- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT04774432
Efecto de GM-CSF en las tasas de éxito del sistema CAPA-IVM en PCOS
Efecto del factor estimulante de colonias de granulocitos y macrófagos (GM-CSF) en las tasas de éxito de la maduración de ovocitos humanos in vitro (sistema CAPA-IVM) en SOP
La maduración in vitro (IVM) de ovocitos humanos obtenidos de ovarios mínimamente estimulados o no estimulados ofrece una opción de tratamiento más "amigable para el paciente" que el tratamiento convencional de tecnología de reproducción asistida (ART) con hiperestimulación ovárica controlada (COH). Sin embargo, la tasa de maduración y el rendimiento total de blastocistos en ovocitos sometidos a maduración in vitro todavía son limitados.
Este estudio piloto tiene como objetivo evaluar la adición de un importante factor de crecimiento conocido como factor estimulante de colonias de granulocitos y macrófagos (GM-CSF). Los investigadores plantean la hipótesis de que la adición de GM-CSF a los medios de cultivo IVM humanos aumentará las tasas de embarazo a niveles comparables a los de la FIV, lo que la convierte en una opción clínica viable para las parejas que se someten a un tratamiento de reproducción asistida.
Descripción general del estudio
Estado
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
La maduración in vitro (IVM) de ovocitos humanos obtenidos de ovarios mínimamente estimulados o no estimulados ofrece una opción de tratamiento más "amigable para el paciente" que el tratamiento convencional de tecnología de reproducción asistida (ART) con hiperestimulación ovárica controlada (COH).
Por lo general, la MIV se ofrecerá a mujeres con ovarios poliquísticos (PCO/SOP) o a pacientes con una reserva ovárica excelente, es decir, un recuento alto de folículos antrales. El tratamiento IVM se caracteriza por la administración mínima de FSH o HMG y NO HCG desencadenante de la ovulación.
El enfoque IVM es menos perturbador para la vida diaria de los pacientes debido a la menor necesidad de control hormonal y ecográfico, evita una variedad de complicaciones mayores y menores, como el síndrome de hiperestimulación ovárica, y tiene como objetivo reducir el costo total del tratamiento de infertilidad para el paciente y para el presupuesto de salud.
Los ovocitos humanos extraídos de pequeños folículos antrales pueden reanudar la meiosis al sufrir la ruptura de la vesícula germinal y la extrusión del primer cuerpo polar, si han alcanzado la competencia meiótica. Estos ovocitos se pueden fertilizar, aunque solo una proporción (menos del 50 %) de ellos puede convertirse en embriones viables. Se ha planteado la hipótesis de que el fracaso del desarrollo embrionario puede deberse, al menos en parte, a un citoplasma de ovocitos inmaduros.
Los investigadores han desarrollado un nuevo sistema de cultivo de maduración in vitro (IVM) humano (denominado CAPACITACIÓN-IVM, en lo sucesivo denominado "CAPA") utilizando 1°) compuestos naturales que se sabe que influyen en los niveles de cGMP y cAMP dentro del complejo cúmulo-ovocitos y 2° ) compuestos que son cruciales para la diafonía entre ovocitos y cúmulos. Mantener el AMP cíclico alto después de la recuperación en el ovocito GV previene la maduración nuclear, lo que permite una mayor comunicación entre el ovocito y las células del cúmulo. Esto permite mejorar la sincronización de los procesos de maduración nuclear y citoplasmática en el ovocito, en beneficio de la calidad del embrión.
Los resultados clínicos del uso de CAPA-IVM en SOP en lugar de tratamientos de FIV-ICSI estimulados con HP-HMG y antagonista de la GnRH completamente estimulados mostraron tasas de nacidos vivos equivalentes después de un primer ciclo de transferencia de embriones realizado en una preparación endometrial artificial en los dos brazos. No obstante, el CAPA-IVM acumulado de nacidos vivos a los 12 meses fue del 44%, mientras que en FIV fue del 62,6. (Vuong et al., 2020). Por lo tanto, la tasa de deserción de embriones en CAPA-IVM es mayor que en ART convencional. Para corregir esta diferencia en el buen número de embriones, es necesario refinar las condiciones de cultivo.
