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Haplotipado de células individuales de todo el genoma como método genérico para el diagnóstico genético previo a la implantación

14 de abril de 2011 actualizado por: Universitaire Ziekenhuizen KU Leuven
Los investigadores desarrollaron previamente enfoques para células humanas únicas de tipo SNP, CNV y haplo (Vanneste et al. 2009, Nature Medicine). Estos métodos abren la posibilidad de convertirse en una técnica de diagnóstico genérica novedosa que amplíe el espectro de alelos de enfermedades contra los que se puede seleccionar durante el diagnóstico genético preimplantacional (PGD) y que permita ayudar a aquellas parejas que aún no pueden ser respaldadas por PGD. El PGD es el análisis genético de un solo blastómero de un embrión fertilizado in vitro (FIV) y se ofrece a las parejas para evitar la transmisión de trastornos genéticos hereditarios a su descendencia. Los análisis de PGD se realizan para (1) enfermedades monogénicas autosómicas dominantes o recesivas, (2) trastornos ligados al cromosoma X y (3) aberraciones cromosómicas que pueden resultar en concepciones aneuploides. Es probable que este nuevo método supere y, por lo tanto, reemplace las técnicas actuales para el diagnóstico genético preimplantacional. En este proyecto, los investigadores llevarán la tecnología de una prueba de principio a la aplicación clínica. Con este fin, los investigadores realizarán mejoras computacionales para la tipificación precisa de SNP, CNV y haplo de blastómeros individuales y realizarán un gran estudio de validación. Para el estudio de validación, los investigadores analizarán los genomas de los blastómeros derivados de 60 embriones sobrantes de diferente origen: (1) Embriones diagnosticados como genéticamente anormales utilizando los protocolos PCR y FISH actuales. (2) Embriones diagnosticados como normales para la región investigada usando los protocolos actuales de PCR y FISH, pero sin la calidad suficiente para ser transferidos o congelados. (3) Embriones del sexo que se selecciona en contra de la selección de sexo basada en PGD, o embriones del sexo que se selecciona pero de calidad insuficiente para ser transferidos o congelados. (4) Embriones que no fueron biopsiados en un ciclo de DGP ya que sufren un ligero retraso en el crecimiento. Este estudio de validación nos permitirá evaluar (1) la validez clínica (tasa de falsos positivos y negativos) y (2) la aplicabilidad clínica (en términos de facilidad de uso, tasa de éxito, etc.). Además, nos brindará conocimientos fundamentales adicionales sobre los orígenes y los mecanismos de inestabilidad cromosómica que operan durante la embriogénesis temprana y sus consecuencias para las aplicaciones clínicas del DGP. Finalmente, tras el estudio de validación, este proyecto implementará clínicamente la técnica para tratar a 10 familias.

Descripción general del estudio

Estado

Desconocido

Tipo de estudio

De observación

Inscripción (Anticipado)

60

Contactos y Ubicaciones

Esta sección proporciona los datos de contacto de quienes realizan el estudio e información sobre dónde se lleva a cabo este estudio.

Ubicaciones de estudio

    • Vlaams Brabant
      • Leuven, Vlaams Brabant, Bélgica, 3000
        • Universitaire Ziekenhuizen Leuven

Criterios de participación

Los investigadores buscan personas que se ajusten a una determinada descripción, denominada criterio de elegibilidad. Algunos ejemplos de estos criterios son el estado de salud general de una persona o tratamientos previos.

Criterio de elegibilidad

Edades elegibles para estudiar

  • Niño
  • Adulto
  • Adulto Mayor

Acepta Voluntarios Saludables

No

Géneros elegibles para el estudio

Todos

Método de muestreo

Muestra de probabilidad

Población de estudio

Nuestro objetivo es recolectar embriones de repuesto de 30 parejas que opten por el diagnóstico genético preimplantacional (ver Criterios de Elegibilidad).

Descripción

Criterios de inclusión:

Blastómeros biopsiados de embriones sobrantes ((A) Embriones diagnosticados como genéticamente anormales usando los protocolos actuales de PCR y FISH; (B) Embriones diagnosticados como normales para la región investigada usando los protocolos actuales de PCR y FISH, pero no de calidad suficiente para ser transferidos o congelados; (C) Embriones del sexo que se selecciona contra siguiendo la selección de sexo basada en PGD, o embriones del sexo que se selecciona pero de calidad insuficiente para ser transferidos o congelados; (D) Embriones que no fueron biopsiados en un ciclo de PGD ya que sufren un ligero retraso en el crecimiento). derivados de los siguientes grupos de pacientes:

  1. El primer grupo de pacientes involucra parejas que sufren un reordenamiento cromosómico complejo (CCR), que se define como un reordenamiento cromosómico estructural con al menos tres puntos de ruptura y un intercambio de material genético entre dos o más cromosomas.
  2. El segundo grupo de pacientes incluye parejas con trastornos recesivos ligados al cromosoma X.
  3. El tercer grupo de pacientes está formado por parejas que tienen un reordenamiento cromosómico equilibrado (una translocación, inserción o inversión) que puede provocar abortos espontáneos recurrentes o descendencia aneuploide, gravemente discapacitada.
  4. Un cuarto grupo de pacientes son parejas en riesgo de transmisión de enfermedades monogénicas.

Plan de estudios

Esta sección proporciona detalles del plan de estudio, incluido cómo está diseñado el estudio y qué mide el estudio.

¿Cómo está diseñado el estudio?

Detalles de diseño

  • Modelos observacionales: Solo caso
  • Perspectivas temporales: Futuro

Cohortes e Intervenciones

Grupo / Cohorte
Intervención / Tratamiento
PGD-FISH

Siguientes parejas que optan por el diagnóstico genético preimplantacional en base a FISH:

  • parejas que sufren un reordenamiento cromosómico complejo (CCR)
  • parejas con trastornos recesivos ligados al cromosoma X
  • parejas que portan un reordenamiento cromosómico equilibrado
Nuestro objetivo es recolectar blastómeros individuales de embriones de FIV sobrantes de 30 parejas para optimizar y probar métodos para el haplotipo de células individuales. Nuestro objetivo es recolectar 20 y 10 parejas que acudan al centro de fertilidad para DGP basado en FISH o PCR, respectivamente. En ambos grupos se recogerán al menos 5 indicaciones diferentes para DGP. Por pareja, realizaremos 10 SNP-arrays: 2 para la pareja que dona el embrión, 4 para miembros de la familia (a menudo los padres de la pareja) y 4 para blastómeros, ya que nuestro objetivo es recoger 2 células de 2 embriones por pareja. Para cinco parejas, se aspirarán 2 blastómeros de todos los embriones disponibles para validar y optimizar los métodos de fase. Finalmente, para algunos embriones, se seleccionarán todos los blastómeros para poder probar la reproducibilidad del haplotipo de una sola célula.
DGP-PCR

Siguientes parejas que optan por el diagnóstico genético preimplantacional en base a PCR:

-parejas en riesgo de transmisión de enfermedades monogénicas

Nuestro objetivo es recolectar blastómeros individuales de embriones de FIV sobrantes de 30 parejas para optimizar y probar métodos para el haplotipo de células individuales. Nuestro objetivo es recolectar 20 y 10 parejas que acudan al centro de fertilidad para DGP basado en FISH o PCR, respectivamente. En ambos grupos se recogerán al menos 5 indicaciones diferentes para DGP. Por pareja, realizaremos 10 SNP-arrays: 2 para la pareja que dona el embrión, 4 para miembros de la familia (a menudo los padres de la pareja) y 4 para blastómeros, ya que nuestro objetivo es recoger 2 células de 2 embriones por pareja. Para cinco parejas, se aspirarán 2 blastómeros de todos los embriones disponibles para validar y optimizar los métodos de fase. Finalmente, para algunos embriones, se seleccionarán todos los blastómeros para poder probar la reproducibilidad del haplotipo de una sola célula.

Colaboradores e Investigadores

Aquí es donde encontrará personas y organizaciones involucradas en este estudio.

Investigadores

  • Investigador principal: Joris R Vermeesch, Professor, Universitaire Ziekenhuizen KU Leuven
  • Investigador principal: Thierry Voet, Professor, KU Leuven
  • Investigador principal: Thomas D'Hooghe, Professor, Universitaire Ziekenhuizen KU Leuven
  • Investigador principal: Yves Moreau, Professor, KU Leuven
  • Investigador principal: Karen Sermon, Professor, Vrije Universiteit Brussel
  • Investigador principal: De Rycke Martine, Professor, Universitair Ziekenhuis Brussel

Publicaciones y enlaces útiles

La persona responsable de ingresar información sobre el estudio proporciona voluntariamente estas publicaciones. Estos pueden ser sobre cualquier cosa relacionada con el estudio.

Fechas de registro del estudio

Estas fechas rastrean el progreso del registro del estudio y los envíos de resultados resumidos a ClinicalTrials.gov. Los registros del estudio y los resultados informados son revisados ​​por la Biblioteca Nacional de Medicina (NLM) para asegurarse de que cumplan con los estándares de control de calidad específicos antes de publicarlos en el sitio web público.

Fechas importantes del estudio

Inicio del estudio

1 de octubre de 2010

Finalización primaria (Anticipado)

1 de septiembre de 2013

Finalización del estudio (Anticipado)

1 de septiembre de 2013

Fechas de registro del estudio

Enviado por primera vez

13 de abril de 2011

Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad

14 de abril de 2011

Publicado por primera vez (Estimar)

15 de abril de 2011

Actualizaciones de registros de estudio

Última actualización publicada (Estimar)

15 de abril de 2011

Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad

14 de abril de 2011

Última verificación

1 de abril de 2010

Más información

Términos relacionados con este estudio

Términos MeSH relevantes adicionales

Otros números de identificación del estudio

  • IWT-TBM-090878

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