Противовоспалительный эффект богатого тромбоцитами фибрина

Операции Все хирургические вмешательства проводились одним и тем же хирургом с использованием одного и того же дизайна лоскута и одной и той же хирургической техники. 2 мл раствора местного анестетика, содержащего 40 мг/мл гидрохлорида артикаина и 0,006 мг/мл гидрохлорида адреналина, использовали для блокады N. alveolaris inferior и N. buccalis. Слизисто-надкостничный лоскут был удален путем горизонтального разреза, начиная с ретромолярной области, через горизонтальный разрез в щечной области, круговой вокруг шейки второго моляра нижней челюсти и продолжая вертикально в мезиальной половине второго моляра нижней челюсти. Альвеолотомию и/или разделение зубов и/или корней выполняли стерильными карбид-вольфрамовыми борами с электрическим приводом, вращающимся со скоростью 20 000 об/мин при орошении 0,9% солевым раствором во время операции. Корни удаляли из альвеол с помощью бейновского элеватора, накладываемого на щечную и/или мезиальную части зубов. После удаления зуба кость, остатки мягких тканей и дебрис в этой области удаляли, а лунку промывали 0,9% физиологическим раствором. В контрольной группе первичное наложение швов выполняли после остановки кровотечения без какого-либо наложения на лунку экстракции, в то время как в группе PRF на лунку накладывали PRF непосредственно перед наложением швов (рис. 2). Всем пациентам были назначены антибиотики (амоксициллин-клавулановая кислота, 1 г, 2х1) (Аугментин-BID, GlaxoSmithKline, Лондон, Англия), анальгетики (ацетаминофен, 500 мг, 3х1) (Парол, Атабай, Стамбул, Турция) и жидкость для полоскания рта (120 мг). 0,12 % хлоргексидина глюконата и 150 мг 0,15 % бензидамина гидрохлорида, 200 мл, 3x1) (Kloroben, Drogsan, Анкара, Турция) после хирургической процедуры.

Подготовка PRF Забор крови производили через периферическую локтевую вену, выбирая подходящую бранулу для сосудистой структуры пациента с помощью закрытой вакуумной системы. PRF были приготовлены в соответствии с методом Choukron et al. (2001). Образцы крови объемом 10 мл помещали в центрифужное устройство (Intra-Lock International Inc., Бока-Ратон, США) при 2700 об/мин в течение 12 минут с использованием высокой скорости. Слой фибрина, богатый тромбоцитами, оставшийся между бесклеточной плазмой и эритроцитами в пробирке, отделяли с помощью ножниц или скальпеля.

Получение данных об отеке, боли и сывороточных маркерах. Для определения выраженности боли в день операции, а также на 2-й и 7-й дни после операции пациентам давали визуальную аналоговую шкалу (ВАШ) 100 мм, где 0 — отсутствие боли, 100 — что указывает на худшую боль, которую они когда-либо испытывали. Для оценки выраженности отека у пациентов измеряли расстояния козелок - щечная спайка и латеральный кантус - гонион с помощью гибкой линейки до операции, на 2-е и 7-е сутки после операции и регистрировали результаты. Для оценки уровня тризма у пациентов измеряли межрезцовое расстояние гибкой линейкой до операции, а также на 2-е и 7-е сутки после операции в обеих группах. Прогрессирование отека и тризма измеряли в миллиметрах и оценивали путем сравнения со значением, полученным на исходном уровне14.

Для объективных данных значения СОЭ измеряли с помощью анализатора Vision ESR (YHLO Biotech Co., Шэньчжэнь, Китай), а значения СРБ измеряли с помощью нефелометрического анализатора BN II (Siemens Healthcare Diagnostics, Марбург, Германия). Уровни IL-6 (пг/мл) определяли с использованием набора для ELISA для человеческого IL-6 (Elabscience Biotechnology Co., Ухань, Китай), а уровни TNF-a (пг/мл) определяли с использованием набора для ELISA для человеческого TNF-α ( Elabscience Biotechnology Co., измеряли в Ухане, Китай).

Данные статистической оценки анализировали с помощью пакетной программы IBM SPSS® V23 (IBM Company, Чикаго, Иллинойс, США). U-критерий Манна-Уитни использовался для сравнения данных с ненормальным распределением по парным группам, а независимый двухвыборочный t-критерий использовался для сравнения данных с нормальным распределением. За уровень значимости принимали р<0,05.