- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT07500337
Day-4 Deframmentazione dell'Embrione: Tasso di Blastocisti e Risultati Clinici (DEBRIS)
Effetto della Deframmentazione dell'Embrione al Giorno 4 (D4) sul Tasso di Sviluppo della Blastocisti e sugli Esiti Clinici nei Cicli di ART: uno Studio RCT Prospettico
Background:
La frammentazione embrionale è uno dei principali parametri morfologici valutati durante la coltura in vitro nelle tecniche di procreazione medicalmente assistita (PMA). La presenza di frammenti citoplasmatici anucleati è comunemente osservata negli embrioni umani e può influire negativamente sul potenziale di sviluppo e sugli outcome clinici. La deframmentazione embrionale nelle fasi precoci (giorno 2-3) è una tecnica consolidata in alcuni centri, ma le evidenze rimangono eterogenee. La deframmentazione al giorno 4 (stadio di morula/compattazione) rappresenta un'area significativamente meno esplorata, con dati promettenti ma insufficienti per guidare la pratica clinica.
Study Objective:
Questo studio mira a valutare se la deframmentazione embrionale meccanica o assistita da laser eseguita al giorno 4 (D4) di coltura in vitro migliori i tassi di sviluppo a blastocisti e gli outcome clinici nei cicli di PMA, rispetto alla coltura standard senza intervento.
Study Design:
Questo è uno studio prospettico, randomizzato controllato (RCT) con valutazione in singolo cieco. Pazienti sottoposti a IVF/ICSI con embrioni che mostrano ≥10% di frammentazione alla valutazione morfologica al D4 saranno randomizzati (rapporto 1:1) in uno dei due gruppi:
Group A (Intervention): Deframmentazione meccanica/laser al D4, seguita da coltura standard a blastocisti Group B (Control): Coltura standard a blastocisti senza alcuna manipolazione aggiuntiva
La randomizzazione sarà effettuata a livello di paziente utilizzando liste di randomizzazione a blocchi pre-generate, stratificate per età della paziente (<35 vs. ≥35 anni), numero di embrioni frammentati al D4 e utilizzo del test genetico preimpianto (PGT-A).
Participants:
Donne di età 18-43 anni sottoposte a cicli di IVF/ICSI, con almeno un embrione che mostra ≥10% di frammentazione al D4 e destinato alla coltura a blastocisti. I criteri di esclusione principali includono: cicli con gameti da donatore, PGT-M come indicazione primaria, embrioni con >50% di frammentazione, o grave compromissione morfologica al giorno 3.
Primary Outcome:
Tasso di blastocisti utilizzabili (punteggio Gardner ≥3BB) per embrione incluso nello studio, valutato al giorno 5 e giorno 6 di coltura.
Secondary Outcomes:
Tasso complessivo di sviluppo a blastocisti (D5/D6), distribuzione del punteggio Gardner, tasso di crioconservazione delle blastocisti, tasso di impianto, tasso di gravidanza clinica (battito cardiaco a 7 settimane), tasso di gravidanza in corso (oltre 12 settimane), tasso di nati vivi per transfer e analisi morfocinetica (se disponibile incubatore time-lapse).
Sample Size:
Circa 240 pazienti totali (120 per braccio), basato su un tasso atteso di blastocisti di ~42% nel gruppo di controllo vs. ~57% nel gruppo di intervento (differenza assoluta del 15%), con potenza dell'80% e α=0.05. Viene applicata una correzione per il 15% di dropout.
Duration:
6 mesi di arruolamento più 6 mesi di follow-up clinico (totale ~12 mesi).
Panoramica dello studio
Stato
Descrizione dettagliata
BACKGROUND AND SCIENTIFIC RATIONALE La frammentazione embrionale è una delle anomalie morfologiche più frequentemente osservate durante la coltura in vitro nelle tecniche di procreazione medicalmente assistita (PMA).
