- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT06150066
Wpływ palenia na zapalenie tkanek wokół implantu
Ocena roli palenia w patogenezie zapalenia tkanek wokół implantu
Głównym celem tego projektu jest ocena mikrobiologicznego i zapalnego wpływu palenia tytoniu oraz nasilenia palenia na zmiany chorobowe związane z zapaleniem okołoimplantologicznym. Drugorzędnym celem jest porównanie wpływu palenia na zapalenie tkanek okołoimplantowych i mikroflorę przyzębia oraz stan zapalny u tych samych osób.
Będzie w nim uczestniczyć 96 pacjentów, podzielonych równo na cztery grupy: palacze z periimplantitis (n=24), osoby niepalące z periimplantitis (n=24), palacze ze zdrowymi tkankami wokół implantu (n=24), osoby niepalące ze zdrowymi tkankami wokół implantu (n=24).
Pobrane próbki zostaną poddane analizom mikrobiologicznym i biochemicznym.
Przegląd badań
Status
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
Badanie przekrojowe zostanie przeprowadzone we współpracy z Zakładami Periodontologii na Wydziale Stomatologii Uniwersytetu w Bernie w Szwajcarii, Uniwersytetem Hatay Mustafa Kemal, Uniwersytetem Dokuz Eylul, Uniwersytetem Gazi i Uniwersytetem Ege w Turcji. Pierwszy etap badania zostanie przeprowadzony w Turcji, a drugi w Szwajcarii. Ponieważ Hatay jest jedną z trzech prowincji najbardziej dotkniętych trzęsieniem ziemi w Turcji w 2023 r., a szkoła dentystyczna Uniwersytetu Hatay Mustafa Kemal została poważnie zniszczona, pobranie próbek od pacjentów w Hatay jest niemożliwe. Dlatego projekt ten zaplanowano jako wieloośrodkowy, a próbki pacjentów będą pobierane z Dokuz Eylül, Uniwersytetu Gazi i Uniwersytetu Ege, Katedry Periodontologii, Wydziału Stomatologii. Próbki zostaną poddane analizie w Laboratorium Mikrobiologii Jamy Ustnej Wydziału Periodontologii Uniwersytetu w Bernie w Szwajcarii. Protokół badania został zatwierdzony przez Komisję Etyki ds. Wykorzystywania Ludzi w Badaniach Uniwersytetu Dokuz Eylul (Protokół nr: 2023/GOA-8246).
Badanie to obejmie 96 pacjentów, równo podzielonych na cztery grupy:
- Palacze z periimplantitis
- Osoby niepalące z zapaleniem periimplantitis
- Palacze ze zdrowymi tkankami wokół implantu
- Osoby niepalące ze zdrowymi tkankami wokół implantu
Stan palenia zostanie podzielony na dwie grupy: palący i niepalący (nigdy niepalący). Do grupy osób niepalących będą należeć byli palacze, którzy rzucili palenie co najmniej 6 lat temu.
Obliczone zostaną liczba wypalanych dziennie papierosów, wskaźnik palenia (średnia liczba papierosów dziennie x lata palenia tytoniu) i kieszonkowy rok palenia (średnia liczba papierosów dziennie x lata palenia tytoniu / liczba papierosów w kieszeń). Stan palenia zostanie wykryty na podstawie raportu własnego. Stan palenia zostanie później potwierdzony na podstawie poziomu kotyniny w ślinie. Stężenie kotyniny w ślinie przy paleniu będzie akceptowane na poziomie 5-7 ng/ml. Nasilenie palenia będzie określane na podstawie wyższych stężeń.
Parametry przyzębia Kliniczne pomiary przyzębia będą oceniane w oparciu o poniższe kryteria diagnostyki przyzębia. Pomiary będą wykonywane przy użyciu sondy periodontologicznej Williams (Hu-Friedy, Chicago, IL, USA) i obejmują głębokość kieszonki sondującej (PPD), kliniczny poziom przyczepu (CAL), wskaźnik płytki nazębnej (PI) 26, wskaźnik dziąseł (GI) 27, oraz procent krwawienia podczas sondowania (BOP) 28 w sześciu miejscach na ząb (mezjalno-policzkowa, policzkowa, dystalno-policzkowa, mezjalno-językowa, językowa i dystalno-językowa) każdego zęba.
