- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT06163833
Mezenchymalne komórki zrębowe w przypadku urazowego uszkodzenia mózgu (MATRIx)
MATRIX: Mezenchymalne komórki zrębowe stosowane w urazowym uszkodzeniu mózgu
Urazowe uszkodzenie mózgu (TBI) to zmiana w funkcjonowaniu mózgu spowodowana działaniem siły zewnętrznej. Śmiertelność długoterminowa w TBI jest znaczna, u osób, które przeżyły TBI, może rozwinąć się przewlekła postępująca niepełnosprawność, a średnia długość życia skrócona o 6 lat. Leczenie polega na terapii wspomagającej, mającej na celu zapobieganie wtórnym urazom, ale nie jest dostępna terapia neuroprotekcyjna. Biorąc pod uwagę wieloaspektowy charakter TBI, mezenchymalne komórki zrębowe (MSC) są idealnym kandydatem: uwalniają wiele rozpuszczalnych czynników, które, jak wykazano, poprawiają mikrośrodowisko urazu poprzez procesy immunomodulujące, ochronne, naprawcze i regeneracyjne. Dane przedkliniczne dotyczące szeregu różnych modeli TBI i ciężkości urazów pokazują, że ludzkie MSC poprawiają wyniki dzięki plejotropowym mechanizmom ochrony i naprawy. Zatem dane wskazują, że MSC są silnym kandydatem terapeutycznym i potwierdzają badania kliniczne w TBI.
Cel: badanie ma na celu ocenę bezpieczeństwa i skuteczności MSC podawanych dożylnie pacjentom z ciężkim TBI w ciągu 48 godzin od urazu. Badanie będzie prowadzone etapowo. Do etapu 1 zostanie włączonych 36 pacjentów (randomizowanych w proporcji 1:1:1 w ramionach 80 x 10^6 MSC vs 160 x 10^6 MSC vs placebo) w celu określenia bezpieczeństwa i wybrania najbardziej obiecującej dawki. Do etapu 2 zostanie włączonych 30 pacjentów (1:1 w ramionach wybrana dawka MSC vs placebo) w celu określenia aktywności MSC w oparciu o ilościowe oznaczenie osoczowego poziomu światła neurofilamentowego (NFL) po 14 dniach, jako biomarkera uszkodzenia neuronów.
Cele drugorzędne mają na celu ocenę:
- ewolucja uszkodzenia mózgu i uszkodzenie istoty białej metodą neuroobrazowania podłużnego (po 4 dniach i 14 dniach po TBI oraz po 6 miesiącach)
- zmiany immunomodulacyjne mózgu poprzez profilowanie czasowe krążących biomarkerów uszkodzenia mózgu i zapalenia układu nerwowego (codziennie przez 3 dni po TBI, w dniu 7 i 14 oraz w 1, 6 i 12 miesiącu)
- wyniki kliniczne na podstawie ustrukturyzowanej oceny klinicznej i neuropsychologicznej po 6 i 12 miesiącach
Metody: wieloośrodkowe, podwójnie ślepe, randomizowane, kontrolowane placebo, adaptacyjne badanie fazy II w celu ustalenia dawki.
Czas trwania badania: 36 miesięcy (24 miesiące włączenia i 12 obserwacji).
Finansowanie: Fondazione Regionale per la ricerca Biomedica, FRRB (zaproszenie „Niezaspokojone potrzeby medyczne”, numer wniosku 3440227) i włoskie Ministerstwo Zdrowia (Ministero della Salute, Bando di Ricerca Finalizzata 2021; numer wniosku RF-2021-12372642).
Przegląd badań
Status
Szczegółowy opis
Opis badania: Wieloośrodkowe, podwójnie ślepe, randomizowane, kontrolowane placebo, adaptacyjne badanie fazy II mające na celu ustalenie dawki, mające na celu określenie, czy MSC podawane w dawce 80 lub 160 x 10^6 komórek w ciągu 48 godzin od TBI są bezpieczne u pacjentów z ciężkim TBI oraz w celu określenia, czy MSC podawane w dawkach uznanych za bezpieczne i bardziej obiecujące zmniejszają biomarker uszkodzenia mózgu w postaci światła neurofilamentowego (NFL) w plazmie po 14 dniach. Pacjenci będą rekrutowani na oddziale intensywnej terapii neurointensywnej w Fondazione IRCCS San Gerardo dei Tintori w Monza, w ASST Ospedale Papa Giovanni XXIII Bergamo oraz w Fondazione IRCCS Ca Granda Ospedale Maggiore Policlinico w Mediolanie. Zbiór wielu parametrów klinicznych, neuroobrazowych i biologicznych opisze ewolucję TBI.
Badania przedkliniczne: Badania na modelach TBI gryzoni wykazały, że podawanie MSC powoduje poprawę funkcjonalną wraz z łagodzeniem deficytów czuciowo-ruchowych i poznawczych, zmniejszeniem objętości stłuczenia i utratą neuronów, modulacją odpowiedzi zapalnej ze zmniejszonym stanem zapalnym, stymulacją korzystnych mechanizmów endogennych (angiogeneza, neurogeneza, plastyczność synaptyczna). Wyniki te potwierdzają pogląd, że MSC mogą przeprogramować mikrośrodowisko, łagodząc postęp uszkodzeń mózgu i sprzyjając przywracaniu funkcji. Tylko w kilku badaniach klinicznych oceniano bezpieczeństwo, wykonalność i skuteczność terapii MSC. Nie zgłoszono żadnych zdarzeń niepożądanych (AE) ani poważnych zdarzeń niepożądanych (SAE). Żadne działania niepożądane nie były związane z drogą dożylną, którą badacze proponują w badaniu.
Docelowa wielkość próby: Całkowita liczba pacjentów podlegających ocenie, która zostanie poddana analizie, wyniesie 66 (27 w ramieniu kontrolnym, 12 w ramieniu eksperymentalnym, kończącym się na pierwszym etapie i 27 w ramieniu eksperymentalnym przechodzącym do drugiego etapu). Szczegółowo, całkowita liczba pacjentów podlegających ocenie wyniesie 24 (12 pacjentów w każdym ramieniu eksperymentalnym) w przypadku tymczasowej analizy bezpieczeństwa i 54 w przypadku ostatecznej analizy skuteczności (27 pacjentów zarówno w ramieniu kontrolnym, jak i w ramieniu eksperymentalnym osiągającym drugi krok).
Oczekując, że na OIT liczba zgonów pacjentów z TBI wyniesie 13%, liczba randomizowanych pacjentów wyniesie około 78 (32 w ramieniu kontrolnym, 14 w ramieniu eksperymentalnym kończącym leczenie na pierwszym etapie i 32 w ramieniu eksperymentalnym przechodzącym do drugiego etapu). W przypadku zamknięcia badania po pierwszym etapie, liczba pacjentów poddanych randomizacji wyniesie około 42 (14 w każdym ramieniu).
Projekt statystyczny i wielkość próby: Projekt badania statystycznego składa się z 2 etapów.
Krok 1: Przeprowadzona zostanie tymczasowa analiza bezpieczeństwa w celu osobnej oceny w każdej z dwóch eksperymentalnych grup dawkowania, przy jednostronnym poziomie błędu I wynoszącym 10%, czy u więcej niż 30% pacjentów wystąpi co najmniej jedno poważne działanie niepożądane leku ( SADR) w ciągu 14 dni od zabiegu i jednocześnie z mocą 80%, czy u 5% lub mniej pacjentów SADR nie występuje. Przyjmując projekt Fleminga z podejściem A'Herna, w każdej grupie analizowanych będzie 12 pacjentów nadających się do oceny (w sumie 36 pacjentów). Maksymalna liczba pacjentów, u których wystąpił co najmniej jeden SADR, którą można zaobserwować w każdej grupie eksperymentalnej, wynosi 1 z 12, ponieważ wynik ten jest powiązany z górną granicą 80% dokładnego przedziału ufności wynoszącego 28,8%.
Leczenie eksperymentalne zostanie uznane za bezpieczne na tym etapie tylko wtedy, gdy żaden pacjent lub jeden pacjent nie eksperymentuje z SADR.
Zgodnie z powyższą rolą:
- jeżeli oba eksperymentalne sposoby leczenia zostaną uznane za niebezpieczne, badanie zostanie przerwane ze względów bezpieczeństwa, a etap 2 badania nie zostanie wykonany
- jeśli jedno leczenie eksperymentalne zostanie uznane za bezpieczne, a drugie za niebezpieczne, do etapu 2 badania przejdzie wyłącznie grupa bezpieczna
- jeśli obie dawki eksperymentalne są bezpieczne, wówczas w kroku 2 zostanie wybrany bardziej aktywny schemat. Bardziej aktywny schemat zostanie zdefiniowany w kategoriach odsetka pacjentów, u których po 14 dniach osiągnięty zostanie wzrost NFL równy lub niższy od poziomu wyjściowego 5-krotnie (definiowani jako „pacjenci reagujący”).
Wartość graniczną zdefiniowano w oparciu o analizę ilościową podłużną dostarczoną dzięki uprzejmości współpracowników BIO-AX-TBI, wykazującą medianę wzrostu o 12,8-krotność po 14 dniach w porównaniu z wartością wyjściową, przy czym pierwszy kwartyl wynosi 5-krotny wzrost (patrz paragraf 5.4 dla Detale). W przypadku równej liczby pacjentów, którzy zareagowali na leczenie w obu ramionach eksperymentu, wartość odcięcia określająca odpowiedź będzie zwiększana iteracyjnie o 1 jednostkę, ponieważ będzie obserwowana różnica między obydwoma ramionami eksperymentu. Ocena ta zostanie przeprowadzona wyłącznie w przypadku ramion leczonych MSC; grupa kontrolna nie będzie brana pod uwagę. Według Simona, Wittesa i Ellemberga, randomizowanego projektu fazy II, w badaniu istnieje ponad 80% prawdopodobieństwo prawidłowego wyboru bardziej aktywnego schematu, gdy odsetek pacjentów, którzy uzyskali odpowiedź na leczenie, jest o 15% większy w pierwszym z dwóch schematów leczenia.
Krok 2: głównym punktem końcowym będzie NFL po 14 dniach. Ostateczna analiza skuteczności zostanie przeprowadzona poprzez zwiększenie wielkości próby do 27 pacjentów podlegających ocenie w ramionach eksperymentalnym i kontrolnym. Badanie ma na celu wykrycie wielkości efektu wynoszącej 0,59 w skali logarytmicznej od ramienia eksperymentalnego do kontrolnego, ustalając jednostronny poziom błędu typu I wynoszący 10% i moc 80%.
Dane będą analizowane przez biostatystyka badania przy użyciu oprogramowania SAS w wersji 9.4. Pełny Plan Analizy Statystycznej zostanie napisany przed analizą statystyczną.
Pacjenci zmarli lub utraceni w trakcie obserwacji oraz pacjenci z brakującymi wartościami będą brać udział w analizie wyników wtórnych tylko przez okres, w którym dostępne są dane.
Wszyscy pacjenci, którzy otrzymali leczenie, zostaną objęci analizą bezpieczeństwa. Każdy pacjent zostanie poddany analizie w faktycznie otrzymanym ramieniu.
