Ta strona została przetłumaczona automatycznie i dokładność tłumaczenia nie jest gwarantowana. Proszę odnieść się do angielska wersja za tekst źródłowy.

Metoda mikroprzepływowa a metoda wirowania w gradiencie gęstości w zapłodnieniu in vitro

3 grudnia 2024 zaktualizowane przez: Professor Ernest Hung-Yu Ng

Randomizowane, kontrolowane badanie z podwójnie ślepą próbą, dotyczące skumulowanego wskaźnika urodzeń żywych po zapłodnieniu in vitro po przygotowaniu nasienia metodą chipa mikroprzepływowego w porównaniu z metodą wirowania w gradiencie gęstości

Niepłodne pacjentki poddawane zabiegowi IVF w Centrum Wspomaganego Rozrodu i Embriologii, szpitalach Queen Mary i szpitalach Kwong Wah będą rekrutowane podczas stymulacji jajników do zapłodnienia in vitro. Następnie, w dniu pobrania oocytów przez personel laboratorium, zostaną one losowo przydzielone do jednej z dwóch grup: (1) grupa z chipem mikroprzepływowym i (2) grupa z gradientem gęstości do przygotowania nasienia i późniejszego wykorzystania w zapłodnieniu. Pozostałe procedury IVF będą takie same jak nasza zwykła praktyka. Zarówno pacjenci, jak i klinicyści byli zaślepieni przy przydziale do grup, tj. w badaniu z podwójnie ślepą próbą. Pierwszorzędowym wynikiem jest skumulowany współczynnik żywych urodzeń zdefiniowany jako liczba ciąż prowadzących do żywych urodzeń w ciągu 6 miesięcy od randomizacji.

Przegląd badań

Szczegółowy opis

W badaniu porównane zostanie zastosowanie chipa mikroprzepływowego z zastosowaniem wirowania w gradiencie gęstości do przygotowania nasienia.

Hipotezą badania jest to, że zastosowanie chipa mikroprzepływowego poprawi skumulowany wskaźnik żywych urodzeń w wyniku zapłodnienia in vitro w porównaniu z metodą gradientu gęstości.

Badanie zostanie przeprowadzone w Centrum Wspomaganego Rozrodu i Embriologii w szpitalach Queen Mary i Kwong Wah. Niepłodne pacjentki poddawane leczeniu IVF będą rekrutowane podczas stymulacji jajników. Zostaną losowo przydzieleni do jednej z dwóch grup: grupy chipów mikroprzepływowych lub grupy gradientu gęstości. Zarówno pacjenci, jak i lekarze nie będą świadomi przydziału grup.

Kryteriami włączenia do badania są niepłodne kobiety w wieku poniżej 43 lat poddawane stymulacji jajników w celu zapłodnienia in vitro. Kryteria wykluczenia obejmują kobiety poddawane określonym badaniom genetycznym, niepłodność spowodowaną czynnikiem męskim wymagającą chirurgicznego pobrania nasienia, wykorzystanie oocytów i plemników dawcy, określone schorzenia macicy, wcześniejszy udział w badaniu oraz udział w innych randomizowanych badaniach.

Kwalifikujące się kobiety zostaną poddane standardowym procedurom IVF, obejmującym stymulację jajników, monitorowanie wzrostu pęcherzyków, inicjowanie pobrania oocytów i samo pobranie oocytów. W dniu pobrania oocytów kobiety zostaną losowo przydzielone do grupy z chipem mikroprzepływowym lub do grupy z gradientem gęstości w celu przygotowania nasienia.

Próbki nasienia zostaną pobrane w dniu pobrania oocytów i poddane ocenie zgodnie ze standardowymi wytycznymi. Uszkodzenie DNA plemnika będzie również oceniane za pomocą testu elektroforezy w alkalicznym żelu jednokomórkowym. W zależności od randomizacji próbki nasienia zostaną przygotowane przy użyciu chipa mikroprzepływowego lub metody wirowania w gradiencie gęstości.

Po przygotowaniu nasienia oocyty zostaną zapłodnione za pomocą konwencjonalnej inseminacji lub docytoplazmatycznej iniekcji plemnika. Zapłodnienie zostanie potwierdzone obecnością dwóch przedjąder. Transfer świeżego zarodka zostanie przeprowadzony 2–5 dni po pobraniu komórki jajowej i zapewnione zostanie wsparcie fazy lutealnej. Nadmiar dobrej jakości zarodków lub blastocyst zostanie poddany kriokonserwacji do wykorzystania w przyszłości.

W przypadku transferu zamrożonych zarodków zarodki lub blastocysty zostaną zastąpione w kolejnych naturalnych lub hormonalnych cyklach zastępczych. Ciąża zostanie potwierdzona testem ciążowym z moczu, a także wykonane zostanie USG przezpochwowe w celu potwierdzenia żywotności i liczby płodów.