Rozpoznanie chorób i schorzeń przyzębia będzie przeprowadzane na podstawie radiograficznych i klinicznych kryteriów diagnostycznych zaproponowanych przez Światowe Warsztaty na temat Klasyfikacji Chorób i Stanów Przyzębia i Wokół Implantów w 2017 r.29 Zdrowie wokół implantu będzie oceniane na podstawie braku wizualnych oznak choroby zapalenie, krwawienie podczas sondowania i dalsza utrata kości po początkowym zagojeniu, która nie powinna przekraczać ≥2 mm. Kryteriami dla pacjentów z zapaleniem periimplantitis będzie PPD ≥ 6 mm w połączeniu z obfitym krwawieniem i utratą kości ≥ 3 mm.
Dane demograficzne pacjentów i kliniczne badanie przyzębia/okolicy implantu
Zbierane będą następujące zmienne:
- Płeć
- Wiek
- BMI
- Wiek implantu
- Liczba i lokalizacja implantów
- Etapy fazy chirurgicznej
- Powikłania związane z leczeniem implantologicznym
- Nieprawidłowe położenie implantu
- Mobilność implantu i dyskomfort (różnice w wartościach Periotestu – PTV)
- Czas od obciążenia implantów do bieżącego badania (czas funkcjonowania)
- Projekt regeneracyjny
- Utrzymanie protezy
- Radiograficzny poziom kości
- Rodzaj i wielkość ubytku kostnego
- Obecność zrogowaciałej błony śluzowej
- Częstotliwość szczotkowania zębów
- Nitkowanie/szczotkowanie przestrzeni międzyzębowych
- Częstotliwość wizyt u dentysty
- Historia zapalenia przyzębia
- Przyczyna utraty zębów
- Używanie alkoholu
Kolekcja śliny
Od pacjentów pobierane będą próbki śliny jako niestymulowane. Próbki zostaną pobrane w ciągu 10 minut, kiedy uczestnicy zajmą miejsca siedzące. Próbki będą przechowywane w temperaturze -80°C do czasu przeniesienia do Katedry Periodontologii Szkoły Medycyny Stomatologicznej Uniwersytetu w Bernie, w suchym lodzie do analiz.
Zbieranie próbek płytki nazębnej
Próbki płytki nazębnej zostaną pobrane z obszaru periimplantitis i zapalenia przyzębia poddziąsłowego w grupie periimplantitis oraz obszaru poddziąsłowego zdrowego przyzębia i zdrowia wokół implantu w grupach zdrowia okołoimplantowego. Próbki implantów poddziąsłowych i płytki nazębnej będą pobierane z dwóch najgłębszych kieszonek przyzębnych i kieszonek wokół implantu w obrębie 200 µl RNAlater w probówkach Eppendorfa. Miejsca pobierania próbek zostaną odizolowane od śliny i lekko wysuszone na powietrzu. Próbka zostanie pobrana przy użyciu sterylnej łyżeczki Gracey (HuFriedy, Rotterdam, Holandia). Próbki zostaną pobrane z obszaru zdrowia wokół implantu tą samą metodą w grupie zdrowia wokół implantu. Probówki do mikrowirówki Eppendorf będą przechowywane w temperaturze -80°C do czasu przeniesienia do Instytutu Stomatologii Uniwersytetu w Bernie, w suchym lodzie w celu przeprowadzenia analiz.
Pobieranie próbek płynu dziąsłowego (GCF) i płynu dziąsłowego wokół implantu (PISF)
Próbki zostaną pobrane z dwóch najgłębszych kieszonek wokół implantu i dwóch najgłębszych kieszonek przyzębnych od pacjentów z zapaleniem tkanek wokół implantu. Zanieczyszczenia śliną można uniknąć, izolując każdy obszar za pomocą wacików i lekko odwadniając powietrzem. Płytka zostanie delikatnie usunięta za pomocą łyżeczki periodontologicznej. Stosując metodę kryzy, w ciągu 30 sekund zostanie pobranych 39 próbek za pomocą standardowych pasków papieru (Periopaper; Oraflow Inc., Plainview, NY). Objętości będą mierzone za pomocą wstępnie skalibrowanego elektronicznego urządzenia do pomiaru płynu dziąsłowego (Oraflow Inc., Plainview, NY). 40 Odczyty z urządzenia elektronicznego zostaną przeliczone na rzeczywistą objętość (μl) poprzez odniesienie do krzywej standardowej. Próbki zanieczyszczone krwią lub śliną zostaną wykluczone. Wszystkie sześć pasków Periopaper zostanie zebranych w plastikowych probówkach do mikrowirówki Eppendorf i przechowywanych w temperaturze -80°C do czasu przeniesienia do Instytutu Stomatologii Uniwersytetu w Bernie, w suchym lodzie do analiz.
