- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT04774432
Efeito do GM-CSF nas taxas de sucesso do sistema CAPA-IVM na SOP
Efeito do Fator Estimulante de Colônias de Macrófagos de Granulócitos (GM-CSF) nas Taxas de Sucesso da Maturação In Vitro de Oócitos Humanos (Sistema CAPA-IVM) na SOP
A maturação in vitro (IVM) de oócitos humanos obtidos de ovários minimamente estimulados ou não estimulados oferece uma opção de tratamento mais "amigável ao paciente" do que o tratamento convencional de Tecnologia de Reprodução Assistida (ART) com hiperestimulação ovariana controlada (COH). No entanto, a taxa de maturação e o rendimento total de blastocistos em oócitos submetidos à maturação in vitro ainda são limitados.
Este estudo piloto visa avaliar a adição de um importante fator de crescimento conhecido como fator estimulador de colônias de macrófagos granulócitos (GM-CSF). Os investigadores levantam a hipótese de que a adição de GM-CSF ao meio de cultura IVM humano aumentará as taxas de gravidez para níveis comparáveis aos da fertilização in vitro, tornando-o uma opção clínica viável para casais submetidos a tratamento de reprodução assistida.
Visão geral do estudo
Status
Intervenção / Tratamento
Descrição detalhada
A maturação in vitro (IVM) de oócitos humanos obtidos de ovários minimamente estimulados ou não estimulados oferece uma opção de tratamento mais "amigável ao paciente" do que o tratamento convencional de Tecnologia de Reprodução Assistida (ART) com hiperestimulação ovariana controlada (COH).
Normalmente, a IVM será oferecida a mulheres com ovários policísticos (SOP/SOP) ou a pacientes com excelente reserva ovariana, ou seja, alta contagem de folículos antrais. O tratamento da MIV é caracterizado pela administração mínima de FSH ou HMG e NO HCG desencadeador da ovulação.
A abordagem IVM é menos perturbadora para a vida diária dos pacientes através da redução da necessidade de monitoramento hormonal e ultrassonográfico, evita uma série de complicações menores e maiores, como a síndrome de hiperestimulação ovariana, e visa reduzir o custo total do tratamento de infertilidade para o paciente e para o orçamento da saúde.
Oócitos humanos recuperados de pequenos folículos antrais são capazes de retomar a meiose por meio da quebra da vesícula germinativa e extrusão do primeiro corpúsculo polar, se tiverem atingido a competência meiótica. Esses oócitos podem ser fertilizados, embora apenas uma proporção (menos de 50%) deles possa se desenvolver em embriões viáveis. Foi levantada a hipótese de que a falha no desenvolvimento embrionário pode, pelo menos em parte, ser devida a um citoplasma imaturo do oócito.
Os investigadores desenvolveram um novo sistema de cultura de maturação humana in vitro (IVM) (denominado CAPACITATION-IVM, doravante denominado "CAPA") usando 1°) compostos naturais conhecidos por influenciar os níveis de cGMP e cAMP dentro do complexo cumulus-oócito e 2° ) compostos que são cruciais para o cross-talk oócito-cúmulo. Manter o AMP cíclico elevado após a recuperação no oócito GV evita a ocorrência de maturação nuclear, permitindo maior comunicação entre o oócito e as células do cumulus. Isso permite melhorar a sincronização dos processos de maturação nuclear e citoplasmática no oócito, em benefício da qualidade do embrião.
Os resultados clínicos do uso de CAPA-IVM na SOP em vez de tratamentos de FIV-ICSI estimulados com antagonista de GnRH totalmente estimulado por HP-HMG mostraram taxas de nascidos vivos equivalentes após um primeiro ciclo de transferência de embriões feito em preparação endometrial artificial nos dois braços. No entanto, o índice acumulado de nascidos vivos CAPA-IVM aos 12 meses foi de 44%, enquanto na FIV foi de 62,6. (Vuong et al., 2020). Portanto, a taxa de atrito de embriões em CAPA-IVM é maior do que em ART convencional. Para corrigir esta diferença no número de embriões é necessário refinar as condições de cultura.
Este estudo piloto visa avaliar a adição de um importante fator de crescimento conhecido como fator estimulador de colônias de macrófagos granulócitos (GM-CSF). Em um avanço recente, foi demonstrado que a adição de GM-CSF ao meio IVM pode melhorar o desenvolvimento do embrião pré-implantação em suínos, bovinos e camundongos (resultados não publicados do Prof. Mark Nottle, Universidade de Adelaide, Austrália). Além disso, em camundongos, essas melhorias levam a um aumento na taxa de implantação (+62%) e tendem a aumentar a taxa de natalidade (+25%) após a transferência de blastocistos vitrificados/aquecidos em comparação com IVM padrão. Com base nesses achados, este estudo piloto visa determinar o efeito benéfico do uso de GM-CSF durante o CAPA-IVM bifásico. Os investigadores levantam a hipótese de que a adição de GM-CSF ao meio de cultura IVM humano aumentará as taxas de gravidez para níveis comparáveis aos da fertilização in vitro, tornando-o uma opção clínica viável para casais submetidos a tratamento de reprodução assistida.
O GM-CSF (Leukine in EmbryoGene medium, Medicult) foi previamente usado como um aditivo na cultura de embriões para aumentar a taxa de implantação de embriões expostos. Este estudo em mais de 1.000 pacientes não mostrou nenhuma vantagem em adicionar GMCSF rotineiramente. No entanto, em um subconjunto de pacientes, aqueles com implantação ruim, a adição desse fator melhorou os resultados clínicos (Ziebe et al., 2013). Neste estudo, nenhum problema de segurança foi mencionado pela exposição de oócitos humanos durante a fertilização e formação inicial do embrião.
No estudo pretendido haverá apenas exposição do GM-CSF durante as etapas de maturação oocitária, e os embriões nunca estarão em contato direto com o composto experimental.
Tipo de estudo
Inscrição (Antecipado)
Estágio
- Não aplicável
Contactos e Locais
Contato de estudo
- Nome: Lan N Vuong, PhD
- Número de telefone: +84903008889
- E-mail: drlan@yahoo.com.vn
Estude backup de contato
- Nome: Dang Q Vinh, MD
- Número de telefone: +84908225481
- E-mail: BSVINH.DQ@MYDUCHOSPITAL.VN
Locais de estudo
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-
Ho Chi Minh City, Vietnã
- Recrutamento
- My Duc Hospital
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Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Gêneros Elegíveis para o Estudo
Descrição
Critério de inclusão:
- Diagnosticada como SOP usando os critérios de Rotterdam (AFC=25 ou volume ovariano >10ml)
- Concordar em participar do estudo
Critério de exclusão:
- Sem grandes anormalidades uterinas ou ovarianas
- Endometriose grau 2 ou superior
- OAT grave (concentração <1 milhão/ml, motilidade <10%), esperma cirúrgico
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: TRATAMENTO
- Alocação: RANDOMIZADO
- Modelo Intervencional: PARALELO
- Mascaramento: NENHUM
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
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ACTIVE_COMPARATOR: Grupo GM-CSF
Os pacientes serão alocados aleatoriamente para o grupo de intervenção com GM-CSF adicionado ao CAPA e meio de maturação. Após o período CAPA de 24h, a avaliação da maturação (MII, GVBD, GV) será feita após 30 h da etapa IVM. Os óvulos maduros são fertilizados usando injeção intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI). Os oócitos fertilizados serão colocados em uma incubadora de lapso de tempo (ASTEC) e seu desenvolvimento até o dia 5/6 (formação do blastocisto) será acompanhado. |
GM-CSF adicionado ao CAPA e meio de maturação
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ACTIVE_COMPARATOR: Grupo de controle
Os pacientes serão alocados aleatoriamente para o grupo controle sem adição de GM-CSF ao CAPA e meio de maturação. Após o período CAPA de 24h, a avaliação da maturação (MII, GVBD, GV) será feita após 30 h da etapa IVM. Os óvulos maduros são fertilizados usando injeção intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI). Os oócitos fertilizados serão colocados em uma incubadora de lapso de tempo (ASTEC) e seu desenvolvimento até o dia 5/6 (formação do blastocisto) será acompanhado. |
O GM-CSF não será adicionado ao CAPA e ao meio de maturação
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Taxa de explosão
Prazo: Pelo menos sete dias após a coleta do oócito
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Porcentagem de blastocisto por 2 tipos de cultura IVM com ou sem GM-CSF
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Pelo menos sete dias após a coleta do oócito
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Dados de embriologia (taxa de maturação, taxa de fertilização, taxa de blastocisto grau 1 e grau 2)
Prazo: Taxa de maturação: 2 dias após OPU, taxa de fertilização: 3 dias após OPU, grau 1 e 2 blastocisto: pelo menos 7 dias após OPU
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Taxa de maturação: porcentagem de oócitos maduros sobre oócitos captados por 2 tipos de cultura IVM Taxa de fertilização: porcentagem de 2PN sobre oócitos injetados por 2 tipos de cultura IVM Taxa de blastocistos de grau 1 e 2: porcentagem de blastocistos de grau 1 e 2 sobre o número total de blastocistos por 2 tipos de cultura IVM
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Taxa de maturação: 2 dias após OPU, taxa de fertilização: 3 dias após OPU, grau 1 e 2 blastocisto: pelo menos 7 dias após OPU
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Taxa de Gravidez Contínua após a primeira transferência do ciclo de tratamento iniciado.
Prazo: Com 12 semanas de gestação
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Gravidez em curso é definida como gravidez com frequência cardíaca detectável na 12ª semana de gestação ou mais, após a conclusão da primeira transferência.
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Com 12 semanas de gestação
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Taxa cumulativa de gravidez contínua em 6 meses após a randomização
Prazo: Com 12 semanas de gestação e 6 meses após a randomização. Após 6 meses, a maioria das pacientes que fazem IVM terminaram todos os seus embriões congelados; portanto, consideramos este ponto de tempo para analisar a taxa cumulativa de gravidez em curso.
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Gravidez em andamento é definida como gravidez com frequência cardíaca detectável em 12 semanas de gestação ou mais, após a transferência de todos os embriões do ciclo de tratamento iniciado.
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Com 12 semanas de gestação e 6 meses após a randomização. Após 6 meses, a maioria das pacientes que fazem IVM terminaram todos os seus embriões congelados; portanto, consideramos este ponto de tempo para analisar a taxa cumulativa de gravidez em curso.
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Eventos adversos (taxa de OHSS, taxa de aborto espontâneo, taxa ectópica)
Prazo: Taxa de OHSS: 03 dias após a coleta dos oócitos e 14 dias após a transferência do embrião, Taxa de aborto espontâneo: Antes de 22 semanas de idade gestacional, taxa ectópica: Às 5-7 semanas de gestação
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Taxa de OHSS: As avaliações de rotina para OHSS foram realizadas no dia 3 após a coleta de oócitos em ambos os grupos. Em outros momentos, a OHSS era avaliada se os sintomas fossem relatados pelo paciente. OHSS foi classificado usando o diagrama de fluxo desenvolvido por Humaidan e colegas para uso em cenários de ensaios clínicos Aborto espontâneo definido como perda espontânea de uma gravidez clínica antes da 22ª semana de idade gestacional, na qual o(s) embrião(es) ou feto(s) é(são) inviável(eis) e é/não é absorvido ou expelido espontaneamente do útero. Gravidez ectópica definida como uma gravidez em que a implantação ocorre fora da cavidade uterina |
Taxa de OHSS: 03 dias após a coleta dos oócitos e 14 dias após a transferência do embrião, Taxa de aborto espontâneo: Antes de 22 semanas de idade gestacional, taxa ectópica: Às 5-7 semanas de gestação
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A razão de expressão relativa ( R ) de genes de células cumulus humanas
Prazo: as células do cumulus serão coletadas após pelo menos 30 horas de cultura de maturação, armazenadas a -80oC até a purificação do RNA
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Serão coletadas células do cumulus (CCc), síntese de cDNA após purificação do mRNA, PCR de quantificação relativa para detecção da expressão gênica entre CCs do grupo GM-CSF e CCs do grupo controle.
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as células do cumulus serão coletadas após pelo menos 30 horas de cultura de maturação, armazenadas a -80oC até a purificação do RNA
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Nível de expressão de metilação do DNA infantil
Prazo: Na hora da entrega
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O material do recém-nascido (sangue do cordão umbilical, esfregaços bucais, tecido placentário) será coletado para análise epigenética. Pipeline computacional para análise de dados de sequenciamento de bissulfito em todo o genoma. As leituras do sequenciamento de bissulfito são primeiro alinhadas ao genoma de referência. Os dados de alinhamento podem ser visualizados em diferentes trilhas para comparação (grupo controle vs grupo GM-CSF). Após a chamada de metilação, o nível de metilação em massa e o nível de metilação em todo o genoma são calculados e plotados, e os DMRs (regiões metiladas diferencialmente) são determinados. Para realizar uma análise integrativa, os dados de metilação do DNA são acoplados à expressão gênica, por exemplo, genes diferencialmente (DEGs), para delinear o papel regulador da metilação do DNA. |
Na hora da entrega
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Investigadores
- Investigador principal: Tuong M Ho, MD, Hope Research Center
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Guzman L, Ortega-Hrepich C, Albuz FK, Verheyen G, Devroey P, Smitz J, De Vos M. Developmental capacity of in vitro-matured human oocytes retrieved from polycystic ovary syndrome ovaries containing no follicles larger than 6 mm. Fertil Steril. 2012 Aug;98(2):503-7.e1-2. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.01.114. Epub 2012 Feb 23.
- Guzman L, Adriaenssens T, Ortega-Hrepich C, Albuz FK, Mateizel I, Devroey P, De Vos M, Smitz J. Human antral follicles <6 mm: a comparison between in vivo maturation and in vitro maturation in non-hCG primed cycles using cumulus cell gene expression. Mol Hum Reprod. 2013 Jan;19(1):7-16. doi: 10.1093/molehr/gas038. Epub 2012 Sep 6.
- Heijnen EM, Eijkemans MJ, Hughes EG, Laven JS, Macklon NS, Fauser BC. A meta-analysis of outcomes of conventional IVF in women with polycystic ovary syndrome. Hum Reprod Update. 2006 Jan-Feb;12(1):13-21. doi: 10.1093/humupd/dmi036. Epub 2005 Aug 25.
- Sanchez F, Lolicato F, Romero S, De Vos M, Van Ranst H, Verheyen G, Anckaert E, Smitz JEJ. An improved IVM method for cumulus-oocyte complexes from small follicles in polycystic ovary syndrome patients enhances oocyte competence and embryo yield. Hum Reprod. 2017 Oct 1;32(10):2056-2068. doi: 10.1093/humrep/dex262.
- Ho VNA, Braam SC, Pham TD, Mol BW, Vuong LN. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Hum Reprod. 2019 Jun 4;34(6):1055-1064. doi: 10.1093/humrep/dez060.
- Ziebe S, Loft A, Povlsen BB, Erb K, Agerholm I, Aasted M, Gabrielsen A, Hnida C, Zobel DP, Munding B, Bendz SH, Robertson SA. A randomized clinical trial to evaluate the effect of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) in embryo culture medium for in vitro fertilization. Fertil Steril. 2013 May;99(6):1600-9. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.12.043. Epub 2013 Feb 4.
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo (REAL)
Conclusão Primária (ANTECIPADO)
Conclusão do estudo (ANTECIPADO)
Datas de inscrição no estudo
Enviado pela primeira vez
Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ
Primeira postagem (REAL)
Atualizações de registro de estudo
Última Atualização Postada (REAL)
Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade
Última verificação
Mais Informações
Termos relacionados a este estudo
Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo
Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA
Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA
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