Ocena bezpieczeństwa będzie opierać się głównie na działaniach niepożądanych (AR) oraz częstotliwości i charakterze poważnych zdarzeń niepożądanych (SAE) i będzie przeprowadzona na podstawie zestawu analiz bezpieczeństwa.
Oczekiwane wyniki: badacze spodziewają się udowodnić bezpieczeństwo i skuteczność dożylnego podawania MSC pacjentom z ostrym i ciężkim TBI. Badacze przedstawią szczegółowy, podłużny opis wpływu MSC na zaawansowane trajektorie neuroobrazowania mózgu, uszkodzenia aksonów i zmiany neuroimmunomodulacyjne na podstawie analizy biomarkerów we krwi oraz na wyniki kliniczne.
Przygotowanie MSC: Przygotowanie MSC zostanie przeprowadzone zgodnie ze szczegółami zawartymi w broszurze IMP, zgodnie z wytycznymi dobrych procedur produkcyjnych (GMP) w Laboratorio Stefano Verri, ASST MONZA. Laboratorio Stefano Verri posiada standardowe procedury operacyjne dotyczące przechowywania, uwalniania, rozmrażania, przygotowywania i podawania MSC.
MSC przechowuje się w fiolkach zawierających 40 X 10^6 MSC każda w 4,5 ml roztworu do przechowywania (2,5 ml 20% albuminy, 1,1 ml normalnego roztworu soli fizjologicznej, 0,45 ml roztworu cytrynianu-dekstrozy (ACD), 0,45 ml sulfotlenku dimetylu (DMSO)). . Fiolki zawierające wyłącznie 4,5 ml roztworu do przechowywania będą przygotowywane i przechowywane w ten sam sposób. Zastrzyki MSC i zastrzyki placebo będą miały identyczny wygląd i konsystencję. Fiolki przechowuje się w fazie gazowej ciekłego azotu do czasu podania.
Badany lek zostanie przygotowany przez wykwalifikowany personel pod wyciągiem laminarnym klasy A w pobliżu OIOM-u.
IMP zostanie podany doraźnie (w ciągu 48 godzin od urazu) w ciągu 15 minut od przygotowania przez żyłę centralną.
Procedura losowego przydziału: Pacjenci zostaną losowo przydzieleni do jednej z trzech grup leczenia (stosunek przydziału 1:1:1 w przypadku pierwszego etapu i 1:1 w przypadku drugiego etapu). Biostatystyk prowadzący badanie przygotuje sekwencję zabiegów zgodnie z procedurą losowych bloków permutowanych. Harmonogram randomizacji zostanie wygenerowany przy użyciu wersji SAS 9.4. Losowy przydział leczenia będzie scentralizowany.
Po rekrutacji pacjenta spełniającego kryteria włączenia lokalny badacz będzie kierował się listą randomizacyjną (dostarczoną przez personel fabryki) (szczegółowo opisaną w Podręczniku procedur), aby w sposób ślepy przypisać leczenie pacjentowi.
Oślepienie: Uczestnicy, koordynatorzy i badacze badań oraz personel zaangażowany w ocenę wyników i monitorowanie przestrzegania zasad zostaną zaślepieni. Przydział leczenia będzie znany jedynie Zespołowi ds. Zarządzania Danymi Sponsora i Fabryce Komórek w każdym ośrodku. Do monitorowania wyników bezpieczeństwa zostanie wyznaczony nieoślepiony lekarz.
Wycofanie pacjenta: Pacjenci mogą wycofać się (lub zostać wycofani) z badania w dowolnym momencie. Wypłaty w ciągu 14 dni zostaną zastąpione.
Przyczyny wycofania się pacjenta obejmują:
- Zdarzenie niepożądane, które w ocenie Badacza wymaga wycofania badania
- Pacjent chce wycofać się z badania
- Pacjent traci możliwość obserwacji. Ocena korzyści/ryzyka: Stosowanie terapii MSC u pacjentów z TBI ma charakter eksperymentalny i może nie przynosić pacjentowi żadnych bezpośrednich korzyści. Niemniej jednak wnioskodawcy są głęboko przekonani, że oczekiwane korzyści z tej strategii terapeutycznej opartej na MSC to złagodzenie ewolucji patologii TBI, a w konsekwencji lepsze wyniki w postaci zmniejszenia długotrwałej niepełnosprawności. Komórki MSC są szczególnie obiecującą terapią komórkową ze względu na ich dostępność, właściwości immunologiczne oraz udokumentowane bezpieczeństwo i skuteczność.
Ryzyko związane z procedurą podawania dożylnego obejmuje krwawienie, obrzęk i niewielki ból podczas wstrzyknięcia. Objawy te ustępują samoistnie i nie stanowią żadnego długotrwałego problemu.
W ciągu pierwszych kilku godzin od wlewu dożylnego MSC mogą wystąpić: ból głowy, gorączka, gorączka i reakcja alergiczna. Ryzyko reakcji alergicznej zmniejsza się dzięki zastosowaniu w procesie produkcyjnym lizatu ludzkich płytek krwi zamiast płodowej surowicy cielęcej. Pozwala to również uniknąć możliwego przeniesienia wciąż nieznanej choroby odzwierzęcej.
Istnieje również odległe ryzyko infekcji, które można leczyć odpowiednimi antybiotykami. Zakażenie może powodować ból, dyskomfort i uszkodzenie tkanek.
Potencjalnym ryzykiem dożylnego wlewu MSC są zdarzenia zakrzepowo-zatorowe. Wlew MSC może zwiększyć płucny opór naczyniowy w przypadku uszkodzenia mikrokrążenia płucnego, potencjalnie poprzez agregację lub zlepianie się w naczyniach włosowatych lub małych tętniczkach. Kolejnymi potencjalnymi zagrożeniami są ostra niewydolność prawej komory, upośledzona pojemność minutowa serca i niestabilność hemodynamiczna. Ponadto wlew MSC może potencjalnie pogorszyć niedopasowanie wentylacji do perfuzji i skutkować dalszym upośledzeniem utlenowania lub wydalania dwutlenku węgla.
Zbieranie danych: Wszystkie dane uzyskane podczas tego badania klinicznego zostaną przechwycone elektronicznie w specjalnie zaprogramowanej aplikacji do elektronicznego przechwytywania danych (EDC) przeznaczonej do konkretnego projektu.
Dla każdego pacjenta wszystkie dane i wizyty związane z badaniem zostaną zarejestrowane w eCRF (elektroniczny formularz raportu przypadku). Jeżeli uczestnik wycofa się z badania, w eCRF należy podać przyczynę.
Świadoma zgoda: Badacz/delegat ma obowiązek uzyskać świadomą zgodę zgodnie z wytycznymi ICH-GCP i Deklaracją Helsińską oraz lokalnymi przepisami od każdego uczestnika biorącego udział w tym badaniu i/lub jego/jej wyznaczonego prawnie przedstawiciela/pełnomocnika. Jeżeli w chwili uzyskania zgody podmiot nie jest w stanie wyrazić osobistej zgody, ma obowiązek udzielić tej zgody lub ją wycofać możliwie jak najszybciej po poprawie stanu klinicznego w zakresie umożliwiającym wyrażenie osobistej zgody, chyba że lokalne przepisy stanowią inaczej.
Formularz świadomej zgody (ICF) zostanie dostarczony w lokalnych językach danego kraju.
Zgodność z przepisami i etyką: Badanie zostanie przeprowadzone zgodnie z Deklaracją Helsińską i Dobrą Praktyką Kliniczną. Badanie uzyskało zgodę Agencji Regulacyjnej (AIFA). Protokół i przebieg badania będą zgodne z przepisami dotyczącymi leków stosowanych u ludzi (badania kliniczne) z 2004 r. i wszelkimi odpowiednimi zmianami. Raporty dotyczące aktualizacji bezpieczeństwa rozwoju zostaną przedłożone IEC i Agencji Regulacyjnej.
Typ studiów
Zapisy (Szacowany)
Faza
- Faza 2
Kontakty i lokalizacje
Kontakt w sprawie studiów
- Nazwa: Giuseppe Citerio, Professor
- Numer telefonu: +39 0392334316
- E-mail: giuseppe.citerio@unimib.it
Kopia zapasowa kontaktu do badania
- Nazwa: Alessia Vargiolu, PhD
- Numer telefonu: +39 0392334335
- E-mail: alessia.vargiolu@unimib.it
Lokalizacje studiów
-
-
-
Bergamo, Włochy, 24127
- Rekrutacyjny
- ASST Ospedale Papa Giovanni XXIII Bergamo
-
Kontakt:
- Paolo Gritti, Professor
- Numer telefonu: +39 035 2675160
- E-mail: pgritti@asst-pg23.it
-
Milano, Włochy, 20122
- Jeszcze nie rekrutacja
- Fondazione IRCCS Cà Granda Ospedale Maggiore Policlinico of Milano
-
Kontakt:
- Tommaso Zoerle, MD
- Numer telefonu: 5561 +39 025503
- E-mail: tommaso.zoerle@policlinico.mi.it
-
-
MB
-
Monza, MB, Włochy, 20900
- Rekrutacyjny
- Fondazione IRCCS San Gerardo dei Tintori
-
Kontakt:
- Giuseppe Citerio, Professor
- Numer telefonu: 4316 +39 039233
- E-mail: giuseppe.citerio@unimib.it
-
Kontakt:
- Alessia Vargiolu, PhD
- Numer telefonu: 4335 +39 039 233
- E-mail: alessia.vargiolu@unimib.it
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
- Dorosły
- Starszy dorosły
Akceptuje zdrowych ochotników
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Wiek: 18-70 lat
- Wskaźnik słabości klinicznej (CFI) < 5
- Dowody TBI potwierdzone nieprawidłowościami odpowiadającymi urazowi w tomografii komputerowej przy przyjęciu (klasyfikacja CT Marshalla > 1)
- Możliwość podania badanego leku (MSC/placebo) w ciągu 48 godzin od TBI
- GCS ≤ 8 w chwili rekrutacji i co najmniej jedna źrenica reaguje na światło
- Monitorowanie ICP już wprowadzone lub zaplanowane ze wskazań klinicznych
- Waga < 100 kg i > 40 kg
Kryteria wyłączenia:
- Motor GCS > 5 w chwili rekrutacji
- Wysokie prawdopodobieństwo (> 85%) śmierci w ciągu pierwszych 48 godzin obliczone za pomocą kalkulatora IMPACT na podstawie danych dotyczących wczesnego przyjęcia do szpitala
- Obustronne rozszerzenie źrenic
- Otwarcie ICP > 40 mmHg
- Znana historia wcześniejszych uszkodzeń mózgu, zaburzeń psychicznych, zaburzeń i (lub) deficytów neurologicznych
- Uraz penetrujący mózg
- Uraz rdzenia kręgowego
- Przebyta padaczka wymagająca leczenia przeciwdrgawkowego
- Ciężka niewydolność narządowa (w tym PaO2/FiO2<200 i wstrząs)
- Niedawny poważny proces zakaźny
- Rak
- Immunosupresja
- Ludzki wirus niedoboru odporności
- Pozytywny test ciążowy w moczu lub karmienie piersią
- Znane ryzyko/historia koagulopatii i choroby zakrzepowo-zatorowej
Istniejące i poważne:
- choroby płuc (takie jak astma, przewlekła obturacyjna choroba płuc),
- zaburzenia czynności serca (jako niewydolność serca i zmniejszona pojemność minutowa serca),
- niewydolność wątroby (jako marskość wątroby)
- niewydolność nerek
- i inne poważne nieprawidłowości narządowe
- Znana nadwrażliwość na substancje pomocnicze użyte w preparacie (sulfotlenek dimetylu (DMSO), roztwór cytrynianowo-dekstrozowy (ACD))
- Udział w równoległym badaniu interwencyjnym
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Leczenie
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Poczwórny
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Komparator placebo: 1-kontrola (placebo)
Sposób podawania: jednorazowo (bolus), dożylnie, 36ml
|
Placebo należy podać w infuzji dożylnej przez cewnik żylny in situ w ciągu 15 minut od przygotowania i w ciągu 48 godzin od TBI.