Przeprowadzona zostanie dalsza kontrola w celu uzyskania danych dotyczących ciąży i porodu. Obliczony zostanie skumulowany współczynnik żywych urodzeń, a wyniki ciąży, w tym masa urodzeniowa i powikłania położnicze, zostaną zarejestrowane i porównane pomiędzy obiema grupami.

Badanie będzie kontynuowane do czasu wykorzystania wszystkich kriokonserwowanych zarodków lub blastocyst lub do momentu, gdy uczestniczki zajdą w ciążę w ciągu 6 miesięcy od randomizacji. Powikłania ciąży i wady wrodzone będą monitorowane poprzez dokumentację szpitalną lub kontakt z pacjentką.

Ostatecznie badanie ma na celu ustalenie, czy zastosowanie chipa mikroprzepływowego poprawia skumulowany wskaźnik żywych urodzeń w wyniku zapłodnienia in vitro w porównaniu z metodą gradientu gęstości.

Typ studiów

Interwencyjne

Zapisy (Szacowany)

1136

Faza

  • Nie dotyczy

Kontakty i lokalizacje

Ta sekcja zawiera dane kontaktowe osób prowadzących badanie oraz informacje o tym, gdzie badanie jest przeprowadzane.

Kontakt w sprawie studiów

Lokalizacje studiów

    • Hong Kong
      • Hong Kong, Hong Kong, Chiny
        • Rekrutacyjny
        • Department of Obstetrics and Gynaecology
        • Kontakt:
          • Ernest HY NG, MD
          • Numer telefonu: 852-22553400
          • E-mail: nghye@hku.hk
        • Główny śledczy:
          • Ernest HY NG, MD

Kryteria uczestnictwa

Badacze szukają osób, które pasują do określonego opisu, zwanego kryteriami kwalifikacyjnymi. Niektóre przykłady tych kryteriów to ogólny stan zdrowia danej osoby lub wcześniejsze leczenie.

Kryteria kwalifikacji

Wiek uprawniający do nauki

  • Dziecko
  • Dorosły

Akceptuje zdrowych ochotników

Nie

Opis

Kryteria przyjęcia:

  • Niepłodne kobiety w wieku <43 lat w momencie stymulacji jajników do zapłodnienia in vitro

Kryteria wyłączenia:

  • Kobiety poddawane preimplantacyjnym badaniom genetycznym, choroby monogenowe, strukturalna rearanżacja chromosomów lub aneuploidia;
  • Czynnik męski wymagający chirurgicznego pobrania nasienia, np. aspiracja mikroskopowa plemników z najądrza i ekstrakcja plemników z jądra;
  • Wykorzystanie oocytów i plemników dawcy;
  • Mięśniak podśluzówkowy lub wodniak pokazane w badaniu miednicy i nieleczone chirurgicznie;
  • Kobiety, które zostały zrekrutowane do tego badania wcześniej i
  • Kobiety przyłączające się do innych randomizowanych badań

Plan studiów

Ta sekcja zawiera szczegółowe informacje na temat planu badania, w tym sposób zaprojektowania badania i jego pomiary.

Jak projektuje się badanie?

Szczegóły projektu

  • Główny cel: Leczenie
  • Przydział: Randomizowane
  • Model interwencyjny: Przydział równoległy
  • Maskowanie: Poczwórny

Broń i interwencje

Grupa uczestników / Arm
Interwencja / Leczenie
Eksperymentalny: metoda chipów mikroprzepływowych

Do sortowania plemników zastosowano metodę chipów mikroprzepływowych w celu wybrania najbardziej ruchliwych i prawidłowych morfologicznie plemników do zastosowania w technologiach wspomaganego rozrodu (ART), takich jak zapłodnienie in vitro (IVF) i docytoplazmatyczna iniekcja plemnika (ICSI).

W mikroprzepływowej metodzie sortowania plemników niewielka ilość próbki nasienia ładowana jest na chip, który zawiera kanały i komory umożliwiające separację plemników na podstawie ich ruchliwości i morfologii. Chip ma naśladować naturalne środowisko żeńskiego układu rozrodczego, gdzie plemniki przed dotarciem do komórki jajowej przechodzą szereg procesów selekcji.

Stosowane będzie urządzenie do separacji plemników – ZyMōt Multi 850µL (ZyMōt Fertility, Inc). Komora mikroprzepływowa będzie używana zgodnie z instrukcją producenta. Do portu wlotowego urządzenia zostanie wprowadzone 850 µl próbki nasienia, a do portu wylotowego 750 µl podłoża do zapłodnienia. Urządzenie zawierające próbkę nasienia będzie inkubowane w 6% CO2 w temperaturze 37°C. Po 30 minutach 500 µl próbki z portu wylotowego zostanie usunięte z portu wylotowego i przepipetowane do oznakowanej probówki testowej.
Aktywny komparator: metoda wirowania w gradiencie gęstości
Wirowanie w gradiencie gęstości jest powszechnie stosowaną metodą separacji i oczyszczania plemników. Jest to technika polegająca na nałożeniu próbki nasienia na gradientowy roztwór o różnej gęstości, zazwyczaj mieszaninie krzemionki koloidalnej i sacharozy, a następnie odwirowaniu próbki. Siła odśrodkowa powoduje, że plemniki migrują przez gradient, gdzie zostają rozdzielone w zależności od ich gęstości.
Po upłynnieniu przygotowanie nasienia zostanie zakończone metodą wirowania w nieciągłym gradiencie gęstości, przy użyciu pożywki z gradientem gęstości plemników Pureception (CooperSurgical, Dania). Powstały osad plemników po odwirowaniu zostanie jednokrotnie przepłukany pożywką do płukania nasienia (G-IVF Plus, Vitrolife, Szwecja). Przepłukane plemniki zostaną ponownie zawieszone w tej samej pożywce, dostosowując końcową objętość do 0,5 mL.

Co mierzy badanie?

Podstawowe miary wyniku

Miara wyniku
Opis środka
Ramy czasowe
skumulowany wskaźnik urodzeń żywych
Ramy czasowe: w ciągu 6 miesięcy od randomizacji.
skumulowany współczynnik żywych urodzeń zdefiniowany jako liczba ciąż prowadzących do żywych urodzeń w ciągu 6 miesięcy od randomizacji.
w ciągu 6 miesięcy od randomizacji.

Miary wyników drugorzędnych

Miara wyniku
Opis środka
Ramy czasowe
Urodzenie na żywo po 22. tygodniu ciąży w ramach pierwszego transferu zarodka lub FET
Ramy czasowe: 3 lata
Urodzenie na żywo po 22. tygodniu ciąży w ramach pierwszego transferu zarodka lub FET
3 lata
Pozytywny test ciążowy w moczu przy pierwszym transferze zarodka lub FET
Ramy czasowe: 3 lata
Pozytywny test ciążowy w moczu przy pierwszym transferze zarodka lub FET
3 lata
Ciąża kliniczna w wyniku pierwszego transferu zarodka lub FET zdefiniowana jako obecność pęcherzyka ciążowego wewnątrzmacicznego w badaniu USG w 6. tygodniu ciąży.
Ramy czasowe: 3 lata
Ciąża kliniczna w wyniku pierwszego transferu zarodka lub FET zdefiniowana jako obecność pęcherzyka ciążowego wewnątrzmacicznego w badaniu USG w 6. tygodniu ciąży.
3 lata
Wskaźnik trwającej ciąży jako obecność bieguna płodu z pulsacją w 8-10 tygodniu ciąży
Ramy czasowe: 3 lata
Wskaźnik trwającej ciąży jako obecność bieguna płodu z pulsacją w 8-10 tygodniu ciąży
3 lata
Poronienie definiuje się jako klinicznie stwierdzoną utratę ciąży przed 22. tygodniem ciąży, której mianownikiem jest ciąża kliniczna.
Ramy czasowe: 3 lata
Poronienie definiuje się jako klinicznie stwierdzoną utratę ciąży przed 22. tygodniem ciąży, której mianownikiem jest ciąża kliniczna.
3 lata
Ciąża mnoga: obecność więcej niż jednego worka wewnątrzmacicznego w 6 tygodniu ciąży
Ramy czasowe: 3 lata
Ciąża mnoga: obecność więcej niż jednego worka wewnątrzmacicznego w 6 tygodniu ciąży
3 lata
Wskaźnik ciąży pozamacicznej
Ramy czasowe: 3 lata
Wskaźnik ciąży pozamacicznej
3 lata

Współpracownicy i badacze

Tutaj znajdziesz osoby i organizacje zaangażowane w to badanie.

Daty zapisu na studia

Daty te śledzą postęp w przesyłaniu rekordów badań i podsumowań wyników do ClinicalTrials.gov. Zapisy badań i zgłoszone wyniki są przeglądane przez National Library of Medicine (NLM), aby upewnić się, że spełniają określone standardy kontroli jakości, zanim zostaną opublikowane na publicznej stronie internetowej.

Główne daty studiów

Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)

1 listopada 2024

Zakończenie podstawowe (Szacowany)

30 listopada 2027

Ukończenie studiów (Szacowany)

30 listopada 2029

Daty rejestracji na studia

Pierwszy przesłany

29 czerwca 2023

Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości

16 sierpnia 2023

Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)

22 sierpnia 2023

Aktualizacje rekordów badań

Ostatnia wysłana aktualizacja (Szacowany)

6 grudnia 2024

Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości

3 grudnia 2024

Ostatnia weryfikacja

1 grudnia 2024

Więcej informacji

Terminy związane z tym badaniem

Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)

Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?

TAK

Ramy czasowe udostępniania IPD

po opublikowaniu artykułu podstawowego

Kryteria dostępu do udostępniania IPD

rozsądna prośba

Typ informacji pomocniczych dotyczących udostępniania IPD

  • PROTOKÓŁ BADANIA
  • SOK ROŚLINNY
  • ICF
  • CSR

Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze

Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA

Nie

Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA

Tak

produkt wyprodukowany i wyeksportowany z USA

Tak

Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .

Subskrybuj