Analizy laboratoryjne
Próbki śliny i płytki nazębnej zostaną przekazane do Laboratorium Mikrobiologii Jamy Jamy Ustnej, Wydziału Periodontologii, Szkoły Medycyny Stomatologicznej, Uniwersytetu w Bernie, a wszystkie analizy laboratoryjne zostaną wykonane przez dr Aysegula Sari w Laboratorium Mikrobiologii Jamy Jamy Ustnej, Wydziału Periodontologii, Szkoły stomatologii, Uniwersytet w Bernie, Szwajcaria, po podpisaniu umowy o transferze materiału.
Analiza biochemiczna
Stan palenia pacjentów zostanie określony na podstawie analizy kotyniny przy użyciu zestawu do testów immunoenzymatycznych w próbkach śliny.
Analiza mikrobiologiczna
Obecność i liczebność Fusobacterium jąkleatum, Campylobacter rectus, Prevotella intermedia, Aggregatinacter actinomycetemcomitans, Porphyromonas gingivalis, Tannerella forsythia, Treponema denticola, Saccharibacteria (TM7), Streptococcus aureus i Actinomyces oris zostaną przeanalizowane w próbkach płytki nazębnej. Ukierunkowana identyfikacja tych bakterii zostanie przeprowadzona metodą Real Time Q-PCR. Sekwencjonowanie 16sRNA zostanie wykorzystane do bezstronnej i nieukierunkowanej analizy mikrobiologicznej. Ekstrahowany zostanie całkowity genomowy DNA, a następnie zostanie przeprowadzona amplifikacja 16S rRNA.
Analiza GCF
Analiza GCF planowana jest jako drugie badanie. Do analizy próbek GCF i śliny zostanie wykorzystany multipleksowy test immunologiczny Luminex oparty na kulkach. Markery GCF i śliny zostały szeroko wybrane zgodnie z wcześniejszą literaturą jako markery stresu oksydacyjnego 8-OHdG, PARK7/DJ-1 i markery stanu zapalnego oksydazy NADPH IL-1beta, IL-17A/E, osteoprotegeryna (OPG); markery degradacji tkanki łącznej MMP-8, MMP-3; markery naprawy/regeneracji białko morfogeniczne kości (BMP)-2, naskórkowy czynnik wzrostu (EGF) i czynnik wzrostu śródbłonka naczyniowego (VEGF).
Analiza statystyczna
Ponieważ w literaturze nie ma podobnych badań, obliczenia próby przeprowadzono na podstawie wielkości efektu. Niezbędna wielkość próby wynosiła 24 dla każdej grupy, aby wykryć znaczącą różnicę przy wielkości efektu (dużej wielkości efektu) wynoszącej 0,4 i poziomie mocy 90% przy poziomie ufności 95% między czterema grupami. Do obliczeń wielkości próby wykorzystano pakiet Gpower w wersji 3.1. Normalność zmiennych ciągłych będzie oceniana za pomocą testu Shapiro-Wilka. Dla wartości o rozkładzie skośnym zostaną zastosowane nieparametryczne metody statystyczne. Test Kruskala-Wallisa zostanie przeprowadzony w celu porównania więcej niż dwóch zmiennych o rozkładzie normalnym, a test porównań wielokrotnych Dunna dla analiz wielokrotnych porównań parami post hoc. W celu porównania więcej niż dwóch grup o rozkładzie normalnym zostanie przeprowadzony jednokierunkowy test ANOVA, a dla wielokrotnych analiz porównawczych post hoc parami zostanie przeprowadzony test Tukeya. Zostaną wykonane ogólne modele liniowe w celu określenia wpływu nasilenia palenia na choroby wokół implantów i przyzębia.