Należy go rozcieńczyć w roztworze soli fizjologicznej w stosunku 1:2, uzyskując w sumie 36 ml.
Inne nazwy:
|
|
Eksperymentalny: 2-MSC 80*10^6
Sposób podawania: jednorazowo (bolus), dożylnie, 36ml
|
MSC należy podawać w dawce 80*10^6. MSC należy podawać w infuzji dożylnej przez cewnik żylny in situ w ciągu 15 minut od przygotowania i w ciągu 48 godzin od TBI. Należy je rozcieńczyć w stosunku 1:2 w roztworze soli fizjologicznej, aby uzyskać łącznie 36 ml.
Inne nazwy:
|
|
Eksperymentalny: 3-MSC 160*10^6
Sposób podawania: jednorazowo (bolus), dożylnie, 36ml
|
MSC należy podawać w dawce 160*10^6. MSC należy podawać w infuzji dożylnej przez cewnik żylny in situ w ciągu 15 minut od przygotowania i w ciągu 48 godzin od TBI. Należy je rozcieńczyć w stosunku 1:2 w roztworze soli fizjologicznej, aby uzyskać łącznie 36 ml.
Inne nazwy:
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Bezpieczeństwo dożylnego podawania mezenchymalnych komórek zrębowych u pacjentów z TBI
Ramy czasowe: 14 dni od podania leku
|
liczba pacjentów w każdej z dwóch eksperymentalnych grup dawkowania, u których wystąpiła co najmniej jedna poważna niepożądana reakcja na lek (SADR) (oceniona według CTCAE v5.0) w ciągu 14 dni od leczenia.
Maksymalna liczba pacjentów doświadczających co najmniej jednego SADR, którą można zaobserwować w każdej grupie eksperymentalnej, wynosi 1 z 12.
|
14 dni od podania leku
|
|
skuteczność mezenchymalnych komórek zrębowych w zapobieganiu podostremu uszkodzeniu aksonów mózgu po TBI
Ramy czasowe: 14 dni po TBI
|
liczba pacjentów leczonych MSC, którzy osiągnęli plazmatyczny wzrost NFL (światło neurofilamentowe) po 14 dniach od leczenia równy lub mniejszy niż 5-krotny w porównaniu z wartością wyjściową (pacjentów tych definiuje się jako „pacjentów odpowiadających na leczenie”)
|
14 dni po TBI
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
skuteczność mezenchymalnych komórek zrębowych w zapobieganiu anatomicznym uszkodzeniom mózgu po TBI
Ramy czasowe: 4 dni po TBI, 14 dni i 6 miesięcy
|
liczba pacjentów leczonych MSC, u których stwierdzono poprawę w zakresie atrofii, dyfuzji i integralności mieliny wykrytą w podłużnym zaawansowanym badaniu MRI wykonanym ostro (4 dni po TBI), podostro (14 dni) i 6 miesięcy po TBI.
|
4 dni po TBI, 14 dni i 6 miesięcy
|
|
skuteczność mezenchymalnych komórek zrębowych w zapobieganiu plazmatycznemu wzrostowi krążących biomarkerów związanych z TBI
Ramy czasowe: codziennie przez 3 dni po TBI, w dniach 7 i 14 oraz w 1, 6 i 12 miesiącu
|
liczba pacjentów, u których stwierdzono obniżone wartości markerów związanych z uszkodzeniem aksonów (NFL, GFAP), stanem zapalnym układu nerwowego (IL-6, IL-10, TNFa) i uszkodzeniem naczyń (MMP9) ocenianych codziennie przez 3 dni po TBI, w 7. i 14. dniu oraz po 1, 6 i 12 miesiącach
|
codziennie przez 3 dni po TBI, w dniach 7 i 14 oraz w 1, 6 i 12 miesiącu
|
|
skuteczność podawania mezenchymalnych komórek zrębowych w poprawie wyników klinicznych pacjentów z TBI
Ramy czasowe: 6 i 12 miesięcy po TBI
|
liczba pacjentów z poprawą wyników klinicznych i neuropsychologicznych zarówno po 6, jak i 12 miesiącach, ocenianą za pomocą ustrukturyzowanych kwestionariuszy klinicznych i neuropsychologicznych (rozszerzona skala wyników Glasgow (GOSE) i test jakości życia po uszkodzeniu mózgu (QOLIBRI)).
|
6 i 12 miesięcy po TBI
|
Współpracownicy i badacze
Współpracownicy
Śledczy
- Główny śledczy: Giuseppe Citerio, Professor, Fondazione IRCCS San Gerardo dei Tintori
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Rubio D, Garcia-Castro J, Martin MC, de la Fuente R, Cigudosa JC, Lloyd AC, Bernad A. Spontaneous human adult stem cell transformation. Cancer Res. 2005 Apr 15;65(8):3035-9. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-04-4194. Erratum In: Cancer Res. 2005 Jun 1;65(11):4969.
- Rosland GV, Svendsen A, Torsvik A, Sobala E, McCormack E, Immervoll H, Mysliwietz J, Tonn JC, Goldbrunner R, Lonning PE, Bjerkvig R, Schichor C. Long-term cultures of bone marrow-derived human mesenchymal stem cells frequently undergo spontaneous malignant transformation. Cancer Res. 2009 Jul 1;69(13):5331-9. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-08-4630. Epub 2009 Jun 9.
- Garcia S, Bernad A, Martin MC, Cigudosa JC, Garcia-Castro J, de la Fuente R. Pitfalls in spontaneous in vitro transformation of human mesenchymal stem cells. Exp Cell Res. 2010 May 15;316(9):1648-50. doi: 10.1016/j.yexcr.2010.02.016. Epub 2010 Feb 18. No abstract available.
- Lazarus HM, Haynesworth SE, Gerson SL, Rosenthal NS, Caplan AI. Ex vivo expansion and subsequent infusion of human bone marrow-derived stromal progenitor cells (mesenchymal progenitor cells): implications for therapeutic use. Bone Marrow Transplant. 1995 Oct;16(4):557-64.
- Tian C, Wang X, Wang X, Wang L, Wang X, Wu S, Wan Z. Autologous bone marrow mesenchymal stem cell therapy in the subacute stage of traumatic brain injury by lumbar puncture. Exp Clin Transplant. 2013 Apr;11(2):176-81. doi: 10.6002/ect.2012.0053. Epub 2012 Aug 11.
- Maas AIR, Menon DK, Adelson PD, Andelic N, Bell MJ, Belli A, Bragge P, Brazinova A, Buki A, Chesnut RM, Citerio G, Coburn M, Cooper DJ, Crowder AT, Czeiter E, Czosnyka M, Diaz-Arrastia R, Dreier JP, Duhaime AC, Ercole A, van Essen TA, Feigin VL, Gao G, Giacino J, Gonzalez-Lara LE, Gruen RL, Gupta D, Hartings JA, Hill S, Jiang JY, Ketharanathan N, Kompanje EJO, Lanyon L, Laureys S, Lecky F, Levin H, Lingsma HF, Maegele M, Majdan M, Manley G, Marsteller J, Mascia L, McFadyen C, Mondello S, Newcombe V, Palotie A, Parizel PM, Peul W, Piercy J, Polinder S, Puybasset L, Rasmussen TE, Rossaint R, Smielewski P, Soderberg J, Stanworth SJ, Stein MB, von Steinbuchel N, Stewart W, Steyerberg EW, Stocchetti N, Synnot A, Te Ao B, Tenovuo O, Theadom A, Tibboel D, Videtta W, Wang KKW, Williams WH, Wilson L, Yaffe K; InTBIR Participants and Investigators. Traumatic brain injury: integrated approaches to improve prevention, clinical care, and research. Lancet Neurol. 2017 Dec;16(12):987-1048. doi: 10.1016/S1474-4422(17)30371-X. Epub 2017 Nov 6. No abstract available.
- Temkin NR, Anderson GD, Winn HR, Ellenbogen RG, Britz GW, Schuster J, Lucas T, Newell DW, Mansfield PN, Machamer JE, Barber J, Dikmen SS. Magnesium sulfate for neuroprotection after traumatic brain injury: a randomised controlled trial. Lancet Neurol. 2007 Jan;6(1):29-38. doi: 10.1016/S1474-4422(06)70630-5.
- Simon R, Wittes RE, Ellenberg SS. Randomized phase II clinical trials. Cancer Treat Rep. 1985 Dec;69(12):1375-81.
- A'Hern RP. Sample size tables for exact single-stage phase II designs. Stat Med. 2001 Mar 30;20(6):859-66. doi: 10.1002/sim.721.
- Shahim P, Politis A, van der Merwe A, Moore B, Chou YY, Pham DL, Butman JA, Diaz-Arrastia R, Gill JM, Brody DL, Zetterberg H, Blennow K, Chan L. Neurofilament light as a biomarker in traumatic brain injury. Neurology. 2020 Aug 11;95(6):e610-e622. doi: 10.1212/WNL.0000000000009983. Epub 2020 Jul 8. Erratum In: Neurology. 2021 Mar 23;96(12):593.
- Thompson M, Mei SHJ, Wolfe D, Champagne J, Fergusson D, Stewart DJ, Sullivan KJ, Doxtator E, Lalu M, English SW, Granton J, Hutton B, Marshall J, Maybee A, Walley KR, Santos CD, Winston B, McIntyre L. Cell therapy with intravascular administration of mesenchymal stromal cells continues to appear safe: An updated systematic review and meta-analysis. EClinicalMedicine. 2020 Jan 17;19:100249. doi: 10.1016/j.eclinm.2019.100249. eCollection 2020 Feb.
- Toyserkani NM, Jorgensen MG, Tabatabaeifar S, Jensen CH, Sheikh SP, Sorensen JA. Concise Review: A Safety Assessment of Adipose-Derived Cell Therapy in Clinical Trials: A Systematic Review of Reported Adverse Events. Stem Cells Transl Med. 2017 Sep;6(9):1786-1794. doi: 10.1002/sctm.17-0031. Epub 2017 Jul 19.
- Friedenstein AJ, Chailakhjan RK, Lalykina KS. The development of fibroblast colonies in monolayer cultures of guinea-pig bone marrow and spleen cells. Cell Tissue Kinet. 1970 Oct;3(4):393-403. doi: 10.1111/j.1365-2184.1970.tb00347.x. No abstract available.