Este estudio piloto tiene como objetivo evaluar la adición de un importante factor de crecimiento conocido como factor estimulante de colonias de granulocitos y macrófagos (GM-CSF). En un avance reciente, se demostró que agregar GM-CSF a los medios IVM puede mejorar el desarrollo embrionario previo a la implantación en cerdos, vacas y ratones (resultados no publicados del profesor Mark Nottle, Universidad de Adelaide, Australia). Además, en ratones, estas mejoras dieron lugar a un aumento de la tasa de implantación (+62 %) y tendieron a aumentar la tasa de natalidad (+25 %) tras la transferencia de blastocistos vitrificados/calentados en comparación con la IVM estándar. Con base en estos hallazgos, este estudio piloto tiene como objetivo determinar el efecto beneficioso del uso de GM-CSF durante el CAPA-IVM bifásico. Los investigadores plantean la hipótesis de que la adición de GM-CSF a los medios de cultivo IVM humanos aumentará las tasas de embarazo a niveles comparables a los de la FIV, lo que la convierte en una opción clínica viable para las parejas que se someten a un tratamiento de reproducción asistida.
GM-CSF (Leukine in EmbryoGene medium, Medicult) se ha utilizado anteriormente como aditivo en el cultivo de embriones para aumentar la tasa de implantación de los embriones expuestos. Este estudio en más de 1000 pacientes no mostró ninguna ventaja de agregar GMCSF de manera rutinaria. Sin embargo, en un subgrupo de pacientes, aquellos con mala implantación, la adición de este factor mejoró los resultados clínicos (Ziebe et al., 2013). En este estudio no se mencionaron problemas de seguridad al exponer ovocitos humanos durante la fertilización y la formación temprana del embrión.
En el estudio previsto, solo habrá exposición a GM-CSF durante los pasos de maduración de los ovocitos, y los embriones nunca estarán en contacto directo con el compuesto en investigación.
Tipo de estudio
Inscripción (Anticipado)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: Lan N Vuong, PhD
- Número de teléfono: +84903008889
- Correo electrónico: drlan@yahoo.com.vn
Copia de seguridad de contactos de estudio
- Nombre: Dang Q Vinh, MD
- Número de teléfono: +84908225481
- Correo electrónico: BSVINH.DQ@MYDUCHOSPITAL.VN
Ubicaciones de estudio
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Ho Chi Minh City, Vietnam
- Reclutamiento
- My Duc Hospital
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
Acepta Voluntarios Saludables
Géneros elegibles para el estudio
Descripción
Criterios de inclusión:
- Diagnosticado como PCOS utilizando los criterios de Rotterdam (AFC = 25 o el volumen ovárico> 10 ml)
- Aceptar participar en el estudio
Criterio de exclusión:
- Sin anomalías uterinas u ováricas importantes
- Endometriosis grado 2 o superior
- TAO grave (concentración <1 millón/ml, motilidad <10%), esperma quirúrgico
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: TRATAMIENTO
- Asignación: ALEATORIZADO
- Modelo Intervencionista: PARALELO
- Enmascaramiento: NINGUNO
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
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COMPARADOR_ACTIVO: Grupo GM-CSF
Los pacientes se asignarán aleatoriamente al grupo de intervención con GM-CSF agregado a CAPA y medio de maduración. Luego del período CAPA de 24 h, la evaluación de la maduración (MII, GVBD, GV) se realizará después del paso de 30 h IVM. Los óvulos maduros se fecundan mediante inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI). Los ovocitos fertilizados se colocarán en una incubadora de lapso de tiempo (ASTEC) y se seguirá su desarrollo hasta el día 5/6 (formación de blastocisto). |
GM-CSF agregado a CAPA y medio de maduración
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COMPARADOR_ACTIVO: Grupo de control
Los pacientes se asignarán aleatoriamente al grupo de control sin la adición de GM-CSF a CAPA ni al medio de maduración. Luego del período CAPA de 24 h, la evaluación de la maduración (MII, GVBD, GV) se realizará después del paso de 30 h IVM. Los óvulos maduros se fecundan mediante inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI). Los ovocitos fertilizados se colocarán en una incubadora de lapso de tiempo (ASTEC) y se seguirá su desarrollo hasta el día 5/6 (formación de blastocisto). |
GM-CSF no se agregará a CAPA ni al medio de maduración
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Tasa de blastulación
Periodo de tiempo: Al menos siete días después de la recogida de ovocitos.
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Porcentaje de blastocisto por 2 tipos de cultivo IVM con o sin GM-CSF
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Al menos siete días después de la recogida de ovocitos.
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Datos de embriología (tasa de maduración, tasa de fertilización, tasa de blastocistos de grado 1 y grado 2)
Periodo de tiempo: Tasa de maduración: 2 días después de la OPU, Tasa de fecundación: 3 días después de la OPU, blastocisto de grado 1 y 2: al menos 7 días después de la OPU
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Tasa de maduración: porcentaje de ovocitos maduros sobre ovocitos captados por 2 tipos de cultivo IVM Tasa de fecundación: porcentaje de 2PN sobre ovocitos inyectados por 2 tipos de cultivo IVM Tasa de blastocistos de grado 1 y 2: porcentaje de blastocistos de grado 1 y 2 sobre el número total de blastocistos por 2 tipos de cultivo IVM
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Tasa de maduración: 2 días después de la OPU, Tasa de fecundación: 3 días después de la OPU, blastocisto de grado 1 y 2: al menos 7 días después de la OPU
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Tasa de embarazo en curso después de la primera transferencia del ciclo de tratamiento iniciado.
Periodo de tiempo: A las 12 semanas de gestación
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El embarazo en curso se define como un embarazo con frecuencia cardíaca detectable a las 12 semanas de gestación o más, después de completar la primera transferencia.
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A las 12 semanas de gestación
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Tasa acumulativa de embarazos en curso a los 6 meses después de la aleatorización
Periodo de tiempo: A las 12 semanas de gestación a los 6 meses después de la aleatorización. Después de 6 meses, la mayoría de los pacientes que realizan IVM han terminado todos sus embriones congelados; por lo tanto, consideramos este punto de tiempo para analizar la tasa acumulativa de embarazo en curso.
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El embarazo en curso se define como un embarazo con frecuencia cardíaca detectable a las 12 semanas de gestación o más, después de la transferencia de todos los embriones del ciclo de tratamiento iniciado.
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A las 12 semanas de gestación a los 6 meses después de la aleatorización. Después de 6 meses, la mayoría de los pacientes que realizan IVM han terminado todos sus embriones congelados; por lo tanto, consideramos este punto de tiempo para analizar la tasa acumulativa de embarazo en curso.
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Eventos adversos (tasa de OHSS, tasa de aborto espontáneo, tasa ectópica)
Periodo de tiempo: Tasa de OHSS: a los 03 días después de la extracción de ovocitos y 14 días después de la transferencia de embriones, tasa de aborto espontáneo: antes de las 22 semanas de edad gestacional, tasa de ectópicos: a las 5-7 semanas de gestación
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Tasa de OHSS: Se realizaron evaluaciones de rutina para OHSS en el día 3 posterior a la recuperación de ovocitos en ambos grupos. En otras ocasiones, se evaluó el SHO si el paciente informaba síntomas. El OHSS se clasificó utilizando el diagrama de flujo desarrollado por Humaidan y colegas para su uso en entornos de ensayos clínicos. El aborto espontáneo se define como la pérdida espontánea de un embarazo clínico antes de la semana 22 de edad gestacional, en la que el embrión o feto no es viable. y no se absorbe o expulsa espontáneamente del útero. Embarazo ectópico definido como un embarazo en el que la implantación tiene lugar fuera de la cavidad uterina |
Tasa de OHSS: a los 03 días después de la extracción de ovocitos y 14 días después de la transferencia de embriones, tasa de aborto espontáneo: antes de las 22 semanas de edad gestacional, tasa de ectópicos: a las 5-7 semanas de gestación
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La relación de expresión relativa ( R ) de los genes de las células del cúmulo humano
Periodo de tiempo: las células del cúmulo se recolectarán después de al menos 30 horas de cultivo de maduración, se almacenarán a -80oC hasta la purificación del ARN
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Se recolectarán células del cúmulo (CCc), síntesis de ADNc después de la purificación del ARNm, PCR de cuantificación relativa para detectar la expresión génica entre las CC del grupo GM-CSF y las CC del grupo de control.
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las células del cúmulo se recolectarán después de al menos 30 horas de cultivo de maduración, se almacenarán a -80oC hasta la purificación del ARN
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Nivel de expresión de metilación del ADN infantil
Periodo de tiempo: En el momento de la entrega
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Se recolectará material del recién nacido (sangre de cordón umbilical, frotis bucal, tejido placentario) para análisis epigenéticos. Canalización computacional para el análisis de datos de secuenciación de bisulfito de todo el genoma. Las lecturas de la secuenciación con bisulfito se alinean primero con el genoma de referencia. Los datos de alineación se pueden visualizar en diferentes pistas para la comparación (grupo de control frente al grupo GM-CSF). Después de la llamada de metilación, se calculan y trazan el nivel de metilación en masa y el nivel de metilación de todo el genoma, y se determinan las DMR (regiones metiladas diferencialmente). Para realizar un análisis integrador, los datos de metilación del ADN se combinan con la expresión génica, por ejemplo, genes diferenciales (DEG), para delinear el papel regulador de la metilación del ADN. |
En el momento de la entrega
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Tuong M Ho, MD, Hope Research Center
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Guzman L, Ortega-Hrepich C, Albuz FK, Verheyen G, Devroey P, Smitz J, De Vos M. Developmental capacity of in vitro-matured human oocytes retrieved from polycystic ovary syndrome ovaries containing no follicles larger than 6 mm. Fertil Steril. 2012 Aug;98(2):503-7.e1-2. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.01.114. Epub 2012 Feb 23.
- Guzman L, Adriaenssens T, Ortega-Hrepich C, Albuz FK, Mateizel I, Devroey P, De Vos M, Smitz J. Human antral follicles <6 mm: a comparison between in vivo maturation and in vitro maturation in non-hCG primed cycles using cumulus cell gene expression. Mol Hum Reprod. 2013 Jan;19(1):7-16. doi: 10.1093/molehr/gas038. Epub 2012 Sep 6.
- Heijnen EM, Eijkemans MJ, Hughes EG, Laven JS, Macklon NS, Fauser BC. A meta-analysis of outcomes of conventional IVF in women with polycystic ovary syndrome. Hum Reprod Update. 2006 Jan-Feb;12(1):13-21. doi: 10.1093/humupd/dmi036. Epub 2005 Aug 25.
- Sanchez F, Lolicato F, Romero S, De Vos M, Van Ranst H, Verheyen G, Anckaert E, Smitz JEJ. An improved IVM method for cumulus-oocyte complexes from small follicles in polycystic ovary syndrome patients enhances oocyte competence and embryo yield. Hum Reprod. 2017 Oct 1;32(10):2056-2068. doi: 10.1093/humrep/dex262.
- Ho VNA, Braam SC, Pham TD, Mol BW, Vuong LN. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Hum Reprod. 2019 Jun 4;34(6):1055-1064. doi: 10.1093/humrep/dez060.
- Ziebe S, Loft A, Povlsen BB, Erb K, Agerholm I, Aasted M, Gabrielsen A, Hnida C, Zobel DP, Munding B, Bendz SH, Robertson SA. A randomized clinical trial to evaluate the effect of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) in embryo culture medium for in vitro fertilization. Fertil Steril. 2013 May;99(6):1600-9. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.12.043. Epub 2013 Feb 4.
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (ACTUAL)
Finalización primaria (ANTICIPADO)
Finalización del estudio (ANTICIPADO)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (ACTUAL)
Actualizaciones de registros de estudio
Última actualización publicada (ACTUAL)
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
Última verificación
Más información
Términos relacionados con este estudio
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
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