混合食事に対する代謝および免疫系の反応

この研究の目的は、脂肪蓄積の増加に伴う食事に応じた脂肪組織の代謝と炎症、および循環の違いを調査することです。 脂肪量が増加した参加者は、「健康な」体重の参加者と比較して、食事に対してより顕著な炎症反応を示すと仮説が立てられています。 炎症反応は、脂肪組織における遺伝子発現およびタンパク質分泌の変化を測定することによって、また血液中の代謝、インスリン抵抗性、心血管疾患および炎症のマーカーを測定することによって評価されます。

研究の宣伝後、興味を持った潜在的な参加者は、電子メールまたは電話で主任研究者に詳細情報を問い合わせるよう求められます。 包含/除外基準に基づいて適格性の初期評価が行われ、これらの要件が満たされた場合、潜在的な参加者は治験についてさらに話し合うための会議に招待されます。 参加者情報シートを読み、研究のタイムラインを概説するフローチャートを見た後、参加を希望する場合は、同意書に署名するよう求められます。 その後、いくつかの予備的な身体計測測定、9 日間の身体活動モニタリング、および試験日 (研究室での丸 1 日のみ) の日程が計画されます。

予備測定:

予備検査には、身長、体重、ウエストとヒップの周囲、矢状ウエストの高さ、血圧の人体測定が含まれます。 これらの測定は、University of Bath Physiology Laboratories で行われます。

身体活動のモニタリング:

9日間、参加者には身体活動モニター（Actiheart™）が装着され、解釈を助け、1日の平均活動エネルギー消費量をより正確に計算できるように、この期間中の身体活動の対応する日記を記録するよう求められます。 この期間中、参加者は通常の生活習慣やルーチンを意識的に変更しないでください。 反応性を考慮して、活動モニタリングの最初の 2 日間は分析から除外されます。

主なトライアル日：

試験の主要日の 3 日前に、参加者は飲食摂取量を記録し、その 48 時間前には激しい身体活動を控えるよう求められます。 また、参加者は事前 24 時間以内にアルコールやカフェインの摂取を控えてください。

参加者は、10時間の絶食後、午前中にバース大学スポーツトレーニングビレッジに到着し、デュアルエネルギーX線吸収計（DEXA）を使用して体組成を正確に評価してもらいます。 その後、彼らは生理学安静研究室に連れて行かれ、安静時代謝率 (RMR) の評価のためにベースラインの呼気ガスが収集されます。 カニューレが前腕の静脈に挿入され、代謝/炎症マーカーの分析と T 細胞の単離のためにベースライン血液サンプルが採取されます。 脂肪サンプルは針吸引法を使用して採取することもできます。

次に、参加者は、Rijkelijkhuizen J. et al、2008 によって使用された食事からアレンジされた、ブリオッシュ、ジャム、バター、ミルクセーキからなる炭水化物と脂肪の含有量が高い朝食タイプの食事を摂取するように求められます。ベータ細胞反応（つまり、インスリン）はグルコース負荷と比較され、インスリン感受性との違いが示されたため、この食事の種類は肥満に基づいた代謝の違いを特定する必要があります。

さらに、高デンプン/低繊維食品はより大きな炎症を誘発する可能性があるという証拠がいくつかあります (Manning, Sutherland et al. 2008)。 すべての個人の食事組成は同一ですが、炭水化物からのエネルギー含有量は個人の安静時代謝率の一部として計算されます。 これにより、体重や体組成の違いによるエネルギー摂取量の標準化が可能になり、安静時の個人のエネルギー要件が反映されます。

食事は 15 分以内に摂取する必要があり、血液サンプルは 15、30、60、90 分後にカニューレから採取され、その後は食事摂取後 6 時間まで 1 時間ごとに採取され、代謝マーカーと炎症マーカーの変化を監視します。 カニューレが真の結果を妨げる局所炎症を刺激する可能性があるという証拠があるため、炎症マーカーの分析のため、食後 2 時間および 6 時間後に静脈穿刺により追加の血液サンプルが採取されます。

RMR 用の呼気ガスサンプルも 1 時間ごとに採取され、食事に応じた相対的な脂肪と炭水化物の代謝を推定するために間接熱量測定が使用されます。

2 番目の脂肪サンプルは、脂肪組織内の食事に対する炎症反応および代謝反応を調べるために 6 時間後に採取されます。 T 細胞の対応する代謝/炎症反応を調べるために、T 細胞分離用の 2 番目の血液サンプルもこの時点で採取されます。

分析：

試験当日、全血の白血球数、グルコース、乳酸が分析されます。 血漿および血清サンプルは遠心分離によって全血から抽出され、-80 度で保存されます。 単球および T リンパ球 (白血球の集団) も、後のインスリン感受性の評価および培養実験のために全血から単離されます。

各脂肪サンプルでは、​​脂肪組織または脂肪細胞（消化法を使用して脂肪組織内の他の細胞から分離されたもの）のいずれかの別々の部分が培養され、後の調査のために培地が収集されます。 脂肪組織および単離された脂肪細胞における mRNA 発現も検査されます。 脂肪組織 (SVF) からの残りの細胞も、フローサイトメトリーを使用した細胞集団の後の分析および発現/分泌分析のために保存されます。