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Genome-wide aplotipo a singola cellula come metodo generico per la diagnosi genetica preimpianto

14 aprile 2011 aggiornato da: Universitaire Ziekenhuizen KU Leuven
I ricercatori hanno precedentemente sviluppato approcci a singole cellule umane di tipo SNP, CNV e aplo (Vanneste et al. 2009, Nature Medicine). Questi metodi aprono la possibilità di essere sviluppati in una nuova tecnica diagnostica generica che amplia lo spettro di alleli di malattia che possono essere selezionati durante la diagnosi genetica preimpianto (PGD) e che consente di aiutare quelle coppie che non possono ancora essere supportate dalla PGD. PGD ​​è l'analisi genetica di un singolo blastomero da un embrione fecondato in vitro (IVF) e viene offerto alle coppie per evitare la trasmissione di malattie genetiche ereditarie alla prole. Le analisi PGD vengono eseguite per (1) malattie monogeniche autosomiche dominanti o recessive, (2) malattie legate all'X e (3) aberrazioni cromosomiche che possono provocare concezioni aneuploidi. È probabile che questo nuovo metodo superi le prestazioni e quindi sostituisca le attuali tecniche per la diagnosi genetica preimpianto. In questo progetto i ricercatori porteranno la tecnologia da una prova di principio all'applicazione clinica. A tal fine, i ricercatori apporteranno miglioramenti computazionali per un'accurata tipizzazione di SNP, CNV e aplo singolo blastomero ed eseguiranno un ampio studio di convalida. Per lo studio di convalida gli investigatori analizzeranno i genomi dei blastomeri derivati ​​da 60 embrioni di riserva di origine diversa: (1) Embrioni diagnosticati come geneticamente anormali utilizzando gli attuali protocolli PCR e FISH. (2) Embrioni diagnosticati come normali per la regione studiata utilizzando gli attuali protocolli PCR e FISH, ma non di qualità sufficiente per essere trasferiti o congelati. (3) Embrioni del sesso selezionato rispetto alla successiva selezione del sesso basata sulla PGD, o embrioni del sesso selezionato ma di qualità insufficiente per essere trasferiti o congelati. (4) Embrioni che non sono stati sottoposti a biopsia in un ciclo PGD poiché subiscono un leggero ritardo di crescita. Questo studio di convalida ci consentirà di valutare (1) la validità clinica (tasso di falsi positivi e negativi) e (2) l'applicabilità clinica (in termini di facilità d'uso, tasso di successo, ecc.). Inoltre, ci fornirà ulteriori approfondimenti fondamentali sulle origini e sui meccanismi dell'instabilità cromosomica operante durante l'embriogenesi precoce e le sue conseguenze per le applicazioni cliniche della PGD. Infine, a seguito dello studio di validazione, questo progetto implementerà clinicamente la tecnica per il trattamento di 10 famiglie.

Panoramica dello studio

Stato

Sconosciuto

Tipo di studio

Osservativo

Iscrizione (Anticipato)

60

Contatti e Sedi

Questa sezione fornisce i recapiti di coloro che conducono lo studio e informazioni su dove viene condotto lo studio.

Luoghi di studio

    • Vlaams Brabant
      • Leuven, Vlaams Brabant, Belgio, 3000
        • Universitaire Ziekenhuizen Leuven

Criteri di partecipazione

I ricercatori cercano persone che corrispondano a una certa descrizione, chiamata criteri di ammissibilità. Alcuni esempi di questi criteri sono le condizioni generali di salute di una persona o trattamenti precedenti.

Criteri di ammissibilità

Età idonea allo studio

  • Bambino
  • Adulto
  • Adulto più anziano

Accetta volontari sani

No

Sessi ammissibili allo studio

Tutto

Metodo di campionamento

Campione di probabilità

Popolazione di studio

Miriamo a raccogliere embrioni di riserva di 30 coppie che optano per la diagnosi genetica preimpianto (vedi Criteri di ammissibilità).

Descrizione

Criterio di inclusione:

Blastomeri sottoposti a biopsia da embrioni di ricambio ((A) Embrioni diagnosticati come geneticamente anormali utilizzando gli attuali protocolli PCR e FISH; (B) Embrioni diagnosticati come normali per la regione studiata utilizzando gli attuali protocolli PCR e FISH, ma non di qualità sufficiente per essere trasferiti o congelati; (C) embrioni del sesso selezionato rispetto alla successiva selezione del sesso basata sulla PGD, o embrioni del sesso selezionato ma di qualità insufficiente per essere trasferiti o congelati; (D) embrioni che non sono stati sottoposti a biopsia in un ciclo PGD poiché subiscono un leggero ritardo di crescita.) derivati ​​dai seguenti gruppi di pazienti:

  1. Il primo gruppo di pazienti comprende coppie che soffrono di un riarrangiamento cromosomico complesso (CCR), che è definito come un riarrangiamento cromosomico strutturale con almeno tre breakpoint e uno scambio di materiale genetico tra due o più cromosomi.
  2. Il secondo gruppo di pazienti comprende coppie con disturbi recessivi legati all'X.
  3. Il terzo gruppo di pazienti è costituito da coppie che portano un riarrangiamento cromosomico bilanciato - una traslocazione, un'inserzione o un'inversione - che può provocare aborto spontaneo ricorrente o prole aneuploide, gravemente handicappata.
  4. Un quarto gruppo di pazienti sono coppie a rischio di trasmissione di malattie monogeniche.

Piano di studio

Questa sezione fornisce i dettagli del piano di studio, compreso il modo in cui lo studio è progettato e ciò che lo studio sta misurando.

Come è strutturato lo studio?

Dettagli di progettazione

  • Modelli osservazionali: Solo caso
  • Prospettive temporali: Prospettiva

Coorti e interventi

Gruppo / Coorte
Intervento / Trattamento
PESCE IGP

Di seguito le coppie che optano per la diagnosi genetica preimpianto sulla base della FISH:

  • coppie che soffrono di un riarrangiamento cromosomico complesso (CCR)
  • coppie con disturbi recessivi legati all'X
  • coppie che portano un riarrangiamento cromosomico bilanciato
Miriamo a raccogliere singoli blastomeri da embrioni IVF di riserva di 30 coppie per ottimizzare e testare metodi per l'aplotipizzazione di singole cellule. Miriamo a raccogliere 20 e 10 coppie che arrivano al centro di fertilità rispettivamente per PGD basata su FISH o PCR. In entrambi i gruppi saranno raccolte almeno 5 diverse indicazioni per PGD. Per ogni coppia, eseguiremo 10 SNP-arrays: 2 per la coppia che dona l'embrione, 4 per i membri della famiglia (spesso i genitori della coppia) e 4 per i blastomeri poiché miriamo a prelevare 2 cellule da 2 embrioni per coppia. Per cinque coppie, 2 blastomeri di tutti gli embrioni disponibili saranno aspirati per convalidare e ottimizzare i metodi di fasatura. Infine, per alcuni embrioni, tutti i blastomeri saranno prelevati per poter dimostrare la riproducibilità dell'aplotipo di singola cellula.
PGD-PCR

Le seguenti coppie che optano per la diagnosi genetica preimpianto sulla base della PCR:

-coppie a rischio di trasmissione di malattie monogeniche

Miriamo a raccogliere singoli blastomeri da embrioni IVF di riserva di 30 coppie per ottimizzare e testare metodi per l'aplotipizzazione di singole cellule. Miriamo a raccogliere 20 e 10 coppie che arrivano al centro di fertilità rispettivamente per PGD basata su FISH o PCR. In entrambi i gruppi saranno raccolte almeno 5 diverse indicazioni per PGD. Per ogni coppia, eseguiremo 10 SNP-arrays: 2 per la coppia che dona l'embrione, 4 per i membri della famiglia (spesso i genitori della coppia) e 4 per i blastomeri poiché miriamo a prelevare 2 cellule da 2 embrioni per coppia. Per cinque coppie, 2 blastomeri di tutti gli embrioni disponibili saranno aspirati per convalidare e ottimizzare i metodi di fasatura. Infine, per alcuni embrioni, tutti i blastomeri saranno prelevati per poter dimostrare la riproducibilità dell'aplotipo di singola cellula.

Collaboratori e investigatori

Qui è dove troverai le persone e le organizzazioni coinvolte in questo studio.

Investigatori

  • Investigatore principale: Joris R Vermeesch, Professor, Universitaire Ziekenhuizen KU Leuven
  • Investigatore principale: Thierry Voet, Professor, KU Leuven
  • Investigatore principale: Thomas D'Hooghe, Professor, Universitaire Ziekenhuizen KU Leuven
  • Investigatore principale: Yves Moreau, Professor, KU Leuven
  • Investigatore principale: Karen Sermon, Professor, Vrije Universiteit Brussel
  • Investigatore principale: De Rycke Martine, Professor, Universitair Ziekenhuis Brussel

Pubblicazioni e link utili

La persona responsabile dell'inserimento delle informazioni sullo studio fornisce volontariamente queste pubblicazioni. Questi possono riguardare qualsiasi cosa relativa allo studio.

Studiare le date dei record

Queste date tengono traccia dell'avanzamento della registrazione dello studio e dell'invio dei risultati di sintesi a ClinicalTrials.gov. I record degli studi e i risultati riportati vengono esaminati dalla National Library of Medicine (NLM) per assicurarsi che soddisfino specifici standard di controllo della qualità prima di essere pubblicati sul sito Web pubblico.

Studia le date principali

Inizio studio

1 ottobre 2010

Completamento primario (Anticipato)

1 settembre 2013

Completamento dello studio (Anticipato)

1 settembre 2013

Date di iscrizione allo studio

Primo inviato

13 aprile 2011

Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità

14 aprile 2011

Primo Inserito (Stima)

15 aprile 2011

Aggiornamenti dei record di studio

Ultimo aggiornamento pubblicato (Stima)

15 aprile 2011

Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC

14 aprile 2011

Ultimo verificato

1 aprile 2010

Maggiori informazioni

Termini relativi a questo studio

Termini MeSH pertinenti aggiuntivi

Altri numeri di identificazione dello studio

  • IWT-TBM-090878

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Prove cliniche su aplotipizzazione a singola cellula

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