Typ studiów
Zapisy (Szacowany)
Kontakty i lokalizacje
Lokalizacje studiów
-
-
-
Hatay, Indyk, 31000
- Hatay Mustafa Kemal University
-
-
-
-
-
Bern, Szwajcaria, 3010
- University of Bern
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
- Dorosły
- Starszy dorosły
Akceptuje zdrowych ochotników
Metoda próbkowania
Badana populacja
Opis
Kryteria włączenia do grup badawczych:
- 18 lat
- Wskaźnik masy ciała (BMI): 30 funtów/m2
- Obecność min 1 implantu i 1 zęba dla grup implantów
- Co najmniej 1 rok obciążania implantów dla grup implantów dla grup implantów
Kryteria wykluczenia grup badawczych:
- Choroby ogólnoustrojowe, takie jak cukrzyca, choroba wątroby lub nerek lub inne schorzenia lub choroby przenoszone (ocena ASA III, IV, V)
- Ciąża
- Przyjmowanie antybiotyków w ciągu ostatnich 6 miesięcy
- Leczenie przyzębia w ciągu ostatnich 6 miesięcy
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
Kohorty i interwencje
Grupa / Kohorta |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Palacze z periimplantitis
Do tej grupy włączono 24 pacjentów palących papierosy z zapaleniem periimplantitis.
|
Od uczestników pobrane zostaną próbki GCF, płytki nazębnej i śliny.
|
|
Osoby niepalące z zapaleniem periimplantitis
Do tej grupy włączono 24 pacjentów niepalących, chorych na periimplantitis.
|
Od uczestników pobrane zostaną próbki GCF, płytki nazębnej i śliny.
|
|
Palacze ze zdrowymi tkankami wokół implantu
Do tej grupy włączono 24 pacjentów palących papierosy, ze zdrowymi tkankami wokół implantu.
|
Od uczestników pobrane zostaną próbki GCF, płytki nazębnej i śliny.
|
|
Osoby niepalące ze zdrowymi tkankami wokół implantu
Do tej grupy włączono 24 pacjentów niepalących, ze zdrowymi tkankami wokół implantu.
|
Od uczestników pobrane zostaną próbki GCF, płytki nazębnej i śliny.
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Ocena liczebności Fusobacterium jądro
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Obecność i liczebność Fusobacterium fusionum zostanie zbadana metodą Q-PCR w czasie rzeczywistym w próbkach łysinek
|
2 miesiące
|
|
Ocena liczebności Campylobacter rectus w próbkach płytki nazębnej
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Obecność i liczebność Campylobacter rectus będzie analizowana metodą Q-PCR w czasie rzeczywistym w próbkach łysinek
|
2 miesiące
|
|
Ocena liczebności Prevotella intermedia w próbkach płytki nazębnej
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Obecność i liczebność Prevotella intermedia zostanie zbadana metodą Q-PCR w czasie rzeczywistym w próbce łysinki
|
2 miesiące
|
|
Ocena liczebności Aggregatinacter actinomycetemcomitans w próbkach płytki nazębnej
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Obecność i liczebność Aggregatinacter actinomycetemcomitans zostanie zbadana metodą Q-PCR w czasie rzeczywistym w próbkach łysinek
|
2 miesiące
|
|
Ocena liczebności Porphyromonas gingivalis w próbkach płytki nazębnej
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Obecność i liczebność Porphyromonas gingivalis zostanie zbadana metodą Q-PCR w czasie rzeczywistym w próbkach płytki nazębnej
|
2 miesiące
|
|
Ocena liczebności forsycji Tannerella w próbkach płytki nazębnej
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Obecność i liczebność Tannerella forsythia będzie analizowana metodą Q-PCR w czasie rzeczywistym w próbkach łysinek
|
2 miesiące
|
|
Ocena liczebności Treponema denticola w próbkach płytki nazębnej
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Obecność i liczebność Treponema denticola będzie analizowana metodą Q-PCR w czasie rzeczywistym w próbkach płytki nazębnej
|
2 miesiące
|
|
Ocena liczebności Saccharibacteria (TM7) w próbkach łysinek
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Obecność i liczebność Saccharibacteria (TM7) będzie analizowana metodą Q-PCR w czasie rzeczywistym w próbce łysinki
|
2 miesiące
