- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT06072079
Rearranjos estruturais de cromossomos e distúrbios cerebrais
Estudos de rearranjos estruturais de cromossomos para identificar genes envolvidos em doenças cerebrais congênitas
O projeto está focado no estudo detalhado de variantes genômicas estruturais (SVs). Tais mutações genéticas são, de facto, alterações na estrutura da molécula de ADN e incluem variantes do número de cópias, inversões e translocações. Um único evento pode afetar muitos genes, bem como regiões regulatórias e as consequências fenotípicas específicas dependerão da localização, do conteúdo genético e do tipo de VS. Muitas vezes, o mecanismo específico causador da doença não é conhecido. Aqui, planejamos estudar o comportamento genético molecular de variantes estruturais, bem como os mecanismos mutacionais subjacentes envolvidos.
Primeiro, usaremos o sequenciamento do genoma para identificar os pontos de quebra cromossômicos no nível dos nucleotídeos, caracterizar a arquitetura genômica nos pontos de quebra e estudar a relação entre variantes estruturais e SNVs. Em segundo lugar, estudaremos como as variantes estruturais impactam a expressão genética. Finalmente, exploraremos funcionalmente os mecanismos da doença in vivo usando peixe-zebra e in vitro usando células primárias de pacientes e células-tronco pluripotentes induzidas.
Nossos estudos se concentrarão na origem, estrutura e impacto da variação estrutural nas doenças humanas. Os resultados levarão diretamente a uma maior taxa de detecção de mutações em diagnósticos genéticos. Através de uma melhor compreensão dos mecanismos da doença, as nossas descobertas também ajudarão no desenvolvimento de novos biomarcadores e estratégias terapêuticas para pacientes com doenças genéticas raras.
Visão geral do estudo
Status
Descrição detalhada
DESCRIÇÃO DO PROJETO Objetivo 1) Quais são os mecanismos moleculares de formação de variantes genômicas estruturais?
Já temos dados WGS de mais de 500 SVs individuais. Para compreender os mecanismos mutacionais e de doença subjacentes, combinaremos a detecção de variantes estruturais com informações posicionais para o rearranjo. Isto será particularmente importante para duplicações (a localização do segmento genómico duplicado é fundamental para uma interpretação clínica correta) e para rearranjos complexos. Em segundo lugar, o ponto de interrupção exato será estabelecido e as junções do ponto de interrupção analisadas para motivos de sequência.
Objetivo 2) Quais são os mecanismos moleculares envolvidos na patologia da doença?
Primeiro usaremos o WGS para identificar e caracterizar variantes estruturais. A seguir, para entender como o(s) gene(s) candidato(s) da doença afetado(s) pelas VSs causam sintomas clínicos, estudaremos os mecanismos celulares envolvidos na patologia da doença de três maneiras:
Parte 1. Estudos in vitro de células primárias: Os efeitos na expressão e splicing serão avaliados em células de pacientes (fibroblastos ou linhagens de células B) com RT-PCR, qPCR e Western blot.
Parte 2. Estudos in vitro em modelos derivados de pacientes: Em casos selecionados, geraremos células-tronco pluripotentes induzidas e células progenitoras neurais (células NES), que proporcionarão uma oportunidade de estudar diretamente os efeitos da neurogênese precoce em células do paciente e compare com células derivadas de controles normais. Estamos interessados em estudar tanto a neurogênese inicial em cultura 2D usando células NES, quanto em gerar outro modelo relevante para o desenvolvimento, organoides cerebrais (minicérebros), em cultura 3D diretamente de linhagens de células iPS. A cultura organoide 3D recapitula o desenvolvimento de várias regiões do cérebro e é, portanto, uma ferramenta única para investigar distúrbios cerebrais. Além disso, a cultura neural 3D poderia melhorar a maturidade celular e estimular a expressão de fenótipos de doenças que facilitam uma melhor compreensão dos mecanismos da doença.
Parte 3. Estudos in vivo em um modelo de peixe-zebra: O peixe-zebra (Danio rerio) é um sistema in vivo que funciona bem para estudos de desenvolvimento embriológico normal e anormal. As duplicações são simuladas pela superexpressão e exclusão do RNA através da interrupção do gene induzida por CRISPR/Cas9 ou da derrubada do morfolino. A avaliação dos fenótipos é projetada de acordo com aqueles observados nos pacientes (por exemplo, tamanho da cabeça, defeitos craniofaciais, malformações cardiovasculares, defeitos ciliares).
Objetivo 3) Como as variantes genômicas estruturais impactam a expressão gênica?
Planejamos estudar os efeitos de longo alcance de três maneiras. Parte 1. Para avaliar o impacto clínico das interrupções do TAD, procuraremos tais eventos nos dados CNV do banco de dados da matriz Clinical Genetics (dados de mais de 6.200 crianças com NDDs raros), LocusDB SV (chamadas de SV de >1.000 pacientes com doenças raras analisadas pelo WGS no Clinical Genomics SciLifeLab) e bancos de dados disponíveis publicamente (DECIPHER, ICCG e SWEGEN). A análise bioinformática combinará informações sobre a sobreposição fenotípica entre genes de doenças conhecidas que cercam o VS e as características dos pacientes, bem como sobre a sobreposição física com intensificadores específicos de tecidos e regiões TAD. Novas abordagens computacionais serão projetadas para a descoberta de genes perturbados por mecanismos semelhantes. Os estudos de acompanhamento envolverão caracterização adicional do paciente e estudos personalizados de RNA.
Parte 2. A análise do transcriptoma de amostras de pacientes é feita por RNA-seq. Uma vez que nem todos os genes são transcricionalmente activos em todas as células, uma chave para alcançar este objectivo com sucesso é o acesso a amostras biologicamente relevantes. Muitas vezes as biópsias não estão disponíveis, portanto, nesses casos, as células iPS são uma forma alternativa de estudar efeitos biologicamente relevantes na expressão do RNA. Nos casos com dados WGS e RNA-seq pareados, integraremos alterações nos níveis de transcrição e ASE como uma leitura do efeito dos SVs nos genes vizinhos.
Parte 3. Estudos celulares e animais: A introdução de SVs específicos com CRISPR/Cas9 em linhas celulares humanas será feita quando as células primárias não estiverem disponíveis e as linhas de peixe-zebra criadas no âmbito do objectivo 2 também poderão ser utilizadas para avaliar os efeitos globais dos SVs ao nível do organismo .
Tipo de estudo
Inscrição (Estimado)
Contactos e Locais
Locais de estudo
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Stockholm, Suécia, 19175
- Anna Lindstrand
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Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
- Filho
- Adulto
- Adulto mais velho
Aceita Voluntários Saudáveis
Método de amostragem
População do estudo
Descrição
Critério de inclusão:
Indivíduo com suspeita de doença rara e/ou anomalia cromossômica
Critério de exclusão:
Sem suspeita de doença rara ou anomalias cromossômicas
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Prazo |
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Compreender os mecanismos da doença
Prazo: 10 anos
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10 anos
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo (Real)
Conclusão Primária (Estimado)
Conclusão do estudo (Estimado)
Datas de inscrição no estudo
Enviado pela primeira vez
Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ
Primeira postagem (Real)
Atualizações de registro de estudo
Última Atualização Postada (Estimado)
Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade
Última verificação
Mais Informações
Termos relacionados a este estudo
Palavras-chave
Termos MeSH relevantes adicionais
Outros números de identificação do estudo
- 2019-02078
Plano para dados de participantes individuais (IPD)
Planeja compartilhar dados de participantes individuais (IPD)?
Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo
Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA
Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA
produto fabricado e exportado dos EUA
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