- ICH GCP
- Register voor klinische proeven in de VS.
- Klinische proef NCT02749448
Mesenchymale stamceltherapie voor de behandeling van remodellering van de luchtwegen bij mosterdpatiënten
Het effect van autologe vet-mesenchymale stamcellen bij de behandeling van luchtwegletsel bij patiënten die zijn blootgesteld aan zwavelmosterd
Achtergrond: Zwavelmosterd (SM) is een krachtig alkyleringsmiddel dat zich richt op verschillende organen, met name longweefsel. Blootstelling aan SM leidt tot ernstige veranderingen in de morfologische structuur van het luchtwegsysteem, wat wordt geassocieerd met chronische obstructieve longdeficiëntie na blootstelling aan SM. Met uitgebreide vooruitgang en successen op het gebied van weefselherstel door middel van stamceltherapie, is de aandacht voor longweefsel toegenomen vanwege de hoge prevalentie van longproblemen. Verschillende factoren, zoals de selectie van celtypen, vereiste voorwaarden voor groei en proliferatie van stamcellen, en het proces van het binnendringen in het lichaam om beschadigd longweefsel te herstellen, worden beschouwd als de belangrijkste problemen in deze kwestie. Accumulerende studies, zowel bij dieren als bij mensen, met mesenchymale stamcellen (MSC) ondersteunen de hypothese van therapeutische effecten van deze cellen bij verschillende aandoeningen. In deze studie probeerden onderzoekers de veiligheid en potentiële werkzaamheid van systemische MSC-toediening voor de behandeling van chronische longletsels bij aan SM blootgestelde patiënten te evalueren.
Methoden: Patiënten krijgen elke twee maanden 100 miljoen MSC-cellen voor drie injecties binnen 6 maanden. Na elke injectie worden parameters zoals veiligheid, longfunctietesten (PFT), indicatoren voor kwaliteit van leven, 6 minuten looptest (6MWT) en expressie van ontstekings- en oxidatieve stressgenen geëvalueerd.
Studie Overzicht
Gedetailleerde beschrijving
Patiënten selectie:
In deze klinische studie onderzochten de onderzoekers het therapeutisch effect van MSC's bij aan SM blootgestelde mannelijke patiënten. Patiënten hadden een gedocumenteerde ontmoeting met SM tijdens de oorlog tussen Iran en Irak. De patiënten ondertekenden geïnformeerde toestemming vóór de studie. Ze werden geselecteerd op basis van de volgende criteria: (a) de ernst van de longbeschadiging varieerde van matig 50< geforceerd expiratoir volume in 1 seconde (FEV1) <65 tot ernstig 40<FEV1<50; (b) afwezigheid van contra-indicaties spirometrie (bloedspuwing, cerebraal arterieel aneurysma of aorta, longembolie, ongecontroleerde bloeddruk, recente pneumothorax, ongetwijfeld recente operatie/borstkas, recente beroerte); en (c) geen coagulatie. De uitsluitingscriteria voor het selectieproces waren als volgt: (a) tegelijkertijd deelnemen aan een ander onderzoek; (b) rokende habitat; (c) het bestaan van longontsteking tijdens het onderzoek; (d) de incidentie van transfusiereacties; (e) die ten grondslag liggen aan andere ziekten (hart- en vaatziekten, hypertensie, diabetes).
Isolatie en kweek van uit vetweefsel afgeleide stamcellen:
200 ml adipeus weefsel van de buik werd verkregen onder plaatselijke verdoving door middel van liposuctie-aspiratenprotocol. Het lipoaspiraat werd gewassen met PBS om weefselresten te verwijderen. 100 ml PBS met 0,1% w/v collagenase A type I werd toegevoegd aan geïsoleerd weefsel en vervolgens gedurende 60 minuten bij 37°C geïncubeerd. Collagenase-activiteit werd geneutraliseerd met behulp van MEM-medium samen met 10% foetaal runderserum. Celpellets werden opnieuw gesuspendeerd in kweekmedium na centrifugatie bij 2000 rpm gedurende 10 minuten, en vervolgens overgebracht naar kweekflessen gedurende 72 uur bij 37°C in 5% CO2-conditie. Het kweekmedium in de kolven werd om de 3 dagen ververst en de cellen werden tweemaal gepasseerd.
Flowcytometrie-analyse:
Om de antigeenexpressie op het celoppervlak te analyseren, werden 5 x 105 verse cellen uit de derde passage geoogst met trypsine-EDTA. Cellen werden 1 minuut gecentrifugeerd bij 100 g, opnieuw gesuspendeerd in kleurbuffer (PBS, 2% FBS) en vervolgens 10 minuten op ijs geïncubeerd. Trypsine werd geneutraliseerd door middel van een centrifuge en geïsoleerde cellen werden tweemaal gewassen met PBS en tenslotte opnieuw gesuspendeerd in kleurbuffer. Cellen werden gedurende 30 minuten in een donkere omgeving geïncubeerd. Na incubatie werden de cellen gelabeld met anti-menselijke monoklonale antilichamen (MAb's) geconjugeerd aan fluorochromen. Deze antilichamen waren als volgt: anti-CD90-fluoresceïne-isothiocyanaat (FITC), CD73-fycoerythrine (PE), CD11b-FITC, CD34-FITC, CD44-FITC, CD45-PE, CD105-PE. De frequenties van alle immunogelabelde cellen werden geanalyseerd door FACS Canto II flowcytometer, waarin ongeveer 500.000 gebeurtenissen werden beoordeeld en gegevens werden geanalyseerd met behulp van FlowJo-software (versie 10.0).
Karyotype-analyse voor detectie van afwijkingen:
Standaard Giemsa-kleuringsprocedure werd uitgevoerd en chromosoompreparaten werden verkregen uit 80% confluente cellen. Om de vorming van microtubuli te stoppen, werden de cellen behandeld met Colcemid-oplossing. De mitotisch gearresteerde cellen werden vervolgens geoogst met behulp van trypsine-EDTA. De cellen werden geëxtraheerd en vervolgens gedurende 30 minuten bij laboratoriumtemperatuur ondergedompeld in 75 mmol/l KCl. Uiteindelijk werden ze verkregen door centrifugeren. Het supernatant werd vervangen door een fixeeroplossing en de suspensie werd uitgespreid over objectglaasjes voor microscopisch onderzoek en beeldvorming. Er werden ten minste 15 metafase-spreads geanalyseerd. De karyotypes werden bekeken met een lichtmicroscoop met behulp van cytovision-software.
Invriezen en opslag van van vetweefsel afgeleide stamcellen:
ADMSC's werden vóór injectie voor invriezen geoogst bij 90% confluentie. Om cellen te verzamelen, werd kweekmedium verwijderd en vervangen door steriel PBS en na drie minuten werd het vervangen door trypsine-EDTA-oplossing en vervolgens gedurende 5 minuten bij 37°C geïncubeerd. Compleet medium (MEM met 10% FBS) werd toegevoegd om de trypsine te inactiveren, en 5 minuten gecentrifugeerd bij 1500 rpm. Celpellet werd opnieuw gesuspendeerd in cryopreservatiemedium (80% FBS, 10% dimethylsulfoxide en 10% MEM-medium) met een eindconcentratie van 5 miljoen cellen per milliliter en verdeeld in cryovials. De flesjes werden een nacht bewaard bij -80 °C en vervolgens overgebracht naar een container met vloeibare stikstof voor langdurige opslag.
MSC's injectie en studieplan:
Patiënten kregen elke 20 dagen 100 × 106 cellen voor vier injecties binnen 2 maanden en werden 7 keer gescreend. MSC's werden intraveneus samen met 300 ml normale zoutoplossing bij de patiënt geïnjecteerd met een maximale snelheid van 2 x 106 cellen/min. Elke infusie nam ongeveer 30 minuten in beslag. Na elke injectie verbleef de patiënt ten minste 6 uur in het ziekenhuis als hersteltijd. De werkzaamheid van de behandeling met MSC's bij deze patiënten werd geëvalueerd aan de hand van de volgende parameters: longfunctietest (PFT's) [geforceerd expiratoir volume in 1 seconde (FEV1), geforceerde vitale capaciteit (FVC), FEV1/FVC], totale longcapaciteit door plethysmografie van het lichaam, single-breath diffusiecapaciteit van koolmonoxide (CO-diffusie), trainingsprestaties [6-minuten looptest (6MWT)], Borg-schaal dyspnoebeoordeling (BSDA), COPD-beoordelingstest (CAT), St. George's Respiratory Questionnaire (SRGQ) en uitgebreide veiligheidsevaluatie.
Studietype
Inschrijving (Verwacht)
Fase
- Fase 1
Deelname Criteria
Geschiktheidscriteria
Leeftijden die in aanmerking komen voor studie
Accepteert gezonde vrijwilligers
Geslachten die in aanmerking komen voor studie
Beschrijving
Inclusiecriteria:
- patiënten die een documentaire blootstelling aan mosterdgas hadden in de oorlog tussen Iran en Irak
- de ernst van hun ziekte was als volgt gebaseerd op spirometrie: matig 50<geforceerd expiratoir volume op één seconde (FEV1)<65 of ernstig 40<FEV1<50
- afwezigheid van contra-indicaties spirometrie (recente myocardischemie (MI)
- bloedspuwing
- cerebraal arterieel aneurysma of aorta
- longembolie,
- ongecontroleerde bloeddruk
- recente pneumothorax
- ongetwijfeld operatie/recente borstkas
- recente oogoperatie, recente beroerte
- niet-beschikbaarheid in een ander onderzoek op hetzelfde moment
- geen stollingsstoornissen
Uitsluitingscriteria:
- roken
- de incidentie van longontsteking tijdens de studie
- de incidentie van een transfusiereactie
- andere medische aandoening (hart- en vaatziekten, hypertensie, diabetes)
- minder dan 2 keer bezocht
Studie plan
Hoe is de studie opgezet?
Ontwerpdetails
- Primair doel: Behandeling
- Toewijzing: NVT
- Interventioneel model: Opdracht voor een enkele groep
- Masker: Geen (open label)
Wapens en interventies
Deelnemersgroep / Arm |
Interventie / Behandeling |
|---|---|
|
Ander: mesenchymale stamcel
Er zijn complexe sets van niet-hematopoëtische cellen in het beenmerg die mesenchymale voorlopercellen (MPC's) worden genoemd.
MSC's staan bekend als multipotente cellen die het vermogen hebben om zichzelf te vernieuwen en te differentiëren tot een grote verscheidenheid aan cellen.
MSC's kunnen worden geïsoleerd uit beenmerg, navelstreng, perifeer bloed en vetweefsel, en worden gekweekt in specifieke media.
MSC-kolonievorming, die bekend staat als mergachtige stromale cellen en MPC's, is vergelijkbaar met fibroblast-kolonievormende eenheid (CFU-F) in in vitro toestand.
Volgens de International Society for Cellular Therapy (ISCT) kunnen MSC's gemakkelijk worden gedetecteerd of geïdentificeerd uit andere cellen met behulp van flowcytometrische analyse om specifieke oppervlaktemarkers te detecteren
|
Er zijn complexe sets van niet-hematopoëtische cellen in het beenmerg die mesenchymale voorlopercellen (MPC's) worden genoemd.
MSC's staan bekend als multipotente cellen die het vermogen hebben om zichzelf te vernieuwen en te differentiëren tot een grote verscheidenheid aan cellen.
MSC's kunnen worden geïsoleerd uit beenmerg, navelstreng, perifeer bloed en vetweefsel, en worden gekweekt in specifieke media.
MSC-kolonievorming, die bekend staat als mergachtige stromale cellen en MPC's, is vergelijkbaar met fibroblast-kolonievormende eenheid (CFU-F) in in vitro toestand.
Volgens de International Society for Cellular Therapy (ISCT) kunnen MSC's gemakkelijk worden gedetecteerd of geïdentificeerd uit andere cellen met behulp van flowcytometrische analyse om specifieke oppervlaktemarkers te detecteren
|
Wat meet het onderzoek?
Primaire uitkomstmaten
Uitkomstmaat |
Maatregel Beschrijving |
Tijdsspanne |
|---|---|---|
|
longfunctietesten (PFT)
Tijdsspanne: een jaar
|
Longfunctietesten (PFT) is een volledige evaluatie van het ademhalingssysteem, inclusief anamnese van de patiënt, lichamelijk onderzoek, röntgenfoto's van de borstkas, arteriële bloedgasanalyse en testen van de longfunctie.
Het primaire doel van longfunctietesten is het vaststellen van de ernst van de longfunctiestoornis.
|
een jaar
|
Secundaire uitkomstmaten
Uitkomstmaat |
Maatregel Beschrijving |
Tijdsspanne |
|---|---|---|
|
St. George's Ademhalingsvragenlijst (SGRQ)
Tijdsspanne: een jaar
|
De SGRQ is ontworpen om gezondheidsstoornissen te meten bij patiënten met astma en COPD.
Het is ook geldig voor gebruik bij bronchiëctasie en is met succes gebruikt bij SM-patiënten
|
een jaar
|
|
6 minuten looptest (6MWT)
Tijdsspanne: een jaar
|
Het oorspronkelijke doel van de wandeling van zes minuten was om inspanningstolerantie te testen bij chronische luchtwegaandoeningen en hartfalen.
|
een jaar
|
Medewerkers en onderzoekers
Sponsor
Publicaties en nuttige links
Studie record data
Bestudeer belangrijke data
Studie start
Primaire voltooiing (Verwacht)
Studie voltooiing (Verwacht)
Studieregistratiedata
Eerst ingediend
Eerst ingediend dat voldeed aan de QC-criteria
Eerst geplaatst (Schatting)
Updates van studierecords
Laatste update geplaatst (Schatting)
Laatste update ingediend die voldeed aan QC-criteria
Laatst geverifieerd
Meer informatie
Termen gerelateerd aan deze studie
Aanvullende relevante MeSH-voorwaarden
Andere studie-ID-nummers
- IRCT2015110524890N1
Plan Individuele Deelnemersgegevens (IPD)
Bent u van plan om gegevens van individuele deelnemers (IPD) te delen?
Beschrijving IPD-plan
Deze informatie is zonder wijzigingen rechtstreeks van de website clinicaltrials.gov gehaald. Als u verzoeken heeft om uw onderzoeksgegevens te wijzigen, te verwijderen of bij te werken, neem dan contact op met register@clinicaltrials.gov. Zodra er een wijziging wordt doorgevoerd op clinicaltrials.gov, wordt deze ook automatisch bijgewerkt op onze website .