|
|
Ocena liczebności Streptococcus aureus w próbkach płytki nazębnej
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Obecność i liczebność Streptococcus aureus będzie analizowana metodą Q-PCR w czasie rzeczywistym w próbkach łysinek
|
2 miesiące
|
|
Ocena liczebności Actinomyces oris w próbkach płytki nazębnej
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Obecność i liczebność Actinomyces oris będzie analizowana metodą Q-PCR w czasie rzeczywistym w próbkach łysinek
|
2 miesiące
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Ocena poziomu oksydazy 8-OHdG, PARK7/DJ-1 i NADPH w próbkach GCF i śliny
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Stężenia 8-OHdG będą analizowane metodą multipleksowego testu immunologicznego w GCF i ślinie
|
2 miesiące
|
|
Ocena poziomu IL-1beta, IL-17A/E i osteoprotegeryny (OPG) w próbkach GCF i śliny
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Stężenia IL-1beta, IL-17A/E, osteoprotegeryny (OPG) będą analizowane metodą multipleksowego testu immunologicznego
|
2 miesiące
|
|
Ocena poziomu MMP-8 i MMP-3 w próbkach GCF i śliny
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Stężenia MMP-8, MMP-3 będą analizowane metodą multipleksowego testu immunologicznego
|
2 miesiące
|
|
Ocena poziomu białka morfogenicznego kości (BMP)-2, naskórkowego czynnika wzrostu (EGF) i czynnika wzrostu śródbłonka naczyń (VEGF) w próbkach GCF i śliny
Ramy czasowe: 2 miesiące
|
Stężenia białka morfogenicznego kości (BMP)-2, naskórkowego czynnika wzrostu (EGF) i czynnika wzrostu śródbłonka naczyń (VEGF) będą analizowane metodą testu immunologicznego z użyciem kulek multipleksowych
|
2 miesiące
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Śledczy
- Dyrektor Studium: Alpdogan Kantarci, Prof, Forsyth Institute
- Krzesło do nauki: Anton Sculean, Prof, University of Bern
- Krzesło do nauki: Berrin Unsal, Prof, Gazi University
- Krzesło do nauki: Aliye Akcali, Prof, Dokuz Eylül University
- Główny śledczy: Aysegul Sari, PhD, Mustafa Kemal University
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Ainamo J, Bay I. Problems and proposals for recording gingivitis and plaque. Int Dent J. 1975 Dec;25(4):229-35.
- SILNESS J, LOE H. PERIODONTAL DISEASE IN PREGNANCY. II. CORRELATION BETWEEN ORAL HYGIENE AND PERIODONTAL CONDTION. Acta Odontol Scand. 1964 Feb;22:121-35. doi: 10.3109/00016356408993968. No abstract available.
- LOE H, SILNESS J. PERIODONTAL DISEASE IN PREGNANCY. I. PREVALENCE AND SEVERITY. Acta Odontol Scand. 1963 Dec;21:533-51. doi: 10.3109/00016356309011240. No abstract available.
- Derks J, Tomasi C. Peri-implant health and disease. A systematic review of current epidemiology. J Clin Periodontol. 2015 Apr;42 Suppl 16:S158-71. doi: 10.1111/jcpe.12334.
- Karoussis IK, Salvi GE, Heitz-Mayfield LJ, Bragger U, Hammerle CH, Lang NP. Long-term implant prognosis in patients with and without a history of chronic periodontitis: a 10-year prospective cohort study of the ITI Dental Implant System. Clin Oral Implants Res. 2003 Jun;14(3):329-39. doi: 10.1034/j.1600-0501.000.00934.x.
- Berglundh T, Armitage G, Araujo MG, Avila-Ortiz G, Blanco J, Camargo PM, Chen S, Cochran D, Derks J, Figuero E, Hammerle CHF, Heitz-Mayfield LJA, Huynh-Ba G, Iacono V, Koo KT, Lambert F, McCauley L, Quirynen M, Renvert S, Salvi GE, Schwarz F, Tarnow D, Tomasi C, Wang HL, Zitzmann N. Peri-implant diseases and conditions: Consensus report of workgroup 4 of the 2017 World Workshop on the Classification of Periodontal and Peri-Implant Diseases and Conditions. J Clin Periodontol. 2018 Jun;45 Suppl 20:S286-S291. doi: 10.1111/jcpe.12957.
- Daubert DM, Weinstein BF, Bordin S, Leroux BG, Flemming TF. Prevalence and predictive factors for peri-implant disease and implant failure: a cross-sectional analysis. J Periodontol. 2015 Mar;86(3):337-47. doi: 10.1902/jop.2014.140438. Epub 2014 Nov 21.
