- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT04774432
Effet du GM-CSF sur les taux de réussite du système CAPA-IVM dans le SOPK
Effet du facteur de stimulation des colonies de granulocytes macrophages (GM-CSF) sur les taux de réussite de la maturation des ovocytes humains in vitro (système CAPA-IVM) dans le SOPK
La maturation in vitro (IVM) d'ovocytes humains obtenus à partir d'ovaires peu stimulés ou non stimulés offre une option de traitement plus « conviviale pour le patient » que le traitement conventionnel par technologie de procréation assistée (ART) avec hyperstimulation ovarienne contrôlée (COH). Cependant, le taux de maturation et le rendement total en blastocystes dans les ovocytes subissant une maturation in vitro sont encore limités.
Cette étude pilote vise à évaluer l'ajout d'un facteur de croissance important connu sous le nom de facteur de stimulation des colonies de granulocytes macrophages (GM-CSF). Les enquêteurs émettent l'hypothèse que l'ajout de GM-CSF aux milieux de culture IVM humains augmentera les taux de grossesse à des niveaux comparables à ceux de la FIV, ce qui en fera une option clinique viable pour les couples suivant un traitement de procréation assistée.
Aperçu de l'étude
Statut
Intervention / Traitement
Description détaillée
La maturation in vitro (IVM) d'ovocytes humains obtenus à partir d'ovaires peu stimulés ou non stimulés offre une option de traitement plus « conviviale pour le patient » que le traitement conventionnel par technologie de procréation assistée (ART) avec hyperstimulation ovarienne contrôlée (COH).
Typiquement, l'IVM sera proposée aux femmes ayant des ovaires polykystiques (PCO/PCOS), ou aux patientes ayant une excellente réserve ovarienne, c'est-à-dire un nombre élevé de follicules antraux. Le traitement IVM est caractérisé par une administration minimale de FSH ou d'HMG et PAS de déclencheur d'ovulation HCG.
L'approche IVM perturbe moins la vie quotidienne des patients grâce à la réduction du besoin de surveillance hormonale et échographique, évite une série de complications mineures et majeures, telles que le syndrome d'hyperstimulation ovarienne, et vise à réduire le coût total du traitement de l'infertilité pour le patient et pour le budget de la santé.
Les ovocytes humains récupérés à partir de petits follicules antraux sont capables de reprendre la méiose en subissant une dégradation des vésicules germinales et une extrusion du premier globule polaire, s'ils ont atteint la compétence méiotique. Ces ovocytes peuvent être fécondés bien que seule une partie (moins de 50%) d'entre eux puisse se développer davantage en embryons viables. Il a été émis l'hypothèse que l'échec du développement embryonnaire peut, au moins en partie, être dû à un cytoplasme ovocytaire immature.
Les chercheurs ont développé un nouveau système de culture de maturation in vitro humaine (IVM) (nommé CAPACITATION-IVM, ci-après nommé "CAPA") utilisant 1°) des composés naturels connus pour influencer les niveaux de GMPc et d'AMPc dans le complexe cumulus-ovocyte et 2° ) composés qui sont cruciaux pour la diaphonie ovocyte-cumulus. Le maintien d'un niveau élevé d'AMP cyclique après récupération dans l'ovocyte GV empêche l'apparition d'une maturation nucléaire, permettant une communication accrue entre l'ovocyte et les cellules du cumulus. Cela permet d'améliorer la synchronisation des processus de maturation nucléaire et cytoplasmique dans l'ovocyte, au bénéfice de la qualité embryonnaire.
Les résultats cliniques de l'utilisation de CAPA-IVM dans le SOPK au lieu de traitements de FIV-ICSI stimulés par HP-HMG entièrement stimulés par l'antagoniste de la GnRH ont montré des taux de naissances vivantes équivalents après un premier cycle de transfert d'embryons effectué dans une préparation endométriale artificielle dans les deux bras. Néanmoins, le cumul des naissances vivantes CAPA-IVM à 12 mois était de 44%, alors qu'en FIV il était de 62,6. (Vuong et al., 2020). Par conséquent, le taux d'attrition des embryons dans CAPA-IVM est plus élevé que dans l'ART conventionnel. Afin de corriger cette différence de bon nombre d'embryons, il est nécessaire d'affiner les conditions de culture.