- Matthay MA, Calfee CS, Zhuo H, Thompson BT, Wilson JG, Levitt JE, Rogers AJ, Gotts JE, Wiener-Kronish JP, Bajwa EK, Donahoe MP, McVerry BJ, Ortiz LA, Exline M, Christman JW, Abbott J, Delucchi KL, Caballero L, McMillan M, McKenna DH, Liu KD. Treatment with allogeneic mesenchymal stromal cells for moderate to severe acute respiratory distress syndrome (START study): a randomised phase 2a safety trial. Lancet Respir Med. 2019 Feb;7(2):154-162. doi: 10.1016/S2213-2600(18)30418-1. Epub 2018 Nov 16.
- Kuhle J, Kropshofer H, Haering DA, Kundu U, Meinert R, Barro C, Dahlke F, Tomic D, Leppert D, Kappos L. Blood neurofilament light chain as a biomarker of MS disease activity and treatment response. Neurology. 2019 Mar 5;92(10):e1007-e1015. doi: 10.1212/WNL.0000000000007032. Epub 2019 Feb 8.
- Wilson JG, Liu KD, Zhuo H, Caballero L, McMillan M, Fang X, Cosgrove K, Vojnik R, Calfee CS, Lee JW, Rogers AJ, Levitt J, Wiener-Kronish J, Bajwa EK, Leavitt A, McKenna D, Thompson BT, Matthay MA. Mesenchymal stem (stromal) cells for treatment of ARDS: a phase 1 clinical trial. Lancet Respir Med. 2015 Jan;3(1):24-32. doi: 10.1016/S2213-2600(14)70291-7. Epub 2014 Dec 17.
- Lalu MM, McIntyre L, Pugliese C, Fergusson D, Winston BW, Marshall JC, Granton J, Stewart DJ; Canadian Critical Care Trials Group. Safety of cell therapy with mesenchymal stromal cells (SafeCell): a systematic review and meta-analysis of clinical trials. PLoS One. 2012;7(10):e47559. doi: 10.1371/journal.pone.0047559. Epub 2012 Oct 25.
- Nair AB, Jacob S. A simple practice guide for dose conversion between animals and human. J Basic Clin Pharm. 2016 Mar;7(2):27-31. doi: 10.4103/0976-0105.177703.
- Li Y, Chen J, Chen XG, Wang L, Gautam SC, Xu YX, Katakowski M, Zhang LJ, Lu M, Janakiraman N, Chopp M. Human marrow stromal cell therapy for stroke in rat: neurotrophins and functional recovery. Neurology. 2002 Aug 27;59(4):514-23. doi: 10.1212/wnl.59.4.514.
- Hulkower MB, Poliak DB, Rosenbaum SB, Zimmerman ME, Lipton ML. A decade of DTI in traumatic brain injury: 10 years and 100 articles later. AJNR Am J Neuroradiol. 2013 Nov-Dec;34(11):2064-74. doi: 10.3174/ajnr.A3395. Epub 2013 Jan 10.
- Leng Z, Zhu R, Hou W, Feng Y, Yang Y, Han Q, Shan G, Meng F, Du D, Wang S, Fan J, Wang W, Deng L, Shi H, Li H, Hu Z, Zhang F, Gao J, Liu H, Li X, Zhao Y, Yin K, He X, Gao Z, Wang Y, Yang B, Jin R, Stambler I, Lim LW, Su H, Moskalev A, Cano A, Chakrabarti S, Min KJ, Ellison-Hughes G, Caruso C, Jin K, Zhao RC. Transplantation of ACE2- Mesenchymal Stem Cells Improves the Outcome of Patients with COVID-19 Pneumonia. Aging Dis. 2020 Mar 9;11(2):216-228. doi: 10.14336/AD.2020.0228. eCollection 2020 Apr.
- Shi L, Huang H, Lu X, Yan X, Jiang X, Xu R, Wang S, Zhang C, Yuan X, Xu Z, Huang L, Fu JL, Li Y, Zhang Y, Yao WQ, Liu T, Song J, Sun L, Yang F, Zhang X, Zhang B, Shi M, Meng F, Song Y, Yu Y, Wen J, Li Q, Mao Q, Maeurer M, Zumla A, Yao C, Xie WF, Wang FS. Effect of human umbilical cord-derived mesenchymal stem cells on lung damage in severe COVID-19 patients: a randomized, double-blind, placebo-controlled phase 2 trial. Signal Transduct Target Ther. 2021 Feb 10;6(1):58. doi: 10.1038/s41392-021-00488-5.
- Wang S, Cheng H, Dai G, Wang X, Hua R, Liu X, Wang P, Chen G, Yue W, An Y. Umbilical cord mesenchymal stem cell transplantation significantly improves neurological function in patients with sequelae of traumatic brain injury. Brain Res. 2013 Sep 26;1532:76-84. doi: 10.1016/j.brainres.2013.08.001. Epub 2013 Aug 11.
- Steyerberg EW, Mushkudiani N, Perel P, Butcher I, Lu J, McHugh GS, Murray GD, Marmarou A, Roberts I, Habbema JD, Maas AI. Predicting outcome after traumatic brain injury: development and international validation of prognostic scores based on admission characteristics. PLoS Med. 2008 Aug 5;5(8):e165; discussion e165. doi: 10.1371/journal.pmed.0050165.
- Meng F, Xu R, Wang S, Xu Z, Zhang C, Li Y, Yang T, Shi L, Fu J, Jiang T, Huang L, Zhao P, Yuan X, Fan X, Zhang JY, Song J, Zhang D, Jiao Y, Liu L, Zhou C, Maeurer M, Zumla A, Shi M, Wang FS. Human umbilical cord-derived mesenchymal stem cell therapy in patients with COVID-19: a phase 1 clinical trial. Signal Transduct Target Ther. 2020 Aug 27;5(1):172. doi: 10.1038/s41392-020-00286-5.
- Dewan MC, Rattani A, Gupta S, Baticulon RE, Hung YC, Punchak M, Agrawal A, Adeleye AO, Shrime MG, Rubiano AM, Rosenfeld JV, Park KB. Estimating the global incidence of traumatic brain injury. J Neurosurg. 2018 Apr 27;130(4):1080-1097. doi: 10.3171/2017.10.JNS17352.
- Ng SY, Lee AYW. Traumatic Brain Injuries: Pathophysiology and Potential Therapeutic Targets. Front Cell Neurosci. 2019 Nov 27;13:528. doi: 10.3389/fncel.2019.00528. eCollection 2019.
- Steyerberg EW, Wiegers E, Sewalt C, Buki A, Citerio G, De Keyser V, Ercole A, Kunzmann K, Lanyon L, Lecky F, Lingsma H, Manley G, Nelson D, Peul W, Stocchetti N, von Steinbuchel N, Vande Vyvere T, Verheyden J, Wilson L, Maas AIR, Menon DK; CENTER-TBI Participants and Investigators. Case-mix, care pathways, and outcomes in patients with traumatic brain injury in CENTER-TBI: a European prospective, multicentre, longitudinal, cohort study. Lancet Neurol. 2019 Oct;18(10):923-934. doi: 10.1016/S1474-4422(19)30232-7.
- Voormolen DC, Polinder S, von Steinbuechel N, Feng Y, Wilson L, Oppe M, Haagsma JA; CENTER-TBI participants and investigators. Health-related quality of life after traumatic brain injury: deriving value sets for the QOLIBRI-OS for Italy, The Netherlands and The United Kingdom. Qual Life Res. 2020 Nov;29(11):3095-3107. doi: 10.1007/s11136-020-02583-6. Epub 2020 Jul 15.
- Carbonara M, Fossi F, Zoerle T, Ortolano F, Moro F, Pischiutta F, Zanier ER, Stocchetti N. Neuroprotection in Traumatic Brain Injury: Mesenchymal Stromal Cells can Potentially Overcome Some Limitations of Previous Clinical Trials. Front Neurol. 2018 Oct 24;9:885. doi: 10.3389/fneur.2018.00885. eCollection 2018.
- Cossu G, Birchall M, Brown T, De Coppi P, Culme-Seymour E, Gibbon S, Hitchcock J, Mason C, Montgomery J, Morris S, Muntoni F, Napier D, Owji N, Prasad A, Round J, Saprai P, Stilgoe J, Thrasher A, Wilson J. Lancet Commission: Stem cells and regenerative medicine. Lancet. 2018 Mar 3;391(10123):883-910. doi: 10.1016/S0140-6736(17)31366-1. Epub 2017 Oct 4. No abstract available. Erratum In: Lancet. 2018 Mar 10;391(10124):e8.
- Fu Y, Karbaat L, Wu L, Leijten J, Both SK, Karperien M. Trophic Effects of Mesenchymal Stem Cells in Tissue Regeneration. Tissue Eng Part B Rev. 2017 Dec;23(6):515-528. doi: 10.1089/ten.TEB.2016.0365.
- Lin CH, Lin W, Su YC, Cheng-Yo Hsuan Y, Chen YC, Chang CP, Chou W, Lin KC. Modulation of parietal cytokine and chemokine gene profiles by mesenchymal stem cell as a basis for neurotrauma recovery. J Formos Med Assoc. 2019 Dec;118(12):1661-1673. doi: 10.1016/j.jfma.2019.01.008. Epub 2019 Jan 30.
- Zanier ER, Montinaro M, Vigano M, Villa P, Fumagalli S, Pischiutta F, Longhi L, Leoni ML, Rebulla P, Stocchetti N, Lazzari L, De Simoni MG. Human umbilical cord blood mesenchymal stem cells protect mice brain after trauma. Crit Care Med. 2011 Nov;39(11):2501-10. doi: 10.1097/CCM.0b013e31822629ba.
- Zanier ER, Pischiutta F, Riganti L, Marchesi F, Turola E, Fumagalli S, Perego C, Parotto E, Vinci P, Veglianese P, D'Amico G, Verderio C, De Simoni MG. Bone marrow mesenchymal stromal cells drive protective M2 microglia polarization after brain trauma. Neurotherapeutics. 2014 Jul;11(3):679-95. doi: 10.1007/s13311-014-0277-y.
- Pischiutta F, D'Amico G, Dander E, Biondi A, Biagi E, Citerio G, De Simoni MG, Zanier ER. Immunosuppression does not affect human bone marrow mesenchymal stromal cell efficacy after transplantation in traumatized mice brain. Neuropharmacology. 2014 Apr;79:119-26. doi: 10.1016/j.neuropharm.2013.11.001. Epub 2013 Nov 15.
- Pischiutta F, Brunelli L, Romele P, Silini A, Sammali E, Paracchini L, Marchini S, Talamini L, Bigini P, Boncoraglio GB, Pastorelli R, De Simoni MG, Parolini O, Zanier ER. Protection of Brain Injury by Amniotic Mesenchymal Stromal Cell-Secreted Metabolites. Crit Care Med. 2016 Nov;44(11):e1118-e1131. doi: 10.1097/CCM.0000000000001864.
- Diez-Tejedor E, Gutierrez-Fernandez M, Martinez-Sanchez P, Rodriguez-Frutos B, Ruiz-Ares G, Lara ML, Gimeno BF. Reparative therapy for acute ischemic stroke with allogeneic mesenchymal stem cells from adipose tissue: a safety assessment: a phase II randomized, double-blind, placebo-controlled, single-center, pilot clinical trial. J Stroke Cerebrovasc Dis. 2014 Nov-Dec;23(10):2694-2700. doi: 10.1016/j.jstrokecerebrovasdis.2014.06.011. Epub 2014 Oct 7.
- Levy ML, Crawford JR, Dib N, Verkh L, Tankovich N, Cramer SC. Phase I/II Study of Safety and Preliminary Efficacy of Intravenous Allogeneic Mesenchymal Stem Cells in Chronic Stroke. Stroke. 2019 Oct;50(10):2835-2841. doi: 10.1161/STROKEAHA.119.026318. Epub 2019 Sep 9.
- Care AD, Ross R. Fetal calcium homeostasis. J Dev Physiol. 1984 Feb;6(1):59-66. No abstract available.
- Majdan M, Plancikova D, Brazinova A, Rusnak M, Nieboer D, Feigin V, Maas A. Epidemiology of traumatic brain injuries in Europe: a cross-sectional analysis. Lancet Public Health. 2016 Dec;1(2):e76-e83. doi: 10.1016/S2468-2667(16)30017-2. Epub 2016 Nov 29.
- Stocchetti N, Zanier ER. Chronic impact of traumatic brain injury on outcome and quality of life: a narrative review. Crit Care. 2016 Jun 21;20(1):148. doi: 10.1186/s13054-016-1318-1.
- Blennow K, Brody DL, Kochanek PM, Levin H, McKee A, Ribbers GM, Yaffe K, Zetterberg H. Traumatic brain injuries. Nat Rev Dis Primers. 2016 Nov 17;2:16084. doi: 10.1038/nrdp.2016.84.
- Das M, Mayilsamy K, Mohapatra SS, Mohapatra S. Mesenchymal stem cell therapy for the treatment of traumatic brain injury: progress and prospects. Rev Neurosci. 2019 Nov 26;30(8):839-855. doi: 10.1515/revneuro-2019-0002.
- Roberts I, Yates D, Sandercock P, Farrell B, Wasserberg J, Lomas G, Cottingham R, Svoboda P, Brayley N, Mazairac G, Laloe V, Munoz-Sanchez A, Arango M, Hartzenberg B, Khamis H, Yutthakasemsunt S, Komolafe E, Olldashi F, Yadav Y, Murillo-Cabezas F, Shakur H, Edwards P; CRASH trial collaborators. Effect of intravenous corticosteroids on death within 14 days in 10008 adults with clinically significant head injury (MRC CRASH trial): randomised placebo-controlled trial. Lancet. 2004 Oct 9-15;364(9442):1321-8. doi: 10.1016/S0140-6736(04)17188-2.
- Wright DW, Yeatts SD, Silbergleit R, Palesch YY, Hertzberg VS, Frankel M, Goldstein FC, Caveney AF, Howlett-Smith H, Bengelink EM, Manley GT, Merck LH, Janis LS, Barsan WG; NETT Investigators. Very early administration of progesterone for acute traumatic brain injury. N Engl J Med. 2014 Dec 25;371(26):2457-66. doi: 10.1056/NEJMoa1404304. Epub 2014 Dec 10.
- Diaz-Arrastia R, Kochanek PM, Bergold P, Kenney K, Marx CE, Grimes CJ, Loh LT, Adam LT, Oskvig D, Curley KC, Salzer W. Pharmacotherapy of traumatic brain injury: state of the science and the road forward: report of the Department of Defense Neurotrauma Pharmacology Workgroup. J Neurotrauma. 2014 Jan 15;31(2):135-58. doi: 10.1089/neu.2013.3019.
- Edwards P, Arango M, Balica L, Cottingham R, El-Sayed H, Farrell B, Fernandes J, Gogichaisvili T, Golden N, Hartzenberg B, Husain M, Ulloa MI, Jerbi Z, Khamis H, Komolafe E, Laloe V, Lomas G, Ludwig S, Mazairac G, Munoz Sanchez Mde L, Nasi L, Olldashi F, Plunkett P, Roberts I, Sandercock P, Shakur H, Soler C, Stocker R, Svoboda P, Trenkler S, Venkataramana NK, Wasserberg J, Yates D, Yutthakasemsunt S; CRASH trial collaborators. Final results of MRC CRASH, a randomised placebo-controlled trial of intravenous corticosteroid in adults with head injury-outcomes at 6 months. Lancet. 2005 Jun 4-10;365(9475):1957-9. doi: 10.1016/S0140-6736(05)66552-X.
- Zafonte RD, Bagiella E, Ansel BM, Novack TA, Friedewald WT, Hesdorffer DC, Timmons SD, Jallo J, Eisenberg H, Hart T, Ricker JH, Diaz-Arrastia R, Merchant RE, Temkin NR, Melton S, Dikmen SS. Effect of citicoline on functional and cognitive status among patients with traumatic brain injury: Citicoline Brain Injury Treatment Trial (COBRIT). JAMA. 2012 Nov 21;308(19):1993-2000. doi: 10.1001/jama.2012.13256.
- Skolnick BE, Maas AI, Narayan RK, van der Hoop RG, MacAllister T, Ward JD, Nelson NR, Stocchetti N; SYNAPSE Trial Investigators. A clinical trial of progesterone for severe traumatic brain injury. N Engl J Med. 2014 Dec 25;371(26):2467-76. doi: 10.1056/NEJMoa1411090. Epub 2014 Dec 10.
- Cooper DJ, Nichol AD, Bailey M, Bernard S, Cameron PA, Pili-Floury S, Forbes A, Gantner D, Higgins AM, Huet O, Kasza J, Murray L, Newby L, Presneill JJ, Rashford S, Rosenfeld JV, Stephenson M, Vallance S, Varma D, Webb SAR, Trapani T, McArthur C; POLAR Trial Investigators and the ANZICS Clinical Trials Group. Effect of Early Sustained Prophylactic Hypothermia on Neurologic Outcomes Among Patients With Severe Traumatic Brain Injury: The POLAR Randomized Clinical Trial. JAMA. 2018 Dec 4;320(21):2211-2220. doi: 10.1001/jama.2018.17075.
- Wilson L, Stewart W, Dams-O'Connor K, Diaz-Arrastia R, Horton L, Menon DK, Polinder S. The chronic and evolving neurological consequences of traumatic brain injury. Lancet Neurol. 2017 Oct;16(10):813-825. doi: 10.1016/S1474-4422(17)30279-X. Epub 2017 Sep 12.
- Karp JM, Leng Teo GS. Mesenchymal stem cell homing: the devil is in the details. Cell Stem Cell. 2009 Mar 6;4(3):206-16. doi: 10.1016/j.stem.2009.02.001.
- Li J, Zhu H, Liu Y, Li Q, Lu S, Feng M, Xu Y, Huang L, Ma C, An Y, Zhao RC, Wang R, Qin C. Human mesenchymal stem cell transplantation protects against cerebral ischemic injury and upregulates interleukin-10 expression in Macacafascicularis. Brain Res. 2010 Jun 2;1334:65-72. doi: 10.1016/j.brainres.2010.03.080. Epub 2010 Mar 28.
- Xin H, Li Y, Shen LH, Liu X, Wang X, Zhang J, Pourabdollah-Nejad D S, Zhang C, Zhang L, Jiang H, Zhang ZG, Chopp M. Increasing tPA activity in astrocytes induced by multipotent mesenchymal stromal cells facilitate neurite outgrowth after stroke in the mouse. PLoS One. 2010 Feb 3;5(2):e9027. doi: 10.1371/journal.pone.0009027.
- Ohtaki H, Ylostalo JH, Foraker JE, Robinson AP, Reger RL, Shioda S, Prockop DJ. Stem/progenitor cells from bone marrow decrease neuronal death in global ischemia by modulation of inflammatory/immune responses. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008 Sep 23;105(38):14638-43. doi: 10.1073/pnas.0803670105. Epub 2008 Sep 15.
- Zhang R, Liu Y, Yan K, Chen L, Chen XR, Li P, Chen FF, Jiang XD. Anti-inflammatory and immunomodulatory mechanisms of mesenchymal stem cell transplantation in experimental traumatic brain injury. J Neuroinflammation. 2013 Aug 23;10:106. doi: 10.1186/1742-2094-10-106.
- Peruzzaro ST, Andrews MMM, Al-Gharaibeh A, Pupiec O, Resk M, Story D, Maiti P, Rossignol J, Dunbar GL. Transplantation of mesenchymal stem cells genetically engineered to overexpress interleukin-10 promotes alternative inflammatory response in rat model of traumatic brain injury. J Neuroinflammation. 2019 Jan 5;16(1):2. doi: 10.1186/s12974-018-1383-2. Erratum In: J Neuroinflammation. 2022 Jan 11;19(1):15.
- Pischiutta F, Caruso E, Cavaleiro H, Salgado AJ, Loane DJ, Zanier ER. Mesenchymal stromal cell secretome for traumatic brain injury: Focus on immunomodulatory action. Exp Neurol. 2022 Nov;357:114199. doi: 10.1016/j.expneurol.2022.114199. Epub 2022 Aug 8.
- Menge T, Zhao Y, Zhao J, Wataha K, Gerber M, Zhang J, Letourneau P, Redell J, Shen L, Wang J, Peng Z, Xue H, Kozar R, Cox CS Jr, Khakoo AY, Holcomb JB, Dash PK, Pati S. Mesenchymal stem cells regulate blood-brain barrier integrity through TIMP3 release after traumatic brain injury. Sci Transl Med. 2012 Nov 21;4(161):161ra150. doi: 10.1126/scitranslmed.3004660.
- Zacharek A, Chen J, Cui X, Li A, Li Y, Roberts C, Feng Y, Gao Q, Chopp M. Angiopoietin1/Tie2 and VEGF/Flk1 induced by MSC treatment amplifies angiogenesis and vascular stabilization after stroke. J Cereb Blood Flow Metab. 2007 Oct;27(10):1684-91. doi: 10.1038/sj.jcbfm.9600475. Epub 2007 Mar 14.
- Yoo SW, Kim SS, Lee SY, Lee HS, Kim HS, Lee YD, Suh-Kim H. Mesenchymal stem cells promote proliferation of endogenous neural stem cells and survival of newborn cells in a rat stroke model. Exp Mol Med. 2008 Aug 31;40(4):387-97. doi: 10.3858/emm.2008.40.4.387.
- Bao X, Wei J, Feng M, Lu S, Li G, Dou W, Ma W, Ma S, An Y, Qin C, Zhao RC, Wang R. Transplantation of human bone marrow-derived mesenchymal stem cells promotes behavioral recovery and endogenous neurogenesis after cerebral ischemia in rats. Brain Res. 2011 Jan 7;1367:103-13. doi: 10.1016/j.brainres.2010.10.063. Epub 2010 Oct 23.
- Gutierrez-Fernandez M, Rodriguez-Frutos B, Ramos-Cejudo J, Teresa Vallejo-Cremades M, Fuentes B, Cerdan S, Diez-Tejedor E. Effects of intravenous administration of allogenic bone marrow- and adipose tissue-derived mesenchymal stem cells on functional recovery and brain repair markers in experimental ischemic stroke. Stem Cell Res Ther. 2013 Jan 28;4(1):11. doi: 10.1186/scrt159.
- Lu D, Mahmood A, Wang L, Li Y, Lu M, Chopp M. Adult bone marrow stromal cells administered intravenously to rats after traumatic brain injury migrate into brain and improve neurological outcome. Neuroreport. 2001 Mar 5;12(3):559-63. doi: 10.1097/00001756-200103050-00025.
- Gennai S, Monsel A, Hao Q, Liu J, Gudapati V, Barbier EL, Lee JW. Cell-based therapy for traumatic brain injury. Br J Anaesth. 2015 Aug;115(2):203-12. doi: 10.1093/bja/aev229.
- Peng W, Sun J, Sheng C, Wang Z, Wang Y, Zhang C, Fan R. Systematic review and meta-analysis of efficacy of mesenchymal stem cells on locomotor recovery in animal models of traumatic brain injury. Stem Cell Res Ther. 2015 Mar 26;6(1):47. doi: 10.1186/s13287-015-0034-0.
- Pischiutta F, Caruso E, Lugo A, Cavaleiro H, Stocchetti N, Citerio G, Salgado A, Gallus S, Zanier ER. Systematic review and meta-analysis of preclinical studies testing mesenchymal stromal cells for traumatic brain injury. NPJ Regen Med. 2021 Oct 29;6(1):71. doi: 10.1038/s41536-021-00182-8.
- Kabat M, Bobkov I, Kumar S, Grumet M. Trends in mesenchymal stem cell clinical trials 2004-2018: Is efficacy optimal in a narrow dose range? Stem Cells Transl Med. 2020 Jan;9(1):17-27. doi: 10.1002/sctm.19-0202. Epub 2019 Dec 5.
- Wakabayashi K, Nagai A, Sheikh AM, Shiota Y, Narantuya D, Watanabe T, Masuda J, Kobayashi S, Kim SU, Yamaguchi S. Transplantation of human mesenchymal stem cells promotes functional improvement and increased expression of neurotrophic factors in a rat focal cerebral ischemia model. J Neurosci Res. 2010 Apr;88(5):1017-25. doi: 10.1002/jnr.22279.
- Xu C, Fu F, Li X, Zhang S. Mesenchymal stem cells maintain the microenvironment of central nervous system by regulating the polarization of macrophages/microglia after traumatic brain injury. Int J Neurosci. 2017 Dec;127(12):1124-1135. doi: 10.1080/00207454.2017.1325884. Epub 2017 May 19.
- Darkazalli A, Vied C, Badger CD, Levenson CW. Human Mesenchymal Stem Cell Treatment Normalizes Cortical Gene Expression after Traumatic Brain Injury. J Neurotrauma. 2017 Jan 1;34(1):204-212. doi: 10.1089/neu.2015.4322. Epub 2016 Jun 10.
- Rodriguez-Fuentes DE, Fernandez-Garza LE, Samia-Meza JA, Barrera-Barrera SA, Caplan AI, Barrera-Saldana HA. Mesenchymal Stem Cells Current Clinical Applications: A Systematic Review. Arch Med Res. 2021 Jan;52(1):93-101. doi: 10.1016/j.arcmed.2020.08.006. Epub 2020 Sep 22.
- Zhuang WZ, Lin YH, Su LJ, Wu MS, Jeng HY, Chang HC, Huang YH, Ling TY. Mesenchymal stem/stromal cell-based therapy: mechanism, systemic safety and biodistribution for precision clinical applications. J Biomed Sci. 2021 Apr 14;28(1):28. doi: 10.1186/s12929-021-00725-7.
- Kawabori M, Weintraub AH, Imai H, Zinkevych L, McAllister P, Steinberg GK, Frishberg BM, Yasuhara T, Chen JW, Cramer SC, Achrol AS, Schwartz NE, Suenaga J, Lu DC, Semeniv I, Nakamura H, Kondziolka D, Chida D, Kaneko T, Karasawa Y, Paadre S, Nejadnik B, Bates D, Stonehouse AH, Richardson RM, Okonkwo DO. Cell Therapy for Chronic TBI: Interim Analysis of the Randomized Controlled STEMTRA Trial. Neurology. 2021 Jan 4;96(8):e1202-14. doi: 10.1212/WNL.0000000000011450. Online ahead of print.
- Zhang ZX, Guan LX, Zhang K, Zhang Q, Dai LJ. A combined procedure to deliver autologous mesenchymal stromal cells to patients with traumatic brain injury. Cytotherapy. 2008;10(2):134-9. doi: 10.1080/14653240701883061.
- Vaquero J, Zurita M, Bonilla C, Fernandez C, Rubio JJ, Mucientes J, Rodriguez B, Blanco E, Donis L. Progressive increase in brain glucose metabolism after intrathecal administration of autologous mesenchymal stromal cells in patients with diffuse axonal injury. Cytotherapy. 2017 Jan;19(1):88-94. doi: 10.1016/j.jcyt.2016.10.001. Epub 2016 Nov 2.
- Schepici G, Silvestro S, Bramanti P, Mazzon E. Traumatic Brain Injury and Stem Cells: An Overview of Clinical Trials, the Current Treatments and Future Therapeutic Approaches. Medicina (Kaunas). 2020 Mar 19;56(3):137. doi: 10.3390/medicina56030137.
- Cox CS Jr, Baumgartner JE, Harting MT, Worth LL, Walker PA, Shah SK, Ewing-Cobbs L, Hasan KM, Day MC, Lee D, Jimenez F, Gee A. Autologous bone marrow mononuclear cell therapy for severe traumatic brain injury in children. Neurosurgery. 2011 Mar;68(3):588-600. doi: 10.1227/NEU.0b013e318207734c.
- Liao GP, Harting MT, Hetz RA, Walker PA, Shah SK, Corkins CJ, Hughes TG, Jimenez F, Kosmach SC, Day MC, Tsao K, Lee DA, Worth LL, Baumgartner JE, Cox CS Jr. Autologous bone marrow mononuclear cells reduce therapeutic intensity for severe traumatic brain injury in children. Pediatr Crit Care Med. 2015 Mar;16(3):245-55. doi: 10.1097/PCC.0000000000000324.
- Cox CS Jr, Hetz RA, Liao GP, Aertker BM, Ewing-Cobbs L, Juranek J, Savitz SI, Jackson ML, Romanowska-Pawliczek AM, Triolo F, Dash PK, Pedroza C, Lee DA, Worth L, Aisiku IP, Choi HA, Holcomb JB, Kitagawa RS. Treatment of Severe Adult Traumatic Brain Injury Using Bone Marrow Mononuclear Cells. Stem Cells. 2017 Apr;35(4):1065-1079. doi: 10.1002/stem.2538. Epub 2016 Nov 23.
- Leibacher J, Henschler R. Biodistribution, migration and homing of systemically applied mesenchymal stem/stromal cells. Stem Cell Res Ther. 2016 Jan 11;7:7. doi: 10.1186/s13287-015-0271-2.
- Armitage J, Tan DBA, Troedson R, Young P, Lam KV, Shaw K, Sturm M, Weiss DJ, Moodley YP. Mesenchymal stromal cell infusion modulates systemic immunological responses in stable COPD patients: a phase I pilot study. Eur Respir J. 2018 Mar 1;51(3):1702369. doi: 10.1183/13993003.02369-2017. Print 2018 Mar. No abstract available.
- Zheng G, Huang L, Tong H, Shu Q, Hu Y, Ge M, Deng K, Zhang L, Zou B, Cheng B, Xu J. Treatment of acute respiratory distress syndrome with allogeneic adipose-derived mesenchymal stem cells: a randomized, placebo-controlled pilot study. Respir Res. 2014 Apr 4;15(1):39. doi: 10.1186/1465-9921-15-39.
- Yip HK, Fang WF, Li YC, Lee FY, Lee CH, Pei SN, Ma MC, Chen KH, Sung PH, Lee MS. Human Umbilical Cord-Derived Mesenchymal Stem Cells for Acute Respiratory Distress Syndrome. Crit Care Med. 2020 May;48(5):e391-e399. doi: 10.1097/CCM.0000000000004285.
- Simonson OE, Mougiakakos D, Heldring N, Bassi G, Johansson HJ, Dalen M, Jitschin R, Rodin S, Corbascio M, El Andaloussi S, Wiklander OP, Nordin JZ, Skog J, Romain C, Koestler T, Hellgren-Johansson L, Schiller P, Joachimsson PO, Hagglund H, Mattsson M, Lehtio J, Faridani OR, Sandberg R, Korsgren O, Krampera M, Weiss DJ, Grinnemo KH, Le Blanc K. In Vivo Effects of Mesenchymal Stromal Cells in Two Patients With Severe Acute Respiratory Distress Syndrome. Stem Cells Transl Med. 2015 Oct;4(10):1199-213. doi: 10.5966/sctm.2015-0021. Epub 2015 Aug 18. Erratum In: Stem Cells Transl Med. 2016 Jun;5(6):845.
- Qu W, Wang Z, Hare JM, Bu G, Mallea JM, Pascual JM, Caplan AI, Kurtzberg J, Zubair AC, Kubrova E, Engelberg-Cook E, Nayfeh T, Shah VP, Hill JC, Wolf ME, Prokop LJ, Murad MH, Sanfilippo FP. Cell-based therapy to reduce mortality from COVID-19: Systematic review and meta-analysis of human studies on acute respiratory distress syndrome. Stem Cells Transl Med. 2020 Sep;9(9):1007-1022. doi: 10.1002/sctm.20-0146. Epub 2020 May 29.
- Chen J, Hu C, Chen L, Tang L, Zhu Y, Xu X, Chen L, Gao H, Lu X, Yu L, Dai X, Xiang C, Li L. Clinical Study of Mesenchymal Stem Cell Treatment for Acute Respiratory Distress Syndrome Induced by Epidemic Influenza A (H7N9) Infection: A Hint for COVID-19 Treatment. Engineering (Beijing). 2020 Oct;6(10):1153-1161. doi: 10.1016/j.eng.2020.02.006. Epub 2020 Feb 28.
- Chang Y, Park SH, Huh JW, Lim CM, Koh Y, Hong SB. Intratracheal administration of umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells in a patient with acute respiratory distress syndrome. J Korean Med Sci. 2014 Mar;29(3):438-40. doi: 10.3346/jkms.2014.29.3.438. Epub 2014 Feb 27.
- Shu L, Niu C, Li R, Huang T, Wang Y, Huang M, Ji N, Zheng Y, Chen X, Shi L, Wu M, Deng K, Wei J, Wang X, Cao Y, Yan J, Feng G. Treatment of severe COVID-19 with human umbilical cord mesenchymal stem cells. Stem Cell Res Ther. 2020 Aug 18;11(1):361. doi: 10.1186/s13287-020-01875-5.
- Adas G, Cukurova Z, Yasar KK, Yilmaz R, Isiksacan N, Kasapoglu P, Yesilbag Z, Koyuncu ID, Karaoz E. The Systematic Effect of Mesenchymal Stem Cell Therapy in Critical COVID-19 Patients: A Prospective Double Controlled Trial. Cell Transplant. 2021 Jan-Dec;30:9636897211024942. doi: 10.1177/09636897211024942.
