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Genomweite Einzelzell-Haplotypisierung als generische Methode zur genetischen Präimplantationsdiagnostik

14. April 2011 aktualisiert von: Universitaire Ziekenhuizen KU Leuven
Die Forscher entwickelten zuvor Ansätze für einzelne menschliche Zellen vom SNP-, CNV- und Haplotyp (Vanneste et al. 2009, Nature Medicine). Diese Methoden eröffnen die Möglichkeit, zu einer neuartigen generischen Diagnosetechnik entwickelt zu werden, die das Spektrum der Krankheitsallele erweitert, gegen die während der genetischen Präimplantationsdiagnostik (PID) selektiert werden kann, und die es ermöglicht, jenen Paaren zu helfen, die noch nicht durch PID unterstützt werden können. PID ist die genetische Analyse eines einzelnen Blastomers eines in vitro befruchteten (IVF) Embryos und wird Paaren angeboten, um die Übertragung vererbbarer genetischer Störungen auf ihre Nachkommen zu vermeiden. PID-Analysen werden durchgeführt für (1) autosomal-dominante oder rezessive monogene Erkrankungen, (2) X-chromosomale Störungen und (3) Chromosomenaberrationen, die zu aneuploiden Empfängnissen führen können. Diese neuartige Methode wird wahrscheinlich die derzeitigen Techniken zur genetischen Präimplantationsdiagnostik übertreffen und somit ersetzen. In diesem Projekt werden die Forscher die Technologie von einem Proof-of-Principle in die klinische Anwendung bringen. Zu diesem Zweck werden die Forscher rechnerische Verbesserungen für eine genaue SNP-, CNV- und Haplo-Typisierung einzelner Blastomere vornehmen und eine große Validierungsstudie durchführen. Für die Validierungsstudie werden die Forscher die Genome der Blastomeren analysieren, die von 60 Ersatzembryonen unterschiedlicher Herkunft stammen: (1) Embryonen, die unter Verwendung aktueller PCR- und FISH-Protokolle als genetisch abnormal diagnostiziert wurden. (2) Embryonen, die mit aktuellen PCR- und FISH-Protokollen für die untersuchte Region als normal diagnostiziert wurden, aber nicht von ausreichender Qualität sind, um transferiert oder eingefroren zu werden. (3) Embryonen des Geschlechts, das im Anschluss an die PID-basierte Geschlechtsselektion ausgewählt wurde, oder Embryonen des Geschlechts, für das ausgewählt wurde, die jedoch von unzureichender Qualität sind, um übertragen oder eingefroren zu werden. (4) Embryonen, die in einem PID-Zyklus nicht biopsiert wurden, da sie eine leichte Wachstumsverzögerung aufweisen. Diese Validierungsstudie wird es uns ermöglichen, (1) die klinische Validität (Rate falsch positiver und negativer Ergebnisse) und (2) die klinische Anwendbarkeit (in Bezug auf Benutzerfreundlichkeit, Erfolgsrate usw.) zu bewerten. Darüber hinaus wird es uns wesentliche weitere grundlegende Einblicke in die Ursprünge und Mechanismen der chromosomalen Instabilität während der frühen Embryogenese und ihre Folgen für die klinische Anwendung der PID bringen. Schließlich wird dieses Projekt nach der Validierungsstudie die Technik klinisch implementieren, um 10 Familien zu behandeln.

Studienübersicht

Status

Unbekannt

Studientyp

Beobachtungs

Einschreibung (Voraussichtlich)

60

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienorte

    • Vlaams Brabant
      • Leuven, Vlaams Brabant, Belgien, 3000
        • Universitaire Ziekenhuizen Leuven

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

  • Kind
  • Erwachsene
  • Älterer Erwachsener

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Nein

Studienberechtigte Geschlechter

Alle

Probenahmeverfahren

Wahrscheinlichkeitsstichprobe

Studienpopulation

Unser Ziel ist es, Ersatzembryonen von 30 Paaren zu sammeln, die sich für eine genetische Präimplantationsdiagnostik entscheiden (siehe Auswahlkriterien).

Beschreibung

Einschlusskriterien:

Blastomeren, die aus Ersatzembryonen biopsiert wurden ((A) Embryonen, die mit aktuellen PCR- und FISH-Protokollen als genetisch abnormal diagnostiziert wurden; (B) Embryonen, die mit aktuellen PCR- und FISH-Protokollen als normal für die untersuchte Region diagnostiziert wurden, aber nicht von ausreichender Qualität sind transferiert oder eingefroren; (C) Embryonen des Geschlechts, das gegen die PID-basierte Geschlechtsselektion selektiert wird, oder Embryonen des Geschlechts, für das selektiert wird, die aber von unzureichender Qualität sind, um transferiert oder eingefroren zu werden; (D) Embryonen, bei denen keine Biopsie durchgeführt wurde einen PID-Zyklus, da sie eine leichte Wachstumsverzögerung erleiden.) abgeleitet von folgenden Patientengruppen:

  1. Bei der ersten Patientengruppe handelt es sich um Paare, die an einem komplexen Chromosomen-Rearrangement (CCR) leiden, das als strukturelle Chromosomen-Rearrangement mit mindestens drei Bruchpunkten und einem Austausch von genetischem Material zwischen zwei oder mehr Chromosomen definiert ist.
  2. Die zweite Patientengruppe umfasst Paare mit X-chromosomal rezessiven Störungen.
  3. Die dritte Patientengruppe besteht aus Paaren, die eine balancierte Chromosomenveränderung – eine Translokation, Insertion oder Inversion – tragen, die zu wiederholten Fehlgeburten oder aneuploiden, schwerbehinderten Nachkommen führen kann.
  4. Eine vierte Patientengruppe sind Paare mit einem Risiko für die Übertragung monogener Krankheiten.

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

  • Beobachtungsmodelle: Nur Fall
  • Zeitperspektiven: Interessent

Kohorten und Interventionen

Gruppe / Kohorte
Intervention / Behandlung
PID-FISCH

Folgende Paare entscheiden sich für eine genetische Präimplantationsdiagnostik auf Basis von FISH:

  • Paare, die an einer komplexen chromosomalen Umlagerung (CCR) leiden
  • Paare mit X-chromosomal rezessiven Störungen
  • Paare, die eine ausgeglichene Chromosomenumlagerung tragen
Unser Ziel ist es, einzelne Blastomere aus Ersatz-IVF-Embryonen von 30 Paaren zu sammeln, um Methoden für die Einzelzell-Haplotypisierung zu optimieren und zu testen. Unser Ziel ist es, 20 bzw. 10 Paare zu sammeln, die zur FISH- bzw. PCR-basierten PID ins Fruchtbarkeitszentrum kommen. In beiden Gruppen werden mindestens 5 verschiedene Indikationen zur PID erhoben. Pro Paar führen wir 10 SNP-Arrays durch: 2 für das Paar, das den Embryo spendet, 4 für Familienmitglieder (häufig Eltern des Paares) und 4 für Blastomere, da wir 2 Zellen von 2 Embryonen pro Paar entnehmen möchten. Für fünf Paare werden 2 Blastomeren aller verfügbaren Embryonen aspiriert, um die Phasing-Methoden zu validieren und zu optimieren. Schließlich werden bei einigen Embryonen alle Blastomeren entnommen, um die Reproduzierbarkeit der Einzelzell-Haplotypisierung nachweisen zu können.
PID-PCR

Folgende Paare entscheiden sich für eine genetische Präimplantationsdiagnostik mittels PCR:

-Paare mit einem Risiko für die Übertragung monogener Krankheiten

Unser Ziel ist es, einzelne Blastomere aus Ersatz-IVF-Embryonen von 30 Paaren zu sammeln, um Methoden für die Einzelzell-Haplotypisierung zu optimieren und zu testen. Unser Ziel ist es, 20 bzw. 10 Paare zu sammeln, die zur FISH- bzw. PCR-basierten PID ins Fruchtbarkeitszentrum kommen. In beiden Gruppen werden mindestens 5 verschiedene Indikationen zur PID erhoben. Pro Paar führen wir 10 SNP-Arrays durch: 2 für das Paar, das den Embryo spendet, 4 für Familienmitglieder (häufig Eltern des Paares) und 4 für Blastomere, da wir 2 Zellen von 2 Embryonen pro Paar entnehmen möchten. Für fünf Paare werden 2 Blastomeren aller verfügbaren Embryonen aspiriert, um die Phasing-Methoden zu validieren und zu optimieren. Schließlich werden bei einigen Embryonen alle Blastomeren entnommen, um die Reproduzierbarkeit der Einzelzell-Haplotypisierung nachweisen zu können.

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Ermittler

  • Hauptermittler: Joris R Vermeesch, Professor, Universitaire Ziekenhuizen KU Leuven
  • Hauptermittler: Thierry Voet, Professor, KU Leuven
  • Hauptermittler: Thomas D'Hooghe, Professor, Universitaire Ziekenhuizen KU Leuven
  • Hauptermittler: Yves Moreau, Professor, KU Leuven
  • Hauptermittler: Karen Sermon, Professor, Vrije Universiteit Brussel
  • Hauptermittler: De Rycke Martine, Professor, Universitair Ziekenhuis Brussel

Publikationen und hilfreiche Links

Die Bereitstellung dieser Publikationen erfolgt freiwillig durch die für die Eingabe von Informationen über die Studie verantwortliche Person. Diese können sich auf alles beziehen, was mit dem Studium zu tun hat.

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn

1. Oktober 2010

Primärer Abschluss (Voraussichtlich)

1. September 2013

Studienabschluss (Voraussichtlich)

1. September 2013

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

13. April 2011

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

14. April 2011

Zuerst gepostet (Schätzen)

15. April 2011

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Schätzen)

15. April 2011

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

14. April 2011

Zuletzt verifiziert

1. April 2010

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen

Andere Studien-ID-Nummern

  • IWT-TBM-090878

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Klinische Studien zur Einzelzell-Haplotypisierung

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