Cette étude pilote vise à évaluer l'ajout d'un facteur de croissance important connu sous le nom de facteur de stimulation des colonies de granulocytes macrophages (GM-CSF). Dans une percée récente, il a été démontré que l'ajout de GM-CSF aux milieux IVM peut améliorer le développement des embryons préimplantatoires chez les porcs, les bovins et les souris (résultats non publiés du professeur Mark Nottle, Université d'Adélaïde, Australie). De plus, chez la souris, ces améliorations conduisent à une augmentation du taux d'implantation (+62%) et tendent à augmenter le taux de natalité (+25%) suite au transfert de blastocystes vitrifiés/réchauffés par rapport à l'IVM standard. Sur la base de ces résultats, cette étude pilote vise à déterminer l'effet bénéfique de l'utilisation du GM-CSF pendant le CAPA-IVM biphasique. Les enquêteurs émettent l'hypothèse que l'ajout de GM-CSF aux milieux de culture IVM humains augmentera les taux de grossesse à des niveaux comparables à ceux de la FIV, ce qui en fera une option clinique viable pour les couples suivant un traitement de procréation assistée.
Le GM-CSF (Leukine in EmbryoGene medium, Medicult) a déjà été utilisé comme additif dans la culture d'embryons afin d'augmenter le taux d'implantation des embryons exposés. Cette étude portant sur plus de 1000 patients n'a montré aucun avantage à ajouter systématiquement du GMCSF. Cependant, dans un sous-ensemble de patients, ceux ayant une mauvaise implantation, l'ajout de ce facteur a amélioré les résultats cliniques (Ziebe et al., 2013). Dans cette étude, aucun problème de sécurité n'a été mentionné en exposant des ovocytes humains pendant la fécondation et la formation précoce d'embryons.
Dans l'étude envisagée, il n'y aura qu'une exposition au GM-CSF pendant les étapes de maturation des ovocytes, et les embryons ne seront jamais en contact direct avec le composé expérimental.
Type d'étude
Inscription (Anticipé)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Lan N Vuong, PhD
- Numéro de téléphone: +84903008889
- E-mail: drlan@yahoo.com.vn
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Dang Q Vinh, MD
- Numéro de téléphone: +84908225481
- E-mail: BSVINH.DQ@MYDUCHOSPITAL.VN
Lieux d'étude
-
-
-
Ho Chi Minh City, Viêt Nam
- Recrutement
- My Duc Hospital
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
La description
Critère d'intégration:
- Diagnostiqué comme SOPK selon les critères de Rotterdam (AFC = 25 ou le volume ovarien> 10 ml)
- Accepter de participer à l'étude
Critère d'exclusion:
- Aucune anomalie utérine ou ovarienne majeure
- Endométriose grade 2 ou supérieur
- OAT sévère (concentration <1 million/ml, motilité <10%), sperme chirurgical
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: TRAITEMENT
- Répartition: ALÉATOIRE
- Modèle interventionnel: PARALLÈLE
- Masquage: AUCUN
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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ACTIVE_COMPARATOR: Groupe GM-CSF
Les patients seront répartis au hasard dans le groupe d'intervention avec GM-CSF ajouté au CAPA et au milieu de maturation. Suite à la période CAPA de 24h, l'évaluation de la maturation (MII, GVBD, GV) se fera après 30h d'étape IVM. Les ovules matures sont fécondés par injection intracytoplasmique de spermatozoïdes (ICSI). Les ovocytes fécondés seront placés dans un incubateur time-lapse (ASTEC) et leur développement jusqu'au jour 5/6 (formation de blastocystes) sera suivi. |
GM-CSF ajouté au CAPA et au milieu de maturation
|
ACTIVE_COMPARATOR: Groupe de contrôle
Les patients seront répartis au hasard dans le groupe témoin sans ajout de GM-CSF au CAPA et au milieu de maturation. Suite à la période CAPA de 24h, l'évaluation de la maturation (MII, GVBD, GV) se fera après 30h d'étape IVM. Les ovules matures sont fécondés par injection intracytoplasmique de spermatozoïdes (ICSI). Les ovocytes fécondés seront placés dans un incubateur time-lapse (ASTEC) et leur développement jusqu'au jour 5/6 (formation de blastocystes) sera suivi. |
Le GM-CSF ne sera pas ajouté au CAPA et au milieu de maturation
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Taux de blastulation
Délai: Au moins sept jours après le prélèvement des ovocytes
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Pourcentage de blastocyste par 2 types de culture IVM avec ou sans GM-CSF
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Au moins sept jours après le prélèvement des ovocytes
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Données d'embryologie (taux de maturation, taux de fécondation, taux de blastocystes grade 1 et grade 2)
Délai: Taux de maturation : 2 jours après OPU, Taux de fécondation : 3 jours après OPU, blastocyste grade 1 et 2 : au moins 7 jours après OPU
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Taux de maturation : pourcentage d'ovocytes matures par rapport aux ovocytes prélevés par 2 types de culture IVM Taux de fécondation : pourcentage de 2PN par rapport aux ovocytes injectés par 2 types de culture IVM Taux de blastocystes de grade 1 et 2 : pourcentage de blastocystes de grade 1 et 2 sur le nombre total de blastocystes par 2 types de culture IVM
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Taux de maturation : 2 jours après OPU, Taux de fécondation : 3 jours après OPU, blastocyste grade 1 et 2 : au moins 7 jours après OPU
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Taux de grossesse en cours après le premier transfert du cycle de traitement commencé.
Délai: A 12 semaines de gestation
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La grossesse en cours est définie comme une grossesse avec une fréquence cardiaque détectable à 12 semaines de gestation ou au-delà, après la fin du premier transfert.
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A 12 semaines de gestation
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Taux cumulé de grossesses en cours à 6 mois après la randomisation
Délai: À 12 semaines de gestation à 6 mois après la randomisation. Après 6 mois, la plupart des patientes qui pratiquent l'IVM ont terminé tous leurs embryons congelés ; par conséquent, nous considérons ce moment pour analyser le taux cumulatif de grossesses en cours.
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La grossesse en cours est définie comme une grossesse avec une fréquence cardiaque détectable à 12 semaines de gestation ou au-delà, après transfert de tous les embryons du cycle de traitement commencé.
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À 12 semaines de gestation à 6 mois après la randomisation. Après 6 mois, la plupart des patientes qui pratiquent l'IVM ont terminé tous leurs embryons congelés ; par conséquent, nous considérons ce moment pour analyser le taux cumulatif de grossesses en cours.
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Événements indésirables (taux de SHO, taux de fausses couches, taux ectopique)
Délai: Taux de SHO : à 03 jours après le prélèvement des ovocytes et 14 jours après le transfert d'embryons, Taux de fausses couches : Avant 22 semaines d'âge gestationnel, Taux ectopique : À 5-7 semaines de gestation
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Taux d'OHSS : Des évaluations de routine pour l'OHSS ont été effectuées au jour 3 après le prélèvement des ovocytes dans les deux groupes. À d'autres moments, le SHO était évalué si des symptômes étaient signalés par le patient. Le SHO a été classé à l'aide du diagramme de flux développé par Humaidan et ses collègues pour une utilisation dans le cadre d'essais cliniques Fausse couche définie comme la perte spontanée d'une grossesse clinique avant la semaine 22 de l'âge gestationnel, dans laquelle le ou les embryons ou fœtus sont non viables et n'est/ne sont pas spontanément absorbé(s) ou expulsé(s) de l'utérus. Grossesse extra-utérine définie comme une grossesse dans laquelle l'implantation a lieu en dehors de la cavité utérine |
Taux de SHO : à 03 jours après le prélèvement des ovocytes et 14 jours après le transfert d'embryons, Taux de fausses couches : Avant 22 semaines d'âge gestationnel, Taux ectopique : À 5-7 semaines de gestation
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Le rapport d'expression relatif ( R ) des gènes des cellules du cumulus humain
Délai: les cellules cumulus seront collectées après au moins 30 heures de culture de maturation, stockées à -80oC jusqu'à la purification de l'ARN
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Les cellules de cumulus (CCc) seront collectées, synthèse d'ADNc après purification de l'ARNm, PCR de quantification relative pour détecter l'expression des gènes entre les CC du groupe GM-CSF et les CC du groupe témoin.
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les cellules cumulus seront collectées après au moins 30 heures de culture de maturation, stockées à -80oC jusqu'à la purification de l'ARN
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Niveau d'expression de la méthylation de l'ADN infantile
Délai: Au moment de la livraison
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Le matériel du nouveau-né (sang de cordon, frottis buccaux, tissu placentaire) sera prélevé pour analyse épigénétique. Pipeline informatique pour l'analyse des données de séquençage du bisulfite à l'échelle du génome. Les lectures du séquençage au bisulfite sont d'abord alignées sur le génome de référence. Les données d'alignement peuvent être visualisées dans différentes pistes à des fins de comparaison (groupe témoin vs groupe GM-CSF). Après l'appel de la méthylation, le niveau de méthylation en vrac et le niveau de méthylation à l'échelle du génome sont calculés et tracés, et les DMR (régions différentiellement méthylées) sont déterminées. Pour effectuer une analyse intégrative, les données de méthylation de l'ADN sont couplées à l'expression des gènes, par exemple, les gènes différentiels (DEG), pour délimiter le rôle régulateur de la méthylation de l'ADN. |
Au moment de la livraison
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Tuong M Ho, MD, Hope Research Center
Publications et liens utiles
Publications générales
- Guzman L, Ortega-Hrepich C, Albuz FK, Verheyen G, Devroey P, Smitz J, De Vos M. Developmental capacity of in vitro-matured human oocytes retrieved from polycystic ovary syndrome ovaries containing no follicles larger than 6 mm. Fertil Steril. 2012 Aug;98(2):503-7.e1-2. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.01.114. Epub 2012 Feb 23.
- Guzman L, Adriaenssens T, Ortega-Hrepich C, Albuz FK, Mateizel I, Devroey P, De Vos M, Smitz J. Human antral follicles <6 mm: a comparison between in vivo maturation and in vitro maturation in non-hCG primed cycles using cumulus cell gene expression. Mol Hum Reprod. 2013 Jan;19(1):7-16. doi: 10.1093/molehr/gas038. Epub 2012 Sep 6.
- Heijnen EM, Eijkemans MJ, Hughes EG, Laven JS, Macklon NS, Fauser BC. A meta-analysis of outcomes of conventional IVF in women with polycystic ovary syndrome. Hum Reprod Update. 2006 Jan-Feb;12(1):13-21. doi: 10.1093/humupd/dmi036. Epub 2005 Aug 25.
- Sanchez F, Lolicato F, Romero S, De Vos M, Van Ranst H, Verheyen G, Anckaert E, Smitz JEJ. An improved IVM method for cumulus-oocyte complexes from small follicles in polycystic ovary syndrome patients enhances oocyte competence and embryo yield. Hum Reprod. 2017 Oct 1;32(10):2056-2068. doi: 10.1093/humrep/dex262.
- Ho VNA, Braam SC, Pham TD, Mol BW, Vuong LN. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Hum Reprod. 2019 Jun 4;34(6):1055-1064. doi: 10.1093/humrep/dez060.
- Ziebe S, Loft A, Povlsen BB, Erb K, Agerholm I, Aasted M, Gabrielsen A, Hnida C, Zobel DP, Munding B, Bendz SH, Robertson SA. A randomized clinical trial to evaluate the effect of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) in embryo culture medium for in vitro fertilization. Fertil Steril. 2013 May;99(6):1600-9. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.12.043. Epub 2013 Feb 4.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (RÉEL)
Achèvement primaire (ANTICIPÉ)
Achèvement de l'étude (ANTICIPÉ)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (RÉEL)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (RÉEL)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
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