Frammenti citoplasmatici anucleati derivano da divisione cellulare asimmetrica o processi apoptotici e possono interessare una proporzione variabile del volume dell'embrione.
La loro presenza è stata costantemente associata a un potenziale di impianto ridotto, tassi di formazione di blastocisti inferiori e risultati clinici peggiori nei cicli di FIVET/ICSI.
Gli attuali sistemi di classificazione degli embrioni, incluso il Consenso di Istanbul e il sistema di punteggio di Gardner per le blastocisti, includono la frammentazione come parametro morfologico chiave.
Gli embrioni con frammentazione ≥10% agli stadi di segmentazione sono generalmente considerati avere un potenziale di sviluppo ridotto ma non assente, e la loro gestione - in particolare se l'intervento attivo per rimuovere i frammenti sia benefico - rimane oggetto di dibattito in corso.
La deframmentazione embrionale meccanica e laser-assistita agli stadi precoci di segmentazione (Giorno 2-Giorno 3) è stata praticata in selezionati laboratori di PMA per diversi decenni.
La logica è che la rimozione fisica dei frammenti anucleati possa alleviare i vincoli di sviluppo sui blastomeri, ridurre la segnalazione citotossica o apoptotica e migliorare la compattazione e la formazione della blastocisti.
Tuttavia, le evidenze pubblicate sulla deframmentazione precoce sono eterogenee: alcuni studi riportano miglioramenti nello sviluppo della blastocisti e nei tassi di gravidanza, mentre altri non mostrano benefici significativi o addirittura potenziali danni dovuti allo stress meccanico durante la manipolazione.
Una lacuna critica nella letteratura riguarda la deframmentazione eseguita al Giorno 4 (D4) di coltura, corrispondente allo stadio di morula e compattazione precoce.
Entro il D4, gli embrioni che hanno mantenuto con successo la competenza di sviluppo stanno subendo la compattazione - un evento morfogenetico chiave che coinvolge la polarizzazione cellulare, la formazione di giunzioni strette e l'istituzione delle linee di massa cellulare interna e trofectoderma.
La logica biologica della deframmentazione al D4 differisce dagli interventi precedenti: a questo stadio, la relazione tra frammenti e blastomeri in compattazione può essere più chiaramente definita, e la rimozione dei frammenti potrebbe interferire meno con la divisione cellulare in corso mentre potenzialmente supporta il processo di compattazione.
Dati osservazionali preliminari del nostro centro suggeriscono che la deframmentazione al D4 potrebbe essere associata a tassi più elevati di blastocisti utilizzabili rispetto ai controlli storici, in particolare negli embrioni con frammentazione moderata (10-50%).
Questi risultati preliminari, sebbene incoraggianti, sono stati ottenuti da dati non randomizzati e sono soggetti a bias di selezione.
Uno studio prospettico randomizzato controllato (RCT) è quindi necessario per determinare se la deframmentazione al D4 migliori effettivamente gli esiti di sviluppo e clinici.
STUDY DESIGN Questo è uno studio prospettico, randomizzato, controllato, in singolo cieco (studio DEBRIS-D4 / DEFRAG-D4).
Lo studio è progettato secondo le linee guida CONSORT per la rendicontazione di studi randomizzati e segue la checklist SPIRIT per i protocolli di studio clinico.
Design in singolo cieco: L'embriologo che esegue la valutazione della qualità della blastocisti al D5/D6 e il sonografo che valuta la gravidanza clinica saranno in cieco rispetto all'assegnazione del braccio di trattamento.
Il mascheramento dell'embriologo che esegue la procedura al D4 non è fattibile a causa della natura dell'intervento.
Unità di randomizzazione: La randomizzazione avviene a livello del paziente (non a livello dell'embrione), per evitare contaminazione tra i gruppi e riflettere la realtà clinica della gestione della coorte embrionale.
Fattori di stratificazione:
Età della paziente: <35 anni vs. ≥35 anni Numero di embrioni con frammentazione ≥10% al D4: 1-2 vs. ≥3 Utilizzo del test genetico preimpianto per aneuploidie (PGT-A): sì vs. no
Metodo di randomizzazione: Liste di randomizzazione a blocchi pre-generate con dimensioni variabili dei blocchi (4 e 6), gestite tramite buste sequenzialmente numerate, sigillate e opache.
Le buste vengono aperte la mattina del Giorno 4, dopo che la valutazione morfologica conferma la presenza di almeno un embrione che soddisfa i criteri di inclusione.
STUDY POPULATION
Criteri di Inclusione:
Pazienti di sesso femminile sottoposte a cicli di FIVET/ICSI presso il centro partecipante Età 18-43 anni FSH basale < 20 mIU/mL Presenza di ≥1 embrione con frammentazione citoplasmatica ≥10% alla valutazione morfologica del D4 Embrioni destinati a coltura estesa fino allo stadio di blastocisti (D5/D6) Consenso informato scritto ottenuto prima di qualsiasi procedura correlata allo studio
Criteri di Esclusione:
Cicli con gameti donatori (donazione di ovociti o spermatozoi) Cicli con test genetico preimpianto per malattie monogeniche (PGT-M) come indicazione primaria Embrioni con frammentazione diffusa >50% o grave compromissione morfologica al Giorno 3 Partecipazione contemporanea ad altri studi interventistici che potrebbero interferire con gli esiti dello studio Incapacità di fornire il consenso informato
INTERVENTIONS
Gruppo A - Deframmentazione al D4 (Intervento):
La deframmentazione meccanica o laser-assistita sarà eseguita al Giorno 4 (96 ± 2 ore post-fecondazione), immediatamente dopo la valutazione morfologica mattutina.
Tutti gli embrioni appartenenti a pazienti randomizzate al Gruppo A con frammentazione ≥10% subiranno la procedura.
La procedura di deframmentazione sarà eseguita in condizioni standard di micromanipolazione:
Ambiente con bassa esposizione luminosa Temperatura controllata a 37°C (piattaforma riscaldata) Tempo massimo fuori dall'incubatore per paziente: ≤10 minuti Tecnica: deframmentazione meccanica utilizzando una pipetta da biopsia o rimozione laser-assistita (secondo la procedura operativa standard specifica del centro) Dopo la deframmentazione, gli embrioni saranno rimessi in coltura nelle stesse condizioni standard (incubatore time-lapse o incubatore convenzionale, a seconda del caso)
Gruppo B - Coltura Standard (Controllo):
Gli embrioni nel braccio di controllo non riceveranno alcuna manipolazione aggiuntiva oltre alla valutazione morfologica di routine al D4.
Per garantire la comparabilità delle condizioni di coltura tra i gruppi, la valutazione al D4 nei pazienti di controllo sarà eseguita dallo stesso operatore con la stessa durata di apertura dell'incubatore del gruppo di intervento (cioè, gli embrioni saranno brevemente rimossi per la valutazione ma immediatamente reinseriti senza intervento).
Standardizzazione di Laboratorio:
Per entrambi i bracci, le condizioni di coltura saranno identiche durante tutto lo studio:
Mezzo di coltura: prodotto standardizzato (da specificare nel protocollo finale) Tipo di incubatore: identico per entrambi i bracci (preferibilmente time-lapse) Atmosfera gassosa: composizione standardizzata di CO₂/O₂/N₂ Valutazioni morfologiche a: Giorno 1 (controllo fecondazione), Giorno 3, Giorno 4 (randomizzazione), Giorno 5, Giorno 6 Punteggio blastocisti: sistema di classificazione di Gardner (espansione, grado ICM, grado TE)
OUTCOME MEASURES
Esito Primario:
Tasso di blastocisti utilizzabili (punteggio Gardner ≥3BB) per embrione incluso nello studio, valutato al Giorno 5 e Giorno 6 di coltura in vitro (periodo di tempo: 6 giorni dalla fecondazione).
Esiti Secondari (con periodi di tempo):
Tasso complessivo di sviluppo di blastocisti (D5 + D6 combinati) - periodo di tempo: Giorno 6 Distribuzione dei punteggi di Gardner tra le blastocisti ottenute - periodo di tempo: Giorno 6 Tasso di crioconservazione delle blastocisti - periodo di tempo: Giorno 6-7 Tasso di impianto (sacco gestazionale per blastocisti trasferita) - periodo di tempo: 5 settimane post-trasferimento Tasso di gravidanza clinica (battito cardiaco rilevato all'ecografia a 7 settimane) - periodo di tempo: 7 settimane post-trasferimento Tasso di gravidanza in corso (gravidanza vitale oltre le 12 settimane di gestazione) - periodo di tempo: 12 settimane post-trasferimento Tasso di nascite vive per trasferimento embrionale - periodo di tempo: circa 9 mesi post-trasferimento Analisi morfocinetica (se incubatore time-lapse disponibile per entrambi i bracci) - periodo di tempo: Giorno 6 Tasso di aneuploidie negli embrioni sottoposti a PGT-A (endpoint esplorativo) - periodo di tempo: Giorno 5-6 (biopsia) più tempo di elaborazione del laboratorio
STATISTICAL ANALYSIS PLAN
Calcolo della Dimensione Campionaria:
La dimensione campionaria si basa sull'endpoint primario (tasso di blastocisti utilizzabili ≥3BB per embrione).
Assumendo un tasso di blastocisti del 42% nel gruppo di controllo e del 57% nel gruppo di intervento (differenza assoluta del 15%), con potenza dell'80%, α a due code = 0,05, utilizzando il test chi-quadrato con correzione di continuità di Fleiss:
N per braccio ≈ 100-110 pazienti Con correzione per dropout del 15%: N per braccio ≈ 115-130 pazienti Dimensione campionaria totale stimata: N ≈ 230-260 pazienti
Il calcolo della dimensione campionaria sarà aggiornato con dati preliminari definitivi del centro prima della registrazione finale.
Sarà ottenuta una consulenza statistica con un biostatistico prima dell'inizio dell'arruolamento.
Analisi Primaria:
Il tasso di blastocisti utilizzabili sarà confrontato tra i due bracci utilizzando il test chi-quadrato (o il test esatto di Fisher per campioni piccoli).
L'analisi primaria seguirà il principio Intention-To-Treat (ITT), includendo tutti i pazienti randomizzati indipendentemente dalle deviazioni dal protocollo.
Analisi Secondarie:
Regressione logistica multivariabile aggiustata per covariate pre-specificate (età del paziente, grado di frammentazione, operatore, tipo di incubatore) Analisi di sottogruppo pre-specificate: età <35 vs. ≥35 anni; grado di frammentazione (10-25% vs. 26-50%); tipo di incubatore (time-lapse vs. convenzionale) Analisi per-protocollo (PP) come analisi di sensibilità Analisi di sopravvivenza di Kaplan-Meier per gli esiti di gravidanza in corso e nascite vive
Analisi Intermedia:
Un'analisi intermedia pre-pianificata sarà condotta al 50% dell'arruolamento (circa N=120 pazienti), esaminata da un Comitato di Monitoraggio della Sicurezza dei Dati (DSMB) indipendente.
Le regole di arresto seguiranno il limite di O'Brien-Fleming per l'efficacia e criteri pre-specificati per la sicurezza.
Dati Mancanti:
I dati mancanti per l'endpoint primario saranno gestiti utilizzando l'imputazione dello scenario peggiore.
Per i dati sugli esiti clinici, sarà applicata l'imputazione multipla per dati mancanti in modo casuale.