- Roccuzzo A, Stahli A, Monje A, Sculean A, Salvi GE. Peri-Implantitis: A Clinical Update on Prevalence and Surgical Treatment Outcomes. J Clin Med. 2021 Mar 6;10(5):1107. doi: 10.3390/jcm10051107.
- Romandini M, Lima C, Pedrinaci I, Araoz A, Soldini MC, Sanz M. Prevalence and risk/protective indicators of peri-implant diseases: A university-representative cross-sectional study. Clin Oral Implants Res. 2021 Jan;32(1):112-122. doi: 10.1111/clr.13684. Epub 2020 Dec 29.
- Schwarz F, Derks J, Monje A, Wang HL. Peri-implantitis. J Clin Periodontol. 2018 Jun;45 Suppl 20:S246-S266. doi: 10.1111/jcpe.12954.
- Derks J, Ichioka Y, Dionigi C, Trullenque-Eriksson A, Berglundh J, Tomasi C, Graziani F. Prevention and management of peri-implant mucositis and peri-implantitis: A systematic review of outcome measures used in clinical studies in the last 10 years. Clin Oral Implants Res. 2023 May;34 Suppl 25:55-67. doi: 10.1111/clr.13925. Epub 2022 Jul 11.
- Genco RJ. Current View of Risk Factors for Periodontal Diseases. J Periodontol. 1996 Oct;67 Suppl 10S:1041-1049. doi: 10.1902/jop.1996.67.10s.1041.
- Curtis MA, Diaz PI, Van Dyke TE. The role of the microbiota in periodontal disease. Periodontol 2000. 2020 Jun;83(1):14-25. doi: 10.1111/prd.12296.
- Marsh PD. Microbial ecology of dental plaque and its significance in health and disease. Adv Dent Res. 1994 Jul;8(2):263-71. doi: 10.1177/08959374940080022001.
- Buduneli N. Environmental factors and periodontal microbiome. Periodontol 2000. 2021 Feb;85(1):112-125. doi: 10.1111/prd.12355. Epub 2020 Nov 23.
- Axelsson P, Paulander J, Lindhe J. Relationship between smoking and dental status in 35-, 50-, 65-, and 75-year-old individuals. J Clin Periodontol. 1998 Apr;25(4):297-305. doi: 10.1111/j.1600-051x.1998.tb02444.x.
- de Araujo Nobre M, Mano Azul A, Rocha E, Malo P. Risk factors of peri-implant pathology. Eur J Oral Sci. 2015 Jun;123(3):131-9. doi: 10.1111/eos.12185. Epub 2015 Apr 20.
- Koldsland OC, Scheie AA, Aass AM. The association between selected risk indicators and severity of peri-implantitis using mixed model analyses. J Clin Periodontol. 2011 Mar;38(3):285-92. doi: 10.1111/j.1600-051X.2010.01659.x. Epub 2010 Dec 15.
- Farronato D, Azzi L, Giboli L, Maurino V, Tartaglia GM, Farronato M. Impact of Smoking Habit on Peri-Implant Indicators following Different Therapies: A Systematic Review. Bioengineering (Basel). 2022 Oct 18;9(10):569. doi: 10.3390/bioengineering9100569.
- Lindquist LW, Carlsson GE, Jemt T. A prospective 15-year follow-up study of mandibular fixed prostheses supported by osseointegrated implants. Clinical results and marginal bone loss. Clin Oral Implants Res. 1996 Dec;7(4):329-36. doi: 10.1034/j.1600-0501.1996.070405.x.
- Schwarz F, Becker K, Sahm N, Horstkemper T, Rousi K, Becker J. The prevalence of peri-implant diseases for two-piece implants with an internal tube-in-tube connection: a cross-sectional analysis of 512 implants. Clin Oral Implants Res. 2017 Jan;28(1):24-28. doi: 10.1111/clr.12609. Epub 2015 Jul 14.
- Bizzarro S, Loos BG, Laine ML, Crielaard W, Zaura E. Subgingival microbiome in smokers and non-smokers in periodontitis: an exploratory study using traditional targeted techniques and a next-generation sequencing. J Clin Periodontol. 2013 May;40(5):483-92. doi: 10.1111/jcpe.12087. Epub 2013 Mar 13.
- Zhou N, Huang H, Liu H, Li Q, Yang G, Zhang Y, Ding M, Dong H, Mou Y. Microbiota analysis of peri-implant mucositis in patients with periodontitis history. Clin Oral Investig. 2022 Oct;26(10):6223-6233. doi: 10.1007/s00784-022-04571-1. Epub 2022 Jun 8.
- Chih SM, Cheng CD, Chen SH, Sung CE, Huang RY, Cheng WC. The impact of smoking on peri-implant microbiota: A systematic review. J Dent. 2023 Jun;133:104525. doi: 10.1016/j.jdent.2023.104525. Epub 2023 Apr 23.
- Tsigarida AA, Dabdoub SM, Nagaraja HN, Kumar PS. The Influence of Smoking on the Peri-Implant Microbiome. J Dent Res. 2015 Sep;94(9):1202-17. doi: 10.1177/0022034515590581. Epub 2015 Jun 29.
- Barbagallo G, Santagati M, Guni A, Torrisi P, Spitale A, Stefani S, Ferlito S, Nibali L. Microbiome differences in periodontal, peri-implant, and healthy sites: a cross-sectional pilot study. Clin Oral Investig. 2022 Mar;26(3):2771-2781. doi: 10.1007/s00784-021-04253-4. Epub 2021 Nov 26.
- Sari A, Davutoglu V, Bozkurt E, Taner IL, Erciyas K. Effect of periodontal disease on oxidative stress markers in patients with atherosclerosis. Clin Oral Investig. 2022 Feb;26(2):1713-1724. doi: 10.1007/s00784-021-04144-8. Epub 2021 Aug 20.
- Yamamoto Y, Nishida N, Tanaka M, Hayashi N, Matsuse R, Nakayama K, Morimoto K, Shizukuishi S. Association between passive and active smoking evaluated by salivary cotinine and periodontitis. J Clin Periodontol. 2005 Oct;32(10):1041-6. doi: 10.1111/j.1600-051X.2005.00819.x.
- Caton JG, Armitage G, Berglundh T, Chapple ILC, Jepsen S, Kornman KS, Mealey BL, Papapanou PN, Sanz M, Tonetti MS. A new classification scheme for periodontal and peri-implant diseases and conditions - Introduction and key changes from the 1999 classification. J Periodontol. 2018 Jun;89 Suppl 1:S1-S8. doi: 10.1002/JPER.18-0157.
- Araujo MG, Lindhe J. Peri-implant health. J Clin Periodontol. 2018 Jun;45 Suppl 20:S230-S236. doi: 10.1111/jcpe.12952.
- Nibali L, Donos N. Periodontitis and redox status: a review. Curr Pharm Des. 2013;19(15):2687-97. doi: 10.2174/1381612811319150003.
- Varghese J, Bhat V, Chianeh YR, Kamath V, Al-Haj Husain N, Ozcan M. Salivary 8-hydroxyguanosine levels in smokers and non-smokers with chronic periodontitis. Odontology. 2020 Oct;108(4):569-577. doi: 10.1007/s10266-020-00496-x. Epub 2020 Feb 17.
- Sun Q, Shen ZY, Meng QT, Liu HZ, Duan WN, Xia ZY. The role of DJ-1/Nrf2 pathway in the pathogenesis of diabetic nephropathy in rats. Ren Fail. 2016;38(2):294-304. doi: 10.3109/0886022X.2015.1120119. Epub 2015 Dec 7.
- Yan YF, Yang WJ, Xu Q, Chen HP, Huang XS, Qiu LY, Liao ZP, Huang QR. DJ-1 upregulates anti-oxidant enzymes and attenuates hypoxia/re-oxygenation-induced oxidative stress by activation of the nuclear factor erythroid 2-like 2 signaling pathway. Mol Med Rep. 2015 Sep;12(3):4734-4742. doi: 10.3892/mmr.2015.3947. Epub 2015 Jun 17.
- Di Minno A, Turnu L, Porro B, Squellerio I, Cavalca V, Tremoli E, Di Minno MN. 8-Hydroxy-2-Deoxyguanosine Levels and Cardiovascular Disease: A Systematic Review and Meta-Analysis of the Literature. Antioxid Redox Signal. 2016 Apr 1;24(10):548-55. doi: 10.1089/ars.2015.6508.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Rzeczywisty)
Ukończenie studiów (Szacowany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- 2023/GOA-8246
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
produkt wyprodukowany i wyeksportowany z USA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .