de 1000ug
|
Augmentation de dose : 10 ug, 100 ug, 500 ug Dose maximale : 1 000 ug
|
|
Expérimental: Poly I:C unidose
Poly I:C défi nasal dose unique 500ug
|
Dose unique : 500 ug
|
|
Expérimental: R848 haute dose
R848 défi nasal 10ug
|
Dose élevée : 10 ug Dose faible : 1-2 ug
Autres noms:
|
|
Expérimental: R848 faible dose
R848 challenge nasal faible dose 1-2ug (0.02ug/kg)
|
Dose élevée : 10 ug Dose faible : 1-2 ug
Autres noms:
|
|
Expérimental: Pollen de graminées
Défi nasal au pollen de fléole des prés
|
Dosage : 5000 SQ-U/100µl
|
|
Expérimental: Supplémentation en vitamine D
Vitamine D 4000U par voie orale tous les jours
|
4000U par voie orale
|
|
Expérimental: Tuberculine
Provocation nasale tuberculine PPD
|
Tuberculine PPD
|
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Réponse protéique IFN-y dans le liquide de revêtement muqueux
Délai: 0, 1, 2, 3, 4, 6, 8 heures après l'administration
|
Le critère de jugement principal est l'IFN-y dans le liquide de la muqueuse nasale après provocation nasale
|
0, 1, 2, 3, 4, 6, 8 heures après l'administration
|
Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Trevor Hansel, FRCPath, PhD, Imperial College London
- Directeur d'études: Peter JM Openshaw, FRCP, PhD, FRSB, FMedSci, Imperial College London
- Chercheur principal: Robin Shattock, PhD, Imperial College London
Publications et liens utiles
Publications générales
- Chawes BL, Edwards MJ, Shamji B, Walker C, Nicholson GC, Tan AJ, Folsgaard NV, Bonnelykke K, Bisgaard H, Hansel TT. A novel method for assessing unchallenged levels of mediators in nasal epithelial lining fluid. J Allergy Clin Immunol. 2010 Jun;125(6):1387-1389.e3. doi: 10.1016/j.jaci.2010.01.039. Epub 2010 Mar 20. No abstract available.
- Hansel TT, Johnston SL, Openshaw PJ. Microbes and mucosal immune responses in asthma. Lancet. 2013 Mar 9;381(9869):861-73. doi: 10.1016/S0140-6736(12)62202-8.
- Nicholson GC, Kariyawasam HH, Tan AJ, Hohlfeld JM, Quinn D, Walker C, Rodman D, Westwick J, Jurcevic S, Kon OM, Barnes PJ, Krug N, Hansel TT. The effects of an anti-IL-13 mAb on cytokine levels and nasal symptoms following nasal allergen challenge. J Allergy Clin Immunol. 2011 Oct;128(4):800-807.e9. doi: 10.1016/j.jaci.2011.05.013. Epub 2011 Jun 29.
- Scadding GW, Calderon MA, Bellido V, Koed GK, Nielsen NC, Lund K, Togias A, Phippard D, Turka LA, Hansel TT, Durham SR, Wurtzen PA. Optimisation of grass pollen nasal allergen challenge for assessment of clinical and immunological outcomes. J Immunol Methods. 2012 Oct 31;384(1-2):25-32. doi: 10.1016/j.jim.2012.06.013. Epub 2012 Jun 30.
- Ekman AK, Virtala R, Fransson M, Adner M, Benson M, Jansson L, Cardell LO. Systemic up-regulation of TLR4 causes lipopolysaccharide-induced augmentation of nasal cytokine release in allergic rhinitis. Int Arch Allergy Immunol. 2012;159(1):6-14. doi: 10.1159/000335196. Epub 2012 Apr 27.
- Walrath JR, Silver RF. The alpha4beta1 integrin in localization of Mycobacterium tuberculosis-specific T helper type 1 cells to the human lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 2011 Jul;45(1):24-30. doi: 10.1165/rcmb.2010-0241OC. Epub 2010 Aug 19.
- Dhariwal J, Kitson J, Jones RE, Nicholson G, Tunstall T, Walton RP, Francombe G, Gilbert J, Tan AJ, Murdoch R, Kon OM, Openshaw PJ, Hansel TT. Nasal Lipopolysaccharide Challenge and Cytokine Measurement Reflects Innate Mucosal Immune Responsiveness. PLoS One. 2015 Sep 14;10(9):e0135363. doi: 10.1371/journal.pone.0135363. eCollection 2015.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Réel)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Estimation)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
- Inflammation
- Asthme
- Allergie
- Éosinophile
- Tuberculose
- Biomarqueurs
- Cytokines
- Virus
- L'expression du gène
- Respiratoire
- Lipopolysaccharide
- Pollen de graminées
- Cellules T
- Chimiokines
- Nasale
- Infection des voies respiratoires
- Fièvre des foins
- Étude sur le défi humain
- Réponse immunitaire innée
- Fluide de revêtement muqueux
- Nasorption
Termes MeSH pertinents supplémentaires
- Infections
- Infections des voies respiratoires
- Maladies des voies respiratoires
- Maladies du système immunitaire
- Hypersensibilité immédiate
- Maladies oto-rhino-laryngologiques
- Infections bactériennes
- Infections bactériennes et mycoses
- Infections bactériennes à Gram positif
- Infections à Actinomycétales
- Hypersensibilité respiratoire
- Hypersensibilité
- Maladies du nez
- Infections à mycobactéries
- Infection latente
- Rhinite
- Rhinite allergique
- Tuberculose
- Tuberculose latente
- Effets physiologiques des médicaments
- Facteurs immunologiques
- Micronutriments
- Vitamines
- Agents de conservation de la densité osseuse
- Inducteurs d'interféron
- Vitamine D
- Poly ICLC
Autres numéros d'identification d'étude
- 13SM1837
- P45058 (Autre subvention/numéro de financement: NIHR Imperial Biomedical Research Council Grant)
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