DATA COLLECTION AND MANAGEMENT
I dati saranno raccolti prospetticamente utilizzando una Cartella Clinica dello Studio (CRF) standardizzata.
I domini di dati chiave includono:
Dati basali del paziente: età, BMI, FSH, AMH, conta follicolare antrale (AFC), indicazione alla PMA, numero di cicli precedenti, protocollo di stimolazione, numero di ovociti recuperati e fecondati.
Dati di laboratorio al D4: numero di embrioni valutati, numero con frammentazione ≥10%, grado di frammentazione per embrione (%), stadio morfodinamico al D4 (morula in compattazione, morula completa, ecc.), braccio di randomizzazione, tecnica di deframmentazione (solo Gruppo A), durata della procedura, note operative.
Dati di laboratorio al D5/D6: numero di blastocisti per giorno, punteggio di Gardner per blastocisti (valutato dall'embriologo in cieco), numero di blastocisti crioconservate.
Dati sugli esiti clinici: trasferimento embrionale eseguito (sì/no), numero di blastocisti trasferite, gravidanza biochimica (beta-hCG), gravidanza clinica (battito cardiaco a 7 settimane), gravidanza in corso (12 settimane), nascita viva.
Tutti i dati saranno pseudonimizzati.
La gestione dei dati sarà conforme al GDPR (Regolamento UE 679/2016) e alla legislazione italiana applicabile in materia di protezione dei dati (D.Lgs. 196/2003).
I dati saranno archiviati in un database sicuro con accesso controllato.
ETHICS AND REGULATORY COMPLIANCE Lo studio ha ottenuto un parere favorevole dal Comitato Etico locale.
Tutti i pazienti riceveranno una dettagliata scheda informativa per il paziente e forniranno il consenso informato scritto prima di qualsiasi procedura correlata allo studio.
Il consenso dello studio è separato dal consenso standard per il ciclo di FIVET/ICSI.
Lo studio sarà registrato su ClinicalTrials.gov prima dell'arruolamento del primo partecipante, in conformità con i requisiti ICMJE per la registrazione degli studi clinici.
È prevista anche la registrazione parallela su ISRCTN (Europa).
Lo studio è condotto in conformità con la Dichiarazione di Helsinki, le linee guida ICH Good Clinical Practice (GCP) e i requisiti normativi italiani ed europei applicabili.
STUDY TIMELINE (ESTIMATED)
Finalizzazione del protocollo e formazione del team: 1 mese Registrazione su ClinicalTrials.gov e ISRCTN: 2 settimane Fase di rodaggio (calibrazione della procedura e audit interno): 1 mese Arruolamento attivo: 6 mesi Analisi intermedia DSMB: Mese 6 Follow-up clinico (gravidanza in corso e nascite vive): 6 mesi post-arruolamento Analisi statistica finale: 1 mese Preparazione e sottomissione del manoscritto: 1 mese Durata totale stimata: ~20 mesi
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Giorgio Maria Baldini, Medical Doctor
- Numero di telefono: +39 0803962313
- Email: gbaldini97@gmail.com
Backup dei contatti dello studio
- Nome: Domenico Baldini, Medicine
- Numero di telefono: +39 3337845481
- Email: dbaldini@libero.it
Luoghi di studio
-
-
BT
-
Bisceglie, BT, Italia, 76011
- Reclutamento
- MOMO' Fertilife
-
Contatto:
- Daniele Ferri, Biology
- Numero di telefono: +39 3703039500
- Email: danieleferrimomo@gmail.com
-
Contatto:
- Dario Lot, Biology
- Numero di telefono: +39 3926179017
- Email: dariolot92@gmail.com
-
Investigatore principale:
- Derna Albrizio, Medicine
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Adulto
Accetta volontari sani
Descrizione
Criteri di inclusione:
- Pazienti di sesso femminile sottoposte a cicli di ICSI presso il centro partecipante
- Età 18-42 anni
- Presenza di almeno una morula con frammentazione citoplasmatica ≥10% alla valutazione morfologica del Giorno 4 (Grado B: 10-25%, Grado C: 26-50%, Grado D: ≥50%)
- Embrioni destinati a cultura estesa fino allo stadio di blastocisti (Giorno 5/Giorno 6)
- Tutte le colture embrionali eseguite in incubatore time-lapse (Geri, Genea Biomedex)
- Consenso informato scritto ottenuto prima di qualsiasi procedura correlata allo studio
Criteri di esclusione:
- Riserva ovarica severamente ridotta (AMH ≤ 0,5 ng/mL)
- Indice di massa corporea (BMI) ≥ 32 kg/m²
- Diagnosi di endometriosi
- Sindrome dell'ovaio policistico (PCOS)
- Età materna ≥ 42 anni
- Storia di ripetuti fallimenti di impianto
- Cicli con gameti donati (donazione di ovociti o spermatozoi)
- Cicli con test genetico preimpianto per malattia monogenica (PGT-M) come indicazione primaria
- Embrioni con grave compromissione morfologica al Giorno 3
- Partecipazione contemporanea ad altri studi interventistici che potrebbero interferire con gli esiti dello studio
- Incapacità di fornire il consenso informato scritto
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Trattamento
- Assegnazione: Randomizzato
- Modello interventistico: Assegnazione parallela
- Mascheramento: Separare
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
|
Comparatore fittizio: Gruppo D4 Non Deframmentato
Embrioni con frammentazione citoplasmatica ≥10% alla valutazione morfologica del giorno 4, randomizzati a coltura blastocistica standard senza alcuna manipolazione aggiuntiva.
La valutazione del giorno 4 viene eseguita nelle stesse condizioni del gruppo di intervento per garantire la comparabilità delle condizioni di coltura.
|
Coltura standard di blastocisti senza alcuna manipolazione aggiuntiva.
La valutazione morfologica del giorno 4 viene eseguita nelle stesse condizioni del gruppo di intervento per garantire la comparabilità delle condizioni di coltura.
|
|
Sperimentale: D4 Gruppo Deframmentato
Embrioni con frammentazione citoplasmatica ≥10% alla valutazione morfologica del Giorno 4, randomizzati a subire deframmentazione meccanica o assistita da laser il Giorno 4 (96 ± 2 ore post-fecondazione).
Dopo la deframmentazione, gli embrioni vengono riportati alle condizioni standard di coltura blastocistica fino alla valutazione del Giorno 5/Giorno 6.
|
Aspirazione microchirurgica dei frammenti citoplasmatici dalle morule con ≥10% di frammentazione, eseguita al giorno 4 dello sviluppo embrionale (96 ± 2 ore post-ICSI), quando i blastomeri stanno già compattandosi e i frammenti sono chiaramente distinguibili dalla massa cellulare compatta.
Viene utilizzato un laser a diodi (lunghezza d'onda 1,48 µm) per perforare la zona pellucida, seguito dall'aspirazione dei frammenti mediante un ago da biopsia da 35 µm montato su un sistema di microiniezione idraulica a olio. I frammenti di consistenza più morbida vengono aspirati direttamente; i frammenti più duri vengono ancorati con la punta dell'ago ed estratti meccanicamente. La procedura viene eseguita su un palco riscaldato a 37°C utilizzando un mezzo tamponato con HEPES (G-MOPS Plus, Vitrolife), con un tempo massimo di manipolazione di 10 minuti per paziente. Tutti gli embrioni vengono coltivati in un incubatore time-lapse (Geri, Genea Biomedex) in atmosfera controllata (6% CO2, 5% O2) per tutta la durata dello studio. |
|
Comparatore attivo: Gruppo di Controllo (Bassa Frammentazione)
Embrioni con frammentazione citoplasmatica <10% alla valutazione morfologica del Giorno 4, coltivati in condizioni standard senza intervento.
Questo braccio serve come riferimento biologico di benchmark per valutare se la deframmentazione nel Gruppo A ripristina la competenza dello sviluppo ai livelli osservati negli embrioni a bassa frammentazione.
|
Coltura standard di blastocisti senza alcuna manipolazione aggiuntiva.
La valutazione morfologica del giorno 4 viene eseguita nelle stesse condizioni del gruppo di intervento per garantire la comparabilità delle condizioni di coltura.
|
Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
|
Tasso di gravidanza clinica
Lasso di tempo: 4 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
|
Tasso di test beta-hCG positivi 12-14 giorni dopo il trasferimento di un singolo blastocisti, confermato da ecografia transvaginale che mostra sacco gestazionale e vitalità fetale a 4 settimane dal trasferimento.
|
4 settimane dopo il trasferimento dell'embrione
|
Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
|
Tasso di formazione della blastocisti
Lasso di tempo: Giorno 5 e Giorno 6 post-fecondazione
|
Tasso di blastocisti (di qualsiasi qualità) sviluppate da morule al Giorno 5/Giorno 6, calcolato come numero di blastocisti diviso per il numero di morule incluse nello studio.
Valutato da un embriologo in cieco.
|
Giorno 5 e Giorno 6 post-fecondazione
|
Collaboratori e investigatori
Sponsor
Investigatori
- Investigatore principale: Giorgio Maria baldini, Medicine, Department of Interdisciplinary Medicine, University of Bari "Aldo Moro"
- Direttore dello studio: domenico baldini, medicine, IVF Center MOMO' FERTILIFE
- Cattedra di studio: Daniele Ferri, Biology, IVF Center MOMO' FERTILIFE
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Petrushko M, Yurchuk T, Piniaiev V, Buderatska N. Cryopreservation of incomplete compacted morulae and preliminary biopsy of excluded fragments. Zygote. 2019 Dec;27(6):386-391. doi: 10.1017/S0967199419000455. Epub 2019 Aug 15.
- Eftekhari-Yazdi P, Valojerdi MR, Ashtiani SK, Eslaminejad MB, Karimian L. Effect of fragment removal on blastocyst formation and quality of human embryos. Reprod Biomed Online. 2006 Dec;13(6):823-32. doi: 10.1016/s1472-6483(10)61031-0.
- Kim SG, Kim YY, Park JY, Kwak SJ, Yoo CS, Park IH, Sun HG, Kim JW, Lee KH, Park HD, Chi HJ. Early fragment removal on in vitro fertilization day 2 significantly improves the subsequent development and clinical outcomes of fragmented human embryos. Clin Exp Reprod Med. 2018 Sep;45(3):122-128. doi: 10.5653/cerm.2018.45.3.122. Epub 2018 Sep 3.
- Sordia-Hernandez LH, Morales-Martinez FA, Frazer-Moreira LM, Villarreal-Pineda L, Sordia-Pineyro MO, Valdez-Martinez OH. Clinical Pregnancy After Elimination of Embryo Fragments Before Fresh Cleavage-stage Embryo Transfer. J Family Reprod Health. 2020 Sep;14(3):198-204. doi: 10.18502/jfrh.v14i3.4674.
- Alikani M, Calderon G, Tomkin G, Garrisi J, Kokot M, Cohen J. Cleavage anomalies in early human embryos and survival after prolonged culture in-vitro. Hum Reprod. 2000 Dec;15(12):2634-43. doi: 10.1093/humrep/15.12.2634.
Collegamenti utili
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Inizio studio (Effettivo)
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Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
Primo Inserito (Effettivo)
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Parole chiave
Termini MeSH pertinenti aggiuntivi
Altri numeri di identificazione dello studio
- 205/CE/2025
Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)
Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?
Descrizione del piano IPD
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Studia un dispositivo regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti
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