- Lanzoni G, Linetsky E, Correa D, Messinger Cayetano S, Alvarez RA, Kouroupis D, Alvarez Gil A, Poggioli R, Ruiz P, Marttos AC, Hirani K, Bell CA, Kusack H, Rafkin L, Baidal D, Pastewski A, Gawri K, Lenero C, Mantero AMA, Metalonis SW, Wang X, Roque L, Masters B, Kenyon NS, Ginzburg E, Xu X, Tan J, Caplan AI, Glassberg MK, Alejandro R, Ricordi C. Umbilical cord mesenchymal stem cells for COVID-19 acute respiratory distress syndrome: A double-blind, phase 1/2a, randomized controlled trial. Stem Cells Transl Med. 2021 May;10(5):660-673. doi: 10.1002/sctm.20-0472. Epub 2021 Jan 5.
- Dilogo IH, Aditianingsih D, Sugiarto A, Burhan E, Damayanti T, Sitompul PA, Mariana N, Antarianto RD, Liem IK, Kispa T, Mujadid F, Novialdi N, Luviah E, Kurniawati T, Lubis AMT, Rahmatika D. Umbilical cord mesenchymal stromal cells as critical COVID-19 adjuvant therapy: A randomized controlled trial. Stem Cells Transl Med. 2021 Sep;10(9):1279-1287. doi: 10.1002/sctm.21-0046. Epub 2021 Jun 8.
- Xu X, Jiang W, Chen L, Xu Z, Zhang Q, Zhu M, Ye P, Li H, Yu L, Zhou X, Zhou C, Chen X, Zheng X, Xu K, Cai H, Zheng S, Jiang W, Wu X, Li D, Chen L, Luo Q, Wang Y, Qu J, Li Y, Zheng W, Jiang Y, Tang L, Xiang C, Li L. Evaluation of the safety and efficacy of using human menstrual blood-derived mesenchymal stromal cells in treating severe and critically ill COVID-19 patients: An exploratory clinical trial. Clin Transl Med. 2021 Feb;11(2):e297. doi: 10.1002/ctm2.297.
- Iglesias M, Butron P, Torre-Villalvazo I, Torre-Anaya EA, Sierra-Madero J, Rodriguez-Andoney JJ, Tovar-Palacio AR, Zentella-Dehesa A, Dominguez-Cherit G, Rodriguez-Reyna TS, Granados-Arriola J, Espisosa-Cruz V, Tellez-Pallares FP, Lozada-Estrada A, Zepeda Carrillo CA, Vazquez-Mezquita AJ, Nario-Chaidez HF. Mesenchymal Stem Cells for the Compassionate Treatment of Severe Acute Respiratory Distress Syndrome Due to COVID 19. Aging Dis. 2021 Apr 1;12(2):360-370. doi: 10.14336/AD.2020.1218. eCollection 2021 Apr.
- Saleh M, Vaezi AA, Aliannejad R, Sohrabpour AA, Kiaei SZF, Shadnoush M, Siavashi V, Aghaghazvini L, Khoundabi B, Abdoli S, Chahardouli B, Seyhoun I, Alijani N, Verdi J. Cell therapy in patients with COVID-19 using Wharton's jelly mesenchymal stem cells: a phase 1 clinical trial. Stem Cell Res Ther. 2021 Jul 16;12(1):410. doi: 10.1186/s13287-021-02483-7.
- Sanchez-Guijo F, Garcia-Arranz M, Lopez-Parra M, Monedero P, Mata-Martinez C, Santos A, Sagredo V, Alvarez-Avello JM, Guerrero JE, Perez-Calvo C, Sanchez-Hernandez MV, Del-Pozo JL, Andreu EJ, Fernandez-Santos ME, Soria-Juan B, Hernandez-Blasco LM, Andreu E, Sempere JM, Zapata AG, Moraleda JM, Soria B, Fernandez-Aviles F, Garcia-Olmo D, Prosper F. Adipose-derived mesenchymal stromal cells for the treatment of patients with severe SARS-CoV-2 pneumonia requiring mechanical ventilation. A proof of concept study. EClinicalMedicine. 2020 Aug;25:100454. doi: 10.1016/j.eclinm.2020.100454. Epub 2020 Jul 10.
- Hashemian SR, Aliannejad R, Zarrabi M, Soleimani M, Vosough M, Hosseini SE, Hossieni H, Keshel SH, Naderpour Z, Hajizadeh-Saffar E, Shajareh E, Jamaati H, Soufi-Zomorrod M, Khavandgar N, Alemi H, Karimi A, Pak N, Rouzbahani NH, Nouri M, Sorouri M, Kashani L, Madani H, Aghdami N, Vasei M, Baharvand H. Mesenchymal stem cells derived from perinatal tissues for treatment of critically ill COVID-19-induced ARDS patients: a case series. Stem Cell Res Ther. 2021 Jan 29;12(1):91. doi: 10.1186/s13287-021-02165-4.
- Liang B, Chen J, Li T, Wu H, Yang W, Li Y, Li J, Yu C, Nie F, Ma Z, Yang M, Xiao M, Nie P, Gao Y, Qian C, Hu M. Clinical remission of a critically ill COVID-19 patient treated by human umbilical cord mesenchymal stem cells: A case report. Medicine (Baltimore). 2020 Jul 31;99(31):e21429. doi: 10.1097/MD.0000000000021429.
- Tang L, Jiang Y, Zhu M, Chen L, Zhou X, Zhou C, Ye P, Chen X, Wang B, Xu Z, Zhang Q, Xu X, Gao H, Wu X, Li D, Jiang W, Qu J, Xiang C, Li L. Clinical study using mesenchymal stem cells for the treatment of patients with severe COVID-19. Front Med. 2020 Oct;14(5):664-673. doi: 10.1007/s11684-020-0810-9. Epub 2020 Aug 6.
- Czeiter E, Amrein K, Gravesteijn BY, Lecky F, Menon DK, Mondello S, Newcombe VFJ, Richter S, Steyerberg EW, Vyvere TV, Verheyden J, Xu H, Yang Z, Maas AIR, Wang KKW, Buki A; CENTER-TBI Participants and Investigators. Blood biomarkers on admission in acute traumatic brain injury: Relations to severity, CT findings and care path in the CENTER-TBI study. EBioMedicine. 2020 Jun;56:102785. doi: 10.1016/j.ebiom.2020.102785. Epub 2020 May 25.
- Huie JR, Mondello S, Lindsell CJ, Antiga L, Yuh EL, Zanier ER, Masson S, Rosario BL, Ferguson AR; Transforming Research and Clinical Knowledge in Traumatic Brain Injury (TRACK-TBI) Investigators, The Transforming Research and Clinical Knowledge in Traumatic Brain Injury (TRACK-TBI) Investigators, Collaborative European NeuroTrauma Effectiveness Research in Traumatic Brain Injury (CENTER-TBI) Participants and Investigators, Collaborative European NeuroTrauma Effectiveness Research in Traumatic Brain Injury (CENTER-TBI) Participants and Investigators. Biomarkers for Traumatic Brain Injury: Data Standards and Statistical Considerations. J Neurotrauma. 2021 Sep 15;38(18):2514-2529. doi: 10.1089/neu.2019.6762. Epub 2020 Apr 1.
- Maas AIR, Menon DK, Manley GT, Abrams M, Akerlund C, Andelic N, Aries M, Bashford T, Bell MJ, Bodien YG, Brett BL, Buki A, Chesnut RM, Citerio G, Clark D, Clasby B, Cooper DJ, Czeiter E, Czosnyka M, Dams-O'Connor K, De Keyser V, Diaz-Arrastia R, Ercole A, van Essen TA, Falvey E, Ferguson AR, Figaji A, Fitzgerald M, Foreman B, Gantner D, Gao G, Giacino J, Gravesteijn B, Guiza F, Gupta D, Gurnell M, Haagsma JA, Hammond FM, Hawryluk G, Hutchinson P, van der Jagt M, Jain S, Jain S, Jiang JY, Kent H, Kolias A, Kompanje EJO, Lecky F, Lingsma HF, Maegele M, Majdan M, Markowitz A, McCrea M, Meyfroidt G, Mikolic A, Mondello S, Mukherjee P, Nelson D, Nelson LD, Newcombe V, Okonkwo D, Oresic M, Peul W, Pisica D, Polinder S, Ponsford J, Puybasset L, Raj R, Robba C, Roe C, Rosand J, Schueler P, Sharp DJ, Smielewski P, Stein MB, von Steinbuchel N, Stewart W, Steyerberg EW, Stocchetti N, Temkin N, Tenovuo O, Theadom A, Thomas I, Espin AT, Turgeon AF, Unterberg A, Van Praag D, van Veen E, Verheyden J, Vyvere TV, Wang KKW, Wiegers EJA, Williams WH, Wilson L, Wisniewski SR, Younsi A, Yue JK, Yuh EL, Zeiler FA, Zeldovich M, Zemek R; InTBIR Participants and Investigators. Traumatic brain injury: progress and challenges in prevention, clinical care, and research. Lancet Neurol. 2022 Nov;21(11):1004-1060. doi: 10.1016/S1474-4422(22)00309-X. Epub 2022 Sep 29. Erratum In: Lancet Neurol. 2022 Oct 7;:
- Marion CM, Radomski KL, Cramer NP, Galdzicki Z, Armstrong RC. Experimental Traumatic Brain Injury Identifies Distinct Early and Late Phase Axonal Conduction Deficits of White Matter Pathophysiology, and Reveals Intervening Recovery. J Neurosci. 2018 Oct 10;38(41):8723-8736. doi: 10.1523/JNEUROSCI.0819-18.2018. Epub 2018 Aug 24.
- Lepinoux-Chambaud C, Eyer J. Review on intermediate filaments of the nervous system and their pathological alterations. Histochem Cell Biol. 2013 Jul;140(1):13-22. doi: 10.1007/s00418-013-1101-1. Epub 2013 Jun 8.
- Shahim P, Zetterberg H, Tegner Y, Blennow K. Serum neurofilament light as a biomarker for mild traumatic brain injury in contact sports. Neurology. 2017 May 9;88(19):1788-1794. doi: 10.1212/WNL.0000000000003912. Epub 2017 Apr 12.
- Hossain I, Mohammadian M, Takala RSK, Tenovuo O, Lagerstedt L, Ala-Seppala H, Frantzen J, van Gils M, Hutchinson P, Katila AJ, Maanpaa HR, Menon DK, Newcombe VF, Tallus J, Hrusovsky K, Wilson DH, Blennow K, Sanchez JC, Zetterberg H, Posti JP. Early Levels of Glial Fibrillary Acidic Protein and Neurofilament Light Protein in Predicting the Outcome of Mild Traumatic Brain Injury. J Neurotrauma. 2019 May 15;36(10):1551-1560. doi: 10.1089/neu.2018.5952. Epub 2019 Jan 8.
- Zetterberg H, Hietala MA, Jonsson M, Andreasen N, Styrud E, Karlsson I, Edman A, Popa C, Rasulzada A, Wahlund LO, Mehta PD, Rosengren L, Blennow K, Wallin A. Neurochemical aftermath of amateur boxing. Arch Neurol. 2006 Sep;63(9):1277-80. doi: 10.1001/archneur.63.9.1277.
- Shahim P, Gren M, Liman V, Andreasson U, Norgren N, Tegner Y, Mattsson N, Andreasen N, Ost M, Zetterberg H, Nellgard B, Blennow K. Serum neurofilament light protein predicts clinical outcome in traumatic brain injury. Sci Rep. 2016 Nov 7;6:36791. doi: 10.1038/srep36791.
- Graham NSN, Zimmerman KA, Moro F, Heslegrave A, Maillard SA, Bernini A, Miroz JP, Donat CK, Lopez MY, Bourke N, Jolly AE, Mallas EJ, Soreq E, Wilson MH, Fatania G, Roi D, Patel MC, Garbero E, Nattino G, Baciu C, Fainardi E, Chieregato A, Gradisek P, Magnoni S, Oddo M, Zetterberg H, Bertolini G, Sharp DJ. Axonal marker neurofilament light predicts long-term outcomes and progressive neurodegeneration after traumatic brain injury. Sci Transl Med. 2021 Sep 29;13(613):eabg9922. doi: 10.1126/scitranslmed.abg9922. Epub 2021 Sep 29.
- Lange RT, Lippa S, Brickell TA, Gill J, French LM. Serum Tau, Neurofilament Light Chain, Glial Fibrillary Acidic Protein, and Ubiquitin Carboxyl-Terminal Hydrolase L1 Are Associated with the Chronic Deterioration of Neurobehavioral Symptoms after Traumatic Brain Injury. J Neurotrauma. 2023 Mar;40(5-6):482-492. doi: 10.1089/neu.2022.0249. Epub 2022 Oct 18.
- Newcombe VFJ, Ashton NJ, Posti JP, Glocker B, Manktelow A, Chatfield DA, Winzeck S, Needham E, Correia MM, Williams GB, Simren J, Takala RSK, Katila AJ, Maanpaa HR, Tallus J, Frantzen J, Blennow K, Tenovuo O, Zetterberg H, Menon DK. Post-acute blood biomarkers and disease progression in traumatic brain injury. Brain. 2022 Jun 30;145(6):2064-2076. doi: 10.1093/brain/awac126.
- Korley FK, Jain S, Sun X, Puccio AM, Yue JK, Gardner RC, Wang KKW, Okonkwo DO, Yuh EL, Mukherjee P, Nelson LD, Taylor SR, Markowitz AJ, Diaz-Arrastia R, Manley GT; TRACK-TBI Study Investigators. Prognostic value of day-of-injury plasma GFAP and UCH-L1 concentrations for predicting functional recovery after traumatic brain injury in patients from the US TRACK-TBI cohort: an observational cohort study. Lancet Neurol. 2022 Sep;21(9):803-813. doi: 10.1016/S1474-4422(22)00256-3.
- Helmrich IRAR, Czeiter E, Amrein K, Buki A, Lingsma HF, Menon DK, Mondello S, Steyerberg EW, von Steinbuchel N, Wang KKW, Wilson L, Xu H, Yang Z, van Klaveren D, Maas AIR; CENTER-TBI participants and investigators. Incremental prognostic value of acute serum biomarkers for functional outcome after traumatic brain injury (CENTER-TBI): an observational cohort study. Lancet Neurol. 2022 Sep;21(9):792-802. doi: 10.1016/S1474-4422(22)00218-6.
- Gardner RC, Rubenstein R, Wang KKW, Korley FK, Yue JK, Yuh EL, Mukherje P, Valadka AB, Okonkwo DO, Diaz-Arrastia R, Manley GT. Age-Related Differences in Diagnostic Accuracy of Plasma Glial Fibrillary Acidic Protein and Tau for Identifying Acute Intracranial Trauma on Computed Tomography: A TRACK-TBI Study. J Neurotrauma. 2018 Oct 15;35(20):2341-2350. doi: 10.1089/neu.2018.5694. Epub 2018 Jun 29.
- Papa L, Silvestri S, Brophy GM, Giordano P, Falk JL, Braga CF, Tan CN, Ameli NJ, Demery JA, Dixit NK, Mendes ME, Hayes RL, Wang KK, Robertson CS. GFAP out-performs S100beta in detecting traumatic intracranial lesions on computed tomography in trauma patients with mild traumatic brain injury and those with extracranial lesions. J Neurotrauma. 2014 Nov 15;31(22):1815-22. doi: 10.1089/neu.2013.3245. Epub 2014 Sep 12.
- Thelin EP, Zeiler FA, Ercole A, Mondello S, Buki A, Bellander BM, Helmy A, Menon DK, Nelson DW. Serial Sampling of Serum Protein Biomarkers for Monitoring Human Traumatic Brain Injury Dynamics: A Systematic Review. Front Neurol. 2017 Jul 3;8:300. doi: 10.3389/fneur.2017.00300. eCollection 2017.
- Kuhle J, Gaiottino J, Leppert D, Petzold A, Bestwick JP, Malaspina A, Lu CH, Dobson R, Disanto G, Norgren N, Nissim A, Kappos L, Hurlbert J, Yong VW, Giovannoni G, Casha S. Serum neurofilament light chain is a biomarker of human spinal cord injury severity and outcome. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2015 Mar;86(3):273-9. doi: 10.1136/jnnp-2013-307454. Epub 2014 Jun 16.
- Scott G, Zetterberg H, Jolly A, Cole JH, De Simoni S, Jenkins PO, Feeney C, Owen DR, Lingford-Hughes A, Howes O, Patel MC, Goldstone AP, Gunn RN, Blennow K, Matthews PM, Sharp DJ. Minocycline reduces chronic microglial activation after brain trauma but increases neurodegeneration. Brain. 2018 Feb 1;141(2):459-471. doi: 10.1093/brain/awx339.
- Petrou P, Kassis I, Ginzberg A, Hallimi M, Karussis D. Effects of Mesenchymal Stem Cell Transplantation on Cerebrospinal Fluid Biomarkers in Progressive Multiple Sclerosis. Stem Cells Transl Med. 2022 Mar 3;11(1):55-58. doi: 10.1093/stcltm/szab017.
- Husain M. Smarter adaptive platform clinical trials in neurology. Brain. 2022 Apr 18;145(2):409-410. doi: 10.1093/brain/awac005. No abstract available.
- Gaipa G, Introna M, Golay J, Nolli ML, Vallanti G, Parati E, Giordano R, Romagnoli L, Melazzini M, Biondi A, Biagi E. Development of advanced therapies in Italy: Management models and sustainability in six Italian cell factories. Cytotherapy. 2016 Apr;18(4):481-6. doi: 10.1016/j.jcyt.2016.01.002.
- Sammali E, Alia C, Vegliante G, Colombo V, Giordano N, Pischiutta F, Boncoraglio GB, Barilani M, Lazzari L, Caleo M, De Simoni MG, Gaipa G, Citerio G, Zanier ER. Intravenous infusion of human bone marrow mesenchymal stromal cells promotes functional recovery and neuroplasticity after ischemic stroke in mice. Sci Rep. 2017 Jul 31;7(1):6962. doi: 10.1038/s41598-017-07274-w.
- Introna M, Lucchini G, Dander E, Galimberti S, Rovelli A, Balduzzi A, Longoni D, Pavan F, Masciocchi F, Algarotti A, Mico C, Grassi A, Deola S, Cavattoni I, Gaipa G, Belotti D, Perseghin P, Parma M, Pogliani E, Golay J, Pedrini O, Capelli C, Cortelazzo S, D'Amico G, Biondi A, Rambaldi A, Biagi E. Treatment of graft versus host disease with mesenchymal stromal cells: a phase I study on 40 adult and pediatric patients. Biol Blood Marrow Transplant. 2014 Mar;20(3):375-81. doi: 10.1016/j.bbmt.2013.11.033. Epub 2013 Dec 7.
- Dander E, Lucchini G, Vinci P, Introna M, Masciocchi F, Perseghin P, Balduzzi A, Bonanomi S, Longoni D, Gaipa G, Belotti D, Parma M, Algarotti A, Capelli C, Golay J, Rovelli A, Rambaldi A, Biondi A, Biagi E, D'Amico G. Mesenchymal stromal cells for the treatment of graft-versus-host disease: understanding the in vivo biological effect through patient immune monitoring. Leukemia. 2012 Jul;26(7):1681-4. doi: 10.1038/leu.2011.384. Epub 2012 Jan 13. No abstract available.
- Lucchini G, Dander E, Pavan F, Di Ceglie I, Balduzzi A, Perseghin P, Gaipa G, Algarotti A, Introna M, Rambaldi A, Rovelli A, Biondi A, Biagi E, D'Amico G. Mesenchymal stromal cells do not increase the risk of viral reactivation nor the severity of viral events in recipients of allogeneic stem cell transplantation. Stem Cells Int. 2012;2012:690236. doi: 10.1155/2012/690236. Epub 2012 May 30.
- Liang X, Ding Y, Zhang Y, Tse HF, Lian Q. Paracrine mechanisms of mesenchymal stem cell-based therapy: current status and perspectives. Cell Transplant. 2014;23(9):1045-59. doi: 10.3727/096368913X667709.
- Acosta SA, Tajiri N, Hoover J, Kaneko Y, Borlongan CV. Intravenous Bone Marrow Stem Cell Grafts Preferentially Migrate to Spleen and Abrogate Chronic Inflammation in Stroke. Stroke. 2015 Sep;46(9):2616-27. doi: 10.1161/STROKEAHA.115.009854. Epub 2015 Jul 28.
- Matthay MA, Pati S, Lee JW. Concise Review: Mesenchymal Stem (Stromal) Cells: Biology and Preclinical Evidence for Therapeutic Potential for Organ Dysfunction Following Trauma or Sepsis. Stem Cells. 2017 Feb;35(2):316-324. doi: 10.1002/stem.2551. Epub 2017 Jan 19.
- George MJ, Prabhakara K, Toledano-Furman NE, Wang YW, Gill BS, Wade CE, Olson SD, Cox CS Jr. Clinical Cellular Therapeutics Accelerate Clot Formation. Stem Cells Transl Med. 2018 Oct;7(10):731-739. doi: 10.1002/sctm.18-0015. Epub 2018 Aug 1.
- Jung JW, Kwon M, Choi JC, Shin JW, Park IW, Choi BW, Kim JY. Familial occurrence of pulmonary embolism after intravenous, adipose tissue-derived stem cell therapy. Yonsei Med J. 2013 Sep;54(5):1293-6. doi: 10.3349/ymj.2013.54.5.1293.
- Wu Z, Zhang S, Zhou L, Cai J, Tan J, Gao X, Zeng Z, Li D. Thromboembolism Induced by Umbilical Cord Mesenchymal Stem Cell Infusion: A Report of Two Cases and Literature Review. Transplant Proc. 2017 Sep;49(7):1656-1658. doi: 10.1016/j.transproceed.2017.03.078.
- de la Fuente R, Bernad A, Garcia-Castro J, Martin MC, Cigudosa JC. Retraction: Spontaneous human adult stem cell transformation. Cancer Res. 2010 Aug 15;70(16):6682. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-10-2451. No abstract available.
- Torsvik A, Rosland GV, Svendsen A, Molven A, Immervoll H, McCormack E, Lonning PE, Primon M, Sobala E, Tonn JC, Goldbrunner R, Schichor C, Mysliwietz J, Lah TT, Motaln H, Knappskog S, Bjerkvig R. Spontaneous malignant transformation of human mesenchymal stem cells reflects cross-contamination: putting the research field on track - letter. Cancer Res. 2010 Aug 1;70(15):6393-6. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-10-1305. Epub 2010 Jul 14. No abstract available.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Szacowany)
Ukończenie studiów (Szacowany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Szacowany)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Szacowany)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- MATRIx